-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Изготовление инженерных сосудистых лоскутов с использованием технологий 3D-печати
Изготовление инженерных сосудистых лоскутов с использованием технологий 3D-печати
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Fabrication of Engineered Vascular Flaps Using 3D Printing Technologies

Изготовление инженерных сосудистых лоскутов с использованием технологий 3D-печати

Full Text
4,675 Views
08:31 min
May 19, 2022

DOI: 10.3791/63920-v

Majd Machour1, Ariel A. Szklanny1, Shulamit Levenberg1

1Faculty of Biomedical Engineering,Technion-Israel Institute of Technology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines a method for creating a 3D printed tissue flap with a hierarchical vascular network, enabling direct microsurgical anastomoses to the rat femoral artery. The approach combines advanced 3D printing techniques to facilitate the study of blood vessel behavior during in vivo integration.

Key Study Components

Area of Science

  • Tissue Engineering
  • Vascular Biology
  • 3D Bioprinting

Background

  • Engineered flaps require functional vascular networks for successful integration.
  • Current methods lack efficient techniques for creating vascularized tissue constructs.
  • This study aims to address these limitations through innovative 3D printing methods.
  • Understanding blood vessel behavior is crucial for developing effective tissue engineering strategies.

Purpose of Study

  • To fabricate a 3D printed tissue flap with a hierarchical vascular network.
  • To enable direct anastomosis with host blood vessels.
  • To provide a platform for studying tissue development and integration.

Methods Used

  • Combination of micro and mesoscale 3D printing techniques.
  • Preparation of polymer solutions and cell suspensions for bioprinting.
  • Use of lyophilization and solvent removal to create scaffolds.
  • Microsurgical techniques for anastomosing the engineered flaps to host vessels.

Main Results

  • Successful fabrication of vascularized tissue flaps with hierarchical networks.
  • Demonstrated feasibility of direct anastomosis to the rat femoral artery.
  • Provided insights into blood vessel behavior during in vivo integration.
  • Established a foundation for future studies on tissue-specific cell incorporation.

Conclusions

  • The developed method enhances the potential for treating large tissue defects.
  • It opens avenues for further research on vascularized tissue constructs.
  • This approach can be adapted for various bioink and support material evaluations.

Frequently Asked Questions

What is the significance of a hierarchical vascular network?
A hierarchical vascular network is crucial for ensuring adequate blood supply and nutrient delivery in engineered tissues.
How can this method be applied in clinical settings?
This technique can be used to create vascularized flaps for reconstructive surgery and tissue regeneration.
What are the potential applications of the engineered flaps?
They can be used for treating large tissue defects and studying tissue development and integration.
What types of cells can be incorporated into the flaps?
Various tissue-specific cells can be incorporated to study their effects on tissue integration and function.
What challenges does this method address in tissue engineering?
It addresses the challenge of creating functional vascular networks within engineered tissues.
How does this study contribute to the field of vascular biology?
It provides insights into blood vessel behavior and integration, which are critical for developing effective tissue engineering strategies.

Инженерные клапаны требуют встроенной функциональной сосудистой сети. В этом протоколе мы представляем метод изготовления 3D-печатного тканевого лоскута, содержащего иерархическую сосудистую сеть и ее прямые микрохирургические анастомозы к бедренной артерии крысы.

Наш протокол позволяет исследователям генерировать иерархические сети сосудов в полностью спроектированном и имплантируемом лоскуте, что проложило путь для новых исследований поведения кровеносных сосудов в рамках интеграции in vivo. Этот метод сочетал в себе универсальность двух технологий 3D-печати для создания и сборки сосудов на микро- и мезомасштабе, которые могут быть непосредственно анастомозированы с сосудами-хозяевами с помощью микрохирургии. Полностью спроектированные васкуляризированные лоскуты могут использоваться для лечения больших дефектов тканей, а также для обеспечения платформы для изучения развития тканей и интеграции.

Предложенные способы могут быть расширены для изучения инкорпорации тканеспецифических клеток, а также для оценки использования различных биочернил и вспомогательных материалов. Начните с заполнения формы BVOH 30 микролитрами раствора полимера. Центрифугируйте форму в 100 раз г в течение 2 минут и доливайте форму еще 20 микролитрами полимерного раствора для обеспечения полного наполнения.

Заморозьте заполненные формы при минус 80 градусах Цельсия в течение не менее 30 минут, чтобы весь полимерный раствор замерз. Удалите растворитель из форм, лиофилизируя их на ночь. Чтобы удалить жертвенный материал плесени, перенесите формы после процесса сублимационной сушки на 5-литровую деионизированную водяную баню при мягком перемешивании.

Замените воду в ванне, когда она помутнеет. Когда все BVOH растворится, высушите каркасы на воздухе и храните их в вакуумной камере до использования. Перенесите приблизительно 4 миллилитра подготовленного, уплотненного опорного материала в каждую скважину 12-луночной пластины с помощью пипетки с положительным смещением.

Постучите пластиной колодца по твердой поверхности, чтобы заставить опорный материал равномерно распределяться в колодце. Приготовьте суспензию, содержащую 2 миллиона HAMEC-ZsGreen и 6 миллионов стволовых клеток пульпы зубов в 10 миллилитрах среды эндотелиальных клеток. Центрифугируют клеточную суспензию в 200 раз г в течение 4 минут для получения клеточной гранулы, затем аспирируют надосадочную среду и повторно суспендируют клеточную гранулу в 1 миллилитре биочернила rhCollMA для получения биочернила с общей клеточной концентрацией 8 миллионов клеток на 1 миллилитр биочернила.

Установите иглу внутреннего диаметра 0,22 миллиметра на 3-миллилитровый янтарный печатный картридж и поместите картридж в 50-миллилитровую коническую трубку. Переложите 1 миллилитр клеточно-биочернилой смеси на картридж, заполнив его сверху с помощью пипетки с положительным смещением для уменьшения пузырьков. Установите картридж в соответствующий инструмент на биопринтере.

Набросайте 2D-рисунок 4-миллиметрового квадрата, содержащего в центре круглый канал диаметром 2 миллиметра. Выдавите эскиз на 4 миллиметра, чтобы получить 4-миллиметровый куб с центральным каналом. Экспортируйте этот объект в виде STL-файла.

Импортируйте 12-луночный шаблон STL пластины на вкладку твердотельного моделирования в программном обеспечении для нарезки биопринтера и поместите его в назначенную область виртуального печатного ложа. Импортируйте STL-файл фигуры куба на вкладку моделирования твердого тела в программном обеспечении для нарезки биопринтера. Установите флажок Использовать внешний срез, а затем настройте срез в разделе свойств объекта.

Во всплывающем окне выберите прямолинейный узор для шаблона заливки и введите плотность заливки 30%, нажмите кнопку Принять. Нажмите на куб и переместите его с помощью мыши, чтобы поместить копию формы куба в каждый нужный виртуальный колодец. Нажмите кнопку «Добавить материал» на вкладке «Материалы» программного обеспечения для нарезки биопринтера, чтобы создать новые настройки материала для биочернила rhCollMA.

Выберите параметры материала для печати. Для давления введите 2 psi, а для скорости 20 миллиметров в секунду в соответствующих полях. Присвойте значениям ширины и высоты строки 0,24 мм, а значению ускорения — 400 миллиметров в квадратную секунду.

На вкладке «Моделирование твердого тела» щелкните объект куба, а затем щелкните материал rhCollMA из раздела материала, чтобы назначить его форме куба. На вкладке биосборки нажмите кнопку Отправить задание на печать, чтобы отправить задание печати на биопринтер. Загрузите картридж, загруженный ячеистым биочернилом, в 3-миллилитровый пневматический дозирующий инструмент биопринтера на основе экструзии 3D.

Нажмите кнопку Cool под вкладкой Control Heating или Cooling на экране интерфейса биопринтера, чтобы установить температуру печатного слоя на 4 градуса Цельсия. Загрузите пластину с опорной ванной на кровать принтера. На вкладке Печать на экране интерфейса биопринтера щелкните задание печати, затем нажмите кнопку Пуск, а затем GO, чтобы начать задание печати.

После печати подвергните пластину скважины 405-нанометровому источнику света с интенсивностью 3 милливатта на квадратный сантиметр в течение 30 секунд, чтобы инициировать сшивание биочернила rhCollMA. После сшивки инкубируйте пластину скважины при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа в течение не менее 20 минут, пока вся опорная ванна не расплавится. Аккуратно аспирируйте сжиженную опорную ванну и замените ее средой эндотелиальных клеток.

Инкубируйте конструкции при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа. Сразу после удаления поддерживающего материала из биопечатной микрососудистой сети поместите сосудистый каркас PLLA:PLGA с фибронектиновым покрытием рядом с биопечатной структурой. Вставьте сосудистый каркас в основной канал биопечатной структуры.

Инкубируйте собранные конструкции при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа в течение двух дней. Готовят клеточную суспензию tdTomato-экспрессирующих микрососудистых эндотелиальных клеток человека в концентрации 10 миллионов клеток на миллилитр. Поместите 20-микролитровую каплю этой клеточной суспензии на гидрофобную поверхность.

Аккуратно поместите сосудистые каркасы поверх капли так, чтобы просвет каркаса на одном конце соприкасался с каплей клетки. Аспирируйте каплю с противоположного конца каркаса, заполняя его просвет клеточной суспензией. Поместите сидячий каркас в микроцентрифужную трубку и поместите его в ротатор внутри увлажненного инкубатора на 60 минут.

Наконец, переложите каркас в 12-луночную пластину и добавьте 2 миллилитра эндотелиальной клеточной среды. Вид сбоку репрезентативного инженерного лоскута, изображенного через четыре дня после эндотелиальной выстилки сосудистого каркаса, показан здесь. Биопечатное микроциркуляторное русло показано зеленым цветом, в то время как эндотелиальная подкладка показана красным.

Репрезентативное изображение показывает анастомозы между биопечатной сосудистой системой и эндотелиальной оболочкой. Иммуноокрашивание гладкой мускулатуры актина, ядер и эндотелиальных клеток после семи дней инкубации показано здесь. Репрезентативное изображение отображает завершенные анастомозы инженерного лоскута с бедренной артерией крысы до снятия зажима и после снятия зажима.

Этот метод может быть использован для изучения созревания и интеграции 3D-печатной сосудистой системы in vivo и мониторинга перфузии имплантата в задней конечности для установления потенциала и безопасности его использования для лечения дефектов тканей.

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 183

Related Videos

Спроектированный васкуляризированных лоскута

08:18

Спроектированный васкуляризированных лоскута

Related Videos

8.7K Views

Жизнеспособность Bioprinted Сотовые конструктов Использование Три диспенсер декартово принтера

07:05

Жизнеспособность Bioprinted Сотовые конструктов Использование Три диспенсер декартово принтера

Related Videos

10.6K Views

Масштабирование Engineered сосудистых трансплантатов С помощью 3D печатных руководств и кольцо Метод Stacking

09:38

Масштабирование Engineered сосудистых трансплантатов С помощью 3D печатных руководств и кольцо Метод Stacking

Related Videos

8.9K Views

Microfluidic подложке для инженерных васкуляризированной ткани и Organoids

08:22

Microfluidic подложке для инженерных васкуляризированной ткани и Organoids

Related Videos

16.5K Views

Трехмерная печать сложных аорты аномалия

03:40

Трехмерная печать сложных аорты аномалия

Related Videos

7.2K Views

Роман процесс для 3D печати Decellularized матрицы

08:14

Роман процесс для 3D печати Decellularized матрицы

Related Videos

7.6K Views

Ядро / оболочка Печать Scaffolds для ткани инженерных трубчатых структур

05:52

Ядро / оболочка Печать Scaffolds для ткани инженерных трубчатых структур

Related Videos

10K Views

Надежная модель фасцио-кожного лоскута свиней для биоинженерных исследований васкуляризированных композитных аллотрансплантатов

05:34

Надежная модель фасцио-кожного лоскута свиней для биоинженерных исследований васкуляризированных композитных аллотрансплантатов

Related Videos

2.8K Views

Закупка и перфузионно-децеллюляризация васкуляризованных лоскутов свиней в индивидуальном перфузионном биореакторе

10:56

Закупка и перфузионно-децеллюляризация васкуляризованных лоскутов свиней в индивидуальном перфузионном биореакторе

Related Videos

3.4K Views

3D-биопечать фотонастраиваемых гидрогелей для изучения активации фибробластов

07:17

3D-биопечать фотонастраиваемых гидрогелей для изучения активации фибробластов

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code