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11.5:

Leaky Scanning

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Molecular Biology
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Leaky Scanning

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Durante a tradução eucariótica, os ribossomas fazem a varredura do mRNA a partir da extremidade 5 prime até encontrarem a primeira sequência AUG, o codão de início, e iniciarem a síntese de proteínas. No entanto, um mRNA pode ter dois ou mais codões AUG contidos em sua sequência. Ribossomas às vezes não reconhecerão o primeiro codão de AUG, e ao invés disso, iniciarão a síntese de proteínas a partir de um codão de início mais abaixo da fita de mRNA.Este fenômeno é chamado de varredura com vazamento, e permite a produção de múltiplos tipos de proteína do mesmo mRNA. Uma sequência particular do consenso, conhecida como a sequência de Kozak, determina se um ribossoma irá iniciar a síntese da proteína no primeiro codão do começo ou ignora-lo. Nesta sequência, o A do primeiro codão de início AUG é numerado como mais um.Os nucleotídeos depois são positivos, e os nucleotídeos antes são negativos. A sequência ideal ocorre quando uma purina está presente na posição menos três e uma guanina está presente na posição mais quatro. Na posição menos três, a adenina é mais eficaz do que guanina em iniciar a tradução.As alterações no restante da sequência do nucleotídeo têm pouca influência na síntese da proteína. Quando uma sequência ideal está presente, quase todos os ribossomas iniciarão a síntese de proteínas neste codão de AUG. Em contraste, se uma purina na posição menos três ou uma guanina na posição mais quatro está ausente, somente alguns ribossomas iniciarão a tradução no primeiro codão.A maioria dos ribossomas vai pular este codão de início, continuar a digitalizar o mRNA, e iniciar a tradução em um codão de início a jusante com um reconhecimento de sequência 00:01:56.340 00:01:57.780 ideal. Na digitalização de Leakey, se ambos os codões tiverem a mesma estrutura de leitura, as proteínas produzidas diferirão somente em sua extremidade terminal. Isto permite que as células produzam as proteínas sem um sinal organela-específico no terminal-N, por exemplo.Por outro lado, se o codão de início a jusante tem uma moldura de leitura diferente do primeiro começo codão, pode levar à produção de tipos completamente diferentes de proteínas.

11.5:

Leaky Scanning

Durante a maioria dos processos de tradução eucariótica, a pequena subunidade ribossómica 40S analisa um mRNA a partir da sua extremidade 5' até encontrar o primeiro codão de iniciação AUG. A subunidade ribossómica grande 60S une-se então à menor para iniciar a síntese proteica. A localização da iniciação da tradução é determinada em grande parte pelos nucleótidos perto do codão de iniciação, uma vez que podem existir vários locais de iniciação da tradução presentes no mRNA.  Marilyn Kozak descobriu que a sequência RCCAUGG (onde R significa adenina ou guanina) é uma sequência de reconhecimento ideal para o início da tradução. A purina na posição -3 e a guanina na posição +4 são altamente conservadas pelas espécies animais e vegetais e regulam o início da síntese proteica. Se o primeiro codão de iniciação não tiver uma purina na posição -3 e uma guanina na posição +4, então esta sequência está em um contexto fraco. Por exemplo, o vírus do amendoim contém um RNA que codifica duas proteínas, p23 e p39. O primeiro codão de iniciação é para a síntese de p23 e tem uma sequência de reconhecimento fraca, CUUAUGU. Cerca de 30% dos ribossomas irão ignorar o primeiro codão de iniciação e iniciar a tradução em um codão de iniciação a jusante, produzindo a segunda proteína, p39. Este início de tradução em um local alternativo é conhecido como leaky scanning e tem sido observado em mRNAs de mamíferos, plantas, e vírus.

A distância do codão de iniciação de outros elementos no transcripto também pode causar leaky scanning. Se o primeiro codão de iniciação estiver a menos de 12 nucleótidos da extremidade 5' do transcripto, o primeiro AUG pode ser ultrapassado. Isto também pode ocorrer se dois codões de iniciação AUG estiverem muito perto, como se pode observar no segmento 6 do vírus da gripe B, onde dois codões de iniciação estão separados por apenas 4 nucleótidos.

O leaky scanning permite que os organismos produzam isoformas diferentes de uma proteína quando os dois codões de iniciação estão na mesma matriz de leitura. O gene do receptor de glicocorticóides de mamíferos é um bom exemplo desse tipo de leaky scanning, onde são produzidas duas isoformas diferentes da proteína – a GR1 maior de 94 kDa e a GR2 menor de 91 kDa. Apesar do seu menor tamanho, a GR2 é duas vezes mais eficiente do que a GR1 na transativação genética. Por outro lado, se o primeiro codão de iniciação e o a jusante tiverem matrizes de leitura diferentes, podem levar à produção de proteínas completamente diferentes. Por exemplo, o mRNA do segmento 2 do vírus da gripe A pode codificar 2 proteínas diferentes. A primeira proteína é um componente central da polimerase viral que é necessária para a replicação do vírus; a segunda proteína promove a apoptose e não é essencial para a replicação do vírus. 

Suggested Reading

  1. Firth, Andrew E., and Ian Brierley. "Non-canonical translation in RNA viruses." The Journal of General Virology 93, no. Pt 7 (2012): 1385.
  2. Yang, Xiaolong, Garry Chernenko, Yawei Hao, Zhihu Ding, Mary M. Pater, Alan Pater, and Shou-Ching Tang. "Human BAG-1/RAP46 protein is generated as four isoforms by alternative translation initiation and overexpressed in cancer cells." Oncogene 17, no. 8 (1998): 981-989.
  3. Ferreira, Joshua P., William L. Noderer, Alexander J. Diaz de Arce, and Clifford L. Wang. "Engineering ribosomal leaky scanning and upstream open reading frames for precise control of protein translation." Bioengineered 5, no. 3 (2014): 186-192.
  4. Yudt, Matthew R., and John A. Cidlowski. "Molecular identification and characterization of a and b forms of the glucocorticoid receptor." Molecular Endocrinology 15, no. 7 (2001): 1093-1103.
  5. Wise, Helen M., Cyril Barbezange, Brett W. Jagger, Rosa M. Dalton, Julia R. Gog, Martin D. Curran, Jeffery K. Taubenberger, Emma C. Anderson, and Paul Digard. "Overlapping signals for translational regulation and packaging of influenza A virus segment 2." Nucleic Acids Research 39, no. 17 (2011): 7775-7790.