Yüksek Canlılık Doku Toplanması için Kemirgenlerde Minimal İnvaziv Beyin Tümörü Rezeksiyonunun Uygulanması

Glioblastoma (GBM) erişkinlerde en sık görülen ve agresif primer beyin tümörüdür. Nöroşirürji, hedefe yönelik ilaç geliştirme ve radyasyon tedavisindeki son gelişmelere rağmen, GBM hastaları için 5 yıllık sağkalım oranı% 5'in altındadır ve otuz yıldan fazla bir süredir önemli ölçüde iyileşmemiş bir^{istatistiktir1}. Bu nedenle daha etkili tedavi stratejilerine ihtiyaç vardır.

Yeni tedaviler geliştirmek için, araştırma protokollerinin (1) tümör heterojenliğini ve mikro çevreyi doğru bir şekilde özetleyen çevrilebilir klinik öncesi modelleri kullanması, (2) GBM'li hastalarda kullanılan ve şu anda cerrahi, radyoterapi ve kemoterapiyi içeren standart terapötik rejimi yansıtması ve (3) rezeke edilmiş çekirdek ile kalıntı arasındaki farkı hesaba katması gerektiği giderek daha belirgin hale gelmektedir. invaziv tümör dokuları 2,3,4,5. Bununla birlikte, şu anda mevcut olan preklinik beyin tümörü modellerinin çoğu ya cerrahi rezeksiyon uygulamıyor ya da nispeten zaman alıcı olan cerrahi rezeksiyon modellerini kullanıyor, bu da önemli miktarda kan kaybına yol açıyor veya standardizasyon eksikliğine neden oluyor. Ayrıca, kemirgen beyin tümörlerinin rezeksiyonunu gerçekleştirmek, klinik olarak karşılaştırılabilir cerrahi aletlerin veya protokollerin eksikliği ve sistematik doku toplama için yerleşik bir platform^6'nın bulunmaması nedeniyle zor olabilir (Tablo 1).

Bu protokol, kemirgen beyin tümörü rezeksiyonu ve doku koruması için çok fonksiyonlu ablatif olmayan minimal invaziv rezeksiyon sistemi (MIRS) ve entegre bir doku koruma sistemi (TPS) kullanarak standartlaştırılmış bir paradigmayı tanımlamayı amaçlamaktadır (Şekil 1). Bu eşsiz tekniğin, GBM ve diğer beyin tümörü modelleri için klinik öncesi araştırmalarda çeşitli çalışmalarda kullanılabilecek standartlaştırılmış bir platform sağlaması beklenmektedir. Beyin tümörleri için terapötik veya tanısal modaliteleri araştıran araştırmacılar, çalışmalarında standartlaştırılmış bir rezeksiyon elde etmek için bu protokolü uygulayabilirler.

Tüm hayvan çalışmaları Maryland Üniversitesi ve Johns Hopkins Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmıştır. Bu çalışmada 6-8 haftalık C57BL/6 dişi fareler kullanıldı. Fareler ticari kaynaklardan elde edilmiştir (bakınız Malzeme Tablosu). Maske, eldiven ve önlük kullanımı da dahil olmak üzere tüm Biyogüvenlik Seviye 2 (BSL-2) düzenlemelerine uyulmuştur.

1. İlk intrakraniyal tümör implantasyonu

1. Çalışmanın ilk aşamasında, her fareye, daha önce yayınlanan rapor^7'yi takiben 4 μL fosfat tamponlu salin (1x PBS) içinde asılı 100.000 hücre (GL261 murin glioma hücre hattı) ile intrakraniyal olarak 2.5 mm derinliğe enjekte edin.
2. Tümör implantasyonundan⁸ 9 gün sonra in vivo görüntüleme sistemini kullanarak her faredeki tümör sinyalini ölçün.
   NOT: Gerekirse, fareleri tümör yüküne göre iki gruba ayırın. Bu çalışmada, iki grup şunlardı: (1) nispeten küçük tümör yüküne sahip fareler (ortalama biyolüminesan sinyal = 5.5e + 006 ± 0.1e + 006 foton / s, n = 10) ve (2) nispeten büyük tümör yüküne sahip fareler (ortalama biyolüminesan sinyal = 1.69e + 007 ± 0.2e + 007 foton / s, n = 10), (p < 0.05, Mann-Whitney testi)⁹.
3. Her grubu karşılaştırılabilir iki alt gruba bölün.
   NOT: Bu çalışmada iki alt grup: Tedavi edilmemiş fareler (n=5) ve MIRS kullanılarak cerrahi rezeksiyon uygulanan tümörlü fareler (n = 5), (p > 0.05, Mann-Whitney testi)⁹.
4. Rezeksiyon gününden itibaren, tümör büyüme paternine dayanan bir frekansta in vivo görüntüleme sistemini kullanarak tümör ilerlemesini izleyin.
   NOT: GL261 hücre hattı için, rezeksiyon gününde ve daha sonra her 3-6 günde bir tümör ilerlemesini izleyin.

2. MIRS kullanarak tümör rezeksiyonu

1. Bir indüksiyon odasında izofluran-O2 gaz karışımı veya intraperitoneal ksilazin / ketamin çözeltisi enjeksiyonu kullanarak fareyi anestezi altına alın.
   1. Gaz anestezik kullanıyorsanız, anestezi indüksiyonu için gaz akış hızını 1.0 mL / dak'ya ve buharlaştırıcıyı% 2.0'a ayarlayın, tipik olarak odada 3-5 dakika gerekir (bkz.
   2. Enjekte edilebilir anestezi kullanılıyorsa, intraperitoneal olarak 0.2 mL anestezik çözelti (80-100 mg / kg ketamin ve 10-12.5 mg / kg ksilazin) enjekte ederek fareleri anestezi altına alın.
2. Ayak parmağını sıkıştırarak hayvanı yeterli sedasyon için değerlendirin. Korneanın kurumasını önlemek için gözlere oftalmik merhem uygulayın. İşlemden önce bir analjezik (0.03-0.06 mg / kg buprenorfin deri altından) uygulayın.
3. Tam sedasyon onaylandıktan sonra fareyi stereotaktik çerçevenin üzerine yerleştirin ( Malzeme Tablosuna bakınız).
   NOT: Gaz anestezisi kullanıyorsanız, farenin burnunu, işlem sırasında izofluran-O2 karışımını almaya devam edeceği bir burun konisine yerleştirin (%1,5).
4. Önceki zımbayı çıkarın, ardından saçları tüy dökücü bir kremle veya tıraş ederek çıkarın. Klorheksidin/betadin bazlı ovma ve alkolün alternatif döngüleri ile cildi dezenfekte edin. Daha sonra, steril bir neşter kullanarak, önceki cerrahi skar boyunca 1 cm uzunlamasına orta hat kesisi oluşturun.
5. Gelişmiş stabilite ve hassasiyet için MIRS el parçasını sahne adaptörü/el aleti tutucusu aracılığıyla stereotaktik kola takın.
6. MIRS makinesini aşağıdaki ayarları kullanarak ayarlayın (bkz. Malzeme Tablosu) (Şekil 1).
   1. Arka panelde ayarlanan güç kablosunu güç kablosu prizine takın. Geçiş yaparak sistemin gücünü açın veya kapatın (1 = AÇIK, 0 = KAPALI).
   2. Nitrojen hortumunun bir ucunu (konsolla birlikte verilir) konsolun arka panelindeki erkek bağlantı parçasına yerleştirin. Bağlantıyı sıkmak için bağlantı somununu saat yönünde döndürün.
      NOT: Hortumun karşı ucunun azot beslemesine bağlanması gerekir.
   3. Hortumu nitrojen beslemesine takmadan önce, besleme basıncının konsol için önerilen giriş besleme basıncı olan 100 psig'yi geçmediğini doğrulayın.
      NOT: Azot konsola sağlandıktan sonra konsol, ayak pedalı tarafından etkinleştirildiğinde kendi aspirasyonunu üretecektir.
   4. Vakum portunun kapağını sabitleyin ve vakum sisteminde herhangi bir sızıntıyı önlemek için kapatın. Aspirasyon sistemindeki herhangi bir sızıntı, MIRS konsolunun performansını etkileyecektir.
   5. Kurulum veya astarlama sırasında aspirasyon 17'nin altındaysa, konsolun önündeki aspirasyon düğmesinin maksimum seviyede (100) ayarlandığından emin olun, aspirasyon sisteminde sızıntı olmadığından emin olun ve azot giriş besleme basıncının doğru olduğundan emin olun.
   6. Ayak pedalını konsola bağlamak için, gri ayak pedalı konektörünü tıklayana ve yerine oturana kadar gri kabına takın.
      NOT: Ayak pedalı konektörü konsola tek bir yönde bağlanır ve anahtarlanır.
   7. El parçasını konsola bağlamak için, mavi el aleti konektörünü tıklatıp yerine oturana kadar mavi haznesine takın.
      NOT: El aleti konektörü konsola tek bir yönde bağlanır ve anahtarlanır.
   8. Sistemi kullanmadan önce steril sıvıyı küçük bir kaseden açıklığa, boru ve el aletinden ve daha sonra doku tıkanıklıklarını azaltmak için borunun ve el aletinin iç kısmının yağlanmasını sağlamak için teneke kutuya aspire ederek her bir el parçasını astarlayın.
   9. Konsolun ön panelinde uygun modu seçerek tek başına aspirasyona veya kesme ile aspirasyona hazırlanın. Ayak pedalını kullanarak başlayın.
7. 23 G MIRS kanülünü çapak deliğine 2,5 mm derinliğe kadar yerleştirin.
8. Kanüle bağlı ayak pedalına basarak rezeksiyon işlemini başlatın. El parçasındaki kontrol düğmesini kullanarak bir tam döngü (360°) veya daha fazla rezeksiyon gerçekleştirin.
   NOT: Ne kadar çok döngü yapılırsa, tümör dokusunun hacmi o kadar fazla rezeke edilir.
9. Rezeksiyon işlemi tamamlandıktan sonra, 23 G MIRS kanülünü çapak deliğinden çekin ve boruyu yıkamak ve artık kalıntıları yerinden çıkarmak için 5 mL 1x PBS kullanın.
10. Fareyi stereotaktik çerçeveden çıkarın ve yarayı zımba veya 4-0 dikiş malzemesiyle kapatın (bkz.
11. Fareyi bir ısıtma yastığına veya anesteziden kurtulma sırasında kafesine geri döndürmeden önce ısınan bir ışığın altına yerleştirin.
12. Deney tamamlandıktan sonra, kanülü kızartarak temizleyin. Rezeke edilen tüm dokuyu toplama kabına geri "itmek" için soğutulmuş ortam ve hava ile değiştirin. Toplama kabını sistemden çıkarın ve birlikte verilen kapakla kapatın.
13. Adım 2.12'yi tamamladıktan sonra, kanülün distal ucunu% 3 H 2 O_2'yeyerleştirin ve emme hattını emme toplama kabına geri doldurmak için Hg'de 24-25'te emme uygulayın ve 60-90 s bekletin. Steril ortamla havayı ve ortamı aralıklı olarak titreşen suyla yıkayın.
14. İşlemi takiben fareleri herhangi bir nörolojik belirti (anormal düzensiz hareketler veya nöbetler) açısından izleyin.
15. Ciddi nörolojik bozuklukları olan fareleri ötenazi haline getirin (uyuşuklaşır, gösterişli bir görünüme sahip olur, kamburlaşır veya düzensiz hareketlere sahip olur).
    NOT: Bu çalışmada, her fareyi ötenazi yapmak için 200 mg / kg ticari olarak temin edilebilen bir ötenazi çözeltisi ( bakınız Malzeme Tablosu) kullanılmıştır.

3. TPS ile doku toplama

1. Tümör örneğini RBC lizis ortamı içeren bir doku kültürü kabına daldırın (bakınız Malzeme Tablosu) oda sıcaklığında 5 dakika boyunca.
   NOT: MIRS'den TPS'ye toplanan doku, öncelikle küçük doku parçaları ile birlikte tek hücreler şeklinde olacaktır.
2. 50 mL'lik bir konik tüp üzerine 70 μm'lik bir filtre yerleştirin (Malzeme Tablosuna bakınız) ve tümör örneğini filtreden geçirmek için 5 mL'lik bir şırınganın bir pistonunu kullanın.
3. Bir transfer pipeti ile, hücrelerin ve herhangi bir doku kütlesinin filtreden geçmesini kolaylaştırmak için RPMI-1640 ortamını kullanın.
4. 4 °C'de 5 dakika boyunca 428 x g'de santrifüj. Süpernatantı bir pipetle atın.
5. Her numuneyi 5 mL'lik hazırlanmış RPMI-1640 ortamında yeniden askıya alın.
6. Doku canlılığını artırmak için, özellikle de büyük doku parçaları ilk izlenimde görselleştirilirse, enzim kokteylinin gerekli hacimlerini (DNAse I, kollajenaz IV, dispase, Papain ve EDTA içeren, Malzeme Tablosuna bakınız) her numuneye ekleyin. Çözümleri karıştırmak için girdabı kullanın.
   NOT: Adım 3.6 isteğe bağlıdır. Enzim kokteylinin bileşimi (toplam 5 mL / numune hacmi için): 300 μL DNAse I Grade II, 150 μL Kollajenaz / Dispaz (fibronektin, kollajenaz IV, I ve polar olmayan amino asitleri parçalar), 250 μL Papain (spesifik olmayan proteaz) ve 6 μL 0.5 M EDTA.
7. Numuneleri 20 dakika boyunca 200 rpm, 37 °C'ye ayarlanmış bir çalkalayıcı inkübatöre yerleştirin.
8. 20 dakika sonra, numuneleri 4 ° C'de 5 dakika boyunca 428 x g'de döndürün. Süper natantı atın.
9. Tek hücreleri 70 μm'lik bir hücre süzgecinden süzün ve 4 ° C'de 3 dakika boyunca 274 x g'de aşağı doğru döndürün. Trypan Blue ve Hemocytometer ile hücre canlılığı analizi¹⁰ yapın (bakınız Malzeme Tablosu).
   NOT: 0. Gün canlılığı %30-%70 arasında değişir ve 2-3 gün içinde önemli ölçüde artar.
10. Gerekli uygulanabilirlik testine bağlı olarak Adım 4, 5 veya 6'ya geçin.

4. Yapışkan kültürde büyüyen hücreler

1. Sertifikalı bir laminer akış başlığında, peleti serum içeren yapışkan ortamda (DMEM,% 10 fetal sığır serumu (FBS) ve% 1 penisilin / streptomisin (P / S) çözeltisi gibi) ve yapışkan bir hücre şişesindeki plaka hücrelerinde yeniden askıya alın.
2. Hücreleri kontrollü bir inkübe ortamında tutun (37 °C,% 5 CO₂).

5. Süspansiyon kültüründe büyüyen hücreler (nörosferler)

1. Sertifikalı bir laminer akış başlığında, peleti serumsuz tam kök hücre ortamı^11'de ve plakayı bir süspansiyon şişesinde yeniden askıya alın.
2. Nörosfer oluşumuna izin vermek için hücreleri_kontrollü bir inkübe ortamında (37 ° C, % 5 CO 2) 2-3 gün boyunca saklayın.
3. Kültür ortamındaki nörosferlerin görselleştirilmesinden sonra, pasaj için tek hücreli süspansiyonlar elde etmek için Tripsin-EDTA veya Accutase kullanın ( Malzeme Tablosuna bakınız).
   NOT: Hasat sırasında özel dikkat gösterildiği ve nöral kök hücreleri destekleyen uygun ortam kullanıldığı sürece, hasat edilen dokudaki kök hücreler birkaç gün içinde nörosferler oluşturmalıdır.

6. Hücrelerin reimplantasyon için hazırlanması

1. Pelet, 4 μL 1x PBS başına 100.000 canlı hücre konsantrasyonunda yeniden askıya alın.
2. İntrakraniyal tümör implantasyon yöntemini kullanarak hemen naif farelere enjekte edin (adım 1).

7. Histolojik analiz

1. Rezeksiyonun hemen ardından, beyinleri 24 saat¹² boyunca% 4 paraformaldehit (PFA) içinde çıkarın ve sabitleyin.
2. Beyinleri, sakkaroz ile doyurulana kadar% 30'luk bir sakkaroz çözeltisine aktarın (kabın dibine batırılmış).
3. Beyinleri% 70'lik bir etanol çözeltisine aktarın.
4. Daha önce yayınlanan rapor^13'ü takiben parafin blok gömme, kesitleme ve standart hematoksilin ve eozin (H & E) boyama işlemini gerçekleştirin.
   NOT: Boyama için alınan her bölümün kalınlığı 10 μm idi.

MIRS kullanılarak yapılan cerrahi rezeksiyon, tümör yükünde önemli bir azalmaya neden olur.
Daha küçük tümör yükü olan grupta, rezeksiyon uygulanan alt grupta ortalama başlangıç biyolüminesan sinyali 5.5e + 006 foton / s ± 0.2e + 006 idi. Rezeksiyonu takiben, ortalama biyolüminesan sinyal 0.3e+006 ± 3.09e+006 foton/sn'ye düşmüştür (p <0.0001, Mann-Whitney testi)9 (Şekil 2). Biyolüminesan sinyal, fareler ötenazi yapılana kadar takip eden birkaç gün içinde arttı. Benzer şekilde, daha büyük bir tümör yüküne sahip grupta, rezeksiyon yapılan alt grupta ortalama başlangıç biyolüminesan sinyali 1.68e + 007 foton / s ± 0.1e + 007 idi. Rezeksiyonu takiben, ortalama biyolüminesan sinyal 0.2e+006 ± 5.19e+006 foton/sn'ye düşmüştür (p <0.0001, Mann-Whitney testi)9. Biyolüminesan sinyal, fareler ötenazi yapılana kadar takip eden birkaç gün içinde arttı.

MIRS kullanılarak rezeksiyon, istenen rezeksiyon hacmine göre ayarlanabilir
Sinjenik CT2A tümörlerinin rezeksiyon öncesi görüntülemesinde, tümör genellikle T2 ağırlıklı (T2w) hipo ve hiper yoğunluğun heterojen alanları ile gösterilen parankimal mimarisi bozulmuş parankimal mimarisi ve peritümöral ödem ve kanaması olan aşılama bölgesinde heterojen bir kitle olarak tanımlanabilir. Stereotaktik tümör hücresi enjeksiyonu için kullanılan iğne izi T2w MRI taramalarında tanımlanabilir14.

Rezeksiyon sonrası T2w MRG taramalarında rezeksiyon boşluğu, tümör aşılama bölgesinde geniş yuvarlak bir hipointens alan olarak tanımlanabilir (Şekil 3). Rezeksiyon prosedürü önemli miktarda kan kaybına veya çevredeki beyin mimarisinin bozulmasına neden olmadı. Bazı durumlarda, rezeksiyon boşluğunda sıvı birikmiştir. Şekil 4'te gösterildiği gibi, rezeksiyon hacmi, kesme açıklığının bir dönüşü için 9.4 mm 3'ten iki rotasyon için 23.2 mm3'e (p = 0.0117) önemli ölçüde artmış ve bilinen bir tümör yükü için optimize etmek üzere hacim rezeksiyonunun ayarlanmasına izin vermiştir.

MIRS kullanılarak tümör rezeksiyonu, tümör taşıyan farelerin medyan sağkalımında herhangi bir nörolojik bulguya neden olmadan 7 günlük bir uzamaya yol açar.
Şekil 5'te gösterildiği gibi, küçük (6 gün) ve büyük (7 gün) tümörleri olan her iki grupta da cerrahi rezeksiyon uygulanan farelerin sağkalımında bir uzama vardı. Daha küçük tümör yükü olan grupta kontrol alt grubunun medyan sağkalımı 16 gün iken, rezeksiyon yapılan alt grubun medyan sağkalımı 22 gün idi (p=0.0044). Benzer şekilde, tümör yükü daha büyük olan grupta, kontrol alt grubunun medyan sağkalımı 12 gün iken, rezeksiyon uygulanan alt grubun medyan sağkalımı 19 gün idi (p = 0.0043). Ek olarak, MIRS kullanılarak rezeksiyon yapılan farelerin hiçbiri, işlemden sonra herhangi bir nörolojik yaralanma belirtisi göstermedi. Bu, MIRS'nin güvenli rezeksiyon elde edebileceğini gösterir.

MIRS kullanılarak rezeke edilen doku in vitro ve in vivo canlılığı yüksektir.
Rezeke edilen dokudan ekstrakte edilen hücreler, in vitro veya in vivo canlılık deneyleri yapılmadan önce uygun ortamda (Şekil 6) filtrelenmiş, nicelleştirilmiş ve yeniden askıya alınmıştır. Hücrelerin in vitro canlılığını incelemek ve normal beyin parankimi değil tümörün rezeksiyonunu doğrulamak için, süspansiyon kültüründe hücreler yetiştirildi. Tümör başlatma potansiyelinin bir göstergesi olan nörosfer oluşumu, rezeksiyon sonrası minimal doku işleme ile meydana geldi. Bu, MIRS platformunun iyi ayrışmış dokuyu topladığını ve rezeke edilen dokunun sağlığı ve yaşayabilirliği üzerinde minimum etkiye sahip olduğunu ileri sürdü. Doğrudan TPS'den ışık mikroskobuna alınan örneklerin, birkaç küçük doku parçasının varlığı ile birlikte öncelikle tek hücreler şeklinde olduğu ortaya çıktı. 0. Gün canlılığı 0-p arasında değişmekteydi (bu, numuneyi 70 μm'lik bir filtreden geçirdikten sonra ve kaplamadan önce canlılığı temsil eder). Rezeksiyon cihazı, rezeksiyon probunun ekseni üzerinde 360 ° dönebilen ve eşmerkezli doku hacimlerinin rezeksiyonuna izin veren bir kesme açıklığına sahiptir. Ortalama olarak, kesme açıklığının bir 360 ° dönüşü ile 2-3 milyon hücre, iki tur ile yaklaşık 7 milyon hücre ve kesme açıklığının üç 360 ° dönüşü ile toplam 12-14 milyon hücre elde edilebilir. Serumsuz tam kök hücre ortamı içeren süspansiyon şişelerine kaplandıktan sonra, nörosferler 2. günde ışık mikroskobu ile ve 7. günde çıplak gözle görülebiliyordu (Şekil 7).

İn vivo canlılığı incelemek için, ekstrakte edilen hücreler intrakraniyal olarak naif C57BL / 6 farelere (n = 8 fare, 100.000 canlı hücre / fare) implante edildi. Tümör büyümesi in vivo görüntüleme sistemi kullanılarak doğrulandı. Tümör sinyali, tümör implantasyonu sonrası 14. günde tüm hayvanlar ötenazi yapılana kadar artmaya devam etti (medyan sağkalım 11 gün).

Temsili H&E doku bölümü (Şekil 3B), kan ürünleri (koyu pembe), inflamasyon ve artık tümör hücreleri (koyu mor hücreler) ile açık, dairesel bir rezeksiyon boşluğu içerir. Makroskopik olarak, rezidüel tümör hücreleri doğada mezenkimal ve infiltratiftir, yaygın perivasküler invazyon ve proliferasyon sergiler. Mikroskopik olarak belirgin nükleer atipiler ve mitotik rakamlar tespit edildi. Enfarktüs dokusu ve mikrohemoraji alanları etrafında tümörle ilişkili makrofajlar da tanımlandı. Çevredeki beyin parankimindeki doku mimarisi rahatsız görünmüyordu.

Şekil 1: MIRS sistem kurulumu. (A) Entegre doku koruma sistemine sahip kemirgen modellerinde beyin tümörü için minimal invaziv rezeksiyon sistemi (MIRS). (B) MIRS konsolunun ön paneli. 1 = Sistem Gücü, 2 = Ayak Pedalı, 3 = Prime Düğmesi, 4 = Aspirasyon, 5 = Aspirasyon Seviyesi Kontrol Kadranı, 6 = Aspirasyon Seviyesi Göstergesi, 7 = El Parçası, 8 = Kesici Etkinleştir Düğmesi. (C) MIRS konsolunun arka paneli. 1 = Güç Kablosu Prizi, 2 = Devre Kesici, 3 = Azot Besleme Girişi. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 2: Tedavi edilmemiş tümörleri olan farelerde ortalama tümör yükündeki değişiklikler, MIRS tarafından tümörlerin rezeksiyonu yapılan farelere karşı . (A) küçük bazal tümör yüküne sahip fareler ve (B) büyük taban çizgisi tümör yüküne sahip fareler (p < 0.0001, SD ≤0.3e + 006, her zaman noktasında tüm gruplarda ve grafikte görüntülenemeyecek kadar küçük). Hayvanlar ya tümör yüküne yenik düştü ya da ötenazi yapıldı. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 3: MRG ve H&E analizi. (A) Rezeksiyon öncesi ve sonrası T2 ağırlıklı beyin MRG görüntüleri ve (B) kan ürünleri (koyu pembe), inflamasyon ve artık tümör hücrelerinin (koyu mor hücreler) bir kenarı ile net, dairesel bir rezeksiyon boşluğu gösteren temsili bir H & E boyalı koronal beyin bölümü. MRG görüntüleri ve H&E kesitleri rezeksiyondan hemen sonra elde edildi. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 4: Tümör rezeksiyon hacminin belirlenmesi. Rezeksiyon boşluklarının MRG görüntülerinden hesaplanan ortalama hacimler, bire karşı bir ile oluşturuldu. kesme açıklığının iki dönüşü, grup başına n = 4. p = 0.01, iki kuyruklu T-testi. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 5: Tedavi edilmemiş tümörleri olan farelerin MIRS tarafından tümörlerin rezeksiyonu yapılan farelere karşı Kaplan-Meier eğrileri. (A) Küçük taban çizgisi tümör yüküne sahip fareler. (B) Büyük bazal tümör yüküne sahip fareler. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 6: Rezeke edilen tümör hücrelerinin canlılık testi . (A) 0. günde 20x'te MIRS ile toplanan dokunun temsili ışık mikroskopisi görüntüleri. (B) Kaplan-Meier eğrisi, rezeke edilen dokudan toplanan hücrelerin intrakraniyal implantasyonundan sonra farelerin hayatta kalmasını tanımlar. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 7: Nörosferlerin oluşumu. Rezeksiyon sonrası 2. günde (A) 20x ve (B) 10x'te rezeksiyon sonrası nörosferlerin temsili ışık mikroskobu görüntüleri ve rezeksiyon sonrası 7. günde (C) 20x ve (D) 10x. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.

Tablo 1: Minimal invaziv rezeksiyon sistemi (MIRS) ile tarihsel cerrahi rezeksiyon modelleri arasındaki karşılaştırma.

BT, NIH'den araştırma fonuna sahiptir ve Hızlandırıcı Kombinasyon Terapileri* için ortak bir ortaktır ve Ashvattha Therapeutics Inc. patentlerinden birini lisanslamıştır. GW, NIH finansmanına sahiptir (R01NS107813). HB, Insightec'e ücretli bir danışman ve şirketin Tıbbi Danışma Kurulu başkanıdır. Bu düzenleme, Johns Hopkins Üniversitesi tarafından çıkar çatışması politikalarını izleyerek gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır. HB, NIH, Johns Hopkins Üniversitesi ve hayırseverlikten araştırma fonuna sahiptir ve CraniUS, Candel Therepeutics, Inc., Accelerating Combination Therapies*, Catalio Nexus Fund II, LLC*, LikeMinds, Inc*, Galen Robotics, Inc.* ve Nurami Medical* için danışmanlık yapmaktadır. (*özkaynak veya opsiyonları içerir).