Name: İnsan internal meme arter (İMA) Transplantasyon ve Stent: In-Stent Restenozis Geliştirme Eğitim Bir İnsan Modeli (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 37 s
Description: Keşfedin, insan internal meme arterinde stent sonrası intimal hiperplazi gelişimini immün yetmezlikli sıçan modelinde nasıl incelendiğini. Bu yöntem, damarsal remodelasyon ve translasyonel araştırmalar için değerli bir model sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, katkılarından dolayı Christiane Pahrmann'a teşekkür ederler. Sütür materyallerini sağladıkları için Ethicon, Norderstedt, Hamburg'a (Almanya) özel teşekkürler sunulur.
Finansman
Sonja Schrepfer, Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) kurumundan araştırma bursu (SCHR992/3 1 ve SCHR992/4-1) almıştır. Bu çalışma, ISHLT Shumway Kariyer Geliştirme Bursu 2010 ve Falk Araştırma Fonu (Stanford Üniversitesi) tarafından desteklenmiştir.

1. İnternal Mammary Arter (IMA) Hazırlığı
<ol>
	<li>Arteriyel endotelyum, 2-french Fogarty arteriyel embolektomi kateterinin (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA) geçirilmesiyle soyulur. Endotelyal hasarın sağlandığından emin olmak için kateter, tüm damar boyunca iki kez çekilir.</li>
	<li>8 mm uzunluğunda ve 2,5 mm-3 mm çapında herhangi bir insan stenti (örneğin Translumina, Yukon stent) kullanın. UYARI: Stent öncesi ve sonrası stenozu önlemek için stentin çapı, damar çapını %10'dan fazla aşmamalıdır. UYARI: Aynı çalışma içinde stentin uzunluğunu değiştirmeyin.</li>
	<li>İstenilen çapı elde etmek için uygun balon basıncını (stent paketinde belirtilen) kullanarak stenti yerleştirin.</li>
	<li>Stentlenmiş IMA'yı, transplantasyona kadar buz üzerinde 4 °C RPMI + heparin (500 IE/10 ml) içinde saklayın.</li>
</ol>
2. Hayvan Hazırlama
RNU Nude (Crl:NIH-Foxn1rnu) sıçanlar (300-350 g), standart sıçan yemi ve otoklavlanmış su ile ad libidum beslenerek, havalandırmalı scantainer kabinlerinde konvansiyonel koşullar altında barındırılır.
<ol>
	<li>Sıçanı bir indüksiyon kamerası kullanarak isofluran (%2,5-3) ile anestezi altına alın.</li>
	<li>Karın bölgesindeki tüyleri tıraş edin, sıçanı sırt üstü yerleştirin ve anesteziyi sürdürmek için burun ve ağız kısmına bir yüz maskesi takın.</li>
	<li>Karın bölgesini Provo-Iodine kullanarak genişçe dezenfekte edin, ardından %80 etanol kullanın - bu adımı iki kez tekrarlayın. Sıçanın yeterince anestezi altında olduğundan emin olmak için arka ayaklarını sıkarak refleksleri kontrol edin.</li>
	<li>Mikroskobik görünüm altında, infrarenal abdominal aortayı açığa çıkarmak için üst medyan laparotomi gerçekleştirin.</li>
	<li>Bağırsakları salinle nemlendirilmiş bir eldivenin içine yerleştirin. Nem kaybını önlemek için eldiveni bağırsakların etrafına katlayın.</li>
	<li>Damar dallarına zarar vermemeye dikkat ederek, aortayı infrarenal bölgeden bifurkasyona kadar disseke edin.</li>
	<li>Aortik kan akışını durdurmak için mikro klempler kullanın. Önce proksimal klempi, ardından distal klempi yerleştirin.</li>
	<li>Yaklaşık 0,5-0,7 mm'lik bir aort segmentini çıkarın ve geri kalan aortayı heparin (200 units) ile yıkayın.</li>
	<li>Stentli IMA'yı alın, uygun uzunluğa kısaltın ve boşluğa yerleştirin.</li>
	<li>8-0 prolene sütür (Ethicon, Norderstedt, Almanya) kullanarak sürekli dikişlerle IMA'yı alıcı aortaya bağlayın.</li>
	<li>Önce birinci kranial klempi, ardından kaudal klempi dikkatlice açın.</li>
	<li>Transplante edilen IMA'da ve aortanın distal ucunda görünür bir nabız olmalıdır.</li>
	<li>Bağırsakları tekrar karın boşluğuna yerleştirin.</li>
	<li>Karın boşluğunu önceden ısıtılmış steril salin ile yıkayın.</li>
	<li>Karın duvarının kas tabakasını 6-0 prolene sürekli dikişler (Ethicon, Norderstedt, Almanya) kullanarak kapatın.</li>
	<li>Sıçan hâlâ anestezi altındayken, cilt altına 4-5 mg/kg Karprofen enjekte edin.</li>
	<li>Ameliyat sonrası 3 gün boyunca uygun post-cerrahi analjezik (örneğin Karprofen veya Meloksikam) uygulayın.</li>
</ol>
3. Temsili Sonuçlar
Histoloji için numuneler %4 formalin ile fikse edilmiş, dereceli bir alkol serisindeye dehidre edilmiş ve 1 gün boyunca %80 metilmetakrilat ve %20 dibütilftalat karışımında (MMA I), 1 gün boyunca %1 kuru benzoil peroksit içeren MMA I'de ve 4 °C'de 1-2 gün boyunca %3 kuru benzoil peroksit içeren MMA I'de (MMA III) infiltre edilmiştir. Ardından numuneler, önceden polimerize edilmiş bir taban üzerinde, su banyosundaki cam tüplerde taze MMA III içerisinde polimerize edilmiştir. Yavaş polimerizasyon, tüplerin gece boyunca 26 °C'de tutulması, ertesi sabah sıcaklığın 28 °C'ye çıkarılması ve ardından polimerizasyon gerçekleşene kadar 12 saat boyunca sıcaklığın kademeli olarak 0.5 °C artırılmasıyla sağlanmıştır. Polimerize bloklar, tungsten karbür bıçakla donatılmış bir MICROM HM 360 mikrotom kullanılarak 5 μm kalınlığında kesilmiştir.
Prolifere olan hücrelerin kaynağını belirlemek için (Şekil 1), lamlar ya yeşil floresan proteini (GFP) ya da sıçan MHC-I ve insan düz kas hücrelerini tanımlayan antikorlarla boyanmıştır. Bu çalışmalar için, IMA hücrelerinin stabil transdüksiyonu amacıyla lentiviral partiküller kullanılarak insan IMA, rapor gen GFP ile gece boyunca inkübe edilmiştir. İnsan kaynaklı bölünen yavru hücreler, GFP eksprese ederek tanımlanabilmektedir. Deparafinizasyon sonrası, lamlar bir buharlaştırıcı kullanılarak antijen geri kazanım solüsyonunda ısıtılarak ısıya bağlı epitop geri kazanımı gerçekleştirilir. Bloklama adımı için Image-iT FX sinyal artırıcı kullanılabilir. İnsan kaynaklı hücreler, GFP'ye karşı fare monoklonal antikorları (birincil antikor dilüentinde (Dako) 1:100 oranında seyreltilmiş) kullanılarak tanımlanmış ve ardından keçi anti-fare IgG, Alexa Fluor 488 (ikincil antikor dilüentinde 1:1000 oranında seyreltilmiş) ile işaretlenmiştir. Düz kas hücreleri, tavşan poliklonal anti-düz kas α-aktin (birincil antikor dilüentinde 1:100 oranında seyreltilmiş) ile işaretlenmiş, ardından keçi anti-tavşan IgG, Alexa Fluor 555 (ikincil antikor dilüentlerinde 1:1000 oranında seyreltilmiş) uygulanmıştır. Her bir antikor inkübasyon adımı, aralarda üç kez PBS yıkaması yapılarak 37 °C'de 1 saat boyunca gerçekleştirilir. Çekirdekler 10 dakika boyunca DAPI ile boyanır. Lamlar Prolong Gold antifade reajanı kullanılarak kapatıldıktan sonra, örnekler konfokal mikroskopi kullanılarak analiz edilmiştir.
<img alt="Floresan mikroskopi, GFP/DAPI, SMA/DAPI, sıçan MHC-I, doku boyama, hücre görüntüleme karşılaştırması." src="/files/ftp_upload/3663/3663fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Şekil 1"> 
Şekil 1. İnsan düz kas hücreleri olarak neointimal hücreler. A: Yeşil= insan kökenli hücreleri işaretleyen anti GFP; kırmızı= anti insan düz kas hücresi aktini; mavi= hücre çekirdeklerini tanımlayan DAPI. B: Yeşil= sıçan kökenli hücreleri işaretleyen anti sıçan MHC-I; kırmızı= anti insan düz kas hücresi aktini; mavi= hücre çekirdeklerini tanımlayan DAPI. Prolifere olan hücreler düz kas hücreleri olarak tanımlanmış olup GFP için pozitif, ancak sıçan MHC-I molekülü için negatiftir. Bu nedenle, prolifere olan hücreler insan kökenlidir.

<ol><li>Deuse, T., Ikeno, F., Robbins, R. C., Schrepfer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+In-Stent+Restenosis%3A+An+Inexpensive%2C+Reliable%2C+and+Rapid+Preclinical+Model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model.</a> J. Vis. Exp. (31), e1346(2009).</li>
<li>Oyamada, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-iliac+rat+aorta+stenting%3A+a+novel+high+throughput+preclinical+stent+model+for+restenosis+and+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis.</a> J. Surg. Res. 166, e91-e95 (2011).</li>
<li>Chamberlain, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+mouse+model+of+in+situ+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+research%22%5BJournal%5D)">A novel mouse model of in situ stenting.</a> Cardiovascular research. 85, 38-44 (2010).</li>
<li>Deuse, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introducing+the+first+polymer-free+leflunomide+eluting+stent%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Introducing the first polymer-free leflunomide eluting stent.</a> Atherosclerosis. 200, 126-134 (2008).</li>
<li>Finn, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+healing+after+sirolimus%2C+paclitaxel%2C+and+bare+metal+stent+placement+in+combination+with+peroxisome+proliferator-activator+receptor+gamma+agonists%3A+requirement+for+mTOR%2FAkt2+in+PPARgamma+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+research%22%5BJournal%5D)">Differential healing after sirolimus, paclitaxel, and bare metal stent placement in combination with peroxisome proliferator-activator receptor gamma agonists: requirement for mTOR/Akt2 in PPARgamma activation.</a> Circulation research. 105, 1003-1012 (2009).</li>
<li>Tellez, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+bare+metal+stent+implantation+in+homozygous+LDL+receptor+deficient+swine+induces+a+neointimal+formation+pattern+similar+to+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Coronary bare metal stent implantation in homozygous LDL receptor deficient swine induces a neointimal formation pattern similar to humans.</a> Atherosclerosis. 213, 518-524 (2010).</li>
<li>Suzuki, Y., Yeung, A. C., Ikeno, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pre-clinical+animal+model+in+the+translational+research+of+interventional+cardiology%5BTitle%5D)+AND+%22JACC+Cardiovasc.+Interv%22%5BJournal%5D)">The pre-clinical animal model in the translational research of interventional cardiology.</a> JACC Cardiovasc. Interv. 2, 373-383 (2009).</li>
<li>Holt, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intimal+proliferation+in+an+organ+culture+of+human+internal+mammary+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+research%22%5BJournal%5D)">Intimal proliferation in an organ culture of human internal mammary artery.</a> Cardiovascular research. 26, 1189-1194 (1992).</li>
<li>Swanson, N., Javed, Q., Hogrefe, K., Gershlick, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+internal+mammary+artery+organ+culture+model+of+coronary+stenting%3A+a+novel+investigation+of+smooth+muscle+cell+response+to+drug-eluting+stents%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Sci.+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Human internal mammary artery organ culture model of coronary stenting: a novel investigation of smooth muscle cell response to drug-eluting stents.</a> Clin. Sci. (Lond). 103, 347-353 (2002).</li>
</ol>

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmemiştir.

Stent yerleşimi sonrası intimal hiperplazi gelişimini incelemek için farklı in vivo araştırma modelleri mevcut olsa da, bu modeller hala aşılması gereken translasyonel engellerle karşı karşıyadır. Ayrıca, büyük hayvan modelleri maliyetlidir; özel barındırma koşulları ve cerrahi ekipmanlar tüm laboratuvarlarda mevcut değildir.
İnsan intimal proliferasyonunun ve stent içi restenozun gelişimini incelemek için insan IMA'sı kullanımı daha önce organ kültürlerinde ex situ olarak ça...

<table><tbody><tr><td>2 French Fogarty kateteri</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>120602F</td><td></td></tr><tr><td>Yukon Stent</td><td>Translumina GmbH, Hechingen, Germany</td><td></td><td>Çalışma protokolünüze göre seçtiğiniz stenti kullanın</td></tr><tr><td>RPMI besiyeri</td><td>Biochrom AG</td><td>Nr.F1275</td><td></td></tr><tr><td>heparin</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>2B0953</td><td></td></tr><tr><td>izofluran</td><td>Abbott Laboratories</td><td>B506</td><td></td></tr><tr><td>Provo-Iodine</td><td>Betadine Puredue Pharma</td><td>EAN:5995327165830</td><td></td></tr><tr><td>80% etanol</td><td>Geyer</td><td>ETV 80/0500</td><td></td></tr><tr><td>Mikro klemps</td><td>Harvard Apparatus</td><td>PY2-61-0186</td><td></td></tr><tr><td>8-0 Sütürler</td><td>Johnson &amp;amp; Johnson</td><td>2808G</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Sütürler</td><td>Johnson &amp;amp; Johnson</td><td>1698 H</td><td></td></tr><tr><td>Karprofen</td><td>Feizer Vet</td><td>PZN:0110208</td><td></td></tr><tr><td>Metamizol</td><td>Ratiopharm</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hedef geri kazanım çözeltisi, pH9</td><td>Dako</td><td>S2368</td><td></td></tr><tr><td>Image-iT FX sinyal artırıcı</td><td>Invitrogen</td><td>I36933</td><td></td></tr><tr><td>fare monoklonal anti-GFP antikoru</td><td>BD Biosciences</td><td>632381</td><td></td></tr><tr><td>primer antikor dilüent</td><td>Dako</td><td>S3022</td><td></td></tr><tr><td>keçi anti-fare IgG, Alexa Fluor 488</td><td>Invitrogen</td><td>A11017</td><td></td></tr><tr><td>sekonder antikor dilüent</td><td>Dako</td><td>S0809</td><td></td></tr><tr><td>tavşan poliklonal anti-düz kas &amp;alpha;-aktin</td><td>Abcam</td><td>ab5694</td><td></td></tr><tr><td>keçi anti-tavşan IgG, Alexa Fluor 555</td><td>Invitrogen</td><td>A21430</td><td></td></tr><tr><td>Prolong Gold solma önleyici reaktif</td><td>Invitrogen</td><td>P36930</td><td></td></tr></tbody></table>

İnsan internal meme arter (İma) transplantasyon ve stent: in-stent restenozis geliştirme eğitim bir İnsan modeli

Human Internal Mammary Artery (IMA) Transplantation and Stenting: A Human Model to Study the Development of In-Stent Restenosis

Damar stentlemesi sonrası intimal hiperplazi gelişimindeki patobiyolojik ve patofizyolojik süreçleri araştırmak için kullanılan preklinik in vivo araştırma modelleri, translasyonel yaklaşımlar için kritik öneme sahiptir1,2.
Sıkça kullanılan hayvan modelleri arasında fareler, sıçanlar, tavşanlar ve domuzlar yer almaktadır3-5. Bununla birlikte, bu biyolojik süreçler hayvan damarlarında halihazırda çalışılmış olmasına rağmen insan araştırma modellerinde daha önce hiç uygulanmadığından, bu modellerin klinik ortamlara aktarılması zor olmaya devam etmektedir6,7. Bu videoda, bu translasyonel boşluğu gidermek için geliştirilen yeni bir insanize modeli sunuyoruz. Gösterilen prosedür tekrarlanabilir, kolay ve hızlı uygulanabilir olup, intimal hiperplazi gelişimini ve çeşitli stentlerin uygulanabilirliğini incelemek için uygundur.
Bu video, insan damarlarında stent tekniğinin nasıl uygulanacağını ve ardından immunodeficient sıçanlara transplantasyon işlemini göstermekte ve çoğalan hücrelerin kaynağının insan olduğunu tanımlamaktadır.

Bu video, immün yetmezlik modelindeki bir sıçanda, insan damarı (IMA) kullanılarak stent yerleşimi sonrası intimal hiperplazi gelişimini inceleyen bir modeli göstermektedir.

İnsan internal meme arter (İMA) Transplantasyon ve Stent: In-Stent Restenozis Geliştirme Eğitim Bir İnsan Modeli

Damar ... sonrası intimal hiperplazi gelişimindeki patobiyolojik ve patofizyolojik süreçleri incelemek için preklinik in vivo araştırma modelleri

Bu prosedürün genel amacı, humanize bir modelde intimal hiperplazi gelişimini incelemektir. Bu işlem, öncelikle iki French fogerty kateter kullanılarak insan meme arterinin veya IMA'nın bir bölümünün denüde edilmesiyle gerçekleştirilir. Ardından, IMA'ya bir stent yerleştirilir.Ardından, sıçan abdominal aortasının bir segmenti stentli bir IMA ile değiştirilir. Son olarak yara dikilir ve hayvanın iyileşmesi beklenir; balon dilatasyonu ve stentleme gibi invaziv prosedürlerin neden olduğu endotel hasarı, inflamasyona ve inflamatuar sitokinlerin üretimine yol açar. Bu durum, damar lümenini kademeli olarak tıkayarak stenozla sonuçlanan düz kas hücrelerinin proliferasyonuna neden olur.Sonuç olarak, immünofloresan konfokal mikroskopi aracılığıyla insan düz kas hücrelerinin proliferasyonunu gösteren veriler elde edilebilir. Bugün size, kırmızı bir konakçıda insan arterlerindeki bilek stenozunun değerlendirilmesi için bir model göstereceğiz. Bu modelin, abdominal ıslak aortik ayakta tutma gibi mevcut tekniklere göre avantajı, insan stentlerini insan dokusu üzerinde değerlendirebilmemizdir.Bu yöntemle ilgili fikir, ilk olarak vasküler yeniden şekillenme için translasyonel bir in vivo model bulmayı hedeflediğimizde ortaya çıktı. IMA'yı hazırlamak için, endotel hasarı oluştuğundan emin olmak amacıyla kateteri damar içine hareket ettirerek arteriyel endoteli soyulmak için iki French'lik bir Fogarty arteriyel embolektomi kateteri kullanmaya başlayın. Damarın içerisine sekiz milimetre uzunluğunda ve 2,5 ila üç milimetre çapında bir insan stenti yerleştirin.İstenen çapı elde etmek için uygun balon basıncını kullanarak stenti yerleştirin. Stent yerleştirilmiş IMA'yı, transplantasyona kadar dört santigrat derecede, buz üzerinde, RPMI ve Heparin içinde saklayın. Bir sıçanı izofloran ile anestezi ettikten sonra, abdominal tüyleri tıraş edin, %2 anesteziyi sürdürmek için burun ve ağzına bir yüz maskesi yerleştirin, abdominal bölgeyi proviodin ile genişçe dezenfekte edin ve ardından %80 etanol uygulayın.Bu adımları iki kez tekrarlayın. Sıçanın yeterince sedate olduğundan emin olmak için arka ayaklarını sıkıştırın. Ardından, infrarenal abdominal aortayı açığa çıkarmak için üst medyan laparotomi gerçekleştirin.Ardından bağırsakları salin ile nemlendirilmiş bir eldivenin içine yerleştirin ve nem kaybını önlemek için eldiveni bağırsakların etrafında katlayın. Cerrahi mikroskop altında, damar dallarına zarar vermemeye dikkat ederek aortayı infrarenal bölgeden bifurkasyona kadar diseke edin. Aortik kan akışını durdurmak için mikro klempler kullanarak önce proksimal ucu, ardından distal ucu klempleyin. Yaklaşık 0,5 ila 0,7 milimetrelik bir aort segmentini çıkarın ve kalan aortayı 200 ünite heparin ile yıkayın.Ardından, stentli IMA'yı uygun bir uzunluğa kısaltın ve aortik boşluğa yerleştirin. Daha sonra, sürekli dikişler kullanarak IMA'yı alıcı aortaya bağlayın. Önce kodle klempi, ardından kranial klempi dikkatlice açın.Nakledilen IMA'da ve aortanın distal ucunda görünür bir nabız olmalıdır. Bağırsakları tekrar karın boşluğuna yerleştirin ve burayı önceden ısıtılmış steril salin ile yıkayın. Karın duvarının kas tabakasını kapatmak için altı adet aut proline sürekli dikiş kullanın ve ardından cilt tabakasını dikin.Sıçan henüz anestezi altındayken, kilogram başına dört ila beş miligram karprofeni deri altına enjekte edin. Proliferasyonun kaynağını belirlemek amacıyla, IMA çıkarılana kadar hayvanı günlük olarak izleyin.İnsan IMA, damarda GFP'yi aşırı eksprese etmek için stabil olarak transduksiyon işlemine tabi tutulmuştur. Histolojik kesitler, burada yeşil renkle gösterilen GFP karşıtı antikorlarla ve kırmızı renkte görülen insan düz kas aktini veya SMA ile boyanmıştır. Hücre çekirdekleri mavi renktedir.Burada, prolifere olmuş hücrelerin kökenini gösteren ortaya çıkmış konfokal görüntü sunulmuştur. Bu 3D video, cerrahi işlem sonrası kırmızı renkte SMA ve yeşil renkte GFP'nin kolokalizasyonunu göstermektedir. Lümen tıkanıklığı, morfoloji ve hücresellik gibi soruları yanıtlamak için histopatoloji ve konfokal immünofloresan mikroskopi gibi diğer yöntemler uygulanabilir.Bu yöntem, translasyonel araştırmalar için gelecek vadeden bir modeldir. İzlediğiniz için teşekkür eder, deneylerinizde başarılar dileriz.I.

human-internal-mammary-artery-ima-transplantation-stenting-human

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu video stent restenoz gelişimi pathobiological ve patofizyolojik süreçleri incelemek için ucuz ve güvenilir bir preklinik modeli nasıl kullanılacağını gösterir. OCT (Optik Koherens Tomografi) ve OCT görüntüleri analizi kullanarak in vivo izleme Boyuna da göstermiştir.

Görüntüleme-stent restenoz: Ucuz, güvenilir ve hızlı bir Preklinik Modeli

Fare karotis arter stent implantasyonu bir modeli açıklanmıştır. Diğer benzer yöntemlerle karşılaştırıldığında, bu işlem için uygun bir yol farklı ilaç salınımlı stent ve restenoz moleküler mekanizmaları için damar duvarı tepki olarak çalışma imkanı sunan, çok hızlı, basit ve erişilebilir.

Restenoz Çalışmaları Karotis Arter Stent İmplantasyonu bir murin Modeli

Kardiyovasküler prosedürleri takiben yapılan restenoz (baypas cerrahisi, anjiyoplasti veya stentleme) bu prosedürlerin dayanıklılığını azaltmakta önemli bir sorundur. İdeal bir terapi düz kas hücresi (VSMC) proliferasyonunu inhibe ederken endotelin rejenerasyonunu teşvik eder. VSMC çoğalması ve endotel fonksiyonunun in vivo olarak eşzamanlı olarak değerlendirilmesi için bir model tanımlıyoruz.

Murin Aort Kırma Yaralanması: Verimli<emIn vivo</em&gt; Düz Kas Hücresi çoğalması ve Endotel Fonksiyon Modeli

Bu çalışma, mikroskopik gözlem için tüm montaj dokusu hazırlığının ardından meme yağ padi transplantasyonu yoluyla vasküler endotel kök hücrelerinin (VESC'lerin) çoğalmasını, farklılaşmasını ve damar oluşturma potansiyelini değerlendirmek için yeni bir yaklaşımı göstermektedir. VESC'lerin in vivo davranışlarını araştırmak için bir soy izleme stratejisi de sunulmuştur.

Vasküler Endotelyal Kök Hücrelerin Damar Oluşumunu Görselleştirmek İçin Yeni Bir Göğüs Göğsü Transplantasyon Tekniği

Bu makalede, aortik balon yaralanma sonra myointimal Hiperplazi (MH) gelişimini incelemek için bir fare modeli gösterilmektedir.

Fare Abdominal aort Myointimal Hiperplazi ikna etmek için balon tabanlı yaralanma

Bu protokol, ven greftleri kullanılarak revaskülarizasyon cerrahisi sonrası venöz intimal hiperplaziyi zayıflatmak için stratejiler geliştirmek için damarları arteriyel kan basıncına maruz kalarak deneysel olarak venöz intimal hiperplazi yaratmayı amaçlamaktadır.

Arteriyel Kan Basıncı Altında İntimal Hiperplazi değerlendirmek için Ven Greftleri kullanarak Revaskülarizasyon Cerrahisi Taklit Bir Tavşan Venöz Interposition Modeli

Bu protokol, insan koroner stentlerin trans-femoral erişim kullanılarak apoE-/- arka plan ile sıçanların karın aortuna implantesini açıklar. Diğer hayvan modelleriyle karşılaştırıldığında, murine modelleri yüksek verim, tekrarlanabilirlik, kullanım ve muhafaza kolaylığı ve moleküler belirteçlerin geniş bir kullanılabilirliği avantajlarını taşır.

Trans-Femoral Erişim Kullanılarak İnsan Büyüklüğünde Koroner Stentlerin Rat Abdominal Aort'a yerleştirilmesi

Bu protokolde kardiyopulmoner bypass yapılmadan sol göğüs duvarında küçük bir kesiden yeni domuz ven baypas greftleme yapıldı. İntimal kalınlaşma gösteren postoperatif patoloji çalışması yapıldı.

Domuz Damarı Greft Hastalığı Modelinin Kurulması ve Değerlendirilmesi

Burada, araştırmacılara vasküler anastomoz darlığını incelemek ve simüle etmek için değerli bir hayvan modeli sunan femoral arter anastomozu için bir murin modeli sunuyoruz. Bu gelişme, bu durumun altında yatan patofizyolojiyi daha iyi anlamamız ve vasküler hastalıklara yönelik daha doğru ve etkili araştırmaları kolaylaştırmak için çok önemlidir.

Femoral Arter Anastomoz Darlığı için Murin Modelinin Geliştirilmesi

Bu video sıçanlarda nakli vaskülopati (TVP) gelişimini incelemek için basit bir model olarak spontan aort nakli modeli göstermektedir.

Ortotopik Aort Nakli: Rat Modeli Kronik Vaskülopati Geliştirme Çalışması

Keşfedin, insan internal meme arterinde stent sonrası intimal hiperplazi gelişimini immün yetmezlikli sıçan modelinde nasıl incelendiğini. Bu yöntem, damarsal remodelasyon ve translasyonel araştırmalar için değerli bir model sunar.

İnsan internal meme arter (İMA) Transplantasyon ve Stent: In-Stent Restenozis Geliştirme Eğitim Bir İnsan Modeli

Daha fazla video keşfet