June 6th, 2018
Этот протокол описывает, как подготовить для анализа на базе GC-MS Метаболомные дрозофилы личинки.
Этот метод может ответить на ключевые вопросы в области метаболизма, например, как онкометаболит L2-гидроксиглутарат синтезируется в здоровых клетках. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он позволяет пользователю напрямую измерять более 100 метаболитов чувствительным и воспроизводимым способом. Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, будут испытывать трудности, потому что протокол требует эффективной обработки образцов и чрезвычайно чувствителен к водяному пару.
Для начала протокола добавьте один миллилитр ледяного 0,9% хлорида натрия в 1,5-миллилитровую пробирку, содержащую заранее подготовленные личинки. Закройте крышку, вертикально переверните трубку, чтобы тщательно промыть личинок, и поместите трубку на лед на 30 секунд. Личинки опустятся на дно трубки, а дрожжи останутся во взвешенном состоянии.
Как только все личинки сформируют рыхлую гранулу, удалите раствор хлорида натрия с помощью пипетки объемом в один миллилитр. Центрифугируйте образцы при температуре 2000 г в течение одной минуты при четырех градусах Цельсия. Удалите весь остаточный раствор с помощью пипетки объемом 200 микролитров и немедленно заморозьте образец в жидком азоте.
Используйте непроницаемый для этанола маркер для маркировки боковой стороны двухмиллилитровой трубки с завинчивающейся крышкой. Далее измерьте массу пробирки с маркированным шариком с помощью аналитических весов, способных с точностью измерить 0,01 миллиграмма. С помощью длинных щипцов извлеките 1,5-миллилитровую пробирку с образцом из жидкого азота Дьюара.
Надев нитриловые перчатки, возьмите замороженную трубку, переверните ее и резко ударьте крышкой трубки о столешницу, чтобы выбить замороженную гранулу. Сразу же вылейте гранулу в предварительно затаренную двухмиллилитровую трубку с завинчивающейся крышкой. Образец должен быть быстро обработан, чтобы гарантировать, что эндогенные метаболические пути не будут реактивированы.
Быстро измерьте общую массу гранулы личинки и трубки с шариками. Немедленно поместите пробирку с образцом в жидкий азот. Поместите пробирки с образцами в настольный охладитель с температурой минус 20 градусов Цельсия.
Добавьте в каждую пробирку 0,8 миллилитра предварительно охлажденного 90% метанола, содержащего два микрограмма на миллилитр янтарной кислоты D4. Верните образцы в настольный охладитель с отрицательным температурой 20 градусов Цельсия. Установите отрицательный контроль, добавив 0,8 миллилитра предварительно охлажденного 90%-ного метанола, содержащего два микрограмма на миллилитр янтарной кислоты D4, в пустую трубку с шариками.
Затем гомогенизируйте образцы в течение 30 секунд со скоростью 6,45 метра в секунду с помощью гомогенизатора бисерной мельницы, расположенного в комнате с температурой 4 градуса Цельсия. Верните гомогенизированные образцы в настольный охладитель с отрицательным температурой 20 градусов Цельсия и переведите охладитель в морозильную камеру с отрицательным температурой 20 градусов Цельсия не менее чем на один час. После инкубации центрифугируйте пробирки при температуре 20 000 г в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия для удаления образовавшегося осадка.
Перелейте 600 микролитров надосадочной жидкости в новую микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитра, и не тревожьте осадок. Откройте все пробирки с образцами и поместите их в вакуумную центрифугу. Высушите образцы при комнатной температуре до тех пор, пока не будет удален весь растворитель.
Если высушенные образцы хранились при температуре минус 80 градусов Цельсия, поместите неоткрытые пробирки с образцами в вакуумную центрифугу и высушите их в течение 30 минут. Приготовьте раствор из 40 миллиграммов на миллилитр метоксиламина гидрохлорида, или МОКС, в безводном пиридине. Храните МОКС и пиридин в эксикаторе.
Затем с помощью теплового пистолета высушите стеклянный шприц объемом один миллилитр в течение примерно пяти секунд. Введите иглу шприца во флакон с безводным пиридином. Удалите один миллилитр пиридина и добавьте его в микрофуговую пробирку, содержащую 40 миллиграммов МОКС.
Эта часть протокола чрезвычайно чувствительна к воде. Перед использованием все реагенты должны храниться в эксикаторе. Кроме того, пользователь должен убедиться, что образец имеет минимальное воздействие атмосферного водяного пара.
Затем промойте бутылку с безводным пиридином с аргоном. Закройте флакон и верните его в эксикатор. Растворите МОКС в пиридине, инкубируя пробирку в термомиксере при температуре 35 градусов Цельсия в течение 10 минут при 600 оборотах в минуту.
Далее добавьте в высушенный образец 40 микролитров по 40 миллиграмм на миллилитр МОКС-кислот в безводном растворе пиридина. Ввергните образец в вихрь в течение 10 секунд и кратковременно центрифугируйте его. Затем инкубируйте образец в термомиксере.
Центрифугируйте образец при максимальной скорости 20 000 g или в течение пяти минут, чтобы удалить частицы. Переложите 25 микролитров надосадочной жидкости во флакон автосамплера с помощью вкладыша объемом 250 микролитров из деактивированного стекла. Добавьте 40 микролитров MSTFA, содержащего 1% TMCS.
Наденьте крышку на флакон автосамплера и закройте флакон с помощью обжимного инструмента. Инкубируйте образец при температуре 37 градусов Цельсия в течение одного часа с встряхиванием при 250 оборотах в минуту. Наконец, добавьте три микролитра ранее приготовленного стандартного метилового эфира жирных кислот (FAMES) во флакон автосамплера с помощью роботизированного автосамплера непосредственно перед инъекцией.
Газовая хромато-масс-спектрометрия мутантных личинок лактатдегидрогеназы демонстрируют значительные изменения лактата, пирувата и L2-гидроксиглутарата по сравнению с контрольными личинками. Спектры GC-MS, сгенерированные с помощью протокола, демонстрируют множество видимых особенностей и заметный пик для трегалозы, который обычно представляет собой самый большой пик в образце личинок. Анализ принципиальных компонент, или PCA, ясно показывает, что группы нокаутного и дикого типов отделяются друг от друга и что ни в одной из этих групп нет выбросов.
При попытке выполнить эту процедуру важно помнить о том, что образцы должны быть заморожены до гомогенизации и чтобы все реагенты оставались сухими на протяжении всей процедуры.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол описывает, как подготовить личинок Drosophila для метаболомного анализа на основе ГХ-МС. Этот метод позволяет проводить прямое измерение более 100 метаболитов в чувствительном и воспроизводимым образом.