Summary
该协议的目的是获得高完整性的 RNA 样本从无固定的, 新鲜切除的人肠道组织, 利用激光捕获显微切割 (LCM) 分离。该协议包括制备人体肠道组织、cryosectioning、乙醇染色和脱水、LCM 和 RNA 提取的闪光冷冻样品。
Abstract
该方法的目的是通过激光捕获显微切割 (LCM) 从未固定的、新鲜切除的人肠道组织采集的肠神经节获得高完整性的 RNA 样本。我们已经确定了工作流程中的五个步骤, 对于从肠神经节获取 rna 分离的关键, 它的质量和数量足以为 rna--首先, 在准备肠道组织时, 每个样品必须有所有多余的液体去除的印迹之前, 使浆膜尽可能多地在底部的大基模具。然后在干冰和2丁烷的泥浆上迅速冻结样品。第二, 当切片的组织, 重要的是放置 cryomolds, 使肠道部分平行的全平面的肌间丛丛, 从而产生最大的肠道神经节每张幻灯片的面积。第三, 在 LCM 过程中, 聚乙烯 napthalate (笔) 膜幻灯片在收集肠神经节时, 可以提供最大的速度和灵活性来勾勒出肠道神经节的非均匀形状。第四, 对于不同的肠道神经节可视化, 与乙醇相容的染料, 如甲酚紫罗兰, 提供优良的保存相对于水染料的 RNA 完整性。最后, 为了从捕获的神经节中提取 rna, 我们观察了商业 rna 提取试剂盒中产生的 rna 数量和质量的差异, 同时消除了 DNA 污染。这些因素在当前协议中的优化极大地加速了工作流, 产生了异常的 RNA 质量和数量的肠神经节样本。
Introduction
本方法旨在利用激光捕获显微切割技术从人体肠道组织获得高质量的肠道神经节 RNA 样品。此处描述的协议已经过优化, 以提供足够的 rna 质量和 rna 排序 (rna 序列) 的产量, 并打算用于与新鲜切除, 无固定, 闪光冷冻人类肠道组织。
功能性胃肠道和肠道运动障碍影响美国每四人之一。肠神经系统, 也称为第二脑1, 往往是这些疾病的中心, 因为它在肠道动态平衡和运动中起着关键的作用。对肠道运动的操纵一般限于手术切除 aganglionic/noncontractile 组织, 慢性饮食修饰和/或药物。令人惊讶的是, 成人的完整转录仍然是排序, 大大限制了我们的能力, 以鉴定在体内的分子, 可以被靶向药用或用于干细胞治疗。
从人肠道神经节中分离 RNA 的方法相对较少。第一种方法, 细胞离解2, 需要高的孵化温度和长时间的潜伏期;这两种都是已知的促进 RNA 降解和改变转录2,3。另一种方法, LCM, 更可靠地保存转录和保护 RNA 完整性。虽然一些研究已经使用 LCM 收集神经节从新鲜冷冻人类肠道组织4,5,6, 这些方法要么是由于 RNA 质量和数量低下, 是相当劳动密集型的, 或需要修改染色或 RNA 提取技术, 在我们的手工作。为保存在 lcm 产品手册中发现的 RNA 而设计的其他 lcm 协议提供了额外的改进7、8, 但在应用于肠神经节8的隔离时需要适应,9. 出于这些原因, 我们开发了一种基于这些资源的优化协议, 它从人类肠道神经节产生大量的高完整性 RNA, 具有相对较快的工作流, 并在大型样本数。
在本研究中, 我们提出了一个优化程序的概要, 以促进分离高完整性的 RNA 从肠道神经节从切除人肠道组织。我们的方法包含五重要方面。首先, 新切除的, 不固定的人体肠道样本应该修剪到大小, 所有多余的水分去除与实验室组织和扁平化在一个大的基础模具之前, 在干冰的泥浆和 2-丁烷 (2 MB) 的闪光冻结。其次, 肠道组织学切片应准备获得肌间丛丛在一张幻灯片上的完整平面, 它提供了一个大的肠道神经节的负载。这个步骤的成功在很大程度上取决于组织的准备过程。第三, 存在的神经节的不均匀结构要求使用聚乙烯 napthalate (钢笔) 膜幻灯片6, 这在 LCM 过程中提供了最大的速度和精度。第四、乙醇相容染料, 如甲酚紫, 应用于保存 RNA 完整性, 同时染色肠神经节。最后, rna 提取过程对于一个成功的 rna 序列的结果是至关重要的。我们寻求一种 rna 提取方法, 产生高 rna 完整性, 最大限度地提高 rna 的产量, 当开始与小收集肠道神经节, 消除 DNA 污染, 并保留尽可能多的 rna 物种。
同时, 本研究对这些因素的优化, 大大加快了肠道神经节的工作流程和产量, 具有异常的 RNA 数量和质量。结果在相当大的样本群中大致一致, 表明了这种方法的一致性。此外, 我们已经使用这些方法成功地序列了许多来自肠道神经节的 RNA 样本。这里所强调的策略也可以广泛地适应于对周围和中枢神经系统所期望的神经节或细胞核进行 LCM, 以及其他需要隔离高质量 RNA 的情况。
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Protocol
此处描述的所有协议都已由范德比尔特大学机构审查委员会批准。
1. 组织到达前的准备工作
- 获得适当的 IRB 批准, 并与人体器官捐赠机构协调, 从捐赠者那里获得新切除的无固定肠道组织, 以满足研究所需的所有研究标准。
注: 本协议可适用于小鼠和其他啮齿动物模型使用。- 在每肠段切除后立即, 用冷冻 PBS 或组织贮存培养基彻底冲洗腔体, 以除去残留的腔内材料或粪便。
- 在适当的生物危害容器中冲洗和丢弃废物后, 将组织浸入足够数量的组织储存培养基中 (如肠道组织体积的3-5 倍), 并贮存在单独标记的水密塑料中。容器, 浸没在冰或冷藏, 直到使用)。
- 从收集时间起18-26 小时内处理组织, 以防止大量 RNA 降解。
注意: 根据肠道和储藏的清洁程度, 可以延长我们建议的时间限制。
- 如本议定书所示, 事先准备好人体组织收集所需的所有材料 (请参阅材料表以了解详细的产品信息)。确保所有所需的个人防护设备始终佩戴。
- 准备干冰桶连同干冰泥浆, 如图 1所示。
- 粉碎足够的干冰, 以填补4标准圆形冰桶和一个长方形的冰桶。一个标准的桶应该有小 (11 x 21 cm) 实验室组织放置在干冰表面。如果可能, 使用新的, 未开封的实验室组织盒。
- 在一个干净的长方形冰桶里 powderizing 2 升的干冰, 做一个干冰泥浆。
- 添加预冷 2 MB 到干冰表面。用吸管尖端盒盖将浆料的表面混合并平整, 使浆料的形状浮出水面, 沿矩形桶的两侧由大块的干冰环绕。
- 在冰桶的边缘放置几个薄薄的干冰块, 以鼓励更快的结冰。在一定的时间内, ≥4基模在干冰泥浆桶中应有适当的空间。
- 可以选择, 将冰桶堆叠在另一个长方形冰桶内, 用干冰填充¼。这种定位有助于更好地隔离干冰泥浆, 并防止需要经常调整干冰和 2 MB 的过程中。
- 按照以下顺序将干冰桶放置在装配线上: 1) 干冰泥浆桶, 2) 实验室组织-干冰桶, 3 & 4) 普通干冰桶, 5) 矩形干冰桶 (图 1A)。
2. 制备闪光冷冻人体肠道组织
注: 这整个过程可以采取45-80 分钟每肠段, 取决于肠道组织质量。我们还建议收集质量控制样本, 以评估 RNA 的质量和组织学之前进行 LCM。
- 用湿冰填满一个大托盘, 在干冰上放置外科切割板。
- 在这个设置中, 冷却一个500毫升和100毫升烧杯储存的组织和修剪的部分在冷库解决方案。在切割板上预冷的基础模具, 使他们准备接受组织。
- 在收到新鲜的肠道组织后, 将组织输送到的培养基上倒入, 并将其保存在预冷烧杯中。在这些烧杯留出一些空间, 暂时储存肠道组织和修剪的部分, 这将在随后的步骤中准备。
- 将肠段切开约20厘米, 提供充足的组织 (40-60 厘米2), 为下游应用和质量控制样品生成 RNA。根据组织完整性的不同, 在下游加工中完成 RNA 分离可能是可行的 (即5 厘米的肠道)。
- 用手术剪刀从肠道中切去脂肪和结缔组织。剩余脂肪沿肠道浆膜妥协的能力, 完全扁平化组织在随后的步骤。仔细修剪组织, 避免偷脂肪和结缔组织的浆膜, 这会在结构上损害肌间丛丛, 或使组织的外部扁平化, 不均匀的切片。
- 沿肠道标本的整个长度进行纵切口, 最好在肠系膜附件部位进行。
- 从结肠中剥离并丢弃绦虫大肠埃希氏菌, 使其在从紧张中释放时更容易平坦。
- 将肠道粘膜伸展到冷冻切割板上, 从组织的全长中切开1.25 厘米宽的小条。
注意: 在修剪后, 肠道组织通常会扩大, 所以这个大小应该相应地调整。 - 暂时将小条储存在冷冻组织储存液中。
注: 我们使用贝尔泽的冷库解决方案, 因为它有一个长期的货架寿命, 是相对成本效益, 可以储存在室温, 直到需要。 - 从冷库溶液中取出一条纸巾, 切成段 1.5-2 厘米长。
- 迅速将肠道部分涂抹在实验室的湿巾上, 去除多余的液体, 防止在闪速冷冻过程中沿肠道浆膜形成冰晶。如果组织不够干燥, 很难从肌间丛丛中获得高质量的切片。
- 将涂抹的肠块粘膜侧向上放置在预冷、大的一次性塑料基模上 (37 毫米 x 24 毫米 x 5 毫米)。
- 小心地压扁每个部分, 轻轻地伸展在基模表面上的组织和使用弯曲钳轻轻按下, 并驱逐任何可能被困在浆膜下的气泡。注意, 组织扩张, 而扁平化。如果需要, 修剪线段, 并以较小的尺寸剪切其余的样品。
注:如果组织过度伸展, 这会扭曲肌间丛丛。在所有气泡被除去后, 在结冰之前评估样品的厚度。如果需要, 把标本的边缘推入内, 直到肠道样本接近其原始厚度。 - 将所装的底座模具放置在干冰的表面上, 2 MB 的浆料。组织应在30-60 秒内完全冻结, 这取决于小肠段的大小和厚度。
- 干燥底部的基本模具, 以消除残余 2 MB 通过快速摩擦的基础上的模具在实验室组织预冷的第二桶干冰。
- 把干的样品转移到第三盆干冰上, 把它埋在干冰的表面, 直到它准备好包装。
- 快速观察底部的基本模具包装前, 检查样品的质量准备。注意任何没有出现平坦或有大气泡的样品, 因为 cryosectioning 和 LCM 应该避免这样做。
- 将样品包装在被放置在桶内的干冰上的预先标记的铝箔上, 这样在保持完全冻结的情况下, 组织发生包装。
- 包装样品与一层塑料包装, 以减少组织脱水时, 贮存在-80 摄氏度。
- 把样品储存在长方形的水桶里, 直到它们准备好搬到冰箱里。
- 预标签和预冷冷藏箱在-80 °c, 以立即储存样品后收集。
- 在进行 LCM 前, 从每个肠道部分取一小部分组织, 以评估 RNA 完整性。
- 为每个段预先贴上2毫升无 RNase 管, 填充≥500µL 溶解缓冲液。我们建议使用 RNA 提取套件 "D", 列在材料表中。
- 融汇一个小 (2 毫米 x 2 毫米) 肚腑在一个标准组织微均质体 (20-40 s, 直到没有组织块保持)。然后, 立即冻结在干冰上的 RNA 裂解物, 储存在-80 摄氏度, 直到进行 rna 提取。
- (可选) 将组织冷冻培养基 (TFM) 中的部分部分嵌入作为备份。用与本节描述的完全相同的方法制备组织切片, 但在 TFM 之前, 将样品浸入底模内。
3. Cryosectioning
- 在 cryosectioning 之前, 准备所有必需的材料进行染色和脱水, 将所需的组织样本从-80 °c 冷藏库转移到一桶干冰中。
- 通过设置最佳切削温度 (-18 到-22 °c) 和用100% 乙醇擦拭表面, 用 RNase 净化液处理刀片和刷子托盘, 准备恒温器。
- 为了最好地将样品粘附到恰克, 请使用以下方法。
- 将镊子放在干冰中至少三十年代, 然后再将肠道样品放到干燥的冰浆膜面上。
- 将3-5 毫米的组织冷冻培养基 (TFM) 倒入一个大型恒温器标本架上, 并立即将肠道样本浆膜一侧转移到 TFM。
- 在允许 TFM 在室温下 powderized 样品2-5 秒后, 快速将试样架转到干冰上, 然后盖上干冰。确保 TFM 仍然低于肌间丛丛的平面。
注: 理想情况下, 肠道粘膜的外表面将完全坚持 TFM 之前, TFM 开始冻结不解冻的样品。
- 将标本架装入恒温器的标本头中, 将试样与恒温器刀片对齐, 这样肌间丛丛的平面将平行于切割刀片。
- 将恒温器上的切片厚度设置为8µm。完美对准标本的目的是在每张幻灯片上获得肌间丛丛最大可能的表面积。这种厚度一般推荐为人和啮齿动物组织, 但可以调整, 根据需要。
- 部分通过浆膜和纵肌直到到达肌间丛丛。
- 要定位肌间丛丛, 请在幻灯片上装入一个样本部分, 并用水染料 (如1% 甲酚紫或甲苯胺蓝等) 染色切片。
- 在40-2000X 放大的光显微镜下查看该部分, 以确定纵向和圆形肌肉层之间的连接。显微镜参数在材料表中提供。在切片开始时, 浆膜会被结缔组织的存在所标记。其余的肠系膜脂肪也可能存在沿浆膜。一张外层的纵向肌肉层然后开始。一旦到达纵向和圆形肌肉层之间的边界, 就会观察到肠道神经节的一部分。
注意: 在接下来的几节中, 肌间丛丛将变得非常明显, 在一个部分 (图 2C) 中有大量的神经节存在。如果组织在切片开始时不完全平坦, 那么在给定时间内, 每个节中只会有部分神经节出现。有时, 肠道样本可能有一个固有的不均匀的肌间丛丛, 尽管组织出现完美扁平。对于十二指肠标本尤其如此。根据我们的经验, 这些样本可能需要更长的时间来处理 LCM, 但是可以在一天的会话中收集足够的 RNA。肌间丛丛的确切位置在样品之间, 根据组织和它的准备在结冰之前可能极大地变化。
- 开始收集 LCM 的串行部分, 以最佳的收集提供最大数量的神经元和胶质细胞每张幻灯片。根据试样的表面积, 可以将多个截面组合到单笔膜幻灯片上。
- 将剖面装入笔膜幻灯片上, 在恒温器中短暂冷却5-10 秒。当安装时, 组织应只略微融化, 最大限度地保持 RNA 的完整性。
4. 染色
注: 有关染色过程的概览, 请参阅表 1。所有的解决方案都是用标准的50毫升圆锥小瓶制成的。用 RNase 净化液处理管外, 似乎没有改善结果 (未显示数据)。
- 在95% 乙醇中至少提前一天准备4% 甲酚紫罗兰的饱和溶液, 并在装入注射器之前完全重新悬浮甲酚紫罗兰。
注: 如讨论部分所述, 乙醇浓度可能需要降低以有效染色。我们没有测试是否使用50% 或75% 乙醇在染色显着降低 RNA 完整性。甲酚紫罗兰是光敏的, 因而应该保护免受光。 - 在将肌间丛丛的部分安装到幻灯片上后, 立即将该幻灯片浸入95% 乙醇 (预冷于-20 摄氏度) 的锥形瓶中, 用于三十年代。
- 如果各节没有完全坚持上一步的幻灯片, 稍微温暖的幻灯片底部与戴手套的手 (实验室擦拭应放置在幻灯片和手套之间), 以充分遵守之前, 淹没在95% 乙醇。此解决方案可在至少3-6 张幻灯片上重复使用, 而不降低 RNA 完整性。
- 将幻灯片正面放置在一个经过预处理、无 RNase 的容器8上的实验室擦拭上。
- 预填充3毫升注射器与4% 甲酚紫罗兰和附上0.2 µm 注射器过滤器。
注:我们推荐醋酸纤维素过滤器。 - 将6-10 滴污渍直接涂抹在组织切片8上, 孵育10-30 秒, 或在染色后保留足够的染料。染色时, 用手轻轻旋转滑动容器, 以确保组织切片均匀涂上污渍。
- 把污渍倒掉, 然后立即在75% 乙醇瓶中把滑梯弄脏。反复淹没的幻灯片, 直到过量染料已大部分渗出的样品。这可能需要10-20 秒。
- 在十年代, 通过反复将样品浸泡在95% 乙醇瓶中, 最终完成染色. 反复淹没样品, 直到去除所有多余的污渍。
- 根据需要修改脱色持续时间, 以优化神经节的染色。如果去除过多的污渍, 样品变得太透明, 可能很难想象
注意: 此染色协议已根据若干出版物5、8、10、11进行了优化, 在获得满意的结果之前需要进行修改。因此, 在必要时, 应对染料中使用的乙醇浓度和脱色过程进行修改, 以获得最佳结果。
- 根据需要修改脱色持续时间, 以优化神经节的染色。如果去除过多的污渍, 样品变得太透明, 可能很难想象
5. 脱水
- 立即蘸100% 乙醇2-3 倍的幻灯片, 总共10-20 秒。
- 在无水100% 乙醇中浸泡至少三十年代。由于无水乙醇是非常吸湿的, 添加分子筛 (8-12 目) 到100% 乙醇瓶之前的程序开始删除任何吸收的水, 从而更完全脱水的样本5。
- 反复蘸二甲苯15-20 秒的滑动。此步骤完全删除幻灯片上的乙醇层。将分子筛提前添加到二甲苯管中, 充分吸附过量的乙醇和水分子5。
注意: 二甲苯被归类为眼睛和上呼吸道的刺激性物质, 应用于化学油烟机。 - 在二甲苯中浸没滑动 (用分子筛, 8-12 目), 至少10分钟。
注:如果需要, 可以在这一步之后采取短暂的休息。样品可以留在二甲苯中4-5 小时, 不影响染色, LCM 或 RNA 的产量/完整性。 - (可选) 在这一点上单独准备几个额外的幻灯片。如果在所有准备好的幻灯片上完成 LCM 后准备第二轮幻灯片, 由于组织表面脱水, 恒温器中的组织可能需要 refaced。在可以收集可用节之前, 可能需要丢弃四个部分。
6. 激光捕获显微切割 (LCM)
- 将滑块从二甲苯中取出, 在化学油烟机中晾干, 至少1分钟. 将 lcm 帽盒插入 lcm 显微镜阶段。将幻灯片加载到舞台上并获取幻灯片的概览图像。
- 确定 LCM 所需的位置, 并将 cap 加载到幻灯片上。
- 对齐红外线 (IR) 激光器并调整其功率和持续时间, 使其成为20-30 µm 直径捕获点。
- 定位紫外线 (UV) 激光器并设置适当的切削速度和强度。
- 概述要使用 LCM 软件收集的所需的神经节, 确保留在 cap 的可收集区域的边界内 (在软件程序的幻灯片概述中描述为绿色圆圈)。
- 在每个跟踪中, 调整 ir 点, 以便每100-500 µm 至少有一个 ir 点。
- 按红外线/紫外线切割按钮继续收集所有标记的神经节。
- 一旦集合完成后, 可以将 cap 移动到新位置, 然后在质检站上重复收集过程或检查 LCM 盖, 一旦瓶盖足够填满神经节 (或直到达到60-80 分钟的建议时限)。
- 如果盖子上有碎片, 用一支细尖的画笔擦拭它, 用 RNase 净化液预先处理, 用无核酸酶水冲洗, 然后完全干燥。
- 在明亮的场显微镜下, 用眼睛仔细检查盖子或放大, 以确保所有碎片都被移走。如果碎片不能通过使用预处理的画笔去除, 那么使用细吸管尖 (RNase) 来刮去碎片。
- 将 cap 固定在0.5 毫升的离心管上, 230 µL rna 裂解缓冲器 (RLT 从 rna 萃取试剂盒 "B" 中提取, β巯基乙醇加在10µL/毫升的浓度中)。
- 反转帽, 简要涡, 室温孵育30分钟。
- 离心机在≥ 5000 x g 为5分钟, 然后将离心管转移到干冰。
注意: 协议可以在这里暂停。rna 裂解物可以存储在-80 摄氏度, 而不影响 rna 降解至少1周。如果在同一天执行 RNA 隔离, 则在冰上冷却样品, 直到它们准备好提取。 - 在从二甲苯中移除幻灯片后, 在建议的最大时间限制内执行所有附加集合80-90 分钟。由于脱水部分暴露于环境湿度, RNases 可以逐渐重新激活。限制收集期间可以最大限度地减少此类影响, 并最大限度地保留 RNA 完整性。
7. RNA 分离
- 准备一个无 RNase 的 RNA 提取工作站。
- 根据手册中的 RNA 提取试剂盒, 准备所有的管子和试剂。
注: 尽管 LCM 中有许多用于 rna 隔离的套件, 但我们使用 "材料" 列表中列出的 rna 提取套件 "B" 取得了最佳的成功。有关 RNA 萃取试剂的并排比较, 请参见图 5 。 - 从-80 °c 冰箱中取出样品, 在37摄氏度的水浴中迅速解冻。
- 立即涡解冻样品 2-3 s 均匀地分布胍硫氰酸盐。
- 将每个样品与同等体积的70% 乙醇相结合。池2或更多裂解物在一起, 如果需要, 达到足够的 RNA 浓度。
- 按照制造商在手册中为 RNA 提取过程的说明进行操作, 使用为 microdissected 示例优化的协议。
- 洗脱 RNA 在最后步入最小的推荐的容量核酸酶水 (14 µL)。
- 在 rna 分离之后, 将每个样品中的 rna 整除1-2 µL 到一个新的预先标记的无 RNase 管, 进行质量评估/质量控制, 用微流体装置, 可以想象少量的 rna, 如 Bioanalyzer。整除一个额外的1µL 进入一个单独的管量化与高灵敏度的 RNA 量化试剂盒。
- 根据需要调整这些步骤, 以获得足够数量的 rna, 用于下游分析 (i., 在 rna 提取之前汇集更多的 LCM 盖帽)。
- 将 RNA 储存在-80 摄氏度, 直到收集足够的样品进行下游分析。
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Representative Results
我们已经对现有的协议进行了几项改进, 通过 LCM 能够相对快速地从人体肠道样本收集肠道神经节, 达到 RNA 序列的标准。首先, 我们优化了在 2 MB (图 1B) 放置在干冰泥浆表面的大型基模中肠道组织段的快速冻结。最佳的成功在 cryosectioning 和随后 LCM 是通过放置肠段平在一个基地模子, 面对黏膜边上升 (图 1 b-1 c) 获得。确保基础模具尽可能平坦的基础上, 因为任何曲率将使它更难以获得一个大断面的肌间丛丛。这种方法导致的组织, 容易切片 8-µm 厚度 (图 1E), 并允许完全消除 TFM 从染色过程。我们发现, TFM 干扰染色过程, 从而掩盖了肠道神经节的鉴别。定位组织在这个方向也避免切片通过粘膜, 其中有高含量的 RNases12, 虽然从我们的经验来看, 乙醇污渍的使用很大程度上抑制了这些 RNases。在需要 TFM 或最佳切削温度 (OCT) 介质的情况下, 我们发现最可靠的办法是先将试样压扁在基模底部, 然后在该步骤之后将 TFM 添加到模具中 (图 1D)。这留下了一个 "窗口", 其中肠道可以很容易地可视化, 使其易于对齐标本和产生的部分完全平行于肌间丛丛 (图 1E)。
在平行于肌间丛丛 (图 2A) 的方向上, 沿小肠的长度纵向 cryosections 的制备, 产生切片, 其中每张幻灯片最大面积的肠神经节在染色时可见 (图 2C). 当接近肌间丛丛 (图 2C), 在同位语的纵向和圆形肌肉层 (图 2B), 6-12 个串行部分可以收集 (图 2A,纵向) 含有大量肠道神经节 (图 2C)。LCM 帽可以使用单个截面加载到容量中 (图 4D)。相比之下, 在准备新鲜冷冻肠道的横断面 (图2 a-2 B) 时, 每张幻灯片上只有一个小面积的肌间丛丛 (图 2B)。只有极少数的肠道神经节可以从横向组织切片收集, 从而使投资时间更大, 并使每样样品的成本更高。与横断面相比, 平行切片法使用的 LCM 帽和幻灯片的数量少于 1/5, 大大加快了采集过程。
在 lcm 之前, 样品必须染色并完全脱水, 以避免在 lcm 收集过程中 RNase 活动。我们设计了一个实验来直接比较水渍与乙醇污渍对 RNA 完整性的影响。在这个实验中, 两个肠道部分被安装在一个单一的幻灯片和处理的四种方式之一, n=2-3 生物复制每组。在第一组, 新鲜的肠道部分没有安装到幻灯片上, 每一个都直接转移到 RNA 裂解缓冲区使用 RNase 钳预冷的干冰 (图 3a)。对于所有剩余的组, 部分被坚持到幻灯片, 处理, 刮掉从幻灯片使用 RNase 净化解决方案处理剃刀刀片, 并转移到 RNA 裂解缓冲器与无 RNase 钳。采用标准微均质机对各组样品进行完全溶解。在第二组中, 幻灯片通过所有步骤进行处理, 但在染色过程中没有使用染料 (图 3B)。三组是用上面描述的协议处理的, 使用了4% 甲酚紫染料 (图 3C)。在第四组中, 用甲苯胺蓝和苏木精 (图 3D) 的混合物, 在遵循水基染色试剂盒的协议时使用了一种水渍, 甲苯胺蓝。在提取 rna 后, 如下所述, 用 Bioanalyzer 对 rna 质量进行了评估。水和乙醇染色协议的唯一区别是增加两个水孵化 (三十年代), 立即染色前后, 这是吸收和保留染料所需的。我们发现, 将组织切片粘附到滑块和加工过程中的脱水步骤导致了轻微的, 不可避免地减少 RNA 质量 (图 3 a-3 b), 但染色与乙醇染料, 甲酚紫罗兰, 不进一步降低 RNA 质量 (图 3C)。相比之下, 水染料, 甲苯胺蓝, 导致了大量的 RNA 降解, 可能是由于延长水接触, 允许内源性 RNase 活动 (图 3D)。
传统的玻璃幻灯片6 (图 4A), 肠道神经节的独特形状对标准 IR LCM 构成困难。当使用笔膜幻灯片 (图 4B) 时, 样品被粘附在与大多数玻璃幻灯片分离的薄薄片上。紫外线激光切割通过样品和笔膜, 导致完全脱离的神经节从幻灯片 (图 4C) 和完全遵守 LCM 帽 (图 4D)。任何所需尺寸和形状的结构 (> 10-15 µm) 可以完全和精确地收集 (估计 4 e-4 h)。对于某些样本, 每节的神经节较少, 在收集前, cap 可以移动≥四次。在这种情况下, 每张幻灯片安装三个部分可最大限度地减少笔膜幻灯片的使用。
当从 LCM 样品中分离 rna rna 序列时, 目标是获得尽可能高的 rna 质量和数量, 同时消除所有基因组 DNA (gDNA)。为了确定一个理想的 RNA 分离程序, 我们进行了一个与 rna 提取套件 "a" (图 5a), rna 提取试剂盒 "b" (图 5B), 或 rna 提取方法 "C" 的头部与头部的比较, 清除 rna 样本由 RNA 提取套件 "B" (图 5C)。用优化后的甲酚紫染色协议处理样品后, 采用 LCM 采集的标准圆形样品 (直径为500µm) 的肠道组织, 从纵肌层抽取。每个盖帽被随机分配到每一个三 RNA 隔离组, 被放置在一个0.5 毫升的离心管前填补与各自的溶解缓冲从每个试剂盒。指示被跟随了确切地被描述为每个试剂盒, 与 RNA 提取套件 "A" 溶解缓冲需要孵化在42°c 为30分钟。对于其他套件, 室温孵化用于30分钟。除裂解缓冲液外, 所有样品均 vortexed。然后将样品冷冻在冰上, 直到当天进行提取 (n=4)。我们发现, rna 提取试剂盒 "B" 与一列 DNA 消化步骤导致最高的 rna 质量和数量, 同时有效地消除 gDNA (图 5 a-5 c)。重要的是, rna 提取试剂盒 "B" 提供的 rna 裂解缓冲器在收集肠神经节时完全裂解捕获的神经节 (图 5D)。
我们的样品平均有7.49 到 0.53 (表 2)。对于 rna 序列 (根据特定 rna 剖面)13, 6-7 以上的分数被认为具有足够的质量, 这使我们有信心, 我们的样品有足够的质量为 rna-在考虑到这些样品, 在收到后,从7.4 到9.5 不等, 这些结果表明, 我们的优化协议提供了优良的 RNA 完整性保护。在图 6 a-6 c中描述了以 rna 序列为样本提交的代表 rna 质量结果。RNA 序列的结果表明, 我们的样品已成功地排序, 并有一个适度的 3 ' 端偏倚 (图 6D)。一般情况下, 更大的 3 '-偏倚是偏爱的样品与较低的玲14;这种效果在我们的样品中有适度的反映。尽管如此, 观察到的基因虱在所有样本中大致一致 (图 6E), 表明了数据的可靠性。
图 1.肠组织的最佳冷冻.(A) 干冰桶按所描述的顺序编制;i) 干冰泥浆, ii) 实验室组织放置在干冰之上, iii) 临时贮存桶, iv) 包装桶, v) 预冷藏储存桶, vi) 预冷藏存储溢流桶。(B) 我们优化了在干冰浆和 2-丁烷表面放置的大型基模中组织段的快速冻结。(C) 在面板 b 组所示的安装中观察到的完全冰冻标本的近距离图像被放置在面朝黏膜侧的基模中。(D) 这种冷冻方法可以很容易地适应与 TFM 的使用, 以同样的方式制备组织, 但在冷冻前添加 TFM 到基模。结果样本将有一个完全平坦的肌间丛丛, 有一个浆膜, 可以很容易地可视化。(E) 两种组织制备方法均以推荐的 8-µm 厚度产生优良的组织切片。这里描述了使用 TFM 的过程。请单击此处查看此图的较大版本.
图 2.适当的肠道组织定位提供丰富的肠道神经节.在准备标准横断面的新鲜冷冻肠道 (A, b), 只有一个小面积的肌间丛丛 (b) 出现在每张幻灯片。每张幻灯片可以收集很少的肠道神经节, 这是费时费力的。相比之下, 在肌间丛丛 (c) 的平面上准备纵断面, 提供了更大的神经节 (c) 的表面积。肌间丛丛的节段从浆膜开始, 通过纵肌 (B) 向内切片。当接近肌间丛丛, 在纵向和圆形肌肉层 (B) 的交界处, 可以收集6-12 个串行部分。肌间丛丛的每一个纵断面都含有大量的肠神经节 (用 C 表示, 使用改良的染色程序, 不含二甲苯, 优先染色神经节)。LCM 帽可以使用单一的组织部分填充到容量。请单击此处查看此图的较大版本.
图 3.用乙醇相容染料染色提高 RNA 质量.用 Bioanalyzer 测定 RNA 质量, 并显示各组样本的代表性结果。最初的 rna 质量从新鲜的, 未被卸载的部分 (A, 没有治疗) 测量, 有一个 rna 完整性数字 (玲) 8.65 0.07。对于通过所有步骤安装和处理的节, 但不带着色 (B), 则为 7.95 0.35。当4% 甲酚紫被添加到脱水步骤, 有一个微不足道的影响, 对玲, 平均玲 7.87, 0.35 (C)。相比之下, 使用水渍, 甲苯胺蓝 (T 蓝), 并增加了所需的水冲洗到该程序 (D) 导致大幅度降低 RNA 质量, 以 6.45 0.21。每个小组包括 n=3 生物复制除了 "没有治疗" 和 "T 蓝色" (n=2)。RINs 在这里被报告为平均标准偏差。请单击此处查看此图的较大版本.
图 4.笔膜 LCM 幻灯片, 使肠道神经节的精确收集。使用常规的玻璃显微镜幻灯片通过 LCM 收集肠道神经节往往导致不必要的组织拾取 (A)。红色圆圈 (直径30µm) 表示收集过程中使用的 IR LCM 斑点的大小。白色箭头表示一个神经节集合, 它拉起了一块相邻的肌组织。用笔膜幻灯片 (B), 样品被粘附在一张薄薄的薄片上, 与大多数玻璃滑梯分离。当用紫外 LCM 激光切割时, 样品和笔膜都被切片, 从而导致整个神经节从幻灯片中分离出来, 不管神经节形状 (C), 以及从样品中取出时完全加入 LCM 盖 (D).任何所需尺寸和形状的结构≥10-15 µm 可以完全和精确地收集 [(E), 初始组织标记;(F) 红外和 UV 激光切割完成;(G) 在 lcm 盖 (H) 上可视化的 lcm 盖从节中移除。面板 H 上的斑点背景是盖子固有的, 不是不想要的碎片。绿色圆圈蓝色十字线在面板E H是 LCM 程序的一部分, 并分别为紫外线和红外激光器的占位符。请单击此处查看此图的较大版本.
图 5.选择最佳的 RNA 隔离套件.在对三种不同的 rna 隔离程序进行并发比较后显示 rna 完整性结果。显示每个组的两个代表性图, 以说明并行处理的样本之间可能发生的可变性。rna 提取试剂盒 "a" (a) 生产的样品与 6.83 "0.65", 并提供了适度的 RNA 产量, 并往往有 DNA 污染, 尽管进行了一列 DNase 消化。RNA 提取试剂盒 "b" (b) 导致最高测量的玲, 在 8.3 0.1。虽然苯酚基 rna 提取方法 "C" (其次是清理的 rna 样品与 rna 提取试剂盒 "B") (C) 似乎消除 gDNA, 并有 7.5 0.26, 有大的污染带, 这可能是由于熔化的在 RNA 裂解过程中, 从 LCM 帽中粘接聚合物。此外, rna 提取试剂盒 "A" 的 rna 产量和提取方法 "C" 一直低于 rna 提取试剂盒 "B" 所获得的。重要的是 rna 提取试剂盒 "B" 提供的 rna 裂解缓冲器。(加β-巯基乙醇) 完全裂解捕获的神经节 (D)。每组都有 n=3 生物复制, 并在这里提出的平均标准偏差。请单击此处查看此图的较大版本.
图 6.代表性的结果.当每个样本汇集两个肠神经节的上限时, 我们获得足够数量的 rna 序列 (> 1 ng), 以及优良的 rna 质量。以 8.3 (a)、7.5 (B) 和 6.9 (C) 为例, 显示有代表性的 RNA 地块。RNA 序列数据是通过质量评估程序运行的, 在 R 中运行. (D) 末端偏倚图表明样品已成功地测序, 并有 3 ' 端偏倚。(E) 基因虱图也表示序列结果在样本中大体上是一致的。总共, 我们有一个 > 95% 成功率在生成可用于 RNA 序列的样品,请点击这里查看这个数字的更大版本.
| 步 | 时间 | 目的 |
| 95% 乙醇 (-20 oC) | 三十年代 | 固定 |
| 4% 甲酚紫罗兰在95% 乙醇 | 10-30 s | 染色 |
| 75% 乙醇 (与反复浸洗) | 15-25 s | 除污 |
| 95% 乙醇 (与反复浸洗) | 5-15 s | 除污 |
| 100% 乙醇 | 十五年代 | 脱水 |
| 100% 乙醇 (无水) | 三十年代 | 脱水 |
| 二甲苯 (与反复浸洗) | 15-20 s | 脱水 |
| 二甲苯 | > 10 分钟 | 脱水 |
| 风干 | 1-3 分钟 | 二甲苯蒸发 |
表1。染色和脱水协议概述。本表概述了我们的优化染色协议。请注意, 任何与乙醇相容的污渍可以用来取代甲酚紫罗兰, 如果它提供了更好的结果。在某些情况下, 染色和脱色的持续时间将需要延长或缩短。通常, 固定时间越长, 组织就会被完全染色。我们没有注意到, 在从同一个组织片段中准备幻灯片时, RNA 完整性的降低会达到3倍。
| 供 | 组织 | RIN |
| F | 结肠 | 7.1, 7.4, 7。2 |
| M | 回肠 | 7.2, 6.9, 7。8 |
| M | 十二指肠 | 8.2, 7.4, 7。7 |
| 回肠 | 7.4, 7.6, 7。3 | |
| 结肠 | 7.7, 7.8, 7。3 | |
| F | 十二指肠 | 7.1, 7.3, 6。9 |
| 回肠 | 7.8, 7.9, 7。6 | |
| 结肠 | 7.3, 8.0, 7。5 | |
| M | 回肠 | 6.9, 6.7, 6。9 |
| 结肠 | 6.8, 6.4, 6。6 | |
| M | 回肠 | 7.2, 7.3, 7。6 |
| 结肠 | 6.7, 7.6, 7。7 | |
| M | 回肠 | 8.3, 7.8, 7。4 |
| 结肠 | 7.0, 7.4, 7。0 | |
| F | 十二指肠 | 8.3, 8.8, 8。0 |
| 回肠 | 8.1, 8.0, 7。8 | |
| 结肠 | 8.4, 8.6, 7。1 |
表2。具有代表性的 RNA 完整性结果。本表所示样品均取自人肠道神经节。所有选择的样品有足够的 rna 质量和数量为 rna 序列分析。本表中列出的所有样本的平均值为7.49 到0.53。rna 浓度的测量也使用 RiboGreen 定量-它的检测和所有样品在本表中已满足最低数量的要求, 我们的 RNA 序列 (> 1) 实验。可以使用较小的数量, 这取决于预放大过程。然而, 当人们期望比较的样本或群体之间的基因表达有很大差异时, 这种程序更可靠;否则, 这些结果可以掩盖某些 RNA 序列应用的真正差异。因此, 一般建议在可能的情况下从更多的材料开始。
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Discussion
这个过程使许多肠道神经节的有效收集成为 rna 的来源在这里, 我们加速了现有协议中概述的过程, 同时最大限度地保留了 RNA 完整性。由于这一程序中的所有步骤都是相互依存的, 因此必须在研究开始时消除所有的问题, 并尽可能以同样的方式编写所有的样本, 以获得可靠的 RNA--
从程序的开始, 如果时间间隔 (冷缺血时间) 在器官捐赠时组织的收集和接收组织在实验室中的处理时间过长, RNA 完整性可能会受到负面影响。考虑到这一问题, 我们感到惊讶的是, 即使在24小时的冷缺血时间之后, 还可以从肠道标本中提取高质量的 RNA。当肠道样品在冷藏液中冷藏保存妥当时, 对组织完整性和 RNA 质量有极好的保护作用。我们要求器官收集小组在收集时将肠道组织冲洗, 以限制肠道对消化酶、RNases 和其他可能影响 RNA 质量的分子的接触。我们发现, 当肠道标本没有完全冲洗, 这可以大大减少样品的玲。
使用我们的优化程序, 以制备肠道组织样本, 我们可以避免嵌入样品在 TFM。由于 TFM 与乙醇和二甲苯相互作用, 形成一种暗褐色沉淀, 干扰肠神经节的可视化, 我们更愿意将其排除在样品中。然而, 当与小鼠或其他物种的肠道组织工作时, 排除 TFM 可能是不可能的。在这种情况下, 我们尝试了从幻灯片上的粘贴部分中删除 TFM。如果组织有足够的表面积, 乙醇 (-20 摄氏度冷冻) 可以用转移吸管滴在幻灯片上, 以快速修复 TFM, 允许用镊子将其取出。在幻灯片上滴下乙醇可避免在乙醇瓶内积聚 TFM, 这会在处理多张幻灯片时加剧褐变效应。
在闪光冷冻期间, 我们倾向于使用 2 mb, 而不是100% 乙醇的干冰浆, 因为 2 MB 在组织表面着陆时容易蒸发。乙醇的蒸发速度较慢, 特别是与 TFM 结合时, 在组织块上形成化学污泥, 不能轻易去除。在小冷冻容器中, 乙醇和 2 MB 在结冰时往往会起泡和飞溅, 因为小体积的干冰泥浆具有较低的比热容量。相反, 使用一个大的矩形桶填充 powderized 干冰提供了一个大的冷却质量和防止温度波动, 而组织被冻结。
如前所述, 从某些组织样本中获取肠神经节的连续片有时较其他人更容易。可以理解的是, LCM 的总体速度取决于源组织的特性或取样的肠道区域的变化。因此, 通常最好在开始时准备许多新鲜冰冻的样品。我们通常发现, 每段肠道 (每节2厘米 x 1.5 厘米) 的样本总数为下游应用提供充足的 RNA 的数量远远超过20。然而, 如果只有一小段肠道组织可用, 我们建议最低长度为5厘米。按照我们的方法, 将获得的最低产量将从18-30 的 RNA, 进一步讨论如下。根据应用的不同, 最小5厘米的长度可能会减少, 特别是如果使用更高数量的 cDNA 前置放大。这些参数在目前的研究中未被测试。例如, 肠神经节从全厚的肠道活检标本 (2 厘米 x 2 厘米) 收集, 用于 qPCR4。
正如我们在这项研究中表明, 使用乙醇相容染料, 甲酚紫罗兰, 提供了更好的保护 RNA 完整性比水渍, 甲苯胺蓝。当淹没在乙醇, RNases 成为不活跃的5,15。然而, RNases 仍然可以恢复功能一旦暴露在水7,15。当用水染料染色时, 组织必须接触到无核酸酶的水, 几乎1分钟9, 从而导致大量的 RNA 降解。在使用甲苯胺蓝组织染色时, 我们无法减少染色前后对水的接触, 因为这种修饰也减少了甲苯胺蓝的吸收和保留。同样的问题也遇到了以苏木素为基础的染料9。在这里描述的修改后的协议, 染色与甲酚紫罗兰避免直接暴露肠道样本到水, 从而最大限度地保持 RNA 完整性。这些结果消除了在染色溶液中需要额外的 RNase 抑制剂。我们发现, 这种抑制剂是无效的, 使使用的水染料, 甲苯胺蓝, 因为它干扰了吸收和保留的染料。
当最初优化我们的染色协议时, 我们无法重现其他协议和报告5、7、8、11中获得的结果。虽然原因不明, 我们发现了几个因素, 导致不一致的染料摄取和保留。例如, 虽然某些协议已经成功地用甲酚紫罗兰色在100% 乙醇8或75% 乙醇5中染色组织, 但染料仅依稀标记神经节或有较高的背景, 与使用甲酚紫罗兰在95% 乙醇。最后, 染色液中使用的甲酚紫的百分比也非常重要。大多数协议建议1% 甲酚紫罗兰溶液7,8, 但这种浓度并没有提供可靠的染色在我们的手, 即使染色后的部分高达2分钟。我们最好的成功染色与澄清饱和染色溶液的4% 甲酚紫11适用于样品通过无菌注射器过滤器8。这种饱和溶液能使样品更快速的染色, 仅在10-15 秒的时候. 在冷冻95% 乙醇 (-20 摄氏度) 的样品预固定, 可以更快地摄取污渍。
另一份报告发现, 在75% 乙醇溶液中, 肠道神经节在新鲜冰冻的人体肠道中最明显地被染色, 而甲酚紫罗兰与伊红结合在一起5。然而, 我们发现, 甲酚更难以识别神经节, 而且, 单独的紫外紫外线提供了优越的检测。在另一项研究中发现, 缓冲的甲酚紫溶液为子宫内膜癌组织10提供了一致的染色结果。然而, 我们发现, 这并没有提供任何改善人类肠道组织, 也不能实施时, 使用95% 乙醇的染色溶液。
我们已经测试了一些条件, 其中可以在以后暂停和恢复协议。许多协议建议提前切片幻灯片, 并在安装到幻灯片5、9后立即将其重新冻结-80 摄氏度。通过这种方法, 染色和 LCM 可以在下周恢复, 提供了很大的灵活性。然而, 这不仅极大地干扰了染色;它还减少了我们手中的 RNA 完整性 (没有显示数据)。为了规避这一问题, 我们建议在冷藏库11之前将切片染色并脱水。在这种方法中, 幻灯片是染色和脱水 (如表 1), 由100% 无水乙醇步骤 (礼宾科 5.2)。然后, 样品在第二瓶100% 无水乙醇孵化10分钟, 并立即转移到一个锥形管与干燥剂凝胶, 然后冷藏在干冰和转移到-80 °c 冰箱。当从冷冻机中取出样品时, 幻灯片立即被浸没在100% 无水乙醇中, 三十年代和风干之前, 执行 LCM11。不幸的是, 在我们的手中, 这种方法减少了 0.6-0.8 (没有显示数据)。因此, 我们采取所有切片, 染色和 LCM 在同一天, 以获得最大的 RNA 完整性, 在我们的条件。这证明是一个耗时的过程, 但 10-14 LCM 帽可以填补在一整天的工作。
我们的协议可以暂停的最可靠的点是在二甲苯孵化步骤。在二甲苯 (用分子筛) 中的幻灯片已经被保留了多达4-5 小时, 对 RNA 完整性没有任何明显的影响。我们发现, 当三张幻灯片准备一次, 所有可以在这个时间段内的 LCM 处理, 即使需要一个小时的休息。另一种选择是在真空密封 exicator16中, 在染色和脱水步骤后脱水幻灯片, 但我们尚未尝试这种方法。
rna 分离是过程的另一个关键步骤, 最重要的因素是: 获得 rna 的最大可能的产量, 保留 rna 的全部光谱 (不损失小 rna 种类)17,18和完全消除样本17中的基因组 DNA。在我们的手中, RNA 提取试剂盒 "B" 提供了最好的结果, 我们的样本, 因为它提供了更大的产量和更有效的基因组 DNA 消除。我们对 RNA 萃取试剂之间产量差异的观察与先前报告17、18一致。然而, 也有许多 LCM 研究报告成功与其他 RNA 萃取试剂19,20。先前的报告还表明, 基于列的 rna 提取过程比基于苯酚的 rna 提取方法更好地保留小 rna 分子18 , 因为 rna 沉淀过程中的上清中小 rna 分子可能丢失步骤。
我们观察到, 使用胍硫氰酸盐添加β巯基乙醇的 RNA 裂解缓冲液在去除 LCM 盖上所有捕获的神经节方面非常有效 (图 5D)。虽然大多数 LCM 协议并不建议涡流裂解, 但我们发现这会产生优异的结果, 不会导致 RNA 的降解。它还提供了一个更大的可能性, 所有捕获的神经节将从 cap 中释放 RNA 提取。使用这些方法, 我们通常从肠神经节的 LCM 中获得 RNA 的产生率, 其范围为1.8 到 18 ng/cm2的肠道组织, 这取决于给定的一张幻灯片上有多少个神经节。我们的 rna 序列程序需要最少输入 10 ng rna, 但其他程序可以有更低的 rna 输入, 如果排序处理包括更多的预放大周期。从制备和闪光冷冻过程中储存的组织总表面积为40-60 厘米2, 为 cDNA 文库的准备和低输入 rna 序列的应用提供了充足的 rna。
虽然我们的程序是为收集整个肠道神经节, 该方法可以很容易地修改, 以收集单神经元, 或胶质细胞, 如果需要5。然而, 由于神经胶质处理的 ensheath 神经元密集, 胶质 rna 将包括与捕获神经元的 rna, 虽然在较低的计数。当试图识别以低拷贝数表示的神经元记录时, 这会引发问题。单细胞 RNA 序列在这方面提供了最佳的精确度和检测, 但要求神经元脱离肠道组织, 染色的是泛神经元标记, 并与流式细胞术21隔离或从全肠道识别dissociations 后, 与生物信息学的方法排序。大多数离解研究的缺点是大多数协议要求样品在室温下或37摄氏度的时间内孵化, 这是已知的改变转录3。最近,地衣芽孢杆菌的冷活性蛋白酶已用于小鼠组织单细胞悬浮液的生成, 并且可以将这种酶用于人体组织的离解4°c22。在这样的优化完成之前, 新鲜冷冻人体组织的 LCM 是一种强有力的手段, 捕捉 RNA 的表达分析的周围神经系统元素, 如肠道神经节。
总之, 我们已经制定了一个可靠和一致的协议, 收集 RNA 从人类肠道神经节。我们优化了人类肠道组织的制备, 染色, LCM 过程, 和 RNA 提取的基础上许多出版物和协议。我们也证明了这种方法的可靠性, 收集 rna 样本, 以 rna 序列的充分 rna 质量。该协议可广泛应用于一些胃肠道疾病患者收集的组织, 可以方便地适应啮齿动物模型的使用, 从而为新疗法的发展提供了可靠的策略。
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Disclosures
作者没有披露的利益冲突。
Acknowledgments
我们感谢捐助者及其家人使这项工作成为可能。我们还感谢国际医学研究所和田纳西州捐助者服务机构的工作人员协助协调本研究所用组织的收集工作。这项工作得到了国家卫生研究院、nih OT2-OD023850 到 EMS2的赠款和 nih T32-DK007673 向湄京集团提供的助学金支持。我们感谢范德比尔特翻译病理学共享资源的工作人员获得 LCM 仪器和关于组织准备的建议。范德比尔特组织病理共享资源部分由 NIH 赠款 P30-CA068485-14 和 U24-DK059637-13 支持。我们感谢华盛顿大学医学院遗传学系的基因组技术访问中心, 以帮助进行基因组分析。GTAC 的部分支持的癌症中心支持补助金 #P30 CA91842 Siteman 癌症中心和信息和通信技术/CTSA 赠款 #UL1TR002345 从国家研究资源中心 (NCRR), 一个组成部分的国家卫生研究院 (nih) 和 nih医学研究的路线图。这份出版物完全是作者的责任, 不一定代表 NCRR 或 NIH 的官方观点。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10% Neutral-buffered formalin | Sigma | HT501128-4L | |
| 2-Methylbutane | Fisher | O3551-4 | |
| 3-mL syringe | BD | 309628 | |
| 50-mL conical tubes, polypropylene | Corning | 05-526B | |
| Base molds 37x24x5mm, disposable | Electron Microscopy Sciences | 5025511 | |
| Belzer UW Cold Storage Solution | Bridge to Life | N.A. | |
| CapSure Macro LCM caps | Arcturus, ThermoFisher | LCM0211 | |
| Cling Wrap, Press’n Seal | Glad | N.A. | |
| Cresyl Violet Acetate | Acros Organics | AC405760025 | |
| Cutting Board | Electron Microscopy Sciences | 63308 | |
| Ethanol, 190-proof | Pharmco-AAPER | 111000190 | |
| Ethanol, 200-proof | Pharmco-AAPER | 111000200 | |
| Glass Microscope slides | Fisher | 12-550-343 | |
| Gloves, extended cuff | Microflex | 19010144 | |
| Gowns, surgical-disposable | Kimberly-Clark | 19-088-2116 | |
| Tray, 20 L (large polypropylene sterilizing pan) | Nalgene | 1335920B | |
| Kimwipes (large) | Kimberly-Clark | 34120 | |
| Kimwipes (small) | Kimberly-Clark | 34133 | |
| Laser Capture Microdissection System (ArcturusXT) | ThermoFisher | N.A. | |
| Leica Cryostat Chuck, large, 40 mm | Southeast Pathology Instrument Service | N.A. | |
| Light Microscope | Olympus | CX43 | |
| Microscope objective (20X) | Olympus UPlanFl 20X/0.50, ∞/0.17 | N.A. | |
| Microscope objective (10X) | Olympus UPlanFl 10X/0.25, ∞/- | N.A. | |
| Molecular Sieves | Acros Organics | AC197255000 | |
| Nuclease-free water | Ambion | AM9937 | |
| PicoPure RNA extraction kit | Applied Biosystems | 12204-01 | |
| Pellet Pestle | Kimble Kontes | 4621973 | |
| PEN membrane LCM slides | Arcturus, ThermoFisher | LCM022 | |
| RNase-free tubes, 1.5 mL | Ambion | AM12400 | |
| RNaseZAP | Sigma | Sigma-R2020 | |
| RNA Extraction Kit "A" (PicoPure) | Applied Biosystems | 12204-01 | |
| RNA Extraction Kit "B" (RNeasy Micro kit) | Qiagen | 74004 | |
| RNA Extraction Method "C" (TRIzol) | Invitrogen | 15596-026 | |
| RNA Extraction Kit "D" (RNeasy PLUS Mini kit) | Qiagen | 74134 | |
| Splash Shield, disposable faceshield | Fisher | 17-310 | |
| Scissors, Surgical, 14.5 cm "sharp-sharp" | Fine Science Tools | 14002-14 | |
| Syringe filter, cellulose acetate (0.2 μm) | Nalgene | 190-2520 | |
| Tissue Freezing Medium | General Data Healthcare | TFM-5 | |
| Xylenes | Fisher | X3P1GAL |
References
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