Produzione di vettori lentivirali per Celle di trasduzione del Sistema Nervoso Centrale

1. Packaging di vettori lentivirali

Vettori lentivirali sono prodotte da cotrasfezione di un vettore di trasferimento lentivirale ed altri plasmidi necessari per il confezionamento in cellule 293T secondo il metodo trasfezione fosfato di calcio. Usiamo 10 da 100 mm, piatti di coltura di tessuto di questo protocollo. Esso può essere aumentato o basso a seconda delle applicazioni. La linea cellulare 293T viene mantenuta in modificato da Dulbecco (DMEM) con glucosio (4500 mg / L), integrato con 10% siero fetale bovino (FBS), 100 unità / ml di penicillina, 100 pg / ml di streptomicina a 37 ° C incubatore con il 5% di CO _2.

1. Seed 293T cellule a confluenza del 30-40% a 10 piatti di tessuto da 100 mm Cultura (3 x 10 ⁶ cellule / piatto) in terreno di coltura. Riportare le cellule incubatrice.
2. Dopo 20-24 cultura h, controllare la densità delle cellule. Le cellule devono essere circa 80% di confluenza al momento della transfezione.
3. Preparare una provetta da 50 ml. Aggiungere 4,4 ml TE79/10 (1 mM TrisHCl, 0,1 mMEDTA, pH 7,9) meno il volume totale del seguente DNA plasmidico. Aggiungere 100 pg trasferimento lentivirale plasmide (figura 1), 58 mg pMDLg / pRRE, 31 pg pCMV-G, 25 pg PRSV-Rev, 600 microlitri 2M CaCl _2. Mescolare delicatamente.
4. Preparare un altro tubo da 50 ml. Aggiungere 5 ml 2x HBS (HEPES 0,05 M, 0,28 M NaCl, 1,5 mM Na ₂ HPO _4, pH 7,12).
5. Prendere la DNA-CaCl ₂ miscela di 10-ml pipetta e aggiungere al tubo contenente 2 x HBS, goccia a goccia mentre il tubo vortex.
6. Mantenere la reazione di precipitazione a temperatura ambiente (RT) per 30 min.
7. Rimuovere le piastre di coltura da incubatrice. Mescolare la reazione di precipitazione bene nel vortex. Aggiungere 1 ml di sospensione per ogni 100 mm di cellule contenenti piatto. La sospensione deve essere aggiunto lentamente, goccia a goccia mentre delicatamente il mezzo nel piatto. Torna questi piatti per l'incubatore e lasciare per 5 ore.
8. Rimuovere il terreno dalla coltura. Aggiungere 6 ml di mezzo di coltura fresco contenente 6 mM di sodio butyrate ad ogni piatto. Riportare le culture di incubatore. Dopo la coltura di una notte, se vi è un reporter fluorescente nel costrutto, controllare l'espressione del gene reporter sotto microscopio a fluorescenza. Solitamente, oltre l'80% delle cellule esprimono il gene reporter se è guidata da un promotore ubiquitario (ad esempio promotore CMV).
9. Due giorni (40-44 h) dopo la transfezione, raccogliere il supernatante da 10 piatti in 2 ml 50-provette (circa 30 ml ciascuna provetta). Congelare il surnatante in freezer -80 ° C o andare al passaggio successivo.

2. Concentrazione e purificazione dei vettori

1. Centrifugare il raccolto di fresco o congelato surnatante a 900 g (circa 2000 rpm) per 10 minuti per rimuovere i detriti cellulari nel supernatante.
2. Collegare una siringa da 60 ml ad un 0,2 micron filtro SFCA siringa. Trasferire il supernatante da 50-ml provetta alla siringa. Filtrare il surnatante in una provetta da centrifuga polyallomer.
3. Take 5 ml di saccarosio 20% (preparato in PBS) in una pipetta da 5 ml. Inserirela pipetta al fondo della provetta contenente supernatante. Aggiungere lentamente la soluzione di saccarosio sotto il surnatante vettore. Ripetere questi passaggi per il surnatante da un altro tubo.
4. Centrifugare il surnatante a 11000 giri al minuto e 4 ° C per 4 h con Beckman SW28 rotore swing.
5. Rimuovere il surnatante. Aggiungere 150 ul Lattosio 4% (preparato in PBS) a ciascuna provetta. Risospendere il pellet.
6. Trasferire il vettore concentrato da tutte le provette da centrifuga a 1,5 ml provetta. Lasciare la provetta in ghiaccio per 15 min.
7. Mescolare la sospensione vettore pipettando. Spin con microcentrifuga a piena velocità (circa 16000 g) per 1 min.
8. Trasferire il surnatante in un nuovo tubo da 1,5 ml. Dividere il campione finale in 20 aliquote pl e conservati in congelatore -80 ° C.

3. Titolazione dei vettori

1. Seme 5 x 10 ⁴ / pozzetto di HT1080 cellule in 12-pozzetti in 1 ml di terreno DMEM supplementato con 10% FBS.
2. Dopo overnigcultura ht, contare le celle da un bene e segnare il numero di cellulare.
3. Effettuare 5-volte diluizione seriale (1:5, 1: 25; 1:125, e 1:625) del vettore concentrato con mezzo di coltura. Aggiungi I ul di ciascun vettore diluito in pozzetti separati. I campioni possono essere duplicati per aumentare la precisione.
4. Aggiungere 1 pl 4 mg / ml Polybrene (Hexadimethrine bromuro) in ciascun pozzetto contenente vettore e in un pozzo senza vettore. Mescolare agitando delicatamente la piastra. Torna a incubatore per 48 ore.
5. Rimuovere media da pozzi di coltura cellulare. Lavare ogni pozzetto con PBS. Aggiungere 250 pl 1x tripsina-EDTA soluzione alle cellule. Quando le cellule vengono staccate (3-5 min), aggiungere 1 ml di mezzo di coltura. Risospendere le cellule pipettando. Trasferimento sospensione di cellule in provette ml 1,5 centrifuga.
6. Centrifugare a 900 g per 6 min. Per i vettori con un gene reporter fluorescente (GFP per esempio), passare al punto 3.7 per l'analisi FACS. Per i vettori che non un giornalista, andare al punto 3.8 per qPCR in tempo reale.
7. Per vettori contenenti un fluogene reporter fluorescente, rimuovere il supernatante e risospendere il pellet con 300 ml di 3,7% di formaldeide in PBS. Determinare la percentuale di cellule positive del reporter mediante analisi FACS. Il titolo sarà rappresentato come unità di trasduzione per millilitro concentrato vettore (TU / ml).

Ad esempio, se 1 x 10 ⁵ cellule è stato trasdotto con pl 1/25 (0,04 pl) vettore e 30% di cellule positive sono giornalista, il titolo sarà:

Utilizzare solo le diluizioni cadono in una relazione lineare tra la percentuale di cellule positive e la quantità di vettore aggiunto per calcolare titolo. Il titolo finale dovrebbe essere una media dei titoli ottenuti da trasduzioni di almeno 2 diverse quantità del vettore.

8. Per vettori senzagene reporter fluorescente, estrarre il DNA genomico da HT1080 cellule usando QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen) secondo il protocollo del produttore. Amplificazione sequenza di vettore nel DNA genomico utilizzando ABI Prism 7000 Sequence Detection System (Applied Biosystems) con inneschi (in HIV-1 PBS / psi regione ¹⁷⁾ 5'-CCGTTGTCAGGCAACGTG-3 'e 5'-AGCTGACAGGTGGTGGCAAT-3', e TaqMan sonda 5 '-FAM-AGCTCTCTCGACGCAGGACTCGGC-TAMRA-3'. Gene albumina che è una sola copia del gene nel genoma (2 copie per cellula) è stato amplificato con i primer 5'-TGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTT-3 'e 5'-CTCTCCTTCTCAGAAAGTGTGCATAT-3' e 5'-probe-TGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGA FAM-TAMRA-3 'come controllo interno. Determinare i numeri di copie di vettore e di albumina da PCR in piastra a 96 pozzetti secondo le istruzioni del fabbricazione con il seguente programma: 50 ° C per 2 min, 95 ° C per 10 minuti, e 35 cicli di 95 ° C per 15 sec e 60 ° C per 2 min. Diluizioni seriali di dieci volte di plasmidi di concentrazione nota (rappresentato come copianumero) contenente le sequenze modello dovrebbe essere amplificato per creare una curva standard per la quantificazione di campioni sconosciuti. Il titolo sarà rappresentato come unità di integrazione per millilitro concentrato vettore (UI / ml).

4. Trasduzione delle Culture neocorticale

Culture neocorticale contenenti sia neuroni e glia sono preparati da corteccia di topo usando una procedura in due fasi placcatura come descritto in precedenza ^18. Neocortices ottenuti da topi fetale a 14-16 giorni di gestazione vengono piastrati su un monostrato precedentemente stabilito gliale in MEM additivato con il 10% FBS, 20 mM di glucosio e glutammina 2 mM a 24-pozzetti di coltura tissutale.

1. Dopo 5 giorni in vitro, aggiungere 10 pM citosina arabinoside (Ara-C) in CENALcultura ortical per inibire non neuronali divisione cellulare. Continua a coltura le cellule per 2 giorni.
2. Mezzo di coltura caldo 37 ° C in bagno d'acqua per 5-10 min. Sostituire Ara-C contenente il mezzo con terreno di coltura fresco (500 pl / pozzetto).
3. Aggiungere vettore con desiderata MOI (molteplicità di infezione, il rapporto tra il numero di particelle vettore per il numero di cellule bersaglio) alla cultura. Continua coltura per 24 h. Usiamo MOI di 1-10 (di solito 5) in colture primarie corticali.
4. Sostituire terreno di coltura con terreno fresco. Continua la cultura. Se c'è un gene reporter nel costrutto vettore, controllare le cellule sotto microscopio fluorescente 2 giorni dopo trasduzione. Espressione del gene reporter sarà visibile in neuroni 2-7 dopo trasduzione, a seconda del design vettore e la dose usata.

5. Risultati rappresentativi

I titoli dei vettori lentivirali prodotti con questa gamma di protocollo 10 ⁸ -10 ¹⁰ IU / ml el'elevatoh sono adatti per la trasduzione di una varietà di tipi di cellule del CNS sia in vitro che in vivo. Tabella 1 e la figura 2 mostra un risultato rappresentativo con i vettori prodotti da questo protocollo. Noi trasdotte murini culture neocorticali con vettori lentivirali esprimenti proteina verde fluorescente (GFP), controllata da sinapsina (SYN) promotore o proteina acidica fibrillare gliale (GFAP) promotore. Sette giorni dopo la trasduzione, abbiamo effettuato immunocolorazione di neuroni etichette ed astrociti con anticorpi anti-NeuN e anti-GFAP, rispettivamente. Come mostrato nella tabella 1 e Fig. 2A, dopo trasduzione con il vettore che porta il promotore sinapsina, oltre il 90% dei neuroni (cellule NeuN ⁺⁾ esprimono GFP e non astrociti (GFAP ⁺ cellule) esprimono questo gene reporter. Quando promotore GFAP è utilizzata nel costrutto vettore (Fig. 2B), circa 80% di astrociti (GFAP ⁺ cellule) espressiones GFP; tutte le cellule GFP ⁺ astrociti sono come confermato dalla colocalizzazione con GFAP e l'assenza di espressione di GFP in cellule NeuN-etichettati. Questi risultati dimostrano che vettori lentivirali sono molto efficaci per fornire transgeni alle cellule del CNS e cellula-specifici espressione genica può essere raggiunta quando vengono utilizzati promotori appropriati.

Figura 1. Rappresentazione schematica di vettori lentivirali dell'HIV basati ed i plasmidi confezionamento. La provirus HIV-1 è mostrata in alto. Gli elementi di vettore di produzione sono separati in quattro differenti plasmidi. Il trasferimento lentivirale plasmide contiene un ibrido 5 'LTR in cui viene sostituita con la regione U3 del citomegalovirus (CMV), il segnale di imballaggio (ψ), la sequenza di RRE, il tratto polypurine centrale (cPPT), un gene di interesse (ad es un reporter fluorescente) insieme con un promotore di scelta, e il 3 'LTR in cui lasequenze cis regolazione sono completamente rimosso dalla regione U3. pMDLg / pRRE contiene geni gag e pol ed sequenza RRE da HIV-1 sotto il controllo del promotore CMV. PRSV-Rev contiene la sequenza codificante di Rev guidata dal promotore RSV. pCMV-G VSV contiene il gene della proteina-G sotto il controllo del promotore CMV. PA indica il segnale di poliadenilazione da umano β-globina.

Figura 2. Espressione dei geni reporter in coltura mista topo neocorticale trasdotte con vettori lentivirali trasportano cellulari tipo-specifici promotori. Le colture sono state transdotte con LV-SYN-GFP (A) o LV-GFAP-GFP vettori (B) ad una MOI di 5. Sette giorni dopo la trasduzione, le cellule sono state immunomacchiate con anticorpo anti-NeuN o anti-GFAP. I pannelli superiori mostrano fluorescenza GFP, pannelli centrali mostrano immunostaining e pannelli inferiori sono uniti immagini (GFP: verde; NeuN o GFAP: rosso). Vettore GFP ⁺ cellule in neuroni ⁺ GFP negli astrociti LV-SYN-GFP 92,2 ± 7,3 0 LV-GFAP-GFP 0 78,3 ± 11,5

Tabella 1. Confronto di espressione GFP in culture neocorticali murine trasdotte con vettori lentivirali che trasportano promotori diversi ^a.
un colture murini neocorticali (5 x 10 ⁵ / pozzetto in 24-pozzetti) sono state transdotte con LV-SYN-GFP o LV-GFAP-GFP ad una MOI di 5. Sette giorni dopo la trasduzione, le culture sono stati fissati e immunomacchiate per NeuN o GFAP. Il numero di cellule GFP e NeuN / GFAP che esprimono sono stati contati in immagini da 10 campi per ogni condizione sperimentale. I valori rappresentano la percentuale di neuroni (NeuN ⁺ cellule) oastrociti (GFAP ⁺ cellule), che ha inoltre espresso il gene reporter GFP. I valori riportati sono medie ± SD di tre esperimenti indipendenti.

In questo protocollo, abbiamo dimostrato la produzione di vettori lentivirali e l'applicazione di questi vettori nelle culture neocorticali. Abbiamo dimostrato efficace e cellula-specifico tipo trasduzione con i vettori prodotti da questi metodi. Quando il promotore sinapsina viene utilizzata, l'espressione della GFP è strettamente neurone specifico. Quando il promotore GFAP viene utilizzata, l'espressione della GFP è esclusivamente in astrociti. Se nessun tipo-specifico espressione cellulare è richiesto, un promotore ubiquitario può essere utilizzato. Abbiamo trovato sia ubiqutin e fosfoglicerato chinasi (PGK) promotori può guidare ad alto livello di espressione genica nelle culture neocorticali ^6. L'espressione genica guidato da vettori lentivirali può essere personalizzato per i livelli di specifici tipi di espressione o di una cella per scelta dei promotori (ad esempio, onnipresente o una cella di tipo specifico) o utilizzando proteine ​​dell'involucro diverse o pseudotypes vettore di indirizzare specifici tessuti o applicazioni. Ad esempio, pseudotipizzazione con rabbia proteina G oppure una fusione di VSV-G unod proteine ​​rabbia supporta trasporto assonale retrogrado ^19,20. Il protocollo di trasfezione transiente consente imballaggio vettore con proteine ​​dell'involucro differenti.

Vettori lentivirali sono comunemente concentrati mediante ultracentrifugazione, senza fasi di purificazione. Questi vettori non purificate sono adatti per molti tipi di cellule. Tuttavia, colture neuronali primarie sono sensibili a contaminanti di cellule produttrici, con conseguente variazione tra le partite di citotossicità. Il cuscino 20% saccarosio fase di purificazione rende i vettori costantemente atossico in neuroni primari. Si consiglia di utilizzare vettori purificate per la trasduzione di neuroni primari e di iniezione in animali. Se grande scala o superiore purezza di preparati vettoriali sono necessarie, altre tecniche di purificazione, come la cromatografia di affinità e ²¹ membrana a scambio anionico cromatografia ²² può essere utilizzato. Come lungo termine trasduzione è generalmente richiesto in colture neuronali primarie, Particolare cautela dovrebbe essere presa per minimizzare la contaminazione durante la preparazione dei vettori. Passando il surnatante vettore con filtro 0,2 micron e con autoclavabili provette polyallomer al momento della concentrazione del vettore servirà a questo scopo. Bottiglia-top filtri può essere utilizzato se un grande volume di supernatante deve essere filtrata. Butirrato di sodio è stata riportata per stimolare l'attività di promotori ^23. L'aggiunta di butirrato di sodio al mezzo di coltura dopo la trasfezione delle cellule produttrici può aumentare il titolo vettore più di 10 pieghe ^24. Polybrene (hexadimethrine bromuro) è stato ampiamente utilizzato per i protocolli di trasferimento genico per aumentare l'efficienza del trasferimento genico retrovirale neutralizzando le cariche negative, facilitando in tal modo l'interazione cellula-vettore ^25. Nelle nostre mani, polibrene è tossico per i neuroni in colture neocorticali. Pertanto, polibrene deve essere evitato in trasduzione colture neuronali primarie. Se c'èun reporter fluorescente nel vettore, è conveniente per determinare il titolo vettore mediante analisi FACS. Quando non reporter è disponibile o un gene reporter è pilotato da un promotore specifico tessuto, qPCR per rilevare l'integrazione del vettore nelle cellule bersaglio dovrebbe essere una scelta migliore l'integrazione del vettore è indipendente di espressione del transgene. Il titolo di vettori specifiche determinate mediante analisi FACS sarà inferiore a quello di qPCR come non tutte le copie del vettore integrati sono funzionali. Titoli vettore può anche essere determinata misurando proteina p24 HIV da ELESA o vettore RNA genomico mediante QRT-PCR in preparazioni vettoriali. Tuttavia, questi metodi sono meno preciso grazie all'elevato numero di particelle virali difettose inevitabilmente generate durante il processo di confezionamento e le particelle funzionali che non correttamente trasducono cellule bersaglio ^26. I vettori fatte da questo protocollo sono stati utilizzati con successo in vitro e in vivo in rodente del cervello ^27. Gli investigatori dovrebbero testare nei loro sistemi singolarmente, come vettore di espressione genica mediata non è necessariamente identico in colture cellulari e sistemi in vivo anche nel tipo cellulare stesso ^6,28. Vettori lentivirali sono stati ampiamente usati per la sovraespressione o abbattere geni di interesse in una varietà di tipi cellulari nel CNS. Il nostro protocollo dovrebbe essere utile per gli investigatori delle neuroscienze di sviluppare vettori lentivirali nelle loro applicazioni di ricerca.