-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
تحليل موائع جزيئية خلية واحدة نجحت عصية
تحليل موائع جزيئية خلية واحدة نجحت عصية
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Single-cell Microfluidic Analysis of Bacillus subtilis

تحليل موائع جزيئية خلية واحدة نجحت عصية

Full Text
12,580 Views
10:37 min
January 26, 2018

DOI: 10.3791/56901-v

Matthew T. Cabeen1, Richard Losick2

1Department of Microbiology and Molecular Genetics,Oklahoma State University, 2Department of Molecular and Cellular Biology,Harvard University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

نحن نقدم طريقة لتحليل موائع جزيئية الأنساب الخلية البكتيرية الفردية باستخدام نجحت عصية على سبيل مثال. الأسلوب ويتغلب على أوجه قصور أساليب التحليلية التقليدية في علم الأحياء الدقيقة بالسماح بمراقبة مئات الأجيال الخلية تحت ظروف النمو يمكن السيطرة عليها بشكل محكم وموحدة.

الهدف العام من هذا الإعداد التجريبي للموائع الدقيقة هو تمكين المراقبة طويلة المدى للخلايا البكتيرية الفردية في ظل ظروف بيئية ثابتة وشديدة الخاضعة للرقابة. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال علم وظائف الأعضاء البكتيري ، مثل أنماط الاستجابة طويلة المدى للخلايا الفردية للإجهاد أو كيف يختلف النمط الظاهري غير المتجانس عبر مجموعة سكانية بمرور الوقت. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكننا مراقبة سلالات الخلايا الفردية لعشرات أو حتى مئات الأجيال ، في ظل ظروف بيئية ثابتة وموحدة وشديدة الخاضعة للرقابة.

بعد تحضير بوليمر PDMS وفقا لبروتوكول النص ، ضع سيد السيليكون على قطعة من رقائق الألومنيوم غير المنقطعة في طبق بتري من البوليسترين. يسكب خليط PDMS منزوع الغاز فوق السيد على عمق خمسة ملليمترات تقريبا. ثم قم بإزالة الطبق لمدة 10 دقائق على الأقل.

قم بمعالجة PDMS في فرن على حرارة 60 درجة مئوية لمدة ساعة على الأقل وقم بتبريده إلى درجة حرارة الغرفة. ثم قم بإزالة رقائق الألومنيوم التي تحتوي على السيد، وPDMS المعالج من اللوحة. قم بتسجيله بعناية وانزع رقائق الألومنيوم من الجزء الخلفي من السيد.

ثم قشر PDMS بعناية من السيد. كرقاقة ، عادة ما تتضمن العديد من أجهزة الموائع الدقيقة ذات الأبعاد المختلفة قليلا. استخدم مشرطا نظيفا وحادا لقص جهاز واحد بالحجم المناسب.

ضع قطعة من شريط المكتب الشفاف على الجانب المزخرف من الجهاز لتحسين رؤية الميزات المزخرفة. يتم تحديد منافذ المدخل والمخرج على أنها مناطق دائرية في طرفي نقيض من القنوات السائلة المرئية. اقلب جهاز PDMS مع وضع جانب النمط لأسفل واستخدم لكمة خزعة 0.75 ملم لكمة الجهاز إلى النقاط المحددة.

ثم تخلص من اللكمات. قد تكون هناك حاجة إلى ملاقط لإزالة اللكمات من الجهاز. أدخل زجاج الغطاء النظيف والمجفف وجهاز PDMS في منظف بلازما الأكسجين ومعالجة البلازما للجهاز بالإعدادات الموضحة هنا.

مباشرة بعد انتهاء العلاج بالبلازما ، قم بإزالة الجهاز وقم بتغطية الزجاج من منظف البلازما. اقلب نظام إدارة حماية البيانات وضعه في منتصف زجاج الغطاء بحيث يلامس جانب النمط الزجاج. تأكد من محاذاة قنوات التغذية مع الوصول الطويل لزجاج الغطاء.

اضغط لأسفل برفق شديد للتأكد من أن PDMS يغلق على الزجاج. اخبز الجهاز المجمع في فرن على حرارة 60 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة على الأقل. بعد الخبز ، تحقق يدويا من ربط PDMS بالزجاج عن طريق الضغط برفق على أحد أركان الجهاز.

بعد قطع أنابيب البوليمر وفقا لبروتوكول النص ، قم بتجميع الوصلات Y لصمامات القرص ، في حالة استخدامها ، عن طريق قطع وربط أطوال سنتيمترين من أنابيب السيليكون المرنة بالأشواك العلوية ل Y وأطوال سنتيمتر واحد من أنابيب السيليكون إلى الشوكة السفلية ل Y.بعد ذلك ، قم بقص أطوال 10 سم من أنابيب البوليمر ثم قم بتوصيلها في أحد طرفيها بتقاطع التبديل عن طريق إدخالها في أجزاء أنابيب السيليكون التي يبلغ طولها سنتيمترا واحدا الشوكة السفلية من Y.قم بتوصيل أطوال الأنابيب في الطرف الآخر بإبر قياس 21 التي تمت إزالتها من محولات الحقن البلاستيكية الخاصة بها وثنيها حوالي 90 درجة على بعد حوالي تسعة ملليمترات من نهاية الإبرة. قم بتوصيل الإبر الحادة قياس 21 بأحد طرفي أجزاء الأنابيب التي ستمتد من المحاقن إلى جهاز التبديل عن طريق إدخال الإبر في الأنبوب. أدخل الأطراف الأخرى لكل طول من الأنابيب في أجزاء أنابيب السيليكون على أشواك مدخل التقاطعات Y.

بعد ملء المحاقن بوسط نمو البكتيريا ، المكملة ب BSA ، وفقا لبروتوكول النص ، قم بتوصيل المحاقن المحملة بالإبر المعدة عيار 21 ، وقم بتوصيلها بأنبوب المدخل وقم بتحميل المحاقن في مضخات الحقن. قم بتطهير الهواء من السباكة الداخلية عن طريق تشغيل مضخات الحقنة بمعدل تدفق مرتفع وتوجيه مضخات الحقنة عموديا ، والنقر على المحاقن لإحضار فقاعات الهواء إلى الأعلى. بمجرد تطهير الهواء من المحقنة ، ضع مضخة المحقنة أفقيا واضغط تدريجيا على خطوط البوليمر أو قم بنقرها من المحاقن ، لأعلى من خلال جهاز التبديل لإزاحة وتطهير أي فقاعات هواء.

كرر هذه العملية للبنك الثاني من المحاقن في حالة تبديل الوسائط. بعد تطهير فقاعات الهواء ، اضبط مضخة الحقنة في المرحلة الثانية على 1.5 ميكرولتر في الدقيقة ثم أوقف التدفق مؤقتا. ضع مشابك رابطة صغيرة على أجزاء الأنابيب المرنة على فرع التقاطعات Y المقابلة للمرحلة المتوسطة الثانية واستمر في تشغيل مضخة المرحلة الأولى لتطهير الوسط الثاني في اتجاه مجرى النهر من التقاطع Y.

لتحميل جهاز PDMS، ابدأ بوضع أطراف ماصة دقيقة فارغة ورفيعة تحمل الهلام برفق في فتحات مخرج جهاز الموائع الدقيقة. باستخدام أطراف رقيقة لتحميل الهلام مع الماصة الدقيقة P200 ، قم بتخميل الجهاز عن طريق حقن وسط يحتوي على ملليغرام واحد لكل مليلتر BSA في فتحات المدخل ، مع مراقبة الأطراف وفتحات المخرج لمراقبة ملء قنوات الموائع الدقيقة. احتضان الجهاز في درجة حرارة الغرفة لمدة خمس دقائق تقريبا.

بعد ذلك ، باستخدام نصائح مماثلة ، قم بتحميل كل قناة بالخلايا المعاد تعليقها باستخدام النصائح الموجودة في قناة المخرج لمراقبة تقدم الخلايا عبر الجهاز. قم بإزالة أطراف تحميل الجل برفق من فتحات المخرج ، واعمل واحدة تلو الأخرى لمنع تلف الجهاز. الطرد المركزي الجهاز في جهاز طرد مركزي صغير على الطاولة في محول دوار مناسب عند حوالي 6 ، 000 مرة جم لمدة 10 دقائق.

تحقق من التحميل الناجح تحت المجهر ولكن دون تثبيت الجهاز على ملحق مرحلة حامل الشريحة. قم بتركيب الجهاز المحمل بعناية على ملحق المسرح عن طريق لصق زجاج الغطاء على جانبي نظام إدارة المفاتيح الشخصية في الجزء السفلي من ملحق المرحلة. اقلب مجموعة جهاز إدخال المسرح بحيث يكون PDMS متجها لأعلى وضعه على سطح ناعم مثل منديل خال من الغبار.

اضبط معدل تدفق مضخة الحقنة في المرحلة الأولى إلى 35 ميكرولتر في الدقيقة. ثم العمل مع حارة واحدة في كل مرة ، أدخل إبرة المدخل ثم إبرة المخرج التي تمتد إلى دورق النفايات. بعد فحص الجهاز بصريا بحثا عن التسريبات ، افحص أنبوب المخرج بحثا عن ظهور الخلايا الزائدة التي تظهر على شكل شريط عكر في الغضروف المفصلي المتوسط ، والذي سيتحرك ببطء نحو دورق النفايات.

بمجرد تشغيل الجهاز لمدة 15 دقيقة تقريبا ، اضبط مضخة الحقنة من المرحلة الأولى على 1.5 ميكرولتر في الدقيقة وأوقف التدفق مؤقتا. قم بإحضار المضخة والجهاز بالكامل إلى مجهر الفلورسنت المقلوب وأعد تشغيل التدفق المتوسط للمرحلة الأولى بمعدل 1.5 ميكرولتر في الدقيقة. قم بتركيب ملحق المسرح بعناية مع وضع الجهاز على المجهر ، باستخدام الشريط اللاصق حسب الضرورة لتوجيه أنبوب المدخل والمخرج.

حدد المواضع المناسبة على الجهاز للتصوير وابدأ التصوير حسب الرغبة. لاحظ أن الخلايا تتطلب عادة بضع ساعات لقراءة الحالة المستقرة ، ونمو الطور الأسي ، وقد يتأخر بداية الحصول على الصورة حسب الرغبة بحيث يبدأ التصوير بعد فترة التوازن. للتبديل بين الجولات المتتالية من التصوير ، أوقف تدفق مضخة الحقنة من المرحلة الأولى مؤقتا ، وقم بفك مقاطع الموثق بعناية من أنابيب السيليكون في المرحلة الثانية ، ونقل كل منها إلى أنبوب السيليكون على فرع المرحلة الأولى من التقاطع Y ، ثم قم بإلغاء إيقاف تدفق مضخة الحقنة من المرحلة الثانية واستمر في التصوير.

كما تم تقييمه بواسطة الفحص المجهري للتباين الطوري ، قبل ربط السباكة الدقيقة بالجهاز ، يعتبر التحميل الأولي للخلية ناجحا إذا احتوت جميع القنوات الجانبية للموائع الدقيقة أو جميعها تقريبا على خلية بكتيرية واحدة أو أكثر. بمجرد تحميل الجهاز في البداية ، يتم موازنته بمعدل تدفق مرتفع نسبيا. كما هو موضح هنا ، يجب أن يكشف الفحص المجهري لجهاز متوازن عن عدد قليل من الخلايا المحصورة في ملف واحد في معظم القنوات الجانبية.

بمجرد وضع جهاز متوازن على المجهر تحت التدفق بسرعة 1.5 ميكرولتر في الدقيقة عند 37 درجة مئوية ، ستستأنف الخلايا نمو الطور الأسي المنتظم والمستمر على مدار ساعتين تقريبا. يمكن تصوير الخلايا التي استأنفت نمو الطور الأسي بشكل موثوق باستخدام المجهر اللامع أو الفلوري لمدة 24 ساعة على الأقل. يؤدي إدخال مفتاح متوسط إلى توسيع نطاق التجارب التي يمكن إجراؤها ولكنه يزيد أيضا من تواتر أحداث موت الخلايا الكارثية من خلال وجود فقاعات هواء أو مجموعات خلايا عند المدخل التي يتم إزاحتها وتمر عبر قناة التغذية.

بمجرد إتقانها ، يمكن إجراء هذه التقنية في غضون خمس ساعات تقريبا ، إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. باستخدام هذا الإجراء ، مع مختلف مراسلي الفلورسنت والسلالات والظروف البيئية ، يمكن فحص مجموعة متنوعة من الظواهر الفسيولوجية ، بما في ذلك الأحداث النادرة جدا أو العابرة.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

البيولوجيا الخلوية العدد 131 البكتيريا ميكروفلويديكس PDMS مجهرية الأسفار والنمو المتسارع والتبديل بين متوسطة

Related Videos

تعيش خلية من التصوير و العقدية الرئوية الآلي باستخدام الميكروسكوب مرور الزمن

07:31

تعيش خلية من التصوير و العقدية الرئوية الآلي باستخدام الميكروسكوب مرور الزمن

Related Videos

43.3K Views

وحيد الخلية تحليل الأغشية الحيوية باستخدام المجهر الإسفار والتدفق الخلوي

13:28

وحيد الخلية تحليل الأغشية الحيوية باستخدام المجهر الإسفار والتدفق الخلوي

Related Videos

21K Views

الزخرفة الدقيقة والتتبع القائم على التألق لنمو البكتيريا أحادية الخلية

03:27

الزخرفة الدقيقة والتتبع القائم على التألق لنمو البكتيريا أحادية الخلية

Related Videos

208 Views

تتبع نمو البكتيريا بدقة خلية واحدة في نظام ميكروفلويديك

02:53

تتبع نمو البكتيريا بدقة خلية واحدة في نظام ميكروفلويديك

Related Videos

142 Views

تقييم حركة البكتيريا باستخدام جهاز ميكروفلويديك

02:10

تقييم حركة البكتيريا باستخدام جهاز ميكروفلويديك

Related Videos

156 Views

المفاعل الحيوي Picoliter Microfluidic لتحليل الخلية الميكروبية أحادية الخلية: التصنيع وإعداد النظام والتشغيل

12:04

المفاعل الحيوي Picoliter Microfluidic لتحليل الخلية الميكروبية أحادية الخلية: التصنيع وإعداد النظام والتشغيل

Related Videos

12.9K Views

مراقبة المكانية الفصل في استعمار سطح الميكروبية السكان

07:40

مراقبة المكانية الفصل في استعمار سطح الميكروبية السكان

Related Videos

11.5K Views

تحليل متعدد النطاقات لنمو البكتيريا تحت علاج الإجهاد

12:08

تحليل متعدد النطاقات لنمو البكتيريا تحت علاج الإجهاد

Related Videos

9.9K Views

منصة الموائع الدقيقة لدراسة الانسداد الحيوي في الوسائط المسامية

05:10

منصة الموائع الدقيقة لدراسة الانسداد الحيوي في الوسائط المسامية

Related Videos

2.4K Views

تحسين تعداد بوغ العصوية الرقيقة وتحليل التسمية في قياس التدفق الخلوي

06:39

تحسين تعداد بوغ العصوية الرقيقة وتحليل التسمية في قياس التدفق الخلوي

Related Videos

1.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code