-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
استخدام يرقات الزيبرافيش لدراسة العواقب المرضية لسكته دماغيه نزفية
استخدام يرقات الزيبرافيش لدراسة العواقب المرضية لسكته دماغيه نزفية
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Using Zebrafish Larvae to Study the Pathological Consequences of Hemorrhagic Stroke

استخدام يرقات الزيبرافيش لدراسة العواقب المرضية لسكته دماغيه نزفية

Full Text
8,741 Views
06:36 min
June 5, 2019

DOI: 10.3791/59716-v

Siobhan Crilly1, Alexandra Njegic2, Adrian R. Parry-Jones2,3, Stuart M. Allan1,3, Paul R. Kasher1,3

1Division of Neuroscience and Experimental Psychology, School of Biological Sciences, Manchester Academic Health Science Centre,University of Manchester, 2Division of Cardiovascular Sciences, School of Medical Sciences, Faculty of Biology, Medicine and Health, Manchester Academic Health Science Centre,University of Manchester, 3Lydia Becker Institute of Immunology and Inflammation,University of Manchester

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for quantifying brain injury, locomotor deficits, and neuroinflammation in zebrafish larvae following intracerebral hemorrhage (ICH), a critical human medical condition. Utilizing the transparent nature of zebrafish larvae allows for real-time observation of cellular responses in a live brain model post-hemorrhagic stroke.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Neuroinflammation
  • Stroke Recovery

Background

  • Intracerebral hemorrhage (ICH) is a serious medical condition lacking specific treatments.
  • Zebrafish larvae serve as an innovative model to study brain responses due to their transparency.
  • Real-time imaging provides insights into cellular dynamics following brain injury.
  • The study employs fluorescent microscopy to assess neuroinflammation and other cellular responses within the brain.

Purpose of Study

  • To develop a pre-clinical model for studying the cellular response to hemorrhagic stroke.
  • To investigate the impacts of ICH on locomotion and neuroinflammation.
  • To explore potential drug candidates for mitigating the effects of ICH.

Methods Used

  • The main platform used is fluorescent microscopy for imaging cellular responses.
  • Zebrafish larvae are the biological model, with a focus on brain injury from induced hemorrhaging.
  • Key timelines involve embryo collection, treatment application, and subsequent imaging at specified post-fertilization hours.
  • Critical phases include monitoring motility and assessing neuroinflammation responses over several days.

Main Results

  • Significant cellular responses were observed, including clusters of dying cells in hemorrhaged larvae.
  • A decrease in motility was noted post-hemorrhage, with partial recovery by 120 hours.
  • Activated macrophages displayed morphological changes associated with the ICH response.
  • This model enables assessment of potential therapeutic interventions for stroke.

Conclusions

  • This research establishes a zebrafish model for studying ICH and its cellular implications.
  • The approach may facilitate drug screening efforts to improve outcomes after brain hemorrhage.
  • Overall, it advances the understanding of cellular dynamics following brain injury and potential recovery mechanisms.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using zebrafish larvae as a model?
Zebrafish larvae offer a transparent view of brain activity, enabling real-time imaging of cellular responses to injury, which is not possible in mammalian models.
How is brain injury induced in zebrafish larvae?
Brain injury is induced by applying Atorvastatin to achieve a specific percentage of hemorrhaged larvae at defined post-fertilization intervals.
What types of data are collected during the study?
Data includes quantification of cellular responses, neuroinflammation, and behavioral assessments of locomotion over specified time points.
How can the method be adapted for drug screening?
The model can be used to test potential drug candidates aimed at mitigating the severity of ICH effects, providing an avenue for screening therapeutics.
What considerations are important when preparing zebrafish larvae?
It's crucial to thoroughly examine larvae for hemorrhage presence before conducting phenotyping assays to ensure valid results.

نقدم هنا بروتوكولا لقياس إصابات الدماغ ، والعجز الحركي والتهاب العصبي بعد النزيف في الدماغ في يرقات الزبرفيش ، في سياق النزف البشري الداخل (ICH).

توفر هذه الطريقة نهجًا مجانيًا قبل السريرية لدراسة الاستجابة الخلوية المباشرة للدم في الدماغ بعد السكتة الدماغية النزفية ، وهي حالة خطيرة للغاية لا تتوفر لدينا أدوية محددة للمرضى. على عكس نماذج القوارض ، تسمح لنا شفافية يرقات أسماك الحمار الوحشي بمراقبة الاستجابات الخلوية داخل أدمغة الحيوانات الحية السليمة في الوقت الحقيقي باستخدام المجهر الفلوري. للبدء، استخدم مصفاة الشاي لجمع جميع الأجنة المخصبة من التفريخ الطبيعي في صناديق التربية المنتجة من ذكر واحد وواحد إلى اثنين من الحمار الوحشي البالغ الإناث.

نقل 100 جنين إلى كل طبق بيتري يحتوي على متوسط جنين E3 القياسي. احتضان في 28 درجة مئوية والمرحلة وفقا للمبادئ التوجيهية القياسية. في ست ساعات بعد الإخصاب، وإزالة الأجنة الميتة وغير المخصبة من الطبق باستخدام ماصة باستور ووضع الأطباق مرة أخرى في الحاضنة.

في 24 ساعة بعد الإخصاب، تحت مجهر ستيريو مشرق المجال، واستخدام ملقط تشريح رقيقة جدا حادة للياقة الأجنة لعلاج أتورفاستاتين. ثم إضافة 30 ملليلتر من الجنين E3 المتوسطة إلى اثنين من الأطباق بيتري نظيفة, واحد للعلاج والآخر للسيطرة. إزالة 60 ميكرولترات من ماء الجنين من طبق المعالجة وإضافة 60 ميكرولترات من 0.5 ملليمولار أتورفاستاتين لتحقيق 80٪ من اليرقات النزف.

باستخدام ماصة باستور، قم بنقل 100 جنين في أقل قدر ممكن من الماء إلى كل طبق. احتضان الأطباق اثنين في 28 درجة مئوية. في أي وقت بعد 50 ساعة بعد الإخصاب ، تحت المجهر استخدام ماصة باستور لفصل الأسماك النزفية بعناية من السكان غير النزف ونقل اليرقات إلى أطباق جديدة تحتوي على وسائل الإعلام E3 الطازجة.

لتسهيل فصل اليرقات الإيجابية النزفية ، يمكنك استخدام الأسماك بدون صبغة أو أسماك تعبر عن البروتين الفلوري في خلايا الدم الحمراء. في اليوم الثالث ، تحت مجهر الفلورسنت فحص اليرقات لضمان التعبير عن البروتين الفلورسنت. ثم تعبئة ورقة ضوء تصاعد الغرفة مع E3 وسائل الاعلام التي تحتوي على 0.2٪ MS-222 ل التخدير.

باستخدام ماصة باستور، نقل قطرة واحدة تحتوي على يرقات واحدة إلى ست يرقات إلى سطح طبق بيتري جاف لتركيبها. استخدام ماصة لإزالة السائل قدر الإمكان. أضف قطرة 1.5٪ تذوب منخفضة agarose من كتلة الحرارة 45 درجة مئوية إلى اليرقات واستخدام 800 ميكرومتر تصاعد الشعيرية لرسم اليرقات حتى الرأس أولا.

إذا لم يكن تحديد المواقع دقيقًا ، فطرد اليرقات من الأغاروز وقذفها مرة أخرى. اترك الشعيرات الدموية لتبرد ثم أدخلها في غرفة ورق الضوء. على برنامج التصوير ZEN، اضغط باستمرار لتوجيه اليرقات والصحافة الحصول على الحصول على صور z-المكدس من الرأس بين العدسات العين.

في علامة التبويب المعالجة، قم بإنشاء صورة إسقاط أقصى كثافة من كل مكدس z. لاختيار عشوائيًا لم مقايسة الحركة ، قم بنقل 24 يرقات بعد التخدير إلى وسائط E3 الطازجة والسماح للحيوانات بالتعافي من التخدير. بعد أن تعافت اليرقات بالكامل من التخدير ، باستخدام ماصة مع نهاية نقل القطع استعادت اليرقات إلى E3 المتوسطة بدون أزرق الميثيلين.

لوحة يرقة واحدة في ملليلتر واحد في بئر من 24 لوحة جيدا. قم بتحميل اللوحة في غرفة الكاميرا. في برنامج تتبع EthoVision XT، اضبط إعدادات التجربة لإعداد روتين الإشعال بالضوء الأبيض لزيادة السباحة التلقائية والحركة الاختبارية لمدة 10 دقائق.

كرر المعاملة الحركة في 96 و 120 ساعة بعد الزهازة. تقييم موت خلايا الدماغ باستخدام في كل مكان مُغَرَّفٍ مُجَرَّدًا Annexin V M الوريدي للمراسلين النتائج في مجموعات واضحة محددة من الخلايا المحتضرة في اليرقات النزفية التي لا توجد في جميع اليرقات غير النزفية التي تشير إليها صور الحقل الفلوري الساطع الأخضر التي تظهر وجود نزيف في الدماغ. وقد لوحظت الخلايا المحتضرة في كل من Atorvastatin وفقاعات نماذج الرأس ليرقات النزف.

يتغير شكل التشكل في الضامة الإيجابية MPEG1 في اليرقات الإيجابية في الدماغ أثناء حدوثها مع اعتماد الخلايا في شكل الأموبيويد الدائري النشط. تم رصد هذه الخلايا المستديرة المنشطة بمرور الوقت لإظهار استجابة بلعوية متزايدة من ubiquitin يفرز الملحق الخامس M الوريدي التعبير عن الخلايا الميتة في نزيف الأنف الوحشية الإيجابية. ويرتبط نزيف الدماغ مع انخفاض كبير في الحركة في 72 و 96 ساعة بعد الإخصاب بالمقارنة مع الضوابط السلبية النزفية داخل المخ.

حركية في 120 ساعة بعد الإخصاب يتعافى إلى مستويات خط الأساس القريبة. الجانب الأكثر أهمية في هذا الإجراء هو التأكد من فحص اليرقات بدقة لوجود أو عدم وجود نزيف في الدماغ قبل الانتقال إلى فحص الظاهري. ويمكن أيضا أن تستخدم هذا النموذج لفحص المخدرات لتحديد ما إذا كان يمكن تحسين شدة النمط الظاهري على بعد نزيف, وهو النهج الذي قد يؤدي بنا إلى تحديد المرشحين المخدرات الجديدة في المستقبل.

هذه التقنية تسمح لنا لاستكشاف الاستجابات الخلوية مباشرة بعد نزيف في الدماغ خلال نقطة زمنية التي كان من الصعب جدا دراسة قبل الآن. على الرغم من أن أيا من الكواشف أو الصكوك المذكورة في هذا البروتوكول هي خطرة على وجه التحديد، يجب اتخاذ الرعاية والاحتياطات القياسية في جميع أنحاء كلما باستخدام المواد الكيميائية، الحادة، أو الليزر.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

العلوم العصبية العدد 148 النزف داخل المخ الزبرافيش أصابه الدماغ السكتة الدماغية التهاب العصبي النماذج الحيوانية ما قبل السريرية

Related Videos

التحقيق في إصابة دماغ يرقات الزرد باستخدام الفحص المجهري الإلكتروني لنقل المسح على نطاق واسع

03:22

التحقيق في إصابة دماغ يرقات الزرد باستخدام الفحص المجهري الإلكتروني لنقل المسح على نطاق واسع

Related Videos

608 Views

نمذجة النزيف الناجم عن المخدرات في يرقات الزرد

02:29

نمذجة النزيف الناجم عن المخدرات في يرقات الزرد

Related Videos

442 Views

التصوير والإعمار 3D من الهياكل الدماغية في الجنينية اسماك الزرد

08:00

التصوير والإعمار 3D من الهياكل الدماغية في الجنينية اسماك الزرد

Related Videos

15.3K Views

طعنة الإصابة بالجروح من اسماك الزرد الكبار الدماغ الانتهائي: طريقة المعنية بالتحقيق في تكوين الخلايا العصبية والدماغ الفقارية التجديد

09:16

طعنة الإصابة بالجروح من اسماك الزرد الكبار الدماغ الانتهائي: طريقة المعنية بالتحقيق في تكوين الخلايا العصبية والدماغ الفقارية التجديد

Related Videos

16K Views

إصابة سفينة الميكانيكية في الزرد الأجنة

06:38

إصابة سفينة الميكانيكية في الزرد الأجنة

Related Videos

7.7K Views

النمذجة سمية اميلويد-β42 ونيوروديجينيريشن في المخ الزرد الكبار

10:01

النمذجة سمية اميلويد-β42 ونيوروديجينيريشن في المخ الزرد الكبار

Related Videos

11.7K Views

في التصوير الحي لأنسجة الدماغ النشطة بالكامل في يرقات حمار وحشي مستيقظا والأحداث عن طريق إزالة الجمجمة والجلد

05:25

في التصوير الحي لأنسجة الدماغ النشطة بالكامل في يرقات حمار وحشي مستيقظا والأحداث عن طريق إزالة الجمجمة والجلد

Related Videos

5.5K Views

نموذج قابل للتطوير لدراسة آثار إصابة القوة الحادة في سمك الحمار الوحشي البالغ

08:13

نموذج قابل للتطوير لدراسة آثار إصابة القوة الحادة في سمك الحمار الوحشي البالغ

Related Videos

3.7K Views

نموذج إصابة جرح الطعنة للتكتوم البصري البالغ باستخدام الزرد و Medaka للتحليل المقارن للقدرة التجديدية

06:12

نموذج إصابة جرح الطعنة للتكتوم البصري البالغ باستخدام الزرد و Medaka للتحليل المقارن للقدرة التجديدية

Related Videos

2.2K Views

الإصابات شبه الآلية التي يسببها الليزر لدراسة تجديد الحبل الشوكي في يرقات أسماك الزرد

09:43

الإصابات شبه الآلية التي يسببها الليزر لدراسة تجديد الحبل الشوكي في يرقات أسماك الزرد

Related Videos

2.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code