March 8th, 2024
يصف البروتوكول منصة الموائع الدقيقة المتقدمة لقياس ديناميكيات إفراز السيتوكين لخلايا الدم أحادية النواة المحيطية البشرية الفردية. تقيس المنصة ما يصل إلى ثلاثة سيتوكينات بالتوازي (IL-6 و TNFα و IL-1β) لكل خلية فردية يتم تحفيزها باستخدام عديد السكاريد الدهني كمثال.
في هذا المشروع ، نركز على تطوير وتطبيق استراتيجيات تحليلية جديدة ، والتي تسمح بالتحليل المباشر والكمي والعميق للوظائف الخلوية بدقة خلية واحدة. وهكذا من خلال تجاوز قياس نقطة بيانات واحدة خالصة ، نهدف إلى فهم واستغلال هذه الوظائف المتعددة بشكل أفضل ، والتي تأتي من الاستجابات المعقدة في المضيف وفي الأنسجة. إن الحصول على فهم شامل لهذه الوظائف أمر معقد وصعب ويتطلب مناهج متعددة التخصصات.
ولذا فإن أحد التحديات في هذا السياق هو التأكد من أن النطاق الديناميكي للفحص الذي يتم تطويره مناسب لالتقاط كمية وديناميكيات البروتين المفرز ، والذي يمكن أن يختلف اختلافا كبيرا عبر العينات والمستحضرات والأنسجة. يمكن أن يؤدي الاضطراب في تنظيم الاستجابة المناعية إلى اضطرابات مختلفة ، مما يؤدي إلى حمى خفيفة إلى مضاعفات قد تهدد الحياة. بالانتقال إلى ما هو أبعد من قياسات نقطة النهاية التقليدية ، اقترحنا قياس عدم تنظيم الخلايا المناعية وتنشيطها ديناميكيا على مستوى خلية واحدة لاكتساب رؤية إضافية.
ومن ثم، عادة ما يكتشف السيتوكين عند نقطة زمنية محددة باعتباره تركيزا في المادة الطافية أو تركيزا للخلايا المنشطة. القياس بالجملة مباشرة لتحديد إفراز كل خلية على حدة ، وإخفاء عدم التجانس الخلوي الذي ، كقياسات نقطة النهاية ، لا يميز بين الإفراز المتزامن والثانوي. تجاهل الجانب الديناميكي للاستجابة تشير الوظيفة الخلوية الكاملة إلى قدرة الخلية المناعية على إفراز عدة سيتوكينات في وقت واحد.
وهذا يسمح لهم بضبط استجابتهم ضد التهديدات ، على سبيل المثال ، وقياس هذه الوظيفة المتعددة ديناميكيا ، مما يعني أنه بمرور الوقت يمكن أن يعطي نظرة ثاقبة على الفروق الدقيقة المختلفة للاستجابة المناعية.
تقدم هذه الدراسة منصة متقدمة للميكروسوائل مصممة لقياس ديناميكيات إفراز السيتوكينات على مستوى الخلية الواحدة بشكل كمي. تسمح المنصة بالقياس المتزامن لثلاثة سيتوكينات (IL-6, TNF伪, و IL-1尾) من خلايا الدم المحيطية أحادية النواة البشرية المنفردة المحفّزة بالليبوبوليساكاريد.
Resolving the simultaneous and sequential secretion of cytokines at single-cell resolution addresses a critical gap in immune response characterization for drug discovery. This microfluidic droplet platform enables quantitative, time-resolved analysis of polyfunctional immune cells, supporting predictive confidence in target validation and mechanistic de-risking. Its modularity and multiplexing capacity position it as a reusable asset for immunology-focused R&D pipelines.
This microfluidic platform integrates from early discovery through preclinical research, bridging hypothesis-driven immune target validation to translational biomarker identification.