Summary

Karakterisering av Metabolsk Status i humane primater med intravenøs glukosetoleransetest

Published: November 13, 2016
doi:

Summary

Målet med denne protokollen er å presentere en standard metode for å utføre intravenøs glukose toleranse tester (IVGTTs) for å vurdere glykemisk kontroll hos ikke-menneskelige primater og vurdere deres metabolske status fra sunt å dysmetabolic.

Abstract

Intravenøs glukose toleranse test (IVGTT) spiller en sentral rolle i karakterisering av glukose homeostase. Når det tas sammen med serum biokjemiske profiler, inklusive blodsukkernivået i både matet og fastende tilstand, HbA1c, insulin nivåer, klinisk historie av kostholdet, kroppssammensetning, og kroppsvekt status, vurdering av normale og unormale glykemisk kontroll kan gjøres . Tolkning av en IVGTT skjer ved måling av forandringer i glukose og insulinnivåer over tid i forhold til den dekstrose utfordring. Kritiske komponenter som skal vurderes er: topp glukose og insulinnivåer nådd i forhold til T0 (slutten av glukoseinfusjon), glukose-eliminasjonshastighet K utledes fra helningen av hurtig glukose klaring i den første 20 min (T1 til T20), tids for å gå tilbake til grunnlinjen glukose, og arealet under kurven (AUC). Disse tiltakene IVGTT viser karakteristiske forandringer som glukosehomeostase beveger seg fra en frisk toa sykelig metabolske tilstand fem. Heri vil vi beskrive den karakteriseringen av ikke-humane primater (Rhesus og Cynomolgus-aper), som er det mest relevante dyremodell av type II diabetes (T2D) hos mennesker og IVGTT og kliniske profiler av disse dyrene fra en mager frisk, for å overvektige dysmetabolic, og T2D tilstand 8, 10, 11.

Introduction

Den IVGTT er en enkel funksjonell analyse som blir rutinemessig brukt for å bestemme den β-cellefunksjon hos mennesker ved forskjellige metabolske tilstander 5, 7. I dyremodeller av T2D, er vel anerkjent som et verktøy for å karakterisere dyr som viser metabolske sykdomsprogresjon fra en sunn til en dysmetabolic hyperglykemisk tilstand 8, 9. Den nærmeste dyremodell av T2D er vist i ikke-humane primater (NHPs), hvorav rhesus og cynomolgus-aper er gode eksempler. Disse dyrene utvikler naturligvis T2D med de samme risikofaktorer for alder og fedme bidra til dens forekomst som hos mennesker 10. Videre er det en lignende sykdomsprogresjon og pankreatisk patologi som viser amyloidavsetninger som dysmetabolic sykdommen utvikler seg 11.

Her rapporterer vi på vår standard metode for å utføre en IVGTT i NHPs som en del av vår koloni karakterisering av metabolske status i disse dyrene. Denne metoden erlett å utføre i forhold til andre, mer tidkrevende og kostbare teknikker 2. Den IVGTT er nyttig for karakterisering av en stor koloni av dyrene hurtig og ofte. Når tatt i betraktning med nivået av glykosylert hemoglobin (HbA1C), dyrets kosthold og matinntak historie, samt deres prosent lean mass og kroppen fett, er det IVGTT normalt tilstrekkelig for å karakterisere et dyr metabolske status og progresjon mot åpenbar diabetes 6 8.

HbA1C representerer den gjennomsnittlige glykemisk nivå over livet til en rød blodceller, noe som gir et pålitelig mål på glukosenivåer i løpet av de siste seks uker til tre måneder. Målt fra fastende baseline blodprøve av IVGTT, gir denne verdien et vindu inn glykemisk kontroll i løpet av månedene mellom prosedyrer. Hvis dyret har gått fra dysmetabolic til diabetiker siden sist IVGTT, ville en HbA1C verdi mye høyere enn deres forrige verdien indikererat overgangen begynte snart etter deres siste IVGTT, mens en HbA1C verdi nærmere sin tidligere verdi skulle tilsi at de har bare nylig overført. Generelt, i rhesusape, verdier HbA1c større enn 6% anses som unormal, og indikerer dårlig glykemisk kontroll 10, 23.

Glykemisk nivåer bør tolkes innenfor rammen av atferd og generelle helsen til dyr som helhet. Diabetiker makaker – som mennesker – utstillings hyperphagia, polydipsi og polyuri. Gruppe bolig av dyr gir betydelige utfordringer for måling av disse indikatorene og den enkelte vare som kreves for dysmetabolic og diabetiske aper. Vi anbefaler enkeltvis boliger dyrene slik at mer personlig omsorg kan gis, og atferdsmessige markører for helsen til ape lettere overvåkes 8. I tillegg vil diabetiske makaker vise vekttap, samt en forhøyet lipidprofil (øktkolesterol, hypertriglyseridemi) og forstyrret mineralmetabolismen i serumkjemi. Det er viktig å måle markører for lever- og nyrefunksjon i serumkjemi, som skade på disse organene er ofte komplikasjoner av fremrykkende metabolsk forstyrrelse / diabetes, og kan være co-determinanter av glykemisk, lipid og mineral ubalanse 9, 11, 18, 24 .

Når du bruker denne metoden, de historiske verdiene som genereres fra flere, hyppige characterizations over livet til en ape er av særlig verdi. Hvis andre prosedyrer, for eksempel en glukose clamp eller gradert glukose infusjonsvæske (GGI), er nødvendig for å fullt ut vurdere et dyrs helse, er det ofte ved første karakterisering når deres historie er utilgjengelig. Men når en baseline har blitt etablert, gjentatte IVGTTs av en frekvens på hver tredje måned er normalt tilstrekkelig for å spore et dyr fremgang. Dette er spesielt viktig når dyrene er registrert i flere studier gjennom etkalenderår basert på deres metabolske status. Mens deres helse kan holde seg relativt stabile i år av gangen, når den metabolske status av et dyr forverres, kan en dramatisk økning i insulinresistens og glukoseintoleranse skje svært raskt. HbA1c-verdier tillate noen interpolering av nedgangen eller forbedring av helsetilstanden til dyret mellom prosedyrer planlagte tre måneders mellomrom. Av denne grunn er denne metoden ideell for å karakterisere dyr som brukes i flere, langsgående studier i løpet av deres naturlige levetid.

Protocol

Alle dyr prosedyrer ble godkjent av David H. Murdock Research Institute IACUC ligger på North Carolina Forskning Campus (NCRC) under protokollen 14-017, til karakterisering av et ikke-menneskelig primat modell av diabetes og prediabetes / insulinresistens og effekt av legemiddel bedre insulinfølsomhet og metabolsk funksjon. 1. Animal Utvalg og Study Forberedelse Velg kosthold og vekt stabile dyr basert på månedlige matinntak og kroppsvekt poster. MERK: Dyr som har utsti…

Representative Results

Resultatene er vist i figur 1 er demonstrative av typiske glukose og insulin kurver fra modne, friske og diabetiske cynomolgus makaker i løpet av en 30 min IVGTT. Data fra friske og avanserte diabetiske aper er vist for å kontrast åpenbare forskjeller mellom dyrene fra begge ytterendene av omfanget av metabolske karakterisering. Dette IVGTT protokollen har blitt brukt med hell av forfatterne i rhesusape med lignende resultater. <p class="jove_content" fo:keep-toge…

Discussion

Den IVGTT vurderer kapasiteten til glukosestimulert insulinfrigjøring ved en enkelt dekstrose infusjon basert på kroppsvekt 5, 12, 13. Fra analysen, er det fastende blodglukose og insulin-nivå oppnådd, og det tillater en vurdering av dyrets kapasitet til å frigjøre insulin og returnere forhøyet glukosenivå mot baseline. Dette gir brukeren informasjon å karakterisere dyret som en normal glukose og insulin nivå sunn kontroll, en hyperinsulinemiske dysmetabolic dyr med normoglycemien, eller en hypergly…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke den sterke støtten fra den DHMRI CLAS dyr omsorg personale, facility manager Mr. Daniel Peralta og behandlende veterinær, Dr. Glicerio Ignacio, DVM MRCVS.

Materials

Allegra X-15R Centrifuge plasma: 4C @3000 rpm for 10 min
Sorvall ST16R Centrifuge serum: 22C @3000 rpm for 10 min
Thermo Scientific -86C Freezer, Forma 88000 Series Model: 88500A
Dextrose 50% (D50) Webster 07-8008986 I.V. glucose infusate
3mL Luer Lock Syringe Midwest Veterinary Suppy serial blood draws
5ml Luer Lock Syringe Midwest Veterinary Suppy heparinized saline flush
10mL Luer Lock Syringe Midwest Veterinary Suppy delivery of I.V. D50
Gauze sponges 2×2 Midwest Veterinary Suppy 366.23000.4 Used Dry, w/ %70 Alcohol, and 2% Chlorohex Solution
4 ml serum separator tubes  Midwest Veterinary Supply 366.45000.4 blood collection tube for superchem panel
K2EDTA, 2mL VWR 95057-239 blood collection tubes
Aprotinin, 100mg Sigma A1153-100MG blood collection tube protease additive
22g x 1" Catheters Midwest Veterinary Suppy 193.75250.2 I.V. catheter 
Injection Plug W/ Cap Midwest Veterinary Suppy 001.11500.2 %50 dextrose infusion port
Porus Tape, 1/2" x 10yd  Midwest Veterinary Suppy 001.85000.2 maintain adherance of catheters and hep. Locks
Chlorhexidine Solution 2% Midwest Veterinary Suppy 193.08855.3 prep catheter site
70% Ethanol VWR 71001-654 prep catheter site
tourniquet Webster 07-8003432
3 way stopcock Midwest Veterinary Supply 366.28510.4 hep. lock
37" extension set Webster 07-8454200 hep. lock
Exel 50-60cc LL Syringes Midwest Veterinary Suppy 001.12250.2 Heparinized saline flush
250 ml bag 0.9% saline Webster 07-8365593 flush
1,000 U Heparin, 10 ml Webster 07-883-4916
Ketamine, (Ketaset) 100mg/mL Fort Dodge (AV ordered)
Precision Xtra glucose test strips 50/bx Abbott (American Diabetes Wholesale) 9381599728K7 test baseline/ T3 blood glucose levels
Masimo Rad 57 DRE 6052057V pulse-oximeter
Pavia rectal thermometer Patterson 07-8391335
Precision Xtra Glucometer Abbott 9381599728K7 Handheld glucometer

References

  1. Bergman, R., Phillips, L., Cobelli, C. Physiologic evaluation of factors controlling glucose tolerance in man. J. Clin. Invest. 68, 1456-1457 (1981).
  2. Bergman, R., Prager, R., Volund, A., Olefsky, J. M. Equivalence of the insulin sensitivity index in man derived by the minimal model and the euglycemic glucose clamp. J. Clin. Invest. 79, 790-800 (1987).
  3. Hovorka, R., et al. Partitioning glucose distribution/transport, disposal, and endogenous production during IVGTT. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 282, E992-E1007 (2002).
  4. Salinari, S., Guidone, C., Bertuzzi, A., Manco, M., Asnaghi, S., Mingrone, G. First-phase insulin secretion restoration and differential response to glucose load depending on the route of administration in type 2 diabetic subjects after beriatric surgery. Diabetes Care. 32 (3), 375-380 (2009).
  5. Roden, M. . Clinical Diabetes Research: Methods and Techniques. , (2007).
  6. Cobelli, C., Pacini, G. Insulin secretion and hepatic extraction in humans by minimal modeling of c-peptide and insulin kinetics. Diabetes. 37, 223-231 (1988).
  7. Lorenzo, C., et al. Disposition index, glucose effectiveness, and conversion to type 2 diabetes: the insulin resistance atherosclerosis study. Diabetes Care. 33, 2098-2103 (2010).
  8. Hansen, B. C. Investigation and treatment of type 2 diabetes in nonhuman primates. Methods Mol Biol. 933, 177-185 (2012).
  9. Hansen, B. C., Bodkin, N. L. Standardization of IVGTT. Importance of method used to calculate glucose disappearance. Diabetes Care. 16 (5), 847 (1993).
  10. Hardwood, J. H., Listrani, P., Wagner, J. D. Nonhuman primates and other animal models in diabetes research. J Diabetes Sci Tech. 3, 503-514 (2012).
  11. De Koning, E. J., Bodkin, N. L., Hansen, B. C., Clark, A. Diabetes mellitus in Macaca mulatta monkeys is characterized by islet amyloidosis and reduction in beta-cell population. Diabetologia. 36, 378-384 (1993).
  12. Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. Insulin secretion, clearance and action before and after gastroplasty in severely obese subjects. Int J Obes Relat Metab Disord. 18, 295-300 (1994).
  13. Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. Postgastroplasty recovery of ideal body weight normalizes glucose and insulin metabolism in obese women. J Clin Endocrinol Metab. 80, 364-369 (1995).
  14. Kim, S. H., Abbasi, F., Chu, J. W., McLaughlin, T. L., Lamendola, C., Polonsky, K. S., Reaven, G. M. Rosiglitazone reduces glucose-stimulated insulin secretion rate and increases insulin clearance in nondiabetic, insulin-resistant individuals. Diabetes. 54, 2447-2452 (2005).
  15. Toffolo, G., Breda, E., Cavaghan, M. K., Ehrmann, D. A., Polonsky, K. S., Cobelli, C. Quantitative indexes of beta-cell function during graded up and down glucose infusion from C-peptide minimal models. Am J Physiol Endocrinol Metab. 280, E2-E10 (2001).
  16. Wang, X., et al. Quantification of beta-cell insulin secretory function using a graded glucose-infusion with C-peptide deconvolution in dysmetabolic, and diabetic cynomolgus monkeys. Diabetology and Metabolic Syn. 5, 40 (2013).
  17. Xiao, Y. F., Wang, B., Wang, X., Du, F., Benzinou, M., Wang, Y. X. Xylazine-induced reduction of tissue sensitivity to insulin leads to acute hyperglycemia in diabetic and normoglycemic monkeys. Anesthesiology. 13 (33), (2013).
  18. Porte, D., Kahn, S. β-cell dysfunction and failure in type 2 diabetes potential mechanisms. Diabetes. 50, S160-S163 (2001).
  19. DeFronzo, R. A., Tobin, J. D., Andres, R. Glucose clamp technique: a method for quantifying insulin secretion and resistance. American Journal of Physiology. 237 (3), G214-G223 (1979).
  20. Ferrannini, E., Gastaldelli, A., Miyazaki, Y., Matsuda, M., Mari, A., DeFronzo, R. A. β-cell function in subjects spanning the range from normal glucose tolerance to overt diabetes: a new analysis. J Clin Endocrinol Metab. 90 (1), 493-500 (2005).
  21. Vaughan, K. L., Szarowicz, M. D., Herbert, R. L., Mattison, J. A. Comparison of anesthesia protocols for intravenous glucose tolerance testing in rhesus monkeys. J Med Primatol. 43, 162-168 (2014).
  22. Kemnitz, J. W., Kraemer, G. W. Assessment of glucoregulation in rhesus monkeys sedated with ketamine. American Journal of Primatology. 3, 201-210 (1982).
  23. Dutton, C. J., Parvin, C. A., Gronowski, A. M. Measurement of glycated hemoglobin percentages for use in the diagnosis and monitoring of diabetes mellitus in nonhuman primates. Am J Vet Res. 64, 562-568 (2003).
  24. Rai, V., Iyer, U., Mani, I., Mani, U. V. Serum biochemical changes in insulin dependent and non-insulin dependent diabetes mellitus and their role in the development of secondary complications. Int J Diab Dev Countries. 17, 33-37 (1997).
  25. Shirasaki, Y., Yoshioka, N., Kanazawa, K., Maekawa, T., Horikawa, T., Hayashi, T. Effect of physical restraint on glucose tolerance in cynomolgus monkeys. J Med Primatol. 42, 165-168 (2013).

Play Video

Cite This Article
Staup, M., Aoyagi, G., Bayless, T., Wang, Y., Chng, K. Characterization of Metabolic Status in Nonhuman Primates with the Intravenous Glucose Tolerance Test. J. Vis. Exp. (117), e52895, doi:10.3791/52895 (2016).

View Video