Summary

Visualiseren van de actine en microtubulus Cytoskeletons in de B-cel immuun Synaps met behulp van de gestimuleerde emissie uitputting (STED) microscopie

Published: April 09, 2018
doi:

Summary

Presenteren we een protocol voor het gebruik van STED microscopie gelijktijdig afbeelding actine structuren, microtubuli en microtubulus plus-end bindende proteïnen in B-cellen die zich hebben verspreid op coverslips bekleed met antilichamen aan de B-cel receptor, een model voor de eerste fase van immuun synapse formatie.

Abstract

B-cellen die zich aan antigenen van de membraan-gebonden (bijvoorbeeldop het oppervlak van een antigeen-presenteren cel binden) vormen een immuun SYNAPS, een gespecialiseerde cellulaire structuur die B-cel receptor (BHG) signalering optimaliseert en BCR-gemedieerde antigeen acquisitie. Zowel de verbouwing van het cytoskelet actine en de heroriëntatie van de microtubuli-netwerk naar de contact site van antigeen zijn essentieel voor immuun synapse formatie. Verbouwing van het cytoskelet van actine in een dichte perifere ring van F-actine gaat gepaard met de polarisatie van het center microtubulus-organiseren naar de immuun synaps. Microtubulus plus-end bindende proteïnen, evenals corticale plus-einde opname eiwitten bemiddelen fysieke interactie tussen de actine en microtubulus cytoskeletons, waarmee ze op een gecoördineerde wijze worden gereorganiseerd. Het ophelderen van de mechanismen die dat besturingselement deze cytoskeletal reorganisatie, alsmede inzicht in hoe deze cytoskeletal structuren vorm immuun synapse formatie en het BHG signalering, nieuwe inzichten in de B-cel-activatie kan leveren. Dit heeft geholpen door de ontwikkeling van super resolutie microscopie benaderingen die nieuwe details van cytoskeletal netwerkorganisatie onthullen. Hier beschrijven we een methode voor het gebruik van gestimuleerde emissie uitputting (STED) microscopie gelijktijdig afbeelding actine structuren, microtubuli en transfected GFP-gelabeld microtubulus plus-end bindende proteïnen in B cellen. Om het model van de vroege gebeurtenissen in immuun synaps formatie, toestaan we dat B-cellen te verspreiden op coverslips bekleed met anti-immunoglobuline (anti-Ig) antistoffen, die BHG signalering en cytoskelet remodeling initiëren. Wij bieden stapsgewijze protocollen voor het uitdrukken van GFP fusion proteïnen in cellen van de A20-B-lymfoom, voor het verspreiden van anti-Ig-geïnduceerde cel, en voor de daaropvolgende cel fixatie, immunokleuring Beeldacquisitie en afbeelding deconvolutie stappen. De hoge resolutie beelden verkregen met behulp van deze procedures kunnen men gelijktijdig visualiseren actine structuren, microtubuli, en de microtubulus plus-end bindende proteïnen die deze twee cytoskeletal netwerken kunnen koppelen.

Introduction

Wanneer B cellen binden aan gepolariseerde arrays van antigenen (bijvoorbeeldweergegeven op het oppervlak van het antigeen-presenteren cellen (APCs)), de resulterende B-cel receptor (BHG) signalering stations de vorming van een klassieke immuun synapse structuur die werd voor het eerst beschreven in T cellen1,2,3,4,5,6,7,8,9,10, 11,12,13. Aanvankelijk, microclusters van antigeen-gebonden vorm van de BCRs aan de rand van de B-cel: APC contact site. Deze microclusters wordt vervolgens verplaatst naar het midden van de antigeen contact site, waar ze in een centrale supramoleculaire activering cluster (cSMAC samensmelten) de kern van de immuun SYNAPS vormt. Immuun synapse formatie optimaliseert BHG signalering en faciliteert het BCR-gemedieerde antigeen extractie van de APC membraan14. Deze overname van antigeen, die wordt gevolgd door antigeen BCR-gemedieerde internalisering en latere antigeen processing, kunt B cellen te presenteren peptide: MHC II complexen naar T-cellen en T-cel help14uitlokken. Omdat immuun synapse formatie B cel activatie bevordert, ophelderen van de mechanismen die stellen dat dit functionele patroon van receptor organisatie kan bieden nieuwe zijn inzichten in hoe humorale immuunreacties gestart en wordt geregeld.

Reorganisatie van zowel de actine en microtubulus cytoskeletons is essentieel voor immuun synapse formatie. Gelokaliseerde BHG signalering gestimuleerd door een ruimtelijk-gepolariseerde scala aan antigenen induceert snelle en dramatische remodelleren van de actine cytoskelet1,15. De vorming van dendritische actine structuren aan de rand van de B-cel oefent duwen krachten op het plasma-membraan en bevordert de verspreiding van de B-cel. Dit maakt de B-cel voor het scannen van een grotere ruimte van de antigeen-steunvlak, en verhoogt het aantal BCRs dat antigeen te binden en te activeren BHG signalering trajecten. Op hetzelfde moment zijn de MTOC en het netwerk van microtubuli omgebogen naar de site van antigeen contact. Als de MTOC de contact site van antigeen nadert, uitbreiden microtubuli die afkomstig zijn van de MTOC langs de binnenzijde van het plasma-membraan op het raakvlak tussen de B-cel en de antigeen-dragende oppervlak16,17 Deze juxtamembrane microtubuli kunnen vervolgens fungeren als tracks voor de dynein-gemedieerde centripetale beweging van antigeen-gebonden BHG microclusters18, wat leidt tot de vorming van een cSMAC.

De heroriëntatie en polarisatie van de MTOC naar de immuun SYNAPS vereist intact actine en microtubulus cytoskeletons en hangt vaak af van interacties tussen de corticale actine netwerk en microtubuli16,17, 19,20. Corticale actine-bindende eiwitten, zoals IQGAP1, kunnen het vangen van microtubuli door interactie met eiwitcomplexen dat de microtubulus plus-ends21 versieren. Deze dynamische complexen van plus-end bindende proteïnen bevatten EB1 en CLIP-170, die gezamenlijk worden aangeduid als microtubulus plus-einde bijhouden van eiwitten (+ TIPs)21,22. + TIPs aan de uiteinden van de microtubuli kunnen binden aan eiwitten die gekoppeld aan het plasma-membraan of de corticale actine cytoskelet zijn. Hierdoor treden genererende mechanismen (bijvoorbeeldhet min-uiteinde gericht verkeer van dynein cortically-verankerd langs de microtubuli) te oefenen trekken krachten op de microtubuli, en daarmee de MTOC verplaatsen. CLIP-170 kan binden aan de steigers actine-geassocieerde proteïne IQGAP123, en we hebben aangetoond dat zowel van deze proteïnen vereist voor het BCR-geïnduceerde MTOC polarisatie richting de immuun synapse17 zijn. Deze IQGAP1-CLIP-170 interactie kan een belangrijke rol bij de coördinatie van de verbouwing van het cytoskelet actine met de herpositionering van het netwerk van microtubuli in de B-cel immuun synaps.

Conventionele fluorescentie microscopie is gebleken dat de dramatische reorganisatie van de actine en microtubulus cytoskeletons tijdens de B-cel immuun synapse formatie2. Echter, deze aanpak niet het oplossen van kleine cellulaire structuren in detail toe te schrijven aan de limiet van de diffractie van licht, die, volgens Abbe de wet, afhankelijk van de golflengte van licht bestemd is tot verlichting van het monster en de opening van de objectieve24. Deze limiet diffractie Hiermee beperkt u de resolutie van conventionele lichte microscopen 200-300 nm in de laterale richting te 500-700 nm in de axiale richting25. Daarom, kleinere subcellular structuren, evenals de fijne details van de actine en microtubulus-cytoskeletons, kunnen alleen worden waargenomen met behulp van elektronenmicroscopie. Elektronenmicroscopie beeldvorming van het cytoskelet is tijdrovend, harde monster fixatie en voorbereiding protocollen die biologische structuren kunnen veranderen, en is beperkt tot de antilichaam-gemedieerde detectie vereist. Het vermogen om immunokleuring en gelijktijdig afbeelding meerdere eiwitten of cellulaire structuren is een aanzienlijk voordeel van fluorescentie microscopie. Anderzijds uiting van fluorescerende fusion eiwitten in cellen kunt real-time imaging en is nuttig wanneer daadwerkelijke antilichamen voor immunokleuring de proteïne van belang niet beschikbaar zijn.

Recente technologische vooruitgang in super resolutie microscopie overwinnen van de grenzen van de diffractie van licht en de visualisatie van nanoschaal cellulaire structuren24toegestaan. Een dergelijke super resolutie microscopie techniek heet gestimuleerde emissie uitputting (STED) microscopie. STED maakt gebruik van twee lasers, waar een laser prikkelt de fluorophore en een tweede laser met een donut-vormige patroon selectief onderdrukt de fluorescentie emissie rond de fluorophore. Dit vermindert de punt-spread-functie (schijnbare gebied) van een één fluorescerende deeltje en zorgt voor een sub diffractie limiet fluorescerende afbeelding25,26. Grondtoestand uitputting microscopie hanteert ook fluorescentie gebaseerde technieken te verwerven Super resolutiebeelden. De afbeelding verwerving en wederopbouw tijden zijn lang, er zijn echter slechts een beperkt aantal fluorophores die kunnen worden gebruikt, en de gelijktijdige high-resolution beeldvorming van meerdere cytoskeletal onderdelen is technisch uitdagend omdat handhaving actine en microtubulus structuren vereist verschillende fixatie procedures. Daarom STED heeft meerdere voordelen ten opzichte van elektronenmicroscopie en andere super resolutie microscopie nadert dat het biedt snelle Beeldacquisitie post-processing minimumvereisten heeft en maakt gebruik van de dezelfde fluorophores en kleuring technieken die worden gebruikt voor conventionele fluorescentie microscopie van vaste monsters26.

Nu al super resolutie microscopie hanteert voor het visualiseren van actine structuren in de immuun SYNAPS in natural killer (NK) cellen en T cellen26,27,28,29,30, 31. echter super resolutie beeldvorming van het cytoskelet van de microtubuli, alsmede de gecoördineerde reorganisatie van de actine en microtubulus cytoskeletons tijdens immuun synaps formatie, is slechts onlangs gemelde17. Wij STED microscopie gewend in afbeelding B-cellen die verspreid over coverslips bekleed met anti-immunoglobuline (anti-Ig) antilichamen, die stimuleren BHG signalering en initiëren cytoskelet reorganisatie had gekregen. Bij het uitplaten op geïmmobiliseerdet anti-Ig antilichamen, ondergaan B-cellen dramatische actine-afhankelijke verspreiden, die de eerste gebeurtenissen recapituleert tijdens immuun synapse formatie. Bovenal bleek STED microscopie de fijne details van de dendritische ring van F-actine die vormen aan de rand van het immuunsysteem synapsen en toonde aan dat de MTOC, evenals de microtubuli die eraan verbonden zijn, dicht bij de antigeen contact site17was verhuisd. Deze microtubuli uitgebreid naar buiten naar de perifere ring van F-actine. Bovendien Multi-Color STED beeldvorming van verschillende combinaties van F-actine, tubuline, IQGAP1, en GFP-gelabeld CLIP-170 + TIPs toonden dat microtubulus plus-ends gekenmerkt door CLIP-170-GFP nauw verbonden met de perifere actine gevlochten en met IQGAP1, een corticale opname eiwitten17.

Hier presenteren we een gedetailleerd protocol voor imaging-de actine en microtubulus cytoskeletons in de immuun Synaps met behulp van microscopie STED. Deze methoden zijn geoptimaliseerd met behulp van de A20 lymfkliertest B-cel-lijn, die veel heeft gewerkt voor de studie BHG signalering en immuun synapse formatie17,32,33,34,35 , 36 , 37 , 38 , 39. omdat commerciële antilichamen tegen CLIP-170 niet goed voor immunokleuring in eerdere experimenten werkte, we beschrijven in detail de uitdrukking van GFP-gelabeld CLIP-170 op de A20 cellen, samen met de protocollen voor het visualiseren van gelijktijdig maximaal kleuring drie cytoskeletal componenten of cytoskelet-geassocieerde eiwitten. Methoden voor het gebruik van STED microscopie naar afbeelding actine op NK-cel immuun synapsen zijn40eerder is beschreven. Hier, breiden we dit aan het verwerven van Multi-Color Super resolutiebeelden van zowel de actine en microtubulus cytoskeletons in B cellen.

Een belangrijke overweging voor super-resolutie microscopie is met behulp van de juiste fixatie-procedures voor het onderhouden van cellulaire structuren en voorkomen van schade aan fluorescerende eiwitten. De fixatie en kleuring van de hier vermelde methoden zijn geoptimaliseerd om te behouden GFP fluorescentie en hoge resolutie beeldvorming van de actine- en microtubulus-netwerken. Wanneer het uiten van fluorescente proteïnen, opgemerkt moet worden dat B-cellen meestal moeilijk zijn te transfect. Met behulp van dit protocol, 20-50% van de A20 express cellen meestal de transfected GFP fusieproteïne, en onder deze populatie de hoeveelheid eiwit expressie variabel. Niettemin, super resolutie beeldvorming van actine en microtubuli met behulp van de procedures die we beschrijven is heel robuust en afbeeldingen van hoge kwaliteit zijn gemakkelijk verkregen. Ondanks hun kleine formaat ten opzichte van de A20 cellen, laten we zien dat deze procedures kunnen ook worden gebruikt om het imago van het netwerk van microtubuli in primaire B-cellen die kort zijn geactiveerd met lipopolysaccharide (LPS). We hebben aangetoond dat de LPS-geactiveerde primaire B cellen kunnen zijn transfected met siRNAs op relatief hoge rendement (dat wil zeggen, zodanig dat eiwit uitputting kan worden gedetecteerd door immunoblotting), waardoor ze een goed alternatief voor het gebruik van B cellijnen voor sommige studies 17.

Protocol

Alle dierlijke procedures werden goedgekeurd door de Universiteit van British Columbia Animal Care Comité. 1. uiten van GFP-fusion proteïnen in cellen van de A20-B-lymfoom Cultuur A20 cellen in volledige RPMI medium (RPMI-1640 aangevuld met 10% warmte-geïnactiveerd foetale runderserum (FBS), 50 µM 2-mercaptoethanol, 2 mM glutamine, 1 mM pyruvaat, 50 U/mL penicilline en 50 µg Mo/mL streptomycine) bij 37 ° C in een broedstoof weefselkweek met 5 % CO2. Voorber…

Representative Results

Voor B-cellen verspreiden op geïmmobiliseerdet anti-Ig, biedt STED microscopie gebruikt in combinatie met deconvolutie software hogere resolutiebeelden van cytoskeletal structuren dan confocale microscopie. Dit blijkt duidelijk uit Figuur 1, waar de F-actine-netwerk werd gevisualiseerd met behulp van het protocol zoals hierboven beschreven. Een vergelijking van de confocal en STED Super resolutiebeelden van hetzelfde voorbeeld toont aan dat de STED beelden v…

Discussion

Gedetailleerde beelden van cytoskeletal structuren kunnen worden verkregen met behulp van STED super resolutie microscopie, wat theoretisch van een oplossing van 50 bereiken kan nm, in vergelijking met conventionele confocale microscopie, waarvoor de diffractie-beperkte resolutie ~ 200 is nm 24. de mogelijkheid om op te lossen fijnere structuren wordt verder verbeterd deconvolutie door software te gebruiken voor het berekenen van de meest waarschijnlijke positie van de oorspronkelijke lichtbron va…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken de UBC Life Sciences Institute (LSI) Imaging faciliteit voor ondersteuning en handhaving van de Microscoop STED. Dit werk werd gefinancierd door een subsidie #68865 van de Canadese instituten van Health Research (M.R.G.). Wij danken Dr. Kozo Kaibuchi (Nagoya University, Nagoya, Japan) voor de CLIP-170-GFP plasmide.

Materials

Cell culture
A20 mouse B-lymphoma cells ATCC TIB-208 Murine B-cell lymphoma of Balb/c origin that expresses an IgG-containing BCR on its surface
RPMI-1640 Thermo Fisher Scientific  R0883
Fetal bovine serum Thermo Fisher Scientific 12483020 Heat inactivate at 56 oC for 30 min
2-mercaptoethanol Millipore Sigma M3148
Glutamine Millipore Sigma G5763
Sodium pyruvate Millipore Sigma P5280
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122 Liquid, 10,000 units
Additional materials for primary B cells
70-µm cell strainer Corning 352350
Magnetic bead-based B cell isolation kit Stemcell Technologies 19854 EasySep Mouse B cell Isolation kit
Lipopolysaccharide (LPS) Millipore Sigma L4391 LPS from E. coli 0111:B4
B cell-activating factor (BAFF) R&D Systems 2106-BF-010
Name Company Catalog Number Comments
Transfection
Plasmid encoding CLIP-170-GFP Gift from Dr. Kozo Kaibuchi (Nagoya Univ., Nagoya, Japan); described in Fukata et al. Cell 109:873-885, 2002
Recommended transfection reagents and equipment
Amaxa Nucleofection kit V Lonza VCA-1003 Follow the manufacturer's directions for mixing the transfection reagents with the DNA
Amaxa Nucleofector model 2b Lonza AAB-1001 Program L-013 used
Falcon 6-well plates, TC treated, sterile Corning 353046
Name Company Catalog Number Comments
Coating coverslips
18-mm diameter round #1.5 cover glasses Thomas Scientific 1217N81 Similar product: Marienfield-Superior catalogue #117580
Forceps Fisher Scientific 1381242 Dissecting extra fine splinter forceps
Falcon 12-well sterile tissue polystyrene tissue culture plate Corning 353043
100% methanol Fisher Scientific A412-4
Sterile phosphate buffered saline (PBS) without calcium or magnesium Thermo Fisher Scientific 10010049
Goat-anti-mouse IgG antibody Jackson ImmunoResearch 115-005-008 For A20 cells
Goat-anti-mouse IgM antibody Jackson ImmunoResearch 115-005-020 For primary mouse B cells
Name Company Catalog Number Comments
Staining
Paraformaldehyde (16% stock solution) Electron Microscopy Sciences 15710 Dilute with PBS to working concentration
Glutaraldehyde (50% stock solution) Millipore Sigma 340855 Dilute with PBS to working concentration
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500
Saponin Millipore Sigma S2149
Bovine serum albumin (BSA), Fraction V Millipore Sigma 10735094001
Rabbit anti-tubulin antibody Abcam ab52866 1:250 dilution recommended but should be optimized
Alexa Fluor 532-conjugated goat anti-rabbit IgG Thermo Fisher Scientific A11009 1:100 dilution recommended but should be optimized
Alexa Fluor 568-conjugated phalloidin Thermo Fisher Scientific A12380 1:100 dilution recommneded but should be optimized
Prolong Diamond Antifade Mountant Thermo Fisher Scientific P36970 Without DAPI
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-15
Name Company Catalog Number Comments
Materials
Parafilm VWR P1150-2
HEPES Millipore Sigma H3375
NaCl Fisher Scientific BP358
KCl Millipore Sigma P9333
CaCl2 Millipore Sigma C1016
Na2HPO4 Fisher Scientific S374-500
MgSO4 Fisher Scientific M63
Dextrose Fisher Scientific D16-500
Name Company Catalog Number Comments
Microscopy
Leica SP8 TCS STED microscope Leica
Huygens deconvolution software Scientific Voume Imaging See https://svi.nl/HuygensProducts

References

  1. Harwood, N. E., Batista, F. D. The cytoskeleton coordinates the early events of B-cell activation. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (2), a002360 (2011).
  2. Batista, F. D., Treanor, B., Harwood, N. E. Visualizing a role for the actin cytoskeleton in the regulation of B-cell activation. Immunol Rev. 237 (1), 191-204 (2010).
  3. Harwood, N. E., Batista, F. D. Early events in B cell activation. Annu Rev Immunol. 28, 185-210 (2010).
  4. Batista, F. D., Harwood, N. E. The who, how and where of antigen presentation to B cells. Nat Rev Immunol. 9 (1), 15-27 (2009).
  5. Kumari, S., et al. T cell antigen receptor activation and actin cytoskeleton remodeling. Biochim Biophys Acta. 1838 (2), 546-556 (2014).
  6. Dustin, M. L. Visualization of Cell-Cell Interaction Contacts: Synapses and Kinapses. Self Nonself. 2 (2), 85-97 (2011).
  7. Dustin, M. L., Chakraborty, A. K., Shaw, A. S. Understanding the Structure and Function of the Immunological Synapse. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2 (10), a002311 (2010).
  8. Dustin, M. L. Modular design of immunological synapses and kinapses. Cold Spring Harb Perspect Biol. 1 (1), a002873 (2009).
  9. Dustin, M. L. Visualization of cell-cell interaction contacts-synapses and kinapses. Adv Exp Med Biol. 640, 164-182 (2008).
  10. Dustin, M. L. Hunter to gatherer and back: immunological synapses and kinapses as variations on the theme of amoeboid locomotion. Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 577-596 (2008).
  11. Dustin, M. L. T-cell activation through immunological synapses and kinapses. Immunol Rev. 221, 77-89 (2008).
  12. Grakoui, A., et al. The immunological synapse: a molecular machine controlling T cell activation. Science. 285 (5425), 221-227 (1999).
  13. Monks, C. R., et al. Three-dimensional segregation of supramolecular activation clusters in T cells. Nature. 395 (6697), 82-86 (1998).
  14. Yuseff, M. I., et al. How B cells capture, process and present antigens: a crucial role for cell polarity. Nat Rev Immunol. 13 (7), 475-486 (2013).
  15. Mattila, P. K., Batista, F. D., Treanor, B. Dynamics of the actin cytoskeleton mediates receptor cross talk: An emerging concept in tuning receptor signaling. J Cell Biol. 212 (3), 267-280 (2016).
  16. Kuhn, J. R., Poenie, M. Dynamic polarization of the microtubule cytoskeleton during CTL-mediated killing. Immunity. 16 (1), 111-121 (2002).
  17. Wang, J. C., et al. The Rap1-cofilin-1 pathway coordinates actin reorganization and MTOC polarization at the B cell immune synapse. J Cell Sci. 130 (6), 1094-1109 (2017).
  18. Schnyder, T., et al. B cell receptor-mediated antigen gathering requires ubiquitin ligase Cbl and adaptors Grb2 and Dok-3 to recruit dynein to the signaling microcluster. Immunity. 34 (6), 905-918 (2011).
  19. Nath, S., et al. Dynein Separately Partners with NDE1 and Dynactin To Orchestrate T Cell Focused Secretion. J Immunol. 197 (6), 2090-2101 (2016).
  20. Combs, J., et al. Recruitment of dynein to the Jurkat immunological synapse. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (40), 14883-14888 (2006).
  21. Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Control of microtubule organization and dynamics: two ends in the limelight. Nat Rev Mol Cell Biol. 16 (12), 711-726 (2015).
  22. Akhmanova, A., Steinmetz, M. O. Microtubule +TIPs at a glance. J Cell Sci. 123 (20), 3415-3419 (2010).
  23. Fukata, M., et al. Rac1 and Cdc42 capture microtubules through IQGAP1 and CLIP-170. Cell. 109 (7), 873-885 (2002).
  24. Wegel, E., et al. Imaging cellular structures in super-resolution with SIM, STED and Localisation Microscopy: A practical comparison. Sci Rep. 6, 27290 (2016).
  25. Huang, B., Bates, M., Zhuang, X. Super-resolution fluorescence microscopy. Annu Rev Biochem. 78, 993-1016 (2009).
  26. Mace, E. M., Orange, J. S. Dual channel STED nanoscopy of lytic granules on actin filaments in natural killer cells. Commun Integr Biol. 5 (2), 184-186 (2012).
  27. Ritter, A. T., et al. Actin depletion initiates events leading to granule secretion at the immunological synapse. Immunity. 42 (5), 864-876 (2015).
  28. Tamarit, B., et al. Membrane microdomains and cytoskeleton organization shape and regulate the IL-7 receptor signalosome in human CD4 T-cells. J Biol Chem. 288 (12), 8691-8701 (2013).
  29. Brown, A. C., et al. Super-resolution imaging of remodeled synaptic actin reveals different synergies between NK cell receptors and integrins. Blood. 120 (18), 3729-3740 (2012).
  30. Dupre, L., et al. T Lymphocyte Migration: An Action Movie Starring the Actin and Associated Actors. Front Immunol. 6, 586 (2015).
  31. Rak, G. D., et al. Natural killer cell lytic granule secretion occurs through a pervasive actin network at the immune synapse. PLoS Biol. 9 (9), e1001151 (2011).
  32. Lin, K. B., et al. The Rap GTPases regulate the migration, invasiveness and in vivo dissemination of B-cell lymphomas. Oncogene. 29 (4), 608-615 (2010).
  33. Lin, K. B., et al. The rap GTPases regulate B cell morphology, immune-synapse formation, and signaling by particulate B cell receptor ligands. Immunity. 28 (1), 75-87 (2008).
  34. McLeod, S. J., et al. The Rap GTPases regulate integrin-mediated adhesion, cell spreading, actin polymerization, and Pyk2 tyrosine phosphorylation in B lymphocytes. J. Biol. Chem. 279 (13), 12009-12019 (2004).
  35. Christian, S. L., et al. Activation of the Rap GTPases in B lymphocytes modulates B cell antigen receptor-induced activation of Akt but has no effect on MAPK activation. J Biol Chem. 278 (43), 41756-41767 (2003).
  36. Batista, F. D., Iber, D., Neuberger, M. S. B cells acquire antigen from target cells after synapse formation. Nature. 411 (6836), 489-494 (2001).
  37. Treanor, B., et al. Dynamic cortical actin remodeling by ERM proteins controls BCR microcluster organization and integrity. J Exp Med. 208 (5), 1055-1068 (2011).
  38. Mattila, P. K., et al. The actin and tetraspanin networks organize receptor nanoclusters to regulate B cell receptor-mediated signaling. Immunity. 38 (3), 461-474 (2013).
  39. Yuseff, M. -. I., et al. Polarized Secretion of Lysosomes at the B Cell Synapse Couples Antigen Extraction to Processing and Presentation. Immunity. 35 (3), 361-374 (2011).
  40. Mace, E. M., Orange, J. S. Visualization of the immunological synapse by dual color time-gated stimulated emission depletion (STED) nanoscopy. J Vis Exp. (85), (2014).
  41. Russ, J. C. . The Image Processing Handbook, Sixth Edition. , (2011).
  42. Stinchcombe, J. C., et al. Centrosome polarization delivers secretory granules to the immunological synapse. Nature. 443 (7110), 462-465 (2006).
  43. Vicidomini, G., et al. Sharper low-power STED nanoscopy by time gating. Nat Methods. 8 (7), 571-573 (2011).

Play Video

Cite This Article
Wang, J. C., Bolger-Munro, M., Gold, M. R. Visualizing the Actin and Microtubule Cytoskeletons at the B-cell Immune Synapse Using Stimulated Emission Depletion (STED) Microscopy. J. Vis. Exp. (134), e57028, doi:10.3791/57028 (2018).

View Video