0 次观看 • 3:46 分钟 • July 8th, 2025
取一个微电极阵列(MEA), 将小鼠脊髓切片置于含 aCSF 的孵育槽中,并用加权网固定。
将MEA孔板置于记录系统中。在显微镜下,确保MEA电极与富含中间神经元的浅层背角(SDH)区域实现最大程度的接触。
保持持续的 aCSF 流动以平衡组织。
神经元通过动作电位进行通讯。钠离子内流使膜去极化,随后钾离子外流引起复极化。膜电位短暂地发生超极化,从而阻止新的动作电位产生,直至静息电位恢复。
使用MEA电极记录神经元的自发性电活动。在多个电极上同时出现的信号表明存在由突触连接的神经元网络。
加入钾通道抑制剂以延长去极化,从而提高动作电位频率,并促进整个网络的同步节律性活动。
显示共现信号的电极越多,表明抑制剂介导的同步活动越明显。
开始记录背角活动时,使用装有人工脑脊液的大口径巴斯德移液管将脑片从孵育箱转移至MEA小室,并加入额外的人工脑脊液。
使用精细的短毛画笔将脑片移至60电极记录阵列上方。然后,在组织上放置一个带重物的网,以固定其位置并促进与MEA电极的良好接触。
将MEA放置在记录头的载物台上。使用倒置显微镜检查组织在电极上的位置,确认尽可能多的电极位于浅层背角(DH)下方。确保至少有2至6个电极不与脑片接触。
将相机连接至设备后,拍摄脑片相对于MEA的参考图像,供分析时使用。然后,在记录软件中点击开始 DAQ,并确认所有电极均接收到清晰信号。
接下来,将灌注系统的进液管和出液管连接至已加入人工脑脊液的MEA小室,并启动灌注系统。检查流速,确保出液端流量充足,以防止灌流液溢出。组织平衡5分钟后,记录5分钟的原始基线数据。
将灌注进液管从人工脑脊液切换至4-氨基吡啶溶液,并等待12分钟,使4-氨基吡啶诱导的节律性活动达到稳态。随后,记录5分钟的4-氨基吡啶诱导活动,并准备好进行后续记录,以测试药物作用或检测4-氨基吡啶诱导活动的稳定性。
本研究展示了一种利用微电极阵列(MEA)记录小鼠脊髓切片中自发性神经元活动的方法。该方法可用于观察突触相互作用以及药理学试剂对神经元活动的影响。
这种微电极阵列(MEA)方法能够直接检测脊髓伤害性感觉回路中的神经元网络动态,有助于疼痛研究中的靶点验证。通过捕捉同步活动模式及药物调节效应,该方法为中枢神经系统活性化合物的作用机制去风险提供了预测性依据。该技术将发现阶段的电生理学研究与可用于筛选的分析方法相结合,助力镇痛先导化合物的识别。
该方法适用于早期发现阶段,可支持靶点验证中的假设检验,并推动以离子通道为重点的筛选级联的检测方法开发。
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最后更新:29 八月 2026