RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
zh_CN
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/60271-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This protocol describes a method for enriching pachytene spermatocytes, round spermatids, and elongating spermatids from adult mouse testes using a discontinuous bovine serum albumin density gradient. The method is simple and utilizes standard laboratory equipment.
这里介绍的是一个协议,用于使用标准实验室设备,使用不连续的牛血清白蛋白密度梯度,丰富白细胞、圆形精子和从成年小鼠睾人身上拉长精子。
简单和廉价的方法,我们称之为MDR允许您从小鼠睾丸分离富集的帕奇滕精子细胞,圆形精子和拉长精子。MDR 方法的主要优点是简单。您只需要大多数生物医学研究实验室提供的标准实验室设备。
MDR协议非常适合对男性生殖细胞进行功能研究的研究人员。例如,正在研究精子生成、影响男性生育力的因素以及父系表观遗传遗传的群体。MDR 方法需要最少的起始材料。
事实上,我们通常只使用一只成年雄性小鼠获得大量的细胞。首先设置必要的设备和试剂。将水浴设置为 37 摄氏度,将细胞培养孵化器设置为 34 摄氏度、5%的二氧化碳和 95% 的湿度。
将管旋转器放在培养箱内。准备并标记适当数量的显微镜玻璃滑梯,然后用润滑脂笔绘制直径约一厘米的环,让润滑脂干燥。当准备解剖动物时,用70%乙醇喷洒小鼠的腹腔,并使用剪刀在腹部骨盆腔中形成V形开口。
用钳子拉上表皮脂肪垫,找到睾丸,用剪刀取出它们,确保避免干扰图尼卡阿尔布吉纳。将睾丸放在含有 1X KREBS 的 6 厘米培养皿上。斩首睾丸,丢弃图尼卡阿尔布吉纳,然后轻轻用钳子戏弄它们,稍微分散半尼的管。
将它们转移到一个50毫升的圆锥管中,含有两毫升新鲜准备的胶原酶溶液。在37摄氏度的水浴中孵育浴缸3分钟,通过摇动轻轻搅拌。然后加入至少40毫升的暖1X KREBS,让管在室温下沉淀。
取出上一液,再重复洗涤。加入25毫升新鲜准备的尝试性西普辛溶液。将管子放在细胞培养箱内的旋转器上,并在那里放置 15 到 20 分钟,以大约 15 rpm 转速旋转。
偶尔检查浴缸。一旦溶液变得多云,只剩下小块的浴缸,将管子放在冰上,然后进入下一步。通过 40 微米电池滤株将溶液过滤到新的 50 毫升圆锥形冰管中。
然后在600xg下离心5分钟,在4摄氏度下对细胞进行分粒。小心地倒出上一提液,然后敲击细胞颗粒,在 1X KREBS 的剩余部分重新浇注细胞。将至少 40 毫升冷 1X KREBS 添加到重新增殖的细胞中,然后重复离心。
通过敲击管子重新暂停细胞。然后将移液器尖端安装到一毫升移液器上,然后切割它,使孔径直径约为 3 毫米。在 KREBS 中,最多加三毫升 0.5%BSA。
通过上下移液来重新暂停细胞,确保避免气泡。通过 40 微米滤株过滤细胞悬浮液,然后立即在 BSA 梯度上加载电池。在将细胞加载到梯度上之前,您必须获得均匀的单细胞悬浮液。
块块细胞会更快地沉淀,破坏你的梯度和污染的分数。在冰上垂直设置一个50毫升的管子,确保可以看到管子的一侧。然后从十毫升血清移液器的尖端切割约五到十毫米,并安装在移液器控制器上。
将 5%BSA 溶液的五毫升移液到 50 毫升管的底部。轻轻触摸 5% 溶液的表面,使用移液器的切尖,并在 5% 溶液顶部缓慢地将 5 毫升 4% BSA 溶液分层。与其他 BSA 解决方案重复此过程,以获得 5% 到 1% BSA 的梯度。
图层之间应显示一条清晰的线。然后小心地将单细胞悬浮在梯度顶部,而不会干扰它。让细胞沉淀通过梯度一个半小时。
使用切制移液器尖端,小心地将一毫升分数收集到单独的 1.5 毫升管中,并将其储存在冰上,确保按收集顺序对管进行编号。将细菌细胞分数在600xg下离心,在4摄氏度下10分钟。然后注意不要打扰颗粒,丢弃大部分上最后一种物,然后通过轻拂管子重新暂停细胞。
在每个管中加入一毫升冰冷 1X KREBS 缓冲液,然后重复离心。丢弃大部分上一液,留下约100微升,并仔细重新暂停细胞颗粒。要分析细胞分数,请从将 20 微升的 4% 对非成醛移液到编号显微镜幻灯片上每个润滑脂笔圈内。
立即从相应分数中添加两个重新释放的细胞的微升。然后在室温下干燥滑梯至少一小时。使用 PBS 冲洗幻灯片一次,并使用 DAPI 安装介质安装幻灯片。
在荧光显微镜下分析每张幻灯片,以估计每个分数中富集了哪种生殖细胞类型。从每个分数中提取一个样品进行显微镜检查后,将一毫升的冰冷 1X KREBS 添加到每个分数中,并在 4 摄氏度下以 600 至 13000 x g 的 600 至 13000 x g 将细胞离心,10 分钟。取出并丢弃上流液,然后继续首选的下游分析。
该协议特别适用于丰富圆形精子。在第二、三、四部分,90%以上的富集。伸长精子往往停留在梯度的顶部,并收集与第一部分。
由于其体积大,帕奇特内精子细胞沉淀物更快,最后被收集。富集在分数14和15中约为75%。从大多数分数获得的总RNA范围从0.5微克到2.5微克,足以进行下游RNA分析。
从每个分数获得的蛋白质量通常为20至140微克,这足以满足几个西方的印迹。在该协议中,从单馏分中提取的10%的蛋白质酸盐足以在标准西方印迹上清楚地检测DDX4、PIWIL1和PIWIL2蛋白质。一个分数中的蛋白质量也足以利用针对PIWIL1的抗体进行免疫沉淀,并用于检测共性免疫沉淀的PIWIL2。
即使对于第一个计时器,只要您确保细胞的预处理良好,并且没有什么能干扰沉淀期间的梯度,此协议也运行良好。从单个小鼠获得高度丰富的细胞,可用于不同的下游分析,如RT-PCR,RNA测序,免疫沉淀和西方印迹。虽然MDR不是丰富雄性生殖细胞的唯一方法,但它是一个非常方便的工具,因为它不需要任何专门的设备或广泛的培训。
Related Videos
10:43
Related Videos
18.4K Views
12:26
Related Videos
14.3K Views
08:39
Related Videos
29.3K Views
06:31
Related Videos
11.2K Views
06:38
Related Videos
12.9K Views
08:46
Related Videos
12.6K Views
09:40
Related Videos
16K Views
08:21
Related Videos
6.5K Views
09:41
Related Videos
2.3K Views
08:41
Related Videos
1.6K Views