2022年8月25日
我们介绍了一种使用新生大鼠幼崽建立的新生儿脑室内出血模型,该模型可模拟人类中观察到的病理特征。
本方案具有重要意义,因为我们建立了一种临床相关的脑室内出血(IVH)诱导性脑损伤及脑积水模型,通过向脑室注射血红蛋白,可在后续应用中对脑室体积进行定量分析,从而用于测试新的治疗策略。该技术的主要优势在于,能够专门研究由血红蛋白及铁代谢通路血液分解产物介导的IVH病理过程。此外,该技术操作简便且具有良好的通用性。
该技术的应用前景包括为脑出血后脑积水的治疗提供新思路,因为它有助于进一步理解脑室内出血(IVH)的病理生理机制,并评估具有临床相关性的治疗策略,以预防IVH后神经系统后遗症的发生。本实验操作将由来自澳大利亚实验室的副博士后研究员Sruthi Ramagiri进行演示。首先,将麻醉后的实验大鼠俯卧位固定于立体定位仪中,并将其鼻部置于麻醉适配器内。
然后通过拧紧外耳道处的非穿刺耳杆来固定头部。清洁头部时,先将浸有聚维酮碘的无菌棉签尖端接触头部中心,然后向外移动,以环形方式涂抹聚维酮碘。接着,用浸有70%乙醇的棉签重复此操作。
接下来,使用手术刀在头部正中央垂直向下做一道0.3厘米的切口,以暴露颅骨的前囟。然后用棉签擦拭该区域使其干燥。设置立体定位注射仪时,将先前配制好的血红蛋白溶液吸入一支0.3或0.5毫升的注射器中,并将该注射器安装到立体定位注射仪系统上。
接下来,打开立体定位注射仪的接口,点击配置按钮以输入注射体积和流速参数。点击体积,将体积设置为 20,000 纳升。然后点击灌注速率,将速率设置为每分钟 8,000 纳升。
单击复位位置按钮以退出配置。点击注入按钮冲洗针尖,直至针尖出现一小滴血红蛋白,然后使用棉签轻轻去除该液滴。开始动物注射前,通过调整注射器的内外侧和前后位置,在立体定位注射系统上将前囟设为零点。
然后将注射器针头轻轻下移至触及颅骨前囟点。确定所选坐标后,将注射器针头抬高至颅骨上方1厘米处,以避开头皮。设定正中-外侧和前-后坐标。
然后缓慢降低注射器,使针头轻轻接触颅骨,并在30秒内设定背腹向坐标。坐标设定完成后,点击立体定位注射仪界面上的运行按钮,开始注射。注射结束后,将针头留置原位2分钟,以尽量减少溶液回流。
接下来,在两分钟内沿背腹向坐标缓慢撤出注射器,直至针尖位于头皮上方两厘米处。然后将立体定位注射臂移开手术区域,并使用6-0单股缝线缝合头皮。对于磁共振成像(MRI),选择T2加权快速自旋回波序列进行T2加权成像。
按照文中所述设置 MRI 参数后,点击继续按钮以启动序列。进行图像处理和脑体积分析时,在分割软件中打开原始 T2 加权数据。为手动勾画侧脑室,点击画笔模式并选择方形画笔样式,然后将画笔大小调整为 1。
接下来,单击布局检查器,选择轴向视图,然后单击“适合窗口”以缩放。随后将光标置于图像上,描记并填充侧脑室区域。最后,单击工具栏中的分割按钮,接着选择体积和统计,以查看分割后的体积。
接受血红蛋白注射的动物在通过MRI评估时出现中度脑室扩大。与注射ACSF的动物相比,血红蛋白注射后24小时和72小时,其侧脑室显著增大。尽管两组大鼠在38天后侧脑室体积的差异不再具有显著性,但MRI扫描显示,接受血红蛋白注射的大鼠中仍有44%存在未缓解的脑室扩大。
此外,与ACSF相比,注射血红蛋白在38天后导致白质体积显著减少。血红蛋白还促进了体内的炎症反应,表现为注射血红蛋白后促炎性细胞因子肿瘤坏死因子α水平显著升高,而注射生理盐水或全血则无此现象。此外,胶质纤维酸性蛋白的免疫组织化学染色显示,与注射ACSF相比,注射血红蛋白后星形胶质细胞的活化程度显著更高。
进行此操作时最重要的是要设定正确的注射坐标,以确保将血红蛋白注入侧脑室。在此操作之后,可将脑脊液示踪剂注入脑脊液腔,以评估脑室内出血(IVH)后脑脊液循环及外流模式的变化。这一附加方法可用于研究脑室内出血后继发性脑积水(IVH PHH)中脑脊液流动的改变情况。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本文介绍了一种与临床相关且简便的动物模型,用于研究新生儿脑室内出血(IVH)后发生的脑出血后脑积水(PHH)。通过将血红蛋白注射到新生大鼠的侧脑室,该模型可稳定地诱导脑室扩大、白质损伤和炎症反应, closely 模拟 PHH 的临床特征。本方案还详细描述了利用 MRI 和图像分析方法对脑室大小进行定量分析的技术。
建立可靠的新生儿脑室内出血(IVH)及出血后脑积水(PHH)模型,对于转化神经科学研究和神经治疗药物的发现至关重要。该基于血红蛋白的大鼠模型可精确探究血红蛋白介导的损伤机制,有助于提高早期靶点验证和药物筛选的预测可信度。该方法针对旨在治疗IVH所致脑损伤和脑积水的神经发育类药物研发中的关键转折点,有助于降低药物研发风险。
该模型可融入神经发育障碍从发现到临床前研究的连续进程中,架起机制研究与治疗候选物评估之间的桥梁。