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Methodenartikel

Vorbereitung der Beschwerde Matrizen zur Quantifizierung von Cellular Kontraktion

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DOI:

10.3791/2173

14. Dezember 2010

In diesem Artikel

Zusammenfassung

In diesem Video zeigen wir die experimentelle Techniken verwendet, um konform, extrazellulären Matrix (ECM) beschichtete Substrate für Zellkulturen herzustellen, und die durchaus in Zugkraft Mikroskopie und Beobachten Auswirkungen der ECM Steifigkeit auf das Verhalten der Zelle.

Zusammenfassung

Die Regulation der zellulären Adhäsion an die extrazelluläre Matrix (ECM) ist von wesentlicher Bedeutung für die Zell-Migration und ECM Umbau. Fokalen Adhäsionen sind makromolekulare Baugruppen, die Kopplung der kontraktilen F-Aktin-Zytoskelett der ECM. Diese Verbindung ermöglicht die Übertragung von intrazellulären mechanischen Kräfte durch die Zellmembran mit dem darunterliegenden Substrat. Neuere Arbeiten haben gezeigt, die mechanischen Eigenschaften der ECM regulieren fokale Adhäsion und F-Aktin-Morphologie sowie zahlreiche physiologische Prozesse, einschließlich der Zelldifferenzierung, Division, Proliferation und Migration. So hat der Einsatz von Zellkultursubstraten zu einem immer vorherrschende Methode zur präzisen Steuerung und modulieren ECM mechanischen Eigenschaften.

Zur Quantifizierung Zugkräfte an fokalen Adhäsionen in einer adhärenten Zelle, entsprechen Substraten in Verbindung mit hochauflösenden Bildgebung und rechnergestützte Techniken in einem Verfahren genannt Traction Force Mikroskopie (TFM) verwendet. Diese Technik beruht auf Messungen der lokalen Größe und Richtung der Substrat Verformungen durch zelluläre Kontraktion induziert. In Kombination mit hochauflösenden Fluoreszenzmikroskopie von fluoreszenzmarkierten Proteinen ist es möglich, Zytoskelett-Organisation und Umbau mit Zugkräften zu korrelieren.

Hier präsentieren wir Ihnen ein ausführliches Versuchsprotokoll für die Herstellung von zweidimensionalen, konforme Matrizen für die Zwecke der Schaffung einer Zellkultur Substrat mit einem gut charakterisierten, abstimmbaren mechanische Steifigkeit, die für die Messung zellulärer Kontraktion ist. Diese Protokolle umfassen die Herstellung von Polyacrylamid-Hydrogele, Beschichtung von ECM-Proteine ​​auf solche Gele, Plattieren Zellen auf Gele und hochauflösenden konfokalen Mikroskopie mit einem Perfusionskammer. Darüber hinaus bieten wir eine repräsentative Stichprobe von Daten, die zeigen Lage und das Ausmaß der zellulären Kräfte mit angeführt TFM-Protokolle.

Protokoll

1. Die Aktivierung der Oberfläche Deckglas

  1. Deckgläser (# 1.5, 22x40 mm) gereinigt werden mit einer Reihe von Seife und Ethanol wäscht in einem zuvor beschriebenen Protokoll (Waterman-Storer, 1998) zu reinigen und zu entstauben.
  2. Legen Sie Deckgläser in einer Edelstahl-Halterung Rack, sind derart, dass Deckgläser beabstandet und berühren sich nicht.
  3. In Laborabzug (Nitril-Handschuhe und Schutzbrille empfohlen), verdünnte voller Stärke 3-aminopropyltrimethoxysilan in Isopropanol zu einer Endkonzentration von 2% (2 ml Silan / 100 ml Isopropanol) zu einem Quadrat Glasschale (~ 350ml Volumen) füllen. Aufgrund Reaktivität mit Kunststoff, mit ei....

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Diskussion

Das hier beschriebene Verfahren für den Aufbau einer Zugkraft-Mikroskopie (TFM) Experiment, zusammen mit der Umsetzung der Computational Tracking-Routinen (Sabass et al., 2008), ermöglicht die Quantifizierung von zellulären Kräfte mit Mikrometer-Skala räumlicher Auflösung. Zur Optimierung der experimentellen Protokoll, ist es entscheidend, eine reine und gleichmäßige Gelsubstrat mit gleichmäßigen Beschichtung von ECM-Liganden zu bilden. Wir diskutieren mögliche Fallstricke unter:

Non-U.......

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Offenlegungen

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Danksagungen

Wir danken dem Labor von Ulrich Schwarz für Computational Tracking-Software in die Quantifizierung von zellulären Zugkräfte (Sabass et al., 2008) verwendet. Diese Arbeit wurde durch ein Burroughs Wellcome Career Award und NIH Director der Pioneer Award (DP10D00354) zu ML Gardel und Medical Scientist National Research Service Award (5 T32 GM07281) auf SP Winter unterstützt.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
3-AminopropyltrimethoxysilanAldrich28, 177-8
40 % AcrylamidBio-Rad161-0140
2 % Bis-AcrylamidFisher ScientificBP1404
TEMEDFisher ScientificBP 150-20
AmmoniumpersulfatFisher ScientificBP179
40 nm fluoreszierende MikrokügelchenInvitrogenF8789
Sulfo-SANPAHPierce, Thermo Scientific22589
Konfokale Abbildungskammer (RC-30)Warner Instruments64-0320
Deckglas-ZentrifugeselbstgebautNA
UV-Lampe CL1000UVP Inc.95-0228-01
EdelstahlgestellElectron Microscopy Sciences72239-04
Acryloyl-X, SE (6-((Acryloyl)amino)hexansäure)InvitrogenA-20770
HydrazinhydratSigma-Aldrich225819
NatriummetaperiodatThermo Fisher Scientific, Inc.20504
IsopropanolFisher ScientificA416-4
FibronectinSigma-AldrichF2006
KollagenBD Biosciences354236
Deckgläser (#1,5)Corning2940‐224
GlutaraldehydElectron Microscopy Sciences16120
Rain-XSOPUS Productswww.rainx.com
EssigsäureAcros Organics64-19-7

Referenzen

  1. Damljanovic, V., Lajerholm, B. C., Jacobson, K. Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamid substrates for cell mechanotransduction assays. Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).
  2. Engler, A., Bacakova, L. N. ewman, Hategan, C., Griffin, A., M, D. D. ischer

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Nachdrucke und Genehmigungen

Tags

Herstellung einer nachgiebigen MatrixQuantifizierung der zellul ren KontraktionHerstellung von Polyacrylamid HydrogelenECM ProteinbeschichtungTraktionskraftmikroskopiekonfokale mikroskopische BildgebungAnalyse der fokalen Adh sionenEinbetten fluoreszierender BeadsAnpassung der SubstratsteifigkeitVorbereitung von Zellkultursubstraten