-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

DE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

German

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Environment
Verfahren für Kreuze in Setaria viridis, Ein New Model System für die Gräser
Verfahren für Kreuze in Setaria viridis, Ein New Model System für die Gräser
JoVE Journal
Environment
This content is Free Access.
JoVE Journal Environment
Methods for Performing Crosses in Setaria viridis, a New Model System for the Grasses

Verfahren für Kreuze in Setaria viridis, Ein New Model System für die Gräser

Full Text
22,245 Views
08:35 min
October 1, 2013

DOI: 10.3791/50527-v

Hui Jiang1, Hugues Barbier2, Thomas Brutnell1

1Donald Danforth Plant Science Center, 2Boyce Thompson Institute

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Wir haben eine Methodik für die Durchführung Kreuze in Setaria viridis (S. viridis) entwickelt. Das Verfahren beinhaltet das Beschneiden der Rispe vor einer Heißwasserbehandlung, um lebensfähige Pollen zu töten. Kreuze werden nach einem gut kontrollierten Wachstum Regime durchgeführt und in der Regel bei der Gewinnung von 1 bis 7 Quer bestäubt-Saatgut / s pro Rispe führen.

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, zu demonstrieren, wie Kreuzungen für cter verus, ein neues Modellsystem für die Gräser, durchgeführt werden können. Dies wird erreicht, indem zuerst die Spitze ausgewählt, getrimmt und beschriftet wird. Der zweite Schritt besteht darin, die getrimmte Rispe zu entmannen, indem Sie sie in ein 48 Grad heißes Wasserbad tauchen.

Als nächstes wird die beschnittene Spitze als Weibchen für die Bestäubung durch eine Spitze verwendet, die Pollen abgibt. Der letzte Schritt ist die Ernte der Samen zwei Wochen nach der Fremdbestäubung. Letztendlich wird die Gus-Färbung der mutmaßlichen Hybridsamen verwendet, um die Wirksamkeit der Technik zu zeigen.

Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber den bestehenden Methoden wie der körperlichen Entmannung besteht darin, dass sie weniger invasiv und relativ einfach im Labor zu etablieren ist. Diese Methode wird dazu beitragen, die Einführung von cter verus als genetisches Modell zu beschleunigen, indem sie die Durchführung von Kreuzungen erleichtert. Entfernen Sie zunächst eine Zelle zum Bewässern und füllen Sie dann eine Schale mit vier mal neun Zellen mit metro Mix 360.

Besprühen Sie dann die Zellen leicht und säen Sie Samen auf die Oberfläche des Bodens, einen Samen pro Zelle. Bedecken Sie dann die Samen mit einer Schicht Erde, besprühen Sie die Oberfläche des Bodens mit einer Dicke von 0,5 Zentimetern, besprühen Sie sie, um sie zu befeuchten, und gießen Sie dann flach von unten. Gießen Sie die Zellen nach der Samenaussaat ein- bis zweimal täglich von unten und achten Sie darauf, nicht zu viel zu gießen.

Stellen Sie die Bedingungen der Wachstumskammer tagsüber auf 31 Grad Celsius und nachts auf 22 Grad Celsius ein, mit einer Preda-Behandlung von 15 Grad Celsius von 8:30 bis 9:00 Uhr. Halten Sie auch einen 12-Stunden-Hell-Dunkel-Zeitplan ein und stellen Sie die relative Luftfeuchtigkeit unter diesen Bedingungen auf 50 % ein. Satter verus a 10.1 blüht 21 bis 22 Tage nach der Aussaat. Idealerweise wird die Entmannung am Nachmittag oder Abend durchgeführt.

Wählen Sie das primäre Pentagramm an jeder Pflanze, die ein bis fünf Blüten in Blüte hat. Schneiden Sie dann die Spitze des Pentagramms ab und entfernen Sie mit einer feinen Pinzette alle Blüten im unteren Bereich des proximalen Mittel- und Basisabschnitts. Wenn nur ein Zehntel bis ein Fünftel der Blüten blüht.

Um den unteren Teil des distalen, mittleren und oberen Teils der proximalen Mitte für den weiteren Schnitt zu erhalten, schneiden Sie die Spitze ab und schneiden Sie die Blüten von der Basis der Rispe ab. Wenn eine Rispe ein Viertel bis die Hälfte der Blüten in Blüte hat, behalten Sie den proximalen Mittelteil für den weiteren Schnitt bei und schneiden Sie den distalen Mittelteil ab. Sobald das Pentagramm geschnitten ist, schneide die Borsten mit einer chirurgischen Schere leicht ab.

Achten Sie darauf, dass die Borsten in der Region, die bestäubt wird, erhalten bleiben, um die Röschen vor möglichen Hitzeschäden zu schützen. Für jedes Ährchen das oberste reife Röschen aufbewahren. Die oberste Blüte hat zum Zeitpunkt der Bestäubung eine höhere Wahrscheinlichkeit einer Anthese.

Entfernen Sie dann alle blühenden Blüten und alle unreifen Blüten, so dass etwa 20 bis 30 Blüten pro Zinne gleichmäßig verteilt sind. Markieren Sie dann eine Seite jeder Blüte mit einem roten Permanentmarker. Und notieren Sie die Anzahl der Röschen auf der Flagge der Spitze mit den folgenden Informationen, dem Datum der Entmannung, der Dauer und der Temperatur, bei der die Entmannung durchgeführt wird.

Sobald die Rispe beschnitten ist, entfernen Sie alle Bestockungen jeder Pflanze, um sicherzustellen, dass mehr Ressourcen für die Entwicklung der Hauptspitze bereitgestellt werden. Stellen Sie eine Stunde vor der Entmannung ein Wasserbad auf 48 Grad Celsius für die Wärmebehandlung ein. Nach dem Vorheizen die getrimmten Pentagramme vorsichtig biegen und drei bis vier auf einmal drei bis sechs Minuten lang in warmes Wasser tauchen.

Sei vorsichtig, um den Stiel des Pentakels nicht zu brechen. Das Fahnenblatt, das das Pentagramm unterspannt, sollte nicht mit warmem Wasser in Berührung kommen. Dies dient dazu, Hitzeschäden am Blattgewebe zu verhindern.

Sobald die Entmannung für die gewünschte Dauer durchgeführt wurde, nehmen Sie die Rispen aus dem Wasserbad und schütteln Sie das Wasser vorsichtig von der Rispe ab. Decken Sie dann die entmannte Rispe vollständig mit einem maßgeschneiderten mikroperforierten Brotbeutel ab und befestigen Sie ihn mit einem Drehbinder. Mikroperforierte Brotbeutel können je nach Größe der Rispe angepasst werden.

Zum Schluss stellst Du die Pflanzen bis zum nächsten Tag wieder in die Wachstumskammer. Bringen Sie am zweiten und dritten Tag um 9:00 Uhr entmannte weibliche und nicht entmannte männliche Eltern aus der Wachstumskammer ins Labor, um Kreuzungen durchzuführen, zu beobachten und eine weitere Rote hinzuzufügen. zu den Blumen, die geblüht haben oder blühen.

Notieren Sie mit einem roten Permanentmarker die Gesamtzahl der blühenden Blüten pro Rispe. Notieren Sie dann das Datum der Bestäubung und den Namen des männlichen Elternteils auf dem Etikett, um zu verfolgen, welche Kreuzungen durchgeführt wurden. Beobachten Sie die Spitzenzeit der Antithese bei männlichen Eltern unter unseren Laborbedingungen, die Blüten auf den Pentagrammen des männlichen Elternteils beginnen sich gegen 10:10 Uhr synchron zu öffnen. Nach dem Öffnen erfolgt die vollständige Anstrengung der Antheren und die Freisetzung von Pollen nach 20 Minuten.

Beginnen Sie sofort mit der Bestäubung, wenn es gelblich ist. Weiße Staubbeutel sind auf den Blüten des männlichen Elternteils sichtbar. Die Bestäubung erfolgt am zweiten und dritten Tag, indem Rispe gegen Rispenbestäubung oder annähernd zur Stigmabestäubung verwendet wird.

Reiben Sie mit einer abgelösten Rispe, während das Männchen die Rispe vorsichtig mit der entmannten Rispe zusammenreibt, um die Bestäubung zu erleichtern, und entsorgen Sie die männliche Rispe, um eine Kontamination zu vermeiden. Wiederholen Sie den Bestäubungsvorgang, bis jede entmannte Spitze von zwei bis drei Pentagrammen bestäubt wurde. Die effektivste Methode ist die Stigmabestäubung mit einer Pinzette. Pflücken Sie eine Blume, die mit gelblich-weißen Staubbeuteln blüht, oder pflücken Sie Staubbeutel und berühren Sie die Narbe der Blüte auf dem weiblichen Elternteil.

Verwenden Sie eine Blüte des männlichen Elternteils, um eine Blüte auf der entmannten Rispe zwischen den Bestäubungen verschiedener männlicher Eltern zu bestäuben. Tauchen Sie die Pinzette in 95%iges Ethanol und wischen Sie sie anschließend mit Kim-Tüchern ab, um eine Kontamination durch Verschleppung von Pollen zwischen verschiedenen Kreuzungen zu vermeiden. Sobald die Bestäubung durchgeführt wurde, decken Sie die Rispe des weiblichen Elternteils mit einem maßgeschneiderten mikroperforierten Brotbeutel ab und befestigen Sie ihn mit einem Drehbinder an der Basis.

Nach der Bestäubung bis zur Samenernte ernten Sie die Samen 14 bis 16 Tage nach dem Tag der Bestäubung und legen Sie das Etikett in denselben Umschlag wie die Samen. Samen mit roter Markierung auf beiden Seiten stellen die Samen dar, die aus der kontrollierten genetischen Kreuzung hervorgegangen sind. Entsorgen Sie alle Samen ohne rote Markierung, da sie die Samen darstellen, die aus neu entwickelten Blüten hervorgegangen sind.

Nach der Entmannung stellen Samen mit roten Markierungen wahrscheinlich nur auf einer Seite die Samen dar, die aus der Selbstbestäubung hervorgegangen sind. Zum Schluss trocknen Sie die Samen zwei Tage lang bei 30 Grad Celsius. Lagern Sie getrocknete Samen im Labor oder idealerweise in einer Samenkammer.

Wenn Sie für die weitere Analyse bereit sind, entfernen Sie die Physen, falls erforderlich. Die in diesem Video beschriebenen Methoden sind das Ergebnis zahlreicher Versuche mit unterschiedlichen Temperaturen und Behandlungszeiten, um den Entmannungsprozess zu optimieren. Der Erfolg dieses Prozesses wurde an der Anzahl der gewonnenen Hybridsamen gemessen.

Sechs Samen von einer der Testkreuzungen, bei denen der männliche Elternteil einen Reporter trug. Die Gene, die für Beta-Glucuronidase kodieren, sind hier dargestellt. Das Reporter-Gen bewirkt, dass sich der Samen beim Färben blau verfärbt, so dass die Anzahl der Hybridsamen leicht zu zählen ist. Einmal gemeistert, können bis zu 15 Pentakel pro Tag gekreuzt werden, wenn das Verfahren richtig durchgeführt wird.

Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man Kreuzungen in Aria verus ausführt.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Umweltwissenschaften Issue 80 Hybridisierung Genetik Pflanzen Setaria viridis Kreuze Entmannung blühen Saatgutvermehrung Samenruhe

Related Videos

Generierung von Composite-Anlagen in Medicago truncatula Für Nodulation Assays verwendet

13:37

Generierung von Composite-Anlagen in Medicago truncatula Für Nodulation Assays verwendet

Related Videos

16.5K Views

Ein PCR-basierte Genotypisierung Methode, zwischen Wildtyp-und Ziersorten Unterscheiden von Imperata cylindrica

12:01

Ein PCR-basierte Genotypisierung Methode, zwischen Wildtyp-und Ziersorten Unterscheiden von Imperata cylindrica

Related Videos

32.1K Views

Protokolle für die Beschaffung Zygotic und somatischen Embryonen zur Untersuchung der Regulation der frühen Embryo-Entwicklung in der Modell-Hülsenfrucht Medicago truncatula

07:32

Protokolle für die Beschaffung Zygotic und somatischen Embryonen zur Untersuchung der Regulation der frühen Embryo-Entwicklung in der Modell-Hülsenfrucht Medicago truncatula

Related Videos

14.4K Views

Protokolle für Robust Herbizidresistenz Testing in verschiedene Unkrautarten

10:52

Protokolle für Robust Herbizidresistenz Testing in verschiedene Unkrautarten

Related Videos

15.1K Views

Eine Strategie zur Validierung der Rolle der Kallose-vermittelten Plasmodesmal Gating im Tropic Antwort

12:18

Eine Strategie zur Validierung der Rolle der Kallose-vermittelten Plasmodesmal Gating im Tropic Antwort

Related Videos

10.7K Views

Zuverlässige Methode zur Beurteilung der Samenkeimung Dormanz und Mortalität unter Feldbedingungen

07:03

Zuverlässige Methode zur Beurteilung der Samenkeimung Dormanz und Mortalität unter Feldbedingungen

Related Videos

11K Views

Messen, Stolonen und Rhizome der Turfgrasses eine digitale Bild-Analyse-System

06:02

Messen, Stolonen und Rhizome der Turfgrasses eine digitale Bild-Analyse-System

Related Videos

10.4K Views

Bildbasierte Methoden zur Untersuchung von Membrantransportereignissen in stomatalen Zellen

11:31

Bildbasierte Methoden zur Untersuchung von Membrantransportereignissen in stomatalen Zellen

Related Videos

1.6K Views

Bewertung der strukturellen Merkmale in Triticum aestivum und Zea mays  für die photosynthetische Differenzierung von C3 und C4 mittels Freihand- und Halbdünnschliffen

06:04

Bewertung der strukturellen Merkmale in Triticum aestivum und Zea mays für die photosynthetische Differenzierung von C3 und C4 mittels Freihand- und Halbdünnschliffen

Related Videos

1.6K Views

Sexuelle Kreuzungen mit dem Mucoromyceten Phycomyces blakesleeanus

05:34

Sexuelle Kreuzungen mit dem Mucoromyceten Phycomyces blakesleeanus

Related Videos

521 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code