Name: Elektrophysiologie der laminaren kortikalen Aktivität beim Weißbüschelaffen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-08-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Erfahren Sie eine maßgeschneiderte Mikroantriebstechnik zur präzisen submillimetergen Elektrodenpositionierung beim Weißbüschelaffen. Diese Methode ermöglicht elektrophysiologische Aufzeichnungen wachen Verhaltens und verbessert die Kartierung kortikaler Retinotopie erheblich.

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Diese Arbeit wurde durch den Zuschuss R01 EY030998 der National Institutes of Health (NIH) (J.F.M., A.B. und S.C.) unterstützt. Diese Methode basiert auf Methoden, die in Coop et al. entwickelt wurden (in Review, 2022; https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2022.10.11.511827v2.abstract). Wir möchten uns bei Dina Graf und den Mitgliedern des Mitchell-Labors für die Hilfe bei der Pflege und Handhabung der Weißbüschelaffen bedanken.

Entwicklung eines X-Y-Elektrodentisches zur präzisen neuronalen Aufzeichnung bei Weißbüschelaffen

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Derzeit stehen mehrere Methoden (z. B. chronisch, semichronisch, akut) zur Verfügung, um neurophysiologische Experimente an nicht-menschlichen Primaten durchzuführen. Der Weißbüschelaffe stellt aufgrund seiner geringen Größe und des Fehlens von Windungen als anatomische Orientierungspunkte einzigartige Herausforderungen für neurophysiologische Experimente dar. Dies erfordert, dass die Forscher neurophysiologische Orientierungspunkte wie die Retinotopie und die Tuning-Eigenschaften von Interessengebieten verwenden, um die...

Der Weißbüschelaffe (Callithrix jacchus) hat in den letzten Jahren als Modell zur Untersuchung der Gehirnfunktion schnell an Popularität gewonnen. Diese wachsende Popularität ist auf die Zugänglichkeit des glatten Kortex des Weißbüschelaffen, die Ähnlichkeiten in der neuronalen Funktionsorganisation mit Menschen und anderen Primaten sowie die geringe Größe und schnelle Fortpflanzungsratezurückzuführen 1. Da dieser Modellorganismus immer beliebter wurde, gab es eine rasche Entwicklung der neurophysiologischen Techniken, die für den Einsatz im Weißbüschelaffengehirn geeignet sind. Elektrophysiologische Methoden werden in den Neurowissenschaften häufig eingesetzt, um die Aktivität einzelner Neuronen im Kortex von Nagetieren und Primaten zu untersuchen, was zu einer beispiellosen zeitlichen Auflösung und einem beispiellosen Standortzugang führt. Aufgrund der relativen Neuheit des Weißbüschelaffen als Modell der visuellen Neurowissenschaften entwickelt sich die Optimierung der Wach-Elektrophysiologie-Techniken noch weiter. Frühere Studien haben die Etablierung robuster Protokolle für die Elektrophysiologie in anästhesierten Präparaten gezeigt2, und frühe Wachverhaltens-Neurophysiologie-Studien haben die Zuverlässigkeit von Einkanal-Wolframmestoden gezeigt3. In den letzten Jahren haben Forscher die Verwendung von Mikroelektrodenarrays auf Siliziumbasis für die Neurophysiologie im Wachzustand etabliert4. Der Weißbüschelaffe stellt jedoch aufgrund seiner geringen Gehirngröße und des Fehlens anatomischer Orientierungspunkte einzigartige Herausforderungen bei der Zielerfassung dar. Dieses Protokoll beschreibt, wie ein für Weißbüschelaffen geeignetes Mikrolaufwerk-Aufzeichnungssystem konstruiert und verwendet wird, das die Aufzeichnung großer Neuronenpopulationen mit linearen Silizium-Arrays bei minimaler Gewebeschädigung ermöglicht.
Die Arbeit mit Weißbüschelaffen stellt eine Herausforderung dar, da die retinotopischen Karten im visuellen Kortex im Vergleich zu größeren Primaten kleiner sind. Eine leichte Verschiebung der Elektroden um nur 1 mm kann zu erheblichen Veränderungen in den Kennfeldern führen. Darüber hinaus müssen Forscher häufig die Platzierung der Elektroden zwischen den Aufnahmesitzungen ändern, um ein breiteres Spektrum an retinotopischen Positionen im visuellen Kortex zu erhalten. Aktuelle semi-chronische Präparate ermöglichen es nicht, die Elektrodenpositionierung täglich oder mit ausreichender Präzision anzupassen, um bestimmte Stellen im Submillimeterbereich anzuvisieren5. Vor diesem Hintergrund verwendet das vorgeschlagene Mikroantriebssystem einen X-Y-Elektrodentisch, der einen leichten Mikroantrieb an einer Aufnahmekammer montiert und das Submillimeter-Targeting von kortikalen Stellen ermöglicht. Die beweglichen X-Y-Tischkomponenten ermöglichen eine vertikale und horizontale Bewegung des linearen Arrays, um die kortikalen Bereiche systematisch zu durchlaufen, was zur Identifizierung von Interessengebieten erforderlich ist (über Retinotopie und Tuning-Eigenschaften). Während der Aufnahmesitzungen können die Forscher den X-Y-Tisch auch manuell anpassen, um die Zielstellen innerhalb des Bereichs zu verschieben. Dies ist ein entscheidender Vorteil gegenüber alternativen Techniken mit semi-chronischen Aufnahmepräparaten, die keine einfachen Elektroden-Targeting-Mechanismen haben.
Der Micro-Drive ist ein vielseitiges Werkzeug, das die Befestigung verschiedener Silizium-Arrays ermöglicht, um sie in den Kortex abzusenken. In diesem Protokoll wurde eine benutzerdefinierte Sonde mit zwei 32-Kanal-Lineararrays im Abstand von 200 μm für die Untersuchung laminarer Schaltkreise verwendet, die die kortikale Tiefe überspannen. Die meisten Methoden zur Untersuchung der neuronalen Schaltkreise werden typischerweise die elektrischen Potentiale oder einzelne Einheiten abgetastet, die über alle Schichten der Großhirnrinde gemittelt werden. Jüngste Forschungen haben jedoch faszinierende Erkenntnisse über kortikale laminare Mikroschaltkreise zutage gefördert6. Durch die Verwendung des Mikroantriebs können Forscher laminare Sonden verwenden und Feineinstellungen an der Aufzeichnungstiefe vornehmen, um eine umfassende Abtastung über alle Schichten hinweg zu gewährleisten.
Dieses System kann mit kommerziell erhältlichen Komponenten aufgebaut werden und kann leicht für verschiedene experimentelle Techniken oder Sonden modifiziert werden. Die Hauptvorteile dieses Präparats sind die Möglichkeit, die X-Y-Aufnahmeposition submillimetergenau zu ändern und die Tiefe der Aufnahme innerhalb des Kortex zu steuern. Dieses Protokoll enthält Schritt-für-Schritt-Anleitungen für den Aufbau des X-Y-Stadiums, des Mikroantriebs und der neurophysiologischen Aufnahmetechniken.

<table><tbody><tr><td>1/4 PS Fräser</td><td>McMaster & Carr</td><td>Cat# 43035A32</td><td>Hartmetallbohrer mit 1/4" Schaftdurchmesser, abgerundeter Zylinderkopf, Handelsnummer SC-1, Single Cut(https://www.mcmaster.com/products/bur-bits/burs-7/?s=1%2F4%22+bur+bits)</td></tr><tr><td>1x1mm Crist Grid</td><td>Crist Instruments</td><td>1 mm x 1 mm Gitter</td><td>https://www.cristinstrument.com/products/implant-intro/grids</td></tr><tr><td>91% Isopropylalkohol</td><td>Medline</td><td>N/A</td><td>https://www.medline.com/product/Medline-Isopropyl-Rubbing-Alcohol/Bulk-Alcohol/Z05-PF03807?question=91%25%20isopropyl%20alcohol</td></tr><tr><td>Acquisition Board</td><td>Open-Ephys</td><td>N/A</td><td>https://open-ephys.org/acquisition-system/eux9baf6a5s8tid06hk1mw5aafjdz1</td></tr><tr><td>Bacitracin Salbe</td><td>Medline: Cosette Pharmaceuticals Inc</td><td>N/A</td><td>https://www.medline.com/product/Bacitracin-Ointment/Antibiotics/Z05-PF86957?question=bacitr</td></tr><tr><td>Blunt gerade Pinzette</td><td>Medline</td><td>N/A</td><td>https://www.medline.com/category/Central-Sterile/Surgical-Instruments/Forceps/Z05-CA16_02_20/products</td></tr><tr><td>Knochenwachs</td><td>Medline</td><td>ETHW31G</td><td>https://www.medline.com/product/Ethicon-Bone-Wax/Bone-Wax/Z05-PF61528?question=bonewax</td></tr><tr><td>C& B Metabond Schnellklebendes Zementsystem</td><td>Parkell, Inc.</td><td>Artikelnummer: S380</td><td>https://www.parkell.com/C-B-Metabond-Quick-Adhesive-Cement-System</td></tr><tr><td>Clavamox</td><td>MWI Tiergesundheit</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Kontaktlinsenlösung</td><td>Bausch und lomb</td><td></td><td>Verschiedene Quellen verfügbar</td></tr><tr><td>Kundenspezifische gedruckte 3D-gedruckte Teile</td><td>ProtoLab</td><td></td><td>https://marmolab.bcs.rochester.edu/resources.html</td></tr><tr><td>DB25-G2 25-poliger Stecker Port Signalstecker</td><td>Verschiedene Quellen</td><td>DB25-G2 25</td><td>DB25-G2 25-poliger Stecker Port Signal 2-reihiges Terminal Breakout-Board Schraubenmutter Steckverbinder Diamantsägenaufsatz</td></tr><tr><td>für Dremel</td><td>Dremel</td><td>545 Diamantrad</td><td>https://www.dremel.com/us/en/p/545-26150545ab</td></tr><tr><td>Digitalisierungskopftische</td><td>Intan</td><td>RHD 32Kanal (Teil #C3314)</td><td>https://intantech.com/RHD_headstages.html?tabSelect=RHD32ch&yPos=120.80 000305175781</td></tr><tr><td>EDOT</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Produkt # 483028</td><td>https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/483028</td></tr><tr><td>Helping Hands</td><td>Harbor Freight</td><td>N/A</td><td>https://www.harborfreight.com/helping-hands-60501.html</td></tr><tr><td>Hook Elektrische Clips</td><td>Verschiedene Quellen</td><td>N/A</td><td>Hook Test Kabeldrähte</td></tr><tr><td>Interface Cables (RHD 3-ft (0,9 m) ultradünnes SPI-Kabel)</td><td>Intan</td><td>&nbsp; Teil #C3213</td><td>https://intantech.com/RHD_SPI_cables.html</td></tr><tr><td>Laborbuchse</td><td>Verschiedene Quellen</td><td>N/A</td><td>https://www.amazon.com/Stainless-Steel-Scissor-Stand-Platform/dp/B07T8FM85H/ref=asc_df_B07T8FM85H/?tag=&linkCode=df0&hvadid=366343 827267& hvpos=& hvnetw=g& hvrand =2036619536500717246& hvpone =& hvptwo=& hvqmt=& hvdev=c& hv dvcmdl=& hvlocint=& hvlocphy=900 5674& hvtargid=pla-795933567991& ref=& adgrpid=71496544770& th=1</td></tr><tr><td>Meloxicam</td><td>MWI Animal Health</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Mikroantrieb</td><td>Crist Instrument</td><td>3-NRMD</td><td>https://www.cristinstrument.com/products/microdrives/miniature-microdrive-3-nrmd</td></tr><tr><td>Mehrkanalige lineare Silizium-Arrays mit 64-Kanal-Anschluss</td><td>NeuroNexus</td><td>A1x32-5mm-25-177</td><td>https://www.neuronexus.com/products/electrode-arrays/up-to-10-mm-depth/</td></tr><tr><td>NanoZ Omentics Adapter - 32 Kanal</td><td>NeuraLynx</td><td>ADPT-NZ-N2T-32</td><td>https://neuralynx.com/hardware/adpt-nz-n2t-32</td></tr><tr><td>NanoZ System</td><td>Plexon</td><td>NanoZ Impedanztester</td><td>https://plexon.com/products/nanoz-impedance-tester/</td></tr> <tr><td>Narishige Mikromanipulator</td><td>Narishige</td><td>Stereotaxischer Mikromanipulator</td><td>https://usa.narishige-group.com/</td></tr> <tr><td>Open-Ephys GUI</td><td>Open-Ephys</td><td></td><td>https://open-ephys.org/</td></tr> <tr><td>Polyimid-Schläuche (OD (in): 0,021 / ID (in) 0,018 )</td><td>Verschiedene Quellen (Chamfr)</td><td>Chamfr Cat# HPC01895</td><td>https://chamfr.com/sellers/teleflex-medical-oem-llc/</td></tr> <tr><td>Primatenstuhl</td><td>Sonderanfertigung von University of Rochester Machine Shop</td><td>Designs online</td><td>https://marmolab.bcs.rochester.edu/resources.html</td></tr><tr><td>Poly(sodium 4-styrolesulfonat) (PSS)Sigma</td><td> Aldrich</td><td>Produkt #</td><td>243051 https://www.sigmaaldrich.com/US/en/product/aldrich/243051</td></tr><tr><td>RHD USB Interface Board</td><td>Intan</td><td>RHD2000 Evaluation Board Version 1.0</td><td>https://intantech.com/RHD_USB_interface_board.html</td></tr><tr><td>Silastic Gel</td><td>World Precision Instruments</td><td># KWIK-SIL</td><td>Silikonkleber mit geringer Toxizität ((https://www.wpiinc.com/kwik-sil-low-toxicity-silicone-adhesive)</td></tr><tr><td>Buprenorphin mit langsamer Freisetzung</td><td>Compounding Pharmacy</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Edelstahldraht 36 Gauge</td><td>McMaster & Carr</td><td>Cat# 6517K11</td><td>Runder Mehrzweckdraht aus Edelstahl 304, mattes Finish, 1 Fuß lang, 0,008"</td></tr><tr><td>Durchmesser Stanley 6-teiliges Präzisionsschraubendreher-Set</td><td>Stanley</td><td>1,4 mm Schlitzschraubendreher</td><td>https://www.amazon.com/Stanley-Tools-6-Piece-Precision-Screwdriver/dp/B076621ZGC/ref=sr_1_3?crid=237VSK5FNFP9N&keywords= Stanley + 66-052& qid=1672764369& sprefix= stanley+66-052%2Caps%2C90& sr=8-3</td></tr><tr><td>Stahlschrauben</td><td>McMaster & Carr</td><td>Typ 00 Edelstahl Sechskantschrauben und 1/8" Länge</td><td>https://www.mcmaster.com/</td></tr> <tr><td>Stahlrohr</td><td>McMaster & Carr</td><td>28 Gauge Edelstahlrohr</td><td>https://www.mcmaster.com/tubing/multipurpose-304-stainless-steel-6/id~0-055/</td></tr> <tr><td>Sekundenkleber</td><td>Loctite</td><td>SuperGlue Gel Control</td><td>https://www.loctiteproducts.com/en/products/fix/super-glue/loctite_super_gluegelcontrol.html</td></tr></tbody></table>

elektrophysiologie der laminaren kortikalen aktivität beim weißbüschelaffen

Electrophysiology of Laminar Cortical Activity in the Common Marmoset

Der Weißbüschelaffe bietet aufgrund seiner glatten kortikalen Oberfläche ein ideales Modell für die Untersuchung laminarer kortikaler Schaltkreise, was Aufnahmen mit linearen Arrays erleichtert. Der Weißbüschelaffe hat in letzter Zeit aufgrund seiner ähnlichen neuronalen funktionellen Organisation wie andere Primaten und seiner technischen Vorteile für die Aufnahme und Bildgebung an Popularität gewonnen. Die Neurophysiologie in diesem Modell stellt jedoch aufgrund der geringen Größe und des Fehlens von Gyri als anatomische Orientierungspunkte einige einzigartige Herausforderungen dar. Mit speziell angefertigten Mikrolaufwerken können Forscher die lineare Array-Platzierung auf Submillimeter-Präzision manipulieren und über Aufzeichnungstage hinweg zuverlässig an derselben retinotopisch anvisierten Stelle aufzeichnen. Dieses Protokoll beschreibt den schrittweisen Aufbau des Mikroantriebspositionierungssystems und die neurophysiologische Aufzeichnungstechnik mit linearen Silizium-Elektrodenarrays. Mit der präzisen Kontrolle der Elektrodenplatzierung über die Aufnahmesitzungen hinweg können Forscher den Kortex leicht durchqueren, um interessante Bereiche basierend auf ihrer retinotopen Organisation und den Abstimmungseigenschaften der aufgezeichneten Neuronen zu identifizieren. Darüber hinaus ist es mit diesem Laminar-Array-Elektrodensystem möglich, eine Stromquellendichteanalyse (CSD) anzuwenden, um die Aufzeichnungstiefe einzelner Neuronen zu bestimmen. Dieses Protokoll zeigt auch Beispiele für laminare Aufzeichnungen, einschließlich in Kilosort isolierter Spike-Wellenformen, die sich über mehrere Kanäle auf den Arrays erstrecken.

Dieses Protokoll beschreibt, wie ein X-Y-Elektrodentisch (Abbildung 1) gebaut wird, der das Anvisieren von Stellen im Submillimeterbereich ermöglicht und eine zuverlässige Positionierung über separate Aufnahmesitzungen hinweg aufrechterhält. Die Zuverlässigkeit der X-Y-Positionierung ist in Abbildung 6 dargestellt, die zeigt, dass zwei Aufnahmesitzungen, die im Abstand von einer Woche durchgeführt wurden, eine Überlappung von 70,8 % in ihren mittleren HF-Positio...

Speziell angefertigte Mikroantriebe ermöglichen das Submillimeter-Targeting von kortikalen Aufzeichnungsstellen mit linearen Siliziumarrays.

Elektrophysiologie der laminaren kortikalen Aktivität beim Weißbüschelaffen

The marmoset monkey provides an ideal model for examining laminar cortical circuits due to its smooth cortical surface, which facilitates recordings with ...

Der Weißbüschelaffe stellt aufgrund seiner geringen Größe und des Fehlens von Wirbeln als anatomische Orientierungspunkte einzigartige Herausforderungen für die Neurophysiologie dar. Eine leichte Verschiebung der Elektrode um nur einen Millimeter kann zu erheblichen Veränderungen in der Retinotopiekarte führen. Das vorgeschlagene Mikroantriebssystem verwendet einen XY-Elektrodentisch, der vertikale und horizontale Bewegungen im Submillimeterbereich ermöglicht.Aufgrund der relativen Neuheit des Weißbüschelaffen als Modell für das visuelle Neuronenzeichen entwickeln sich die elektrophysiologischen Techniken des Wachverhaltens noch weiter. Aktuelle Präparate verwenden oft semi-chronische Sonden, die keinen Zugang für die Positioniermechanismen ermöglichen. Dieses Protokoll demonstriert einen leichten Mikroantrieb für nützliche lineare Array-Aufzeichnungen, die eine flexible Positionierung über Sitzungen hinweg ermöglichen, um die Retinotopie innerhalb der Kammer abzubilden.Langfristige kortikale Schäden können bei der Zubereitung vermieden werden, wenn sie richtig mit dem sicheren Antrieb, dem langsamen Eindringen in das Gewebe und der Vermeidung größerer Blutgefäße angewendet werden. Darüber hinaus wurde der Einsatz von Silastic in den Kraniotomien zur Vermeidung von Infektionen in dieser Technik optimiert.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Ein grundlegendes Problem in unserem Verständnis der kortikalen Schaltung ist, wie Netzwerke in verschiedenen kortikalen Schichten kodieren sensorische Informationen. Hier beschreiben wir elektrophysiologische Techniken unter Verwendung von Multi-Contact-laminar Elektroden an Single-Einheiten und lokale Feld Potenziale und vorliegenden Analysen Datensatz kortikalen Schichten zu identifizieren.

Untersuchen Local Network Processing mit Multi-Contact-Laminar Electrode Recording

Wir haben eine ganze kortikale Electrocorticographic-Array für die Weißbüschelaffe entwickelt, die kontinuierlich fast die gesamte Mantelfläche des Kortex, aus dem okzipitalen Pol an die zeitlichen und frontal Pole abdeckt. Dieses Protokoll beschreibt eine chronische Implantationsverfahren des Arrays in den Epiduralraum des Gehirns Marmoset.

Chronische Implantation des gesamten kortikalen Electrocorticographic Arrays in der Weißbüschelaffe

Diese Arbeit präsentiert ein Protokoll, um eine stereotaxic, neurochirurgische Implantation von Mikroelektroden-Arrays im gemeinsamen Marmoset durchzuführen. Diese Methode ermöglicht speziell elektrophysiologische Aufnahmen bei frei verhaltenden Tieren, kann aber leicht an alle anderen ähnlichen neurochirurgischen Eingriffe bei dieser Art angepasst werden (z. B. Kanülen zur Arzneimittelverabreichung oder Elektroden zur Hirnstimulation).

Stereotaxic Chirurgie für die Implantation von Mikroelektroden-Arrays im Gemeinsamen Marmoset (Callithrix jacchus)

Hier beschreiben wir eine Handaufzuchtmethode zur Aufzucht von Weißbüschelaffenbabys in einem Tierbrutkasten. Diese Methode erhöht die Überlebensrate von Weißbüschelaffen-Säuglingen erheblich, was die Möglichkeit bietet, die Entwicklung von Weißbüschelaffen-Säuglingen mit ähnlichem genetischen Hintergrund zu untersuchen, die in verschiedenen postnatalen Umgebungen aufwachsen.

Handaufzuchtmethode für Weißbüschelaffenbabys

Um die Evolution der Sprache zu untersuchen, ist es wichtig, die Mechanismen des Gehirns beim Menschen mit denen bei nichtmenschlichen Primaten zu vergleichen. Wir haben eine Methode entwickelt, um die Elektroenzephalographie (EEG) von wachen Tieren nicht-invasiv zu messen. Es ermöglicht uns, EEG-Daten zwischen Mensch und Tier langfristig direkt zu vergleichen, ohne ihnen zu schaden.

Elektroenzephalographie-Messungen bei wachen Weißbüschelaffen, die den Lautäußerungen von Artgenossen lauschen 

Hier stellen wir zwei Protokolle für die Aufzeichnung von Mikro-Elektrokortikographie (μEcoG) mit hoher Dichte bei Ratten und Mäusen vor, einschließlich chirurgischer, Implantations- und Aufzeichnungsmethoden. μECoG-Aufzeichnungen werden entweder in Kombination mit laminarer Polytrodenaufzeichnung im auditorischen Kortex der Ratte oder mit optogenetischer Manipulation der neuronalen Aktivität im somatosensorischen Kortex der Maus durchgeführt.

Multiskalige Untersuchungen der kortikalen Prozessierung durch Integration laminarer Polytroden und Optogenetik mit Mikroelektrokortikographie bei Nagetieren

Wir haben eine Methode zur gleichzeitigen funktionellen Kernspintomographie und elektrophysiologischen Aufnahme in das Nagetier Gehirn entwickelt, eine Plattform für die Untersuchung der Beziehung zwischen neuronaler Aktivität und der Blutoxygenierung level dependent (BOLD) MRT-Signal.

Gleichzeitige fMRI und Elektrophysiologie in der Nager Gehirn

Eine Demonstration der Herstellung und Verwendung einer extrazellulären Saugelektrode zur elektrophysiologischen Ableitungen von Neugeborenen Nagetier Rückenmark...

Spinal Cord Elektrophysiologie II: Extrazelluläre Saugelektrode Fabrication

Dieser Artikel beschreibt eine elektrophysiologische Methode zur Isolierung chemische Stimulation einzelner Sensillen via extrazelluläre, tip-Aufnahmen unter Mineralöl.

Elektrophysiologie des Scorpion Peg Sensillen

Wir zeigen Varianten der extrazellulären Multi-Unit-Aufnahmetechnik, um Geruch hervorgerufenen Reaktionen in den ersten drei Stufen der wirbellosen olfaktorischen charakterisieren. Diese Techniken können leicht an ensemble Aktivität in anderen neuronalen Systemen sowie zu untersuchen.

Multi-unit Recording Methoden zur neuronalen Aktivität in der Locust Charakterisieren (<em&gt; Schistocerca Americana</em&gt;) Olfaktorische Circuits

Erfahren Sie eine maßgeschneiderte Mikroantriebstechnik zur präzisen submillimetergen Elektrodenpositionierung beim Weißbüschelaffen. Diese Methode ermöglicht elektrophysiologische Aufzeichnungen wachen Verhaltens und verbessert die Kartierung kortikaler Retinotopie erheblich.

Elektrophysiologie der laminaren kortikalen Aktivität beim Weißbüschelaffen

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