Waiting
Procesando inicio de sesión ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Necroptosis MLKL-aracılı plazma zarı kopma karakterizasyonu

Published: August 7, 2018 doi: 10.3791/58088
* These authors contributed equally

Summary

Biz yöntemleri konvansiyonel ve confocal live-cep mikroskobu görüntüleme, dahil olmak üzere necroptosis MLKL-aracılı plazma zarı kopma karakterizasyonu için scanning elektron mikroskobu ve lipid NMR tabanlı bağlama raporu.

Abstract

Necroptosis phosphorylates ve karışık soy kinaz benzeri etki alanı pseudokinase, MLKL rüptürü veya plazma zarı permeabilize, aktive protein kinaz 3 (RIPK3), etkileşim reseptör etkinleştirme tarafından tetiklenen bir programlı hücre ölümü yoludur . Necroptosis otoimmünite, bulaşıcı ve kalp-damar hastalıkları, felç, ateş ve kanser de dahil olmak üzere birden çok patolojileri ile ilişkili inflamatuvar bir yoludur. Burada, MLKL necroptosis plazma zarı kopma cellat olarak karakterize etmek için kullanılan iletişim kurallarını açıklar. Biz necroptosis confocal ve konvansiyonel floresans mikroskobu ile canlı hücre Imaging'i kullanma hücreleri ve sabit hücrelerin elektron mikroskobu, birlikte plazma için sitozol üzerinden MLKL dağıtılması ortaya kullanarak işlem görselleştirmek membran plazma zarı büyük delikler indüksiyon öncesinde. Biz MLKL-aracılı necroptosis sözde modülatörler tanımlamak için lipidler kullanarak vitro nükleer manyetik rezonans (NMR) analiz mevcut. Bu yöntem üzerinde bağlı olarak, biz nicel lipid-bağlama tercihleri ve phosphatidyl inositol fosfatlar (pip) MLKL, plazma zarı hedefleme ve necroptosis permeabilization için gerekli olan kritik bağlayıcı olarak tespit edilmiştir.

Introduction

Necroptosis genetik bileşenleri tanımlayan necroptosis dolaylı fizyolojisi ve hastalığı1,2,3,4,5' te test etmek için hayvan modellerinin kullanımı kolaylaştırdı. RIPK3 veya MLKL nakavt farelerde en az dolaylı geliştirme ve yetişkin homeostazı o necroptosis için hayat3,6şart değil ima vardı. Ayrıca, bazı türler ya RIPK3 ya da MLKL genler, necroptosis olmayan temel rolü hayvanların7,8' destek içermez. Öte yandan, çeşitli patolojileri laboratuvarda indüklenen ile nakavt hayvan modelleri zorlu necroptosis inflamasyon, doğuştan gelen bağışıklık ve viral enfeksiyon9,10, önemli bir rol ortaya koymuştur 11 , 12.

Necroptosis etkinleştirilmesi birkaç şekilde farklı doğuştan gelen bağışıklık sensörler sinyal tarafından tüm belgili tanımlık harekete geçirmek RIPK31,13,14hangi sonucu. Active RIPK3 sırayla phosphorylates ve MLKL3,4,5,6,7,8,9,10 etkinleştirir ,11,12,13,14,15,16,17,18. En iyi okudu ve belki de RIPK3 aktivasyonu için önde gelen en karmaşık yolu da apoptozis ya da necroptosis1ikna etmek için sinyal kompleksleri aşağı akım kompozisyona göre hangi bifurcates ölüm reseptör ligasyonu, geçiyor. RIPK1 sinyal tercih edilir ve nişan RIPK319,20sonuç Necroptosis ensues. Bu sonuç kolayca farmakolojik inhibisyon veya caspase 8, bir sözde endojen inhibitörü olan necroptosis koyunda tutar necroptosis genetik silinmesi üzerine tercih edilir. RIPK1 bağlar ve RIPK3'ı etkinleştirir. Necroptosis etkinleştirmek için başka bir yol TLR3/TLR4 Toll benzeri reseptörler sinyal aracılığıyla yürütmektedir ve RIPK3 tır etki alanını içeren bağdaştırıcı indükleyici interferon-β (TRIF)21aktive olduğu. Henüz doğrudan yürütmektedir ve RIPK322etkinleştirir DNA sensör DAI, etkinleştirme tarafından necroptosis tarafından ölmek için başka bir yol olduğunu.

MLKL bir N-terminal helix paket (NB) ve bir düzenleyici küme ayracı bölge3ile bağlantılı bir C-terminal pseudokinase etki alanı (psKD) oluşan sitozolik bir proteindir. Normal hücrelerde, MLKL nereye RIPK314ile etkin olmayan bir karmaşık olduğu düşünülen sitozol bulunur. Harekete geçirmek-in necroptosis MLKL RIPK3 fosforilasyon harekete geçirmek ilmik psKD ve NF ve kaşlı ayraç3,15,23yılında potansiyel olarak ek siteler içinde tetikler. Fosforilasyon ayrılma RIPK314sonuç MLKL konformasyon bir değişiklik neden olmaktadır. Kötü anlaşılır konformasyon değişiklikleri küme ayracı psKD24yayın. 2 sarmal içeren küme ayracı, MLKL Oligomerizasyonda sözde trimer ile C-terminal helix25içine aracılık eder. Brace N-terminal helix membran permeabilization24,26için gerekli olan NB etki alanı engeller. Tecrit NB etki alanı plazma zarı permeabilization ve necroptosis16,24,27ikna etmek yeterlidir. NB pro-necroptotic etkinliği içinde fare embriyonik fibroblastlar MLKL (mlkl- / - MEFs) eksik öldürüldüğüne tanıklık etmişlerdir. NB tercihen fosfolipid phosphatidylinositol 4,5 nükleotittir (PIP2) yürütmektedir bir lipid bağlayıcı etki alanıdır. Biz MLKL, onda MLKL alımı için plazma zarı NB zayıf etkileşimler PIP2 kutup baş grup24ile üzerinden küme ayracı Oligomerizasyonda kolaylaştırır aktivasyon kademeli bir mekanizma önerdi. Membran NB PIP2etkin olmayan MLKL brace tarafından maskeli için bir ek yüksek afinite bağlama sitesinin düzenlenmiş pozlama uğrar. Genel olarak, her ne kadar bu olayların moleküler mekanizması-değil var aydınlatılmamıştır NB birden çok etkileşimler PIP2 ile onun kopmalara önde gelen plazma zarı istikrarsızlaştırmak.

Burada MLKL işlevini necroptosis24cellat tanımlamak için kullanılan belirli yöntemleri gösterilmektedir. Özellikle, biz odaklanmak en az etki alanı MLKL, NB ve küme ayracı (NBB), hangi küme ayracı inhibisyon tarafından düzenlenir ve plazma membran rüptürü ve necroptosis ikna etmek için zorunlu dimerization ile aktif hale getirebilirsiniz. Biz zorunlu uyuşturucu kaynaklı FKBP-aracılı dimerization canlı hücre görüntüleme ve necroptosis geçiren hücrelerin elektron mikroskobu ile birlikte bizim indüklenebilir ifade sistemi açıklanmaktadır. Ayrıca, bizim vitro NMR Analizi NBB etkileşimleri ile phosphatidylinositols (pip) göstermektedir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. klonlama ve hücre satırı üretimi

  1. PCR yükseltmek NBB bölge çerçeve standart Restriksiyon enzimi tabanlı Oligomerizasyonda etki alanı 2 x FK506 bağlayıcı protein (2xFKBP veya 2xFV) ve Venüs floresan ile klonlama olarak amino asit kalıntıları eklenmesi 1-140 (NBB140), insan MLKL cDNA sayfasından için karşılık gelen protein doksisiklin (Dox) - indüklenebilir retroviral vektör pRetroX-NBB140elde etmek için TRE3G - 2xFV-Venüs (Tablo 1, rakamlar 1A-B).
  2. Ölümsüzleştirmek SV40 büyük antijen ile geçici transfection tarafından ilgili fareler yeşil laboratuarda elde edilen birincil mlkl- / - veya ripk3- / - mlkl- / - fare embriyonik fibroblastlar (MEFs) Plazmid ifade ediyorum. ~ 1 – 2 ile ölümsüzleştirdi hücreleri seçin hafta ve % 10 fetal Sığır serum (FBS), 2 mM L-glutamin, 100 U/mL penisilin ve streptomisin, 1 mM sodyum pyruvate ve 37 ° C ve % 5 CO2 standart doku'de gerekli olmayan amino asitler ile takıma DMEM korumak Kültür İnkübatörler.
  3. Transduce SV40 ölümsüzleştirilmiş mlkl- / - MEFs ile ters tetrasiklin kontrol transactivator (rtTA)-retrovirüsü blasticidin direnç gen (bizim değiştirilmiş plazmid) içeren bir plazmid ifade içeren ve 1 için tedavi hafta ile 5 μg/mL blasticidin stabil rtTA28ifade hücrelerini seçer.
  4. RtTA ifade MEFs ile Dox indüklenebilir retroviral vektör chimeric MLKL içeren transduce (pRetroX-NBB140-2xFV-Venüs-puro) ve bir hafta, 2 gün sonra iletim için 4 μg/mL puromisindir kullanarak seçin.

2. canlı cep mikroskobu görüntüleme Necroptosis MLKL-aracılı

  1. Plaka mlkl- / - NBB140ifade MEFs-2xFV-24 (1 mL/de) kuyuya başına 50.000 hücre yoğunluğu, Venüs de tabak ve gecede kuluçkaya (Şekil 2A). (Bkz. Tablo reçetesi) otomatik hücre sayımı için canlı hücre boyama kullanın.
  2. Hücreler Dox ile 12 h için tedavi (0.5 μg/NBB140ifade ikna etmek için mL)-2xFV-Venüs.
  3. Necroptosis 25 nM FKBP dimerizer (Dim) ile 25 nM membran geçirimsiz yeşil floresan yanı sıra teşvik ( Tablo malzemelerigörmek) standart DMEM boya (1.2 bakın). Necroptosis geçiren hücreleri birikir boya NBB140tarafından onların plazma membran bütünlüğü tehlikeye gibi-aracılı yırtılması. Deneyleri nüsha veya quadruplicate yerine getirmek.
  4. Tek veya çift renkli görüntüleme sistemleri ( Tablo malzemelerigörmek) kullanarak necroptosis izlemek için bir memeli doku kültürü kuluçka makinesine yer alan ilgili görüntüleme birimi damarları yerleştirin.
  5. Açık bilgisayar yazılımı ( Tablo malzemelerigörmek) ve zamanlama yaklaşan tarar görevler listesinin altında sekmesini seçin.
    Not: bu iletişim kuralı tek renkli sistemleri kullanarak görüntüleme için ama benzer bir yazılım çift renkli sistemlerinde kullanılabilir.
  6. "Tepsi, gemi, tarama türleri" ve "Tarama deseni" "Fiziksel düzeni" sekmesini ve "Hızlı floresan" Özellikler sekmesini seçin.
  7. "İnceden inceye gözden geçirmek yanında tıkırtı zaman" "Zaman çizelgesi" pencere ve toplam zaman puan ve frekans Alım (genellikle 1 edinme her 0,5 h 6 12 h s veya fast-kinetik necroptosis için her 5 dk 1 h) ekleyin ve resim alma "App seçerek başlayın ly"(kırmızı düğme).
  8. Görüntü analiz yazılımı kullanarak necroptosis ölçmek ( Tablo malzemelerigörmek) seçerek "görev bölmesinden", "Nesne sayma yeni analizi ile sabit segmentasyon eşik arka plan seviyesinden", hangi tespit üzerine gelerek fare imlecini birkaç görüntü analizinde kullanılan bölgelerde arka plan üzerinde.
  9. Geçerli görüntü kullanarak önizlemesini görüntülemek seçerek floresan nesneleri inceleyin ve gerektiği gibi eşit düzeylerine rafine.
  10. Yeşil floresans sayar "Denize indirmek yeni analiz" sekmesini açarak entegre, "Zaman aralığı" seçmek, çözümlenmesi, "Analiz iş adı" girin ve "Tamam" tuşuna basarak için kuyu seçin.
  11. Erişim ilgili işin adına çift tıklatıp ek çözümleme harici grafik yazılım grafik/verme penceresinden verme "Analiz işleri" sekmesinden veri analiz ( Tablo malzemelerigörmek).
  12. Veri yeşil floresans pozitif (+ ve) olarak sayar/mm2 quantitate veya sayıları izdiham tarafından normale ve verileri hızlı yeşil floresans + ve sayıları/izdiham olarak.
  13. İsteğe bağlı olarak, deneysel uç noktada 100 hücrelerle leke membran-permeant yeşil floresan nM boya ( Tablo malzemelerigörmek). Yeşil floresans/yeşil floresans uç noktada oranı % necroptotic hücrelere veri normalleştirmek.

3. canlı hücre Confocal mikroskobu görüntüleme plazma zarı işe alım ve Permeabilization MLKL tarafından

  1. Plaka mlkl- / - NBB140ifade MEFs-2xFV-Venüs bir cam (0.5 mL/de) kuyuya başına 20.000 hücre yoğunluğu, alt için 30 dk 37 ° C'de PBS içinde 50 µg/mL fibronektin ile ön işleme 4-şey mikroskobu odası ve ~ 12 h ( için kuluçkaya Şekil 2B).
  2. Dox hücrelerle tedavi (0.5 μg/mL) ~ 12 h NBB140ifade ikna etmek için-2xFV-Venüs.
  3. Necroptosis taze orta ile 25 (1 mL/de) kuluçka tarafından teşvik nM NBB140ikna etmek için Dim-2xFV-Venüs harekete geçirmek ve plazma zarı için translocation.
  4. Çevre denetimi ve bir 63 ile donatılmış bir ters stand üzerinde inşa confocal mikroskobu tarama dönen disk lazer odası yerleştirin 1.4 NA amaç ve yazılım kullanarak edinme Imaging başlar ( Tablo malzemelerigörmek).
  5. Belgili tanımlık bilgisayar yazılımı başlatmak, YFP filtre yapılandırma (uyarma dalga boyu 515 nm) ve "Focus" simgesini seçin.
  6. Görüş alanı ve odak düzlemi bulun ve "Kesin Focus" sekmesini kullanarak odak bakım sistem meşgul.
  7. Satın alma başlamak için filtre yapılandırma, uygun EMCCD fotoğraf makinesi pozlama zaman ve yoğunlaştırılması kazanç ve hızlandırılmış edinme parametrelerini aralığı ve edinme uzunluğu gibi atama tarafından takip "Yakalama" sekmesini seçin.
  8. İzlemek floresan NBB140hücresel yeniden dağıtım-2xFV-Venüs protein elde tarafından necroptosis sırasında görüntüleri her 10 515 nm lazer (Film 1) kullanarak bir EMCCD kamera tarafından s.
    Not: Photobleaching floresan protein görüntüleme ile bir husustur. Venüs daha dayanıklı floresan proteinler photobleaching29biridir. Photobleaching için daha duyarlı floresan proteinler kullandıysanız, her 30 resim s veya kurtarma görüntüleme zaman puan arasında sinyal sağlamak için daha uzun.
  9. NBB140Derneği plazma zarı izlemek için-2xFV-Venus necroptosis sırasında görüntü her 10 s örnek hazırlanan 3.3 içinde toplam iç yansıma floresans tarafından bir otomatik TIRF slider ile donatılmış bir mikroskop kullanarak (TIRF) mikroskopi ve bir 100 x 1.4 NA objektif ve bir EMCCD kamera (Movie 2). 3.5-3.7, adımları izleyin ama TIRF odak sekme mikroskobu odası örnek ve alt cam kalınlığı göre içindeki TIRF açısını ayarlamak.
    Not: plazma zarı işaretleyicileri LCK-C-RFP gibi denetimleri plazma zarı yerelleştirme TIRF analizi için kullanılabilir.
  10. Görüntü kalitesi Gauss işlev (Marr algoritması) negatif normalleştirilmiş ikinci türev ile evrişim tarafından geliştirmek için işleme gerçekleştirin.

4. elektron mikroskobu

  1. Plaka mlkl- / - NBB140ifade MEFs-2xFV-Venüs bir yoğunluk plazma kaplı 150 mm 5 milyon hücre, hücre kültür çanak ve kuluçkaya 12 h (Şekil 3).
  2. Doksisiklin hücrelerle tedavi (0.5 μg/NB1-140ifade ikna etmek için mL)-2xFV-Venüs 12 h için.
  3. NBB140ikna etmek-2xFV-Venüs harekete geçirmek ve 25 ile plazma zarı translocation homodimerizer 5 min için nM. Bu sefer canlı hücre görüntülemede gözlenen necroptosis kinetik üzerinden kurulur.
  4. Medyayı çıkarın ve 10 mL % 2.5 oxazolidin, 37 ° C'de önceden ısınmış % 2 paraformaldehyde 0.1 M sodyum cacodylate tampon pH 7.4 içinde (cacodylate arabellek) kullanarak hücreleri tamir
  5. Kazıma örnek toplamak ve örnekleri 500 x g, 10 min için spin. Süpernatant atmak.
  6. Örnek % 1.5 potasyum ferrocyanide 0.1 M sodyum cacodylate tampon ile 1,5 saat içinde indirimli % 2 osmiyum tetroxide için postfix. Osmiyum tetroxide TEM içinde kontrast sağlamak için yaygın olarak kullanılan boyama bir ajandır. TEM necroptosis geçiren hücre SEM önce ön analiz olarak kullanılır.
  7. Örnek 5 kere 5 min için ultrasaf su vasıl 500 x gdurular arabelleği ardından, durulama (bkz: 4.6), su ve etanol otomatik bir işlemci. Süpernatant atmak.
  8. SEM için % 1 uranyl asetat ve kurşun aspartat heavy metalci leke31ile daha önce sabit örnekleri leke.
  9. Alkol ve propilen oksit çözümleri kademeli bir dizi örnekleri kurutmak.
  10. Örnek bir reçine blok elde etmek için sert reçine32 içinde embed.
  11. Analiz doğru alan belirlemek için 0.5 mikron kalınlığında bölümlerini kes.
  12. Elektriksel olarak iletken metal (Iridium) ultra ince bir film örnekleriyle kat.
  13. Görüntü ve örneklerini (Şekil 3). Miktar için reçine blok yüzey maruz kalan hücrelerle düşük-büyütme resim 5'te taranır bir elektron mikroskop kullanarak keV.
  14. Hücrelerin SEM tarafından yakalanan bireysel görüntüleri karşısında görselleştirmek veya görüntüleme yazılımı birden çok alan görünümü bir bitişik resim30birleştirmek için kullanılan. Kabaca 100 hücreler hücreleri necroptosis bu şekilde seçim yazılımında yüksek çözünürlüklü resim dizisi oluşturarak geçiren kısmını değerlendirmek için kullanılan ( Tablo malzemelerigörmek).
    Not: SEM tarafından nekrotik morfoloji Puanlama normal hücre özellikleri önceden nekrotik veya nekrotik fenotipleri ilerleme ile karşılaştırır. Bu özellikler microvilli ortadan kalkması da dahil olmak üzere, düzleştirme, yırtığı 10 arasında değişen hücrelerdeki plazma zarı değişiklikler içerir nm 1 µm boyutu veya organel yapısı sitozolik hücre alan en az % 30-40 arasında kaybı için.

5. lipid bağlama, nükleer manyetik rezonans (NMR) spektroskopisi tarafından MLKL

  1. 15N etiketli NBB1-156 standart protein ifade ve arıtma yukarıda açıklanan24olarak hazırlayın.
  2. 1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoinositol amonyum tuz (18:0 PI) ve 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-(1'-myo-inositol) amonyum tuzu (18:1 PI) buz gibi CHCl3 her için son 1 mg/mL konsantrasyonda 500 µL 500 µg geçiyoruz.
  3. 1 mg/mL 18:0 ve sonication su banyosu oda sıcaklığında 1 dk 18:1 PI solüsyon içeren temizleyicide veya en fazla 5 dakika içinde bir buz-su karışımı.
  4. Aliquot 1 mg/mL 18:0 ve 18:1 PI içine temiz cam şişeler için bireysel NMR titrasyon serisi (Şekil 4). Transfer lipidler organik çözücüler hava geçirmez cam şırınga kullanarak içinde.
    1. 1 mg/mL 18:1 PI aliquot 132 µL (molar kütlesi = 880.137 g/mol) CHCl3 125 µM konsantrasyon, 1200 µL son resuspension hacmi için.
      Not: 5 mm NMR tüpler için seri seyreltme hacimleri hazırlamak > 1000 µL ve son NMR örnek hacimleri > 500 µL. 3 mm NMR tüpler için seri seyreltme hacimleri hazırlamak > 300 µL ve son NMR örnek hacimleri > 150 µL.
  5. Aliquot 1 mg/mL domuz beyin 20 L-α-phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate amonyum tuzu: 9:1 CHCl3/MeOH/H2O (beyin PI (4,5) P2) temiz cam şişe içine.
  6. Şişeleri argon (Ar) veya azot (N2) karşı cam şişe duvarları sıçramasına olmadan organik çözücü buharlaşır için orta akış ile gaz akışı altına yerleştirin. Otuz beş dk 10-200 µL organik çözücü birimler için genellikle yeterli olur.
  7. Cam vial(s) Büchner veya vakum büyük Cımbız kullanarak flask altındaki bir kauçuk tıpa ile mühür ve bir vakum hattına bağlı plastik boru eklemek düzenlemek. Şişesi altında kalan organik kaldırmak için hafif vakum gecede tahliye edin.
  8. Lipid film aliquots inert gaz ile yerleşimi, hava geçirmez bir kapak ile mühür ve daha uzun vadeli depolama için kullanmak bir ay içinde veya-80 ° C-20 ° C'de depolayın.
  9. NMR örnek arabellek deterjan olmadan hazırlamak (-Det) 20 mM NaxHyPO4 pH 6.8, %10 D2içeren O ve deterjan (+ Det ile) 20 mM NaxHyPO4 pH 6.8, içeren %10 D2O, 0,34 mM n-Lauryl-β-D-maltopyranoside (demir).
  10. Ekle + cam şişe istenen toplama ulaşmak için ve su banyosu ilâ 30 dk sonication için 10 dk alternatif için solüsyon içeren temizleyicide lipid film ile Det arabelleğe görsel denetim tarafından takip.
    Not: Örnek Sonication sıcak. Oda sıcaklığında son protein örnek sulandırma önce 15 dakika soğumasını bekleyin.
  11. Lipid-deterjan micelles + 1:1 karışımları sonication için istenen konsantrasyon serisi kullanarak Det arabellek seri seyreltme gerçekleştirin. 125 µM lipid konsantrasyonu başlayarak, üç tekrarlama 62.5 µM, 31.3 µM ve 15,6 µM lipid 0,34 mm DDM ortaya çıkarır.
  12. Denetim hazırlayın ve protein ve katkı - Det NMR örnekleri başvuru ve + Det arabellekleri, anılan sıraya göre. Protein ve lipit içinde her seyreltme için katkı + Det arabellek ekleyin.
    Not: 15N NBB156için protein 40 µM son bir konsantrasyon için eklendi ve azaltılmış Cys artıkları tutmak için 2 mM deuterated dithiothreitol ile desteklenmiştir.
  13. Örnekler uygun hacmi (bkz: Not Adım 5,4) 5 mm veya 3 mm NMR tüpler aktarın.
  14. El ile yükleme örnekleri NMR alet veya bir Otomasyon platform SampleCase yükleyici gibi düzenleyin.
  15. Kalite kontrol en iyi duruma getirilmiş enine gevşeme spektroskopisi (TROSY) olarak 2D 1H -15N korelasyon spectra tarafından takip olarak 1H proton spectra için standart darbe programları kullanarak bileşik NMR spectra elde etmek veya heteronuclear birden fazla kuantum tutarlılık (SOFAST-HMQC)33.
    Not: 3 mm NMR tüpler kullanımı 1 H -15N TROSY (~ 3 h) veya 1H -15N SOFAST-HMQC (~ 90 dk) 64 inceden inceye gözden geçirmek ister. Tarama numaraları 5 mm NMR tüpler için yarıya iner.
  16. İşlenmiş 2D NMR spectra çözümleme veya kullanıcıya diğer yazılım CARA depo34 eklenebilir.
  17. Yazılım 2D NMR rezonanslar her protein durumu için üç iyi dağınık ve çözümlenen tepeler için ek açıklama ekleme tarafından analiz. Her NBB156 (Şekil 5A) içeren her arabellek koşul için altı zirvesinin en yüksek genlikleri kaydedin.
    1. Bir toplu iş-entegrasyon liste hazırlamak için Cara'yı kullanın (tıklatın ana menü başlığı "spektrum | Kurulum toplu iş listesi"...) Tüm spectra toplanan ve bir tek en yüksek atama dosyasını kullanarak analiz (tıklatın ana menü başlığı "tepeler | Peaklist alma"..... .ve 6 Toplam tepeler, 3 içinde tanımlanan her protein durum için bir .peaks Kullanıcı tanımlı dosya seçin).
    2. Uygulamasının ayarlarını ("ıntegrator | En yüksek Model tune"...) X-genişlikte 0.06 ppm ve Y-genişlik 0.30 ppm (tıklatın ana menü başlığı "ıntegrator | En yüksek Model tune"...) Son çıktı iki menü seçimlerini (1. kaydetmeden önce Ana menü başlığını tıklatın "ıntegrator | «««Entegre"toplu liste) (2. Ana menü başlığını tıklatın "tepeler | Entegrasyon tablosunu verin") (Şekil 5B).
      Not: Kalıntıları M21, V53 ve L105 omurga Amid rezonanslar NBB156 kapalı küme ayracı devlet için atanmıştır. Açık küme ayracı devlet omurga Amid rezonanslar kalıntılarının G130 ve A141 ve 3D NMR deneyler24kullanarak epsilon proton yan zinciri rezonans W133 atandı.
  18. Örnekleri farklı mıknatıslar veya örnek koşullar doğrudan karşılaştırma için üç açık küme ayracı genlikleri başvuru örneklerinin ortalama ve iki başvuru ile ilgili bir normalleştirme faktörünün hesaplanması normalleştirmek. NBB156 rezonanslar normalleştirme faktörü ve ayar negatif genlikleri (Tablo 2) sıfır olarak kullanarak için ölçekli genlikleri hesaplayın.
    Örnekler: 1) farklı mıknatıslar örnekleri karşılaştırma: mıknatıs A, NBB156+ DDM ve mıknatıs B, NBB156+ DDM. 2) deterjan karşılaştırma: 0,34 mM DDM ve 1.7 mM DDM.
  19. Ölçekli kesir, kapalı - veya açık-tüm spectra ürününün için maksimum minimum genlik yelpazesi ile bölünerek küme ayracı içeren uygun başvuruları ücretsiz NBB156 ve tamamen açık ayraç NBB156 içinde toplanan her rezonans için hesaplamak deterjan.
  20. Normalleştirilmiş NMR genlikleri lipid konsantrasyonu bir fonksiyonu olarak arsa ve açık küme ayracı NBB156 farklı koşullarda (şekil. 5 C) kısmını karşılaştırın.
    Not: Alternatif olarak, kapalı küme ayracı conformation lipid konsantrasyon karşı kısmını analizini NBB156lipid bağlama karşılaştırmak için gerçekleştirilebilir. Çünkü bu daha hızlı ve lipidler tarafından daha iyi kesir raporlarda tam-nişanlı eski analiz tercih ederim.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Düzenlenmiş necroptosis yürütme canlı hücrelerdeki görselleştirme en az bir kesilmiş yapı, NBB140MLKL indüklenebilir ifade yoluyla mümkün olmuştur-2xFV-Venüs. Bu yapıyı plazma zarı permeabilization ikna yeteneği korur ve Dim kaynaklı Oligomerizasyonda FKBP kaset (2xFV) etkinleştirilir. Biz gözlemlemek ve necroptosis tarafından Imaging, kinetically (her 5 dk) bir hücre geçirimsiz yeşil floresans DNA bağlama boya (Şekil 6A) alımını izleme live-cep mikroskobu ölçmek. Bu indüklenebilir sistemi çok sağlam ve mlkl- / - MEFs tam necroptosis ~ 1 h Dim-aracılı Oligomerizasyonda NBB140hızlı Dox preincubated hücrelerin üzerine içinde gözlenen-2xFV-Venüs (Şekil 1A ). Biz fast-kinetik necroptosis bu şartları bakın. İfade Venüs yalnız ± Dim veya NBB140-2xFV-Venüs Dim yokluğunda değil ikna etmek necroptosis (Şekil 6A). Genellikle en az 3 Çoğalt görüntüleme deneyler nüsha veya quadruplicate 24, 96 veya 384-şey plakaları gerçekleştiriyoruz.

Hızlı-kinetik necroptosis NBB140yürürlüğe dimerization tarafından indüklenen-2xFV-Venüs (Şekil 6A) MLKL rol plazma zarı yırtılması sözde cellat olarak destekler. NBB140dağıtılması görselleştirmek için-2xFV-Venüs'e necroptosis, canlı-hücre confocal mikroskobu sırasında plazma zarı Venüs floresans izlemek için kullanılır. Hücre çevre kaplama görülmektedir, Venüs, kuluçka Dim ile 2-3 dakika içinde hızlı-kinetik necroptosis sırasında (Film 1) yuvarlama kademeli hücre tarafından takip. NBB140-2xFV-Venüs birikimi plazma zarı, hücre ses seviyesinde sitozol-plazma membran-glass arayüzü üzerinde duruluyor TIRF confocal mikroskobu tarafından görüntülenmiştir. Plazma zarı ilişkili Venus puncta, kuluçka Dim (Movie 2) ile 1-2 dk içinde görünür. Böylece, zorlanan Oligomerizasyonda NBB140-2xFV-Venüs, hızlı yeniden dağıtım için plazma zarı neden olmaktadır.

Elektron mikroskobu (SEM) tarama necroptosis geçiren hücrelerdeki morfolojik değişiklikler ortaya çıkarmak için güçlü bir araçtır. NBB140Oligomerizasyonda tarafından indüklenen hızlı necroptosis altında-2xFV-Venüs, değişiklik morfoloji (zaman 0 dk) normal uzun şekillere üzerinden yuvarlak ve kısmen yırtılmış (10 dakika) için (5 dk) arttı ve kapsamlı sitozol bulunduğu çöktü hücreleri (20 dk) (Şekil 6B) ortadan kayboldu. SEM MLKL yerelleştirme plazma zarı için membran rüptürü ile korele yaşamak-cep mikroskobu önceki gözlemler tamamlar. Genel olarak izlemek, değerlendirmek ve necroptosis hücresel düzeyde ölçmek ve NBB140işe bulaştırmak için tamamlayıcı anlamına gelir burada sunulan mikroskobu teknikleri teklif-2xFV-Venüs plazma zarı yırtılması yürütülmesini.

MLKL plazma zarı doğrudan iletişim kurabilirsiniz Eğer belirlemek için rekombinant NBB156kullanarak NMR spektroskopisi tarafından izlenen vitro lipid bağlama deneyler yapmak. Lipid-deterjan micelles deterjan (lipid tanıtımı için araç) sürekli bir konsantrasyon ve değişken lipit konsantrasyonları, kullanarak, seri dilutions 2D NMR spektroskopisi tarafından test için 15N etiketli NBB156 bağlama için hangi monitör bağlama kaynaklı protein değişimler. NBB156 üzerine inhibitör küme ayracı bölge (amino asitler 132-156) kapalı ve helisel yerinden için bağlama lipid (kapalı kaşlı ayracı) açık ve özünde düzensiz biçimi (açık kaşlı ayracı) (Şekil 7 için önemli yapısal değişiklikler geçer A). Her iki conformers (Rakamlar 7B-7 C) karışımları üzerinde kalıntı bilgi başına iki boyutlu NMR spektroskopisi sağlar. Daha önce her iki conformers24omurga amidler atanmış. Kolayca 5A-C rakamlaraçıklandığı gibi belirli bir örnek içinde kapalı ve açık conformers oranlarda izleyebilirsiniz. Bu bağlama tahlil kullanarak, biz NBB156 bağlama için tırtıl (Şekil 5B) bağlama NBB156 için hareketsiz DDM deterjan keşfetmek. Bu tahlil, tam inhibitör küme ayracı açılışında 125 µM (Şekil 5C) ikna en iyi NBB156 ligand PIP2 dir. Buna ek olarak, doymuş (18:0) PI ve doymamış (18:1) PI zavallı NBB156 ligandlar aynı koşullarda (Şekil 5C) açılış kısmi küme ayracı inducing vardır. Bizim lipid NMR tabanlı bağlama tahlil fosfolipitler ile MLKL NBB156 etkileşim için destekleyici kanıt sağlar ve MLKL ve plazma zarı arasında doğrudan bir bağ öneriyor.

Figure 1
Şekil 1: Kararlı bir modifiye Tet üzerinde 3 G indüklenebilir sistemi barındıran hücre kültürünü. (A)istikrarlı hücre hatları tarafından retroviral iletim mlkl- / - MEFs pTREX-rtTA-pRetroX-TRE3G-NBB140tarafından takip patlama ile oluşturulan-2xFV-Venüs-puro. Her iletim daha sonraki analizler için geçmeden 1 hafta antibiyotik seçimi izledi. (B) indüklenebilir MLKL ifade sistem şematik gösterimi. Bu sistem 2 ilaç-indüklenebilir düzenleyici merdivenlerinde dayanmaktadır: i) MLKL gen ekspresyonu ve protein üretim (+ Dox) ve II) etkinleştirme Oligomerizasyonda (+ Dim) tarafından. Protein üretim indüklenen zaman peşin + Dox, hızlı-kinetik necroptosis tetiklenebilir + Dim. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 2
Resim 2 : Fast-kinetik necroptosis live-hücre görüntüleme ortaya MLKL hızlı membran relocalization. (A)Fast-kinetik Şekil 1B olduğu gibi indüklenen necroptosis izlenen bir görüntüleme sistemi. Necroptosis hücre geçirimsiz yeşil flüoresan boya alımı tarafından attı. (B) canlı hücre görüntüleme fast-kinetik necroptosis epifluorescence ve toplam iç yansıma Floresan (TIRF) mikroskopi analizi ile şematik gösterimi. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 3
Şekil 3 : Elektron mikroskobu (SEM) numune hazırlama ve analiz tarama şematik Gösterim. Şekil 1 ' de açıklandığı gibi indüklenen fast-kinetik necroptosis hücrelerden Dim eklenmesinden sonra farklı zaman noktalarda plaka üzerinde sabitlenir. Hücrelerin SEM analiz için kazıma ve havuzu, ağır metal boyama, reçine katıştırma ve 4 bölümde açıklandığı gibi iridyum kaplama hazır mısın. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 4
Şekil 4: Örnek hazırlama ve veri toplama için 15N NBB156 ve lipid-deterjan micelles NMR titrations. Bu tahlil ve Analizi genellikle 3-4 gün içinde gerçekleştirilen: 1 gün boyunca, lipid aliquots reçete ve gecede kurutulmuş. 2 gün boyunca, lipid filmleri tahlil arabellek ± deterjanlar, sonicated ve seri olarak seyreltilmiş (iki kat) içinde rehydrated lipid çözüm arabellek lipid içermeyen çözüm ile eşit miktarda karıştırılarak rehydrated. Her seyreltme homojen karıştırma ve lipidler deterjan micelles sonraki dilutions önce içinde dağılımını sağlamak için sonicated. Protein örnekleri seri lipid-deterjan micelle dilutions karışık, uygun NMR tüplerde yüklü, bir SampleCase yükleyici yerleştirilir (veya el ile yüklenen) ve otomatik NMR veri toplama başladı. Sonraki günlerde, NMR veri toplama tamamlandı ve 2D NMR analizi ile izledi. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 5
Şekil 5 : NBB156 lipid-bağlama tercihlerini ölçülen 2D NMR kullanarak. (A)(kırmızı) varlığı veya yokluğu 0,34 DDM görselleştirildiği CARA içinde mM 125 µM PI (4,5) P2 (mavi) 1H -15N TROSY spectra 15N-NBB156 için üst üste. (B) rezonanslar genlik ölçümleri ve normalleştirme için kullanılan tek boyutlu dilim. Ham spektrum (yeşil) genlik ve entegrasyon için sınır ile programıyla CARA overlaid. (C) NORMALIZED genlikleri NBB156 fosfoinositid DDM micelles huzurunda, çizilen lipid konsantrasyon karşı. PIP2 tam açılış ayracı neden olmaktadır. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 6
Şekil 6 : Fast-kinetik necroptosis NBB140Oligomerizasyonda tarafından indüklenen-2xFV- mlkl- / - MEFs Venüs. (A)hücre geçirimsiz, DNA'ya bağlanıcı yeşil flüoresan boya alımını yanında yüksek üretilen iş floresans düşsel Necroptosis miktar. Sağlam necroptosis indüksiyon sadece Dim kaynaklı Oligomerizasyonda NBB140gözlenen-2xFV-Venüs, ama değil Dim yokluğunda. Sadece Venüs kontrol deneyleri de gerçekleştirilir. Her koşulda nüsha yapılır ve ortalama çizilir ve SD bir temsilcisi çoğaltır. (B) Fast-kinetik necroptosis indüklenen huzurunda Dim elektron mikroskobu tarama ile görüntülenir. Ders ortaya morfolojik değişiklikler temel necroptosis hücre yuvarlama ve (5 dk), şişme gibi zaman plazma membran (10 dakika) rüptürü ve ekstravazasyonu sitozol (20 dk) tamamlayın. Her örnek zaman 0 dk. hücreleri benzer dizi vardı. Soldan sağa, 26, 32, 23 ve çekirdekleri ile 36 hücreleri içinde yakınlaştırılan alan içerir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Figure 7
Şekil 7 : NBB156 NMR spektroskopisi tarafından izlenen phosphoinositides için bağlama. (A) 1H -15N TROSY spektrum 15N-NBB156. Rezonanslar kapalı küme ayracı spektrum normalleştirme veya miktar açık durumu için kullanılan kimyasal vardiya kareler veya daire ile sırasıyla vurgulanır. Doğru şematik NMR imzaları yokluğu veya lipid-deterjan micelles varlığı tespit edildi. NBB156 DDM deterjan micelles phosphoinositides yokluğunda bağlanmaz. (B) 1H -15N TROSY spectra 15N-NBB156 ilgili lipid-deterjan micelles varlığında üst üste. (C) tek 1H -15N TROSY spectra 15N-NBB156 ilgili lipid-deterjan micelles B. panelinden varlığında Açık ve kapalı biçimler belirsizliğe yer bırakmadan iki biçimler karışımları yanında hafiye verilen örnekteki iki conformers oranlarda ölçmek. PIP2 MLKL ve plazma membran fosfolipitler arasında doğrudan bir bağlantı sağlayan NBB156 tercih edilen lipid ligand var. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

PCR arabellek (10 x) 5.0 ΜL
DNA şablonu (100 ng/µL) 1.0 ΜL
cDNAs için MLKL, 2 x FKBP, Venüs)
dNTPs (25 mM her NTP) 0.5 ΜL
PCR astar ileri (F) (100 ng/µL) 1.3 ΜL
PCR astar ileri (FR (100 ng/µL) 1.3 ΜL
NBB140 F ATAATCGATACCATGGAAAATTTGAAGCATATT
NBB140 R TATGCGGCCGCATCCTGCTGATCTTCCTGTGC
2xFKBP F ATAGCGGCCGCAGGCGTCCAAGTCGAAACCATT
2xFKBP R TATGCGGCCGCTTCCAGTTTTAGAAGCTCCAC
Venüs F ATAGGGCCCACCATGGTGAGCAAGGGCGAG
Venüs R TATGAATTCTTACTTGTACAGCTCGTC
DNA polimeraz (2.5 U/µL) 1.0 ΜL
Distile deiyonize su (GKD2O) 39.9 ΜL
Toplam reaksiyon birim 50.0 ΜL
PCR Bisiklete binme parametreleri
1 döngüsü 94-98 ° C; 45 s
25 – 30 döngüleri 94-98 ° C; 45 s
58 ° C; 45 s
72 ° C; 1-2 dk
1 döngüsü 72 ° C; 10 dk

Tablo 1: NB PCR reaksiyon 140 -2xFV-Venüs Restriksiyon enzimi tabanlı pRetroX-TRE3G içinde klonlama için.

Table 2
Tablo 2: NMR spectra normalleştirilmiş dönüşümün veri gösteren şekil 5'te sunulan için ham veri toplanan ikinci NMR mıknatısa Hesaplanan Ortalama Açık ayraç durumuna. Bu tablo daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Movie 1
Film 1: Fast-kinetik necroptosis indüklenen NBB Oligomerizasyonda tarafından 140 -2xFV-Venüs mlkl- / - MEFs. NBB140hızlı translocation gösterilen confocal mikroskobu canlı-2xFV-Venüs sitozol'ten sonra FKBP etki zorunlu Oligomerizasyonda plazma zarı için. Hücreleri Şekil 1'de açıklandığı gibi tedavi edildi. Sarı: NBB140-2xFV-Venüs. Bu videoyu izlemek için lütfen buraya tıklayın. (İndirmek için sağ tıklatın.)

Movie 2
Movie 2: fast-kinetik necroptosis TIRF mikroskobu. Plazma zarı mlkl- / - NBB140ifade MEFs loş eklenmesi üzerine hızlı (~ 2 dk) relocalization ve MLKL agregasyon gösteren TIRF mikroskobu-2xFV-Venüs. Bu videoyu izlemek için lütfen buraya tıklayın. (İndirmek için sağ tıklatın.)

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

MLKL plazma zarı yırtılması24sözde cellat karıştığı için kombine teknikleri için iletişim kuralları sağlar. Necroptosis MLKL-aracılı düzenleyen yasal ağ deşifre ek olarak, bu tekniklerin uygun diğer biyolojik sistemleri tanımlamak için bağımsız olarak kullanılabilir. Pratik olarak konuşursak, bu teknikleri orta-düşük verimi keşif araçları vardır.

Biz düzenli olarak canlı hücre görüntüleme NBB140kullandık-2xFV-Venüs-aracılık necroptosis ve mechanistically necroptosis mutagenesis ve küçük molekül kimyasal kullanarak MLKL Yönetmelikte incelemek için diğer MLKL yapıları tarafından indüklenen sondalar. Özellikle, biz ve diğer gruplar bu insan göstermiştir ve NBB en az bölge içeren fare yapıları MLKL, necroptosis insan ve fare hücre hatları aracılık. Bir necroptosis MLKL-aracılı yöneten bilmeniz gereken türler özgüllük ters yönde stimülasyon TNF, şaplak atmak mimetics ve caspase inhibisyon kombinasyonu tarafından gözlenen türler arasında olan engeller RIPK3 ve MLKL etkileşim bildirilir 25,35,36. Buna göre insan ve RIPK3 fare ve MLKL proteinler altında bu koşullar25,35,36cross-react değil. Türler arası kısıtlamaları bypass için biz insan MLKL etkinleştirmek veya Oligomerizasyonda kaset burada gösterildiği gibi kullanın NBB140için mutasyonlar tanıtmak-2xFV-Venüs24. İnsan NBB140 için inhibitör bölge tutar ve bu nedenle NBB140bağlamında devre dışı kalır bir yapısı-2xFV-Venüs. 2xFV dimerization brace serbest bırakarak NBB140 etkinleştirmek için düşünülmektedir. Buna ek olarak, bu oluşumu kendiliğinden24oligomerize mümkün olduğundan insan NBB182 Oligomerizasyonda, yokluğunda bile necroptosis neden olmaktadır. Ayrıca, mutantlar (R30A, R30E, E136A ve E136R) işaret tam uzunlukta insan MLKL bağlamında NB bölgede aktive üstesinden gelmek için harekete geçirmek ihtiyaç RIPK3 fosforilasyon24tarafından. Ayrıca, dimerizable insan RIPK3 yeniden (Cerulean-2xFV-RIPK3) ve Dox indüklenebilir tam uzunlukta insan MLKL-uyumlu ve sağlam ripk3- / - mlkl- / - MEFs24 necroptosis neden Venüs, . Diğerleri son ek mutasyonlar veya insan-fare etki alanı türler özgüllük engelleri25üstesinden MLKL yapıları takas ortaya.

Biz genellikle 96-şey levha birkaç aralığı bulma deneyler yaparak necroptosis tahlil koşulları optimize. Biz o zaman tamamlayıcı floresan aktif hücre (FACS) sıralama ile çoğullama için yeterli hücre ve western Blot analizleri daha sonra aynı örnekleri üzerinde gerçekleştirilen sağlayan 24-şey kaplamalar, en iyi duruma getirilmiş deneyler ile takip hemen son kez görüntüleme sonra gelin. Şu anda, canlı hücre görüntüleme birçok uygulama etiketleme olasılıklarını sınırlayan yeşil ve kırmızı floresans tespiti temel alır. Yeşil floresan boyalar bir ortak hücre geçirimsiz DNA'ya bağlanıcı floresan boya propidium (PI) iyodür alternatiftir. Çift renk görüntüleme cihazları necroptosis görüntüleme yardımcı programı ve bilgi içeriğini geliştirmek için tamamlayıcı kırmızı veya yeşil flüoresan proteinler ile bu boyalar kullanarak seçeneği sunuyoruz.

MLKL plazma zarı onun aktivasyon sonra translocate yeteneği yapar canlı mikroskobu seçim bu proteinin biyoloji çalışma tekniği ve gerçek zamanlı olarak morfolojik takip etmek temel necroptosis değiştirir. TIRF mikroskobu tümden MLKL protein toplamları plazma zarı üzerinde özellikle plazma zarı Co yerelleştirmek işaretleri huzurunda çalıştırıldığında giderir. LCK-C-RFP plazma zarı Co yerelleştirme24avans olarak kullanılır. Etiket proteinler ile farklı fluorophores, ilgi yetenek da aynı anda birkaç proteinler aynı sürecine dahil aktivite çalışmaya izin verir. Süper çözünürlük mikroskobu yeni nesil kısmen ve standart confocal mikroskobu kırınım sınırı sorunu üstesinden necroptosis MLKL-aracılı'nın ek özellikleri ortaya çıkarmak için bir potansiyele sahiptir.

Plazma zarı permeabilization necroptosis işaretlerinden biridir. Çeşitli teknikler dolaylı olarak ölçmek veya membran yırtığı belirtmek bile sadece EM MLKL tarafından uyarılan plazma zarı bütünlük içinde süreksizliklerin görselleştirebilirsiniz. TEM çözünürlüğü yüksek güç olsa da, SEM daha büyük örnek alanları eşleme yeteneği vardır. Bu özellik, veri, büyük hacim yönetimi yapmak yeni ve güçlü yazılım geliştirme ile kombine SEM yardımcı programında hücre morfolojisi karakterizasyonu geliştirmiştir. Ayrıca, SEM de iyon demeti odaklanmış gibi diğer sistemlerine birleştiğinde 3D imar izin ardışık örnek bölümler tarama yapabiliyor. Bazı sakıncaları EM analiz araçları ve bakım maliyeti, alanında son derece uzman personel ve önemli zaman yatırım gerekliliğini örnek işleme ve analiz içerir.

Nokta leke deneyleri aslında MLKL ve plazma membran fosfolipitler16,27arasında doğrudan bağlantı kurmak için kullanılmaktadır. Bizim lipid NMR tabanlı bağlama tahlil MLKL PIP2 seçim MLKL ligand vurgulama belirli fosfolipid bağlamadaki kesin olarak implicates. Sonuçlarımız asil zinciri doygunluk NBB156 bağlama phosphatidylinositol için zararlı etkisini göstermektedir. Bununla birlikte, nasıl MLKL bağlama PIP2ve potansiyel olarak diğer fosfolipitler, plazma zarı yırtılması kalır bilinmeyen sonuçlanır. Bu iletişim kuralını kullanan diğer fosfolipid bağlama için MLKL için test edilebilir. MLKL ve çeşitli ligandlar mutantlarla lipid bağlama özel katkılar kesin olarak belirlemek için kullanılabilir bizim tahlil MLKL aracılık necroptosis, ortaya çıkan modelleri sınamak için mükemmel bir araç olarak hizmet vermektedir. Ayrıca, bu diğer ilişkili Membran Sistemler için lipid bağlama profillerini sorgulamak için kullanılabilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Hiçbiri.

Acknowledgments

Hiçbiri.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cloning and cell line generation
pRetroX-TRE3G Clontech 631188
Tet-On transactivator plasmid Llambi et al., 2016
Mouse Embryonic Fibroblasts (MEFs) mlkl-/- Dillon et al., 2014
Blasticidin S Hydrochloride Thermo Fisher Scientific BP2647100 CAS#3513-03-9
Cell death quantification and live-cell microscopy
Doxycycline Clontech 631311 CAS# 24390-14-5
B/B Homodimerizer AP20187 Takara 635059 CAS# 195514-80-8
SYTOX Green Thermo Fisher Scientific S7020
Syto16 Thermo Fisher Scientific S7578
NMR
15 N Ammonium Chloride Cambridge Isotope Laboratories NLM-467-10 CAS# 12125-02-9
Deuterated DTT Cambridge Isotope Laboratories DLM-2622-1
Deuterium Oxide Sigma Aldrich 617385-1 CAS# 7789-20-0
n-Dodecyl-β-D-Maltopyranoside Anatrace D310 CAS# 69227-93-6
L-α-phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate (Brain, Porcine) (ammonium salt) Avanti Polar Lipids 840046X CAS# 383907-42-4
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoinositol (ammonium salt) (18:0 PI) Avanti Polar Lipids 850143 CAS# 849412-67-5
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-(1'-myo-inositol) (ammonium salt) (18:1) Avanti Polar Lipids 850149 CAS# 799268-53-4
Specialized Equipment
IncuCyte FLR or ZOOM Essen BioScience, Inc. Live-cell microscopy imaging
Helios NanoLab 660 DualBeam  Thermo Fisher Scientific Electron microscope
Software
IncuCyte 2011A Rev2 v20111.3.4288 (FLR) Essen BioScience, Inc. http://www.essenbioscience.com Imaging analysis
FEI MAPS Thermo Fisher Scientific https://www.fei.com/software/maps/ EM analysis
TopSpin v3.2 Bruker BioSpin http://www.bruker.com NMR data collection
CARA v1.9.1.7 http://cara.nmr.ch/  NMR data analysis
Slidebook 3i (Intelligent Imaging Innovations) https://www.intelligent-imaging.com/slidebook Confocal microscopy

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Weinlich, R., Oberst, A., Beere, H. M., Green, D. R. Necroptosis in development, inflammation and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 18 (2), 127-136 (2017).
  2. Kaiser, W. J., et al. RIP3 mediates the embryonic lethality of caspase-8-deficient mice. Nature. 471 (7338), 368-372 (2011).
  3. Murphy, J. M., et al. The pseudokinase MLKL mediates necroptosis via a molecular switch mechanism. Immunity. 39 (3), 443-453 (2013).
  4. Oberst, A., et al. Catalytic activity of the caspase-8-FLIP(L) complex inhibits RIPK3-dependent necrosis. Nature. 471 (7338), 363-367 (2011).
  5. Zhang, H., et al. Functional complementation between FADD and RIP1 in embryos and lymphocytes. Nature. 471 (7338), 373-376 (2011).
  6. He, S., et al. Receptor interacting protein kinase-3 determines cellular necrotic response to TNF-alpha. Cell. 137 (6), 1100-1111 (2009).
  7. Dondelinger, Y., Hulpiau, P., Saeys, Y., Bertrand, M. J. M., Vandenabeele, P. An evolutionary perspective on the necroptotic pathway. Trends in Cell Biology. 26 (10), 721-732 (2016).
  8. Newton, K., Manning, G. Necroptosis and Inflammation. Annual Review of Biochemistry. 85, 743-763 (2016).
  9. Kaiser, W. J., Upton, J. W., Mocarski, E. S. Viral modulation of programmed necrosis. Current Opinion in Virology. 3 (3), 296-306 (2013).
  10. Newton, K., et al. RIPK3 deficiency or catalytically inactive RIPK1 provides greater benefit than MLKL deficiency in mouse models of inflammation and tissue injury. Cell Death & Differentiation. 23 (9), 1565-1576 (2016).
  11. Kearney, C. J., Martin, S. J. An Inflammatory Perspective on Necroptosis. Molecular Cell. 65 (6), 965-973 (2017).
  12. Pasparakis, M., Vandenabeele, P. Necroptosis and its role in inflammation. Nature. 517 (7534), 311-320 (2015).
  13. Sun, L., Wang, X. A new kind of cell suicide: mechanisms and functions of programmed necrosis. Trends in Biochemical Sciences. 39 (12), 587-593 (2014).
  14. Grootjans, S., Vanden Berghe, T., Vandenabeele, P. Initiation and execution mechanisms of necroptosis: an overview. Cell Death & Differentiation. 24 (7), 1184-1195 (2017).
  15. Sun, L., et al. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase. Cell. 148 (1-2), 213-227 (2012).
  16. Wang, H., et al. Mixed lineage kinase domain-like protein MLKL causes necrotic membrane disruption upon phosphorylation by RIP3. Molecular Cell. 54 (1), 133-146 (2014).
  17. Cai, Z., et al. Plasma membrane translocation of trimerized MLKL protein is required for TNF-induced necroptosis. Nature Cell Biology. 16 (1), 55-65 (2014).
  18. Chen, X., et al. Translocation of mixed lineage kinase domain-like protein to plasma membrane leads to necrotic cell death. Cell Research. 24 (1), 105-121 (2014).
  19. Dillon, C. P., et al. RIPK1 blocks early postnatal lethality mediated by caspase-8 and RIPK3. Cell. 157 (5), 1189-1202 (2014).
  20. Rickard, J. A., et al. RIPK1 regulates RIPK3-MLKL-driven systemic inflammation and emergency hematopoiesis. Cell. 157 (5), 1175-1188 (2014).
  21. Kaiser, W. J., et al. Toll-like receptor 3-mediated necrosis via TRIF, RIP3, and MLKL. Journal of Biological Chemistry. 288 (43), 31268-31279 (2013).
  22. Upton, J. W., Kaiser, W. J. DAI Another Way: Necroptotic Control of Viral Infection. Cell Host & Microbe. 21 (3), 290-293 (2017).
  23. Tanzer, M. C., et al. Necroptosis signalling is tuned by phosphorylation of MLKL residues outside the pseudokinase domain activation loop. Biochemical Journal. 471 (2), 255-265 (2015).
  24. Quarato, G., et al. Sequential Engagement of Distinct MLKL Phosphatidylinositol-Binding Sites Executes Necroptosis. Molecular Cell. 61 (4), 589-601 (2016).
  25. Davies, K. A., et al. The brace helices of MLKL mediate interdomain communication and oligomerisation to regulate cell death by necroptosis. Cell Death & Differentiation. , (2018).
  26. Su, L., et al. A plug release mechanism for membrane permeation by MLKL. Structure. 22 (10), 1489-1500 (2014).
  27. Dondelinger, Y., et al. MLKL compromises plasma membrane integrity by binding to phosphatidylinositol phosphates. Cell Reports. 7 (4), 971-981 (2014).
  28. Llambi, F., et al. BOK Is a Non-canonical BCL-2 Family Effector of Apoptosis Regulated by ER-Associated Degradation. Cell. 165 (2), 421-433 (2016).
  29. Malkani, N., Schmid, J. A. Some secrets of fluorescent proteins: distinct bleaching in various mounting fluids and photoactivation of cyan fluorescent proteins at YFP-excitation. PLoS One. 6 (4), 18586 (2011).
  30. Perez, A. J., et al. A workflow for the automatic segmentation of organelles in electron microscopy image stacks. Frontiers in Neuroanatomy. 8, 126 (2014).
  31. Walton, J. Lead aspartate, an en bloc contrast stain particularly useful for ultrastructural enzymology. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 27 (10), 1337-1342 (1979).
  32. Denk, W., Horstmann, H. Serial block-face scanning electron microscopy to reconstruct three-dimensional tissue nanostructure. PLoS Biology. 2 (11), 329 (2004).
  33. Rossi, P., Xia, Y., Khanra, N., Veglia, G., Kalodimos, C. G. 15N and 13C- SOFAST-HMQC editing enhances 3D-NOESY sensitivity in highly deuterated, selectively [1H,13C]-labeled proteins. Journal of Biomolecular NMR. 66 (4), 259-271 (2016).
  34. Keller, R. The computer aided resonance assignment tutorial. Cantina Verlag. , (2004).
  35. Chen, W., et al. Diverse sequence determinants control human and mouse receptor interacting protein 3 (RIP3) and mixed lineage kinase domain-like (MLKL) interaction in necroptotic signaling. Journal of Biological Chemistry. 288 (23), 16247-16261 (2013).
  36. Tanzer, M. C., et al. Evolutionary divergence of the necroptosis effector MLKL. Cell Death & Differentiation. 23 (7), 1185-1197 (2016).

Tags

Biyoloji sayı 138 Necroptosis karışık soy kinased etki alanı gibi (MLKL) plazma zarı permeabilization canlı-cep mikroskobu elektron mikroskobu NMR spektroskopisi phosphoinositides
Necroptosis MLKL-aracılı plazma zarı kopma karakterizasyonu
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

McNamara, D. E., Quarato, G., Guy,More

McNamara, D. E., Quarato, G., Guy, C. S., Green, D. R., Moldoveanu, T. Characterization of MLKL-mediated Plasma Membrane Rupture in Necroptosis. J. Vis. Exp. (138), e58088, doi:10.3791/58088 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter