Este estudio se llevó a cabo de acuerdo con los principios éticos de la Declaración de Helsinki y las normativas institucionales que rigen la investigación en humanos. El estudio se llevó a cabo conforme a los principios éticos de la Declaración de Helsinki y fue aprobado por el Comité de Ética del Hospital Popular de Xingtai, Departamento de Dermatología (ID de aprobación: 2021[029]). Todos los participantes proporcionaron un consentimiento informado por escrito antes de participar.
Selección de pacientes
Un total de 232 pacientes diagnosticados clínicamente con vitíligo fueron inscritos en un periodo de 3 años, desde enero de 2021 hasta diciembre de 2023. A todos los participantes se les diagnosticó vitíligo no segmentario (tipo generalizado o localizado) y se clasificaron como estables o progresivos en función de la ausencia o presencia de nuevas lesiones en los 3 meses previos a la inscripción. La duración de la enfermedad y la distribución de las lesiones se registraron al inicio. Los criterios de inscripción incluyeron a personas de entre 18 y 65 años con vitiligo estable o progresivo confirmado por dermatólogos mediante examen clínico, iluminación con lámpara de Wood y dermoscopia. Los criterios de exclusión fueron embarazo, lactancia, trastornos fotoalérgicos, enfermedades autoinmunes sistémicas, disfunción hepática o renal severa y uso previo de corticosteroides sistémicos, inmunosupresores o fototerapia en un plazo de 3 meses. Todos los procedimientos se realizaron bajo supervisión ética continua, garantizando la comodidad y la seguridad del paciente durante todo el tratamiento.
Resumen del estudio y flujo de trabajo del tratamiento
El flujo de trabajo general del estudio, incluyendo la inscripción de pacientes, la asignación de grupos, las evaluaciones de seguimiento y el análisis de biomarcadores, se ilustra en la Figura 1. Los participantes elegibles fueron asignados en una proporción de 1:1 a uno de dos grupos de estudio paralelos: el grupo de monoterapia con láser excímero de 308 nm (solo láser excimer; n = 116) y el grupo de terapia combinada (láser excímero de 308 nm más matrina oral; n = 116). La asignación de grupos se realizó utilizando una secuencia aleatoria generada por ordenador preparada por un miembro independiente del personal investigador que no participó en la evaluación de resultados; Las asignaciones se colocaban en sobres sellados numerados secuencialmente y se abrían tras la inscripción para determinar la asignación del tratamiento. El flujo de trabajo terapéutico consistió en tres fases principales: (1) evaluación y documentación basal, (2) 12 semanas de tratamiento activo según el régimen asignado, y (3) evaluación posterior al tratamiento, incluyendo pruebas de laboratorio de inmunoglobulinas séricas y citocinas inflamatorias. Cada paciente recibió un plan de atención estandarizado, intervalos de seguimiento idénticos y procedimientos uniformes de análisis de laboratorio. Las fotografías clínicas y la puntuación de VASI fueron realizadas por dermatólogos cegados ante la asignación de tratamientos. Todos los procedimientos se realizaron en la sala de fototerapia dermatológica del Hospital Popular de Xingtai bajo condiciones ambientales controladas (temperatura ambiente 22–24 °C, humedad relativa 40%–60%).
Preparación del área de tratamiento
Antes de cada sesión con láser, las zonas despigmentadas del objetivo se limpiaban suavemente con solución fisiológica estéril y se secaban con gasas médicas sin pelusa. Se inspeccionó la piel lesional para confirmar la ausencia de infección, excoriación o formación. Cuando se trató más de una lesión en una sola visita, cada lesión se preparó y trató de forma secuencial. Las lesiones que superaban un solo campo de irradiación se subdividían en campos de irradiación adyacentes, y la piel normal circundante se protegía con una lámina opaca bloqueante de rayos UV para cada campo para minimizar la exposición innecesaria. Se indicó a los pacientes que evitaran agentes tópicos, cosméticos fotosensibilizantes o perfumes durante 24 horas antes del tratamiento. Durante todo el procedimiento, tanto el paciente como el operador llevaron gafas protectoras.
Procedimiento de irradiación láser excímero de 308 nm
Se utilizó un sistema láser excímero monocromático de cloruro de xenón (XeCl) de 308 nm. Todas las sesiones con láser fueron realizadas por dos médicos dermatológicos formados bajo un protocolo estandarizado para garantizar una salida de energía consistente, distancia de irradiación y reproducibilidad. La salida del dispositivo se verificó con un medidor de potencia UV calibrado antes de cada día de tratamiento, y todos los sistemas fueron calibrados semanalmente por un técnico certificado para mantener un margen de error inferior al ±5%. Antes de la primera irradiación, la dosis mínima de eritema (MED) para cada paciente se determinaba aplicando dosis incrementales (100–400 mJ/cm 2) en pequeñas áreas de prueba en el antebrazo interno y evaluando la respuesta del eritema tras 24 horas; los resultados se fotografiaban y registraban en las historias clínicas de los pacientes. En la Tabla Suplementaria 1 se proporciona una documentación representativa de la MED y una tabla de ajuste de dosis sesión por sesión. La MED se definió como la dosis de prueba más baja que produce un eritema uniforme y claramente discernible a las 24 horas. La dosis inicial del tratamiento se estableció en el 80%–90% de la MED individual, y los cambios de dosis posteriores siguieron un algoritmo predefinido basado en la respuesta al eritema de 24 horas de la sesión previa (aumento entre un 10% y un 20% para eritema ausente o leve, mantenimiento de la misma dosis para eritema moderado y reducción entre un 10% y un 20% para ampollas o dolor significativo). La dosis terapéutica inicial se estableció en 150–250 mJ/cm2 (aproximadamente entre el 80% y el 90% de la MED individual). Cada sesión comenzaba con el paciente sentado cómodamente en una silla ajustable. La pieza láser se mantenía perpendicular (90°) a la piel a una distancia de 10–15 cm, y los campos de irradiación circulares o rectangulares se alineaban para cubrir completamente las áreas despigmentadas con una superposición mínima. La irradiación duraba entre 1 y 3 segundos por campo de exposición, dependiendo de la fluidez. Las dosis se incrementaron posteriormente entre un 10% y un 20% por sesión según la respuesta previa al eritema; Si se produjo eritema moderado, se mantuvo la dosis anterior, mientras que las ampollas o el dolor requirieron una reducción del 10%–20%. La dosis máxima no superó los 2.000 mJ/cm2. Cada sesión cubría todas las lesiones visibles y duraba entre 10 y 20 minutos, dependiendo de la extensión. Los tratamientos se realizaron dos veces por semana, con al menos 72 horas entre sesiones durante un periodo total de 12 semanas (24 sesiones). Tras la irradiación, se aplicó una fina capa de gel estéril a base de aloe para aliviar el eritema local. Se indicó a los pacientes que evitaran la exposición al sol durante 48 horas y que usaran un protector solar de amplio espectro (SPF >30) durante todo el tratamiento. Las lesiones que mostraban una repigmentación del >50% continuaron bajo los mismos parámetros hasta lograr una pigmentación estable.
Administración de la matrina oral
En el grupo combinado, se preparó un extracto acuoso estéril de raíces de Sophora flavescens conforme a la Farmacopea China (edición 2020)30 y se estandarizó a una concentración de 5 mg/mL con pureza del ≥98%, verificada mediante cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC). La solución se almacenaba a 4 °C en botellas de vidrio ámbar para evitar la fotodegradación. Las pruebas aleatorias por lotes confirmaron la concentración de alcaloides (5 ± 0,3 mg/mL) y la esterilidad microbiana. Cada paciente recibió la solución matrina por administración oral a una dosis de 0,3 g (60 mL) dos veces al día durante 12 semanas, sincronizada con el programa de tratamiento con láser. La dosis se seleccionó basándose en datos farmacológicos previos que demostraban una inmunomodulación eficaz con un perfil de seguridad favorable en dermatosis inflamatoriascrónicas 31,32. Se indicó a los pacientes que tomaran la solución 30 minutos después de las comidas para minimizar las molestias gastrointestinales y evitar el alcohol, el té fuerte y la comida picante durante la terapia para reducir la carga hepática. Las náuseas o fatiga leves se controlaban administrando una pequeña cantidad de agua tibia. La adherencia al tratamiento se evaluó mediante un diario de medicación y verificación de devolución de botellas en cada visita de seguimiento. La seguridad se evaluó en cada visita mediante una investigación estructurada de síntomas y documentación de eventos adversos, incluyendo molestias gastrointestinales, fatiga y cualquier signo que sugiriera intolerancia hepática. No se permitieron medicamentos sistémicos adicionales, corticosteroides tópicos ni inmunosupresores durante el periodo de observación para prevenir efectos de confusión.
Evaluación de la respuesta clínica
Los cambios de pigmentación fueron evaluados al inicio y en las semanas 4, 8 y 12 por dos dermatólogos experimentados, cegados a la información del tratamiento. Las fotografías digitales estandarizadas se tomaron con idénticos ajustes de iluminación y cámara (distancia 60 cm, exposición 1/60 s, ISO 200). El grado de repigmentación se cuantificó utilizando el Índice de Puntuación de Área del Vitíligo (VASI). Las lesiones se clasificaron además en cuatro categorías: Excelente (≥75% de repigmentación), Buenas (50%–74%), Moderadas (25%–49%), Malas (<25%). Los pacientes también completaron una Escala Visual Analógica (VAS) de 10 puntos para la satisfacción y el alivio de los síntomas. En cada visita se documentaron eventos adversos como eritema, ardor, prurito, ampollas e hiperpigmentación.
Recogida de muestras de suero
Para el análisis de biomarcadores, se recogió sangre periférica en ayunas (5 mL) de cada paciente al inicio y al final de la semana 12 utilizando tubos de separación sérica. Las muestras se dejaron coagular durante 30 minutos a temperatura ambiente y centrifugaron a 800 x g durante 10 minutos a 4 °C. El suero sobrenadante se alicitó en 0,5 mL crioviales y se almacenó a −80 °C hasta el análisis. Todas las muestras se procesaron en un plazo de 2 horas tras la recogida para minimizar la degradación de las citocinas.
Cuantificación de inmunoglobulinas séricas
Las concentraciones séricas de IgG, IgA e IgM se determinaron mediante inmunonefelometría automatizada siguiendo las instrucciones del fabricante. Las curvas de calibración se prepararon utilizando diluciones en serie de estándares de referencia. Cada ensayo incluía sueros de control de calidad en concentraciones altas y bajas. Las mediciones se expresaron en g/L y se repitieron 2 veces para asegurar una variación intraensayadora < el 5%. La precisión y calibración del instrumento se verificaban diariamente utilizando estándares de control rastreables. Los resultados se registraron electrónicamente y revisaron dos técnicos independientes cegados a la información del paciente.
Medición de citocinas inflamatorias
El perfilado de citocinas incluyó IFN-γ, TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-17 e IL-10, cuantificado mediante una plataforma multiplex de ensayo inmunoenzimático ligado a enzimas (ELISA). La preparación del reactivo siguió el protocolo estándar del fabricante. Brevemente, se añadieron 100 μL de suero diluido a cada pozo recubierto de anticuerpos y se incubaron durante 2 horas a 37 °C. Tras lavarse con solución salina tamponada con fosfato que contenía 0,05% Tween-20 (PBST), se añadieron 100 μL de anticuerpo de detección biotinilado e incubaron durante 1 hora. Los pozos se incubaron con estreptavidina-peroxidasa de rábano picante durante 30 minutos, seguidos de un revelado del color usando sustrato de tetrametilbenzidina (TMB) durante 10 minutos en la oscuridad. La reacción se detuvo con 50 μL de ácido sulfúrico de 2 mol/L, y la absorbancia se midió a 450 nm usando un lector de microplacas. Se generaron curvas estándar a partir de diluciones seriadas de citocinas recombinantes, y las concentraciones se expresaron como pg/mL. Todas las muestras se midieron en duplicado. Para asegurar la reproducibilidad, el coeficiente de variación (CV) entre ensayos se mantuvo por debajo del 10%. Los pozos en blanco contenían tampón de ensayo sin suero, y los pozos de control negativos contenían matriz libre de citocinas procesada idénticamente a las muestras y equivalente al estándar 0 pg/mL para confirmar la especificidad del ensayo. Cualquier muestra hemolizada o lipépica fue excluida del análisis final.
Análisis estadístico
Los datos se introducían en una base de datos electrónica dedicada y se verificaban para garantizar su exactitud por dos gestores de datos independientes. El tamaño de la muestra se estimó en función del tamaño del efecto esperado (d de Cohen = 0,5) con α = 0,05 y potencia (1–β) = 0,8, dando un mínimo de 100 participantes por grupo. Para controlar múltiples comparaciones entre citocinas, se aplicó la corrección de Bonferroni cuando fue apropiado. Se aplicó regresión lineal multivariante cuando fue necesario para ajustar posibles factores de confusión, incluyendo edad, sexo, duración de la enfermedad y área basal de la lesión. La distribución normal de variables continuas se verificó mediante la prueba de Shapiro–Wilk. Las estadísticas descriptivas se presentaron como media ± desviación estándar (DS) para datos normalmente distribuidos o como mediana (rango intercuartíl, IQR) para datos sesgados. Los cambios antes y después del tratamiento se analizaron mediante pruebas t pareadas, mientras que las comparaciones entre grupos se analizaron con pruebas t de muestra independiente o pruebas U de Mann–Whitney según correspondá. Los datos categóricos se compararon con el qui-cuadrado o la prueba exacta de Fisher. Se evaluaron las correlaciones entre los niveles de citocinas, inmunoglobulinas y la mejora de la pigmentación utilizando el coeficiente de correlación de Pearson. Todos los análisis se realizaron con SPSS v26.0 (RRID: SCR_002865), y se consideró estadísticamente significativo un < p bilateral de 0.05.