Waiting
Procesando inicio de sesión ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Encyclopedia of Experiments
Encyclopedia of Experiments: Biology

Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Zebrafish Optogentics

 
Click here for the English version

Zebrafish Optogentics: Ativando neurônio somatossensorial geneticamente modificado para estudar respostas comportamentais larvais

Article

Transcript

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the English version.

- Em larvas de zebrafish, um estímulo visual pode ativar neurônios somatosensoriais e desencadear uma resposta de fuga. Existem dois tipos de neurônios encontrados nos neurônios larva, trigeminal e Rohon-Beard. Podemos manipular a atividade desses neurônios modificando-os para expressar canais de íons transgênicos sensíveis à luz.

Para realizar esta técnica, monte uma larva transgênica com o lado dorsal voltado para cima em gel de agarose e coloque-a sob um microscópio dissecando. Use uma lâmina de barbear para desprender uma porção em forma de cunha de agarose ao redor da gema e cauda. Preencha esta área com água de ovo.

Posicione a ponta de um cabo óptico perto do tronco onde está localizado o corpo celular do neurônio Rohon-Beard. Entregue um pulso de luz laser azul. Após a exposição à luz azul, os canais de íons transgênicos sensíveis à luz na membrana do neurônio se abrem, permitindo que íons entrem, desencadeando um potencial de ação que provoca a resposta de fuga. Regisse o comportamento da larva usando uma câmera de alta velocidade.

No protocolo de exemplo, montaremos as larvas para ativar o neurônio Rohon-Beard, expressando uma variante channelrhodopsin e observar a resposta comportamental.

- Faça 1,5% de baixa derretimento em água dupla destilada e armazene em um bloco de calor de 42 graus Celsius para evitar que se solidifique. Usando uma pipeta Pasteur de vidro, transfira uma das larvas pré-tela para um tubo de 1,5% de baixa derretimento com o menor calírio azul possível.

Sob um microscópio dissecando, posicione o lado dorsal da larva para cima. Quando a agarose for solidificada, use uma lâmina de barbear fina para cortar a ágarose de ambos os lados da larva. Preencha a área ao redor da ágarose com água azul de embrião.

Em seguida, faça dois cortes diagonais de ambos os lados da gema, tomando cuidado para não cortar a larva.

Agora, monte a câmera de alta velocidade no escopo de dissecação e conecte a câmera ao computador. Em seguida, ligue o computador e a câmera de alta velocidade. Abra o software de imagem de vídeo e ajuste as configurações da câmera. Em seguida, conecte o cabo óptico, o laser e o estimulador juntos.

Em seguida, use o microscópio de dissecação fluorescente para posicionar a ponta do cabo óptico perto de um corpo de célula de neurônio com expressão ChEF-tdTomato. Entregue um pulso de luz azul para ativar o neurônio sensorial. Em seguida, registe as respostas usando uma câmera de alta velocidade fixada em 500 ou 1.000 quadros por segundo e repita os experimentos com pelo menos 1 minuto entre ativações para evitar a habituação.

Para liberar a larva, retire a agarose com fórceps e tenha cuidado para não ferir o animal. Em seguida, transfira-o para água de embrião azul fresco. Os animais podem ser autorizados a se desenvolver ainda mais, e o procedimento pode ser repetido em estágios mais antigos.

Tags

Valor vazio emissão
Read Article

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter