Name: A preclínicos modelo murino de metástasis hepática (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Aprende a establecer un modelo preclínico de metástasis hepática en ratones mediante inyección hemesplénica con células tumorales pancreáticas. Este método permite estudiar la progresión metastásica y evaluar nuevas terapias contra el cáncer.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

KF y KO son co primeros autores, junto con KS Este trabajo fue apoyado en parte por el AHPBA Fellowship (KS), NIH K23 CA148964-01 (LZ), la Escuela de Medicina Johns Hopkins premio Clinical Scientist (LZ), Fundación Viragh y el Centro de Cáncer Skip Viragh pancreático en la Universidad Johns Hopkins (EMJ y LZ), la Fundación Nacional de Páncreas (LZ), la Fundación Lefkofsky Familia (LZ), el NCI SPORE en Gastrointestinal Cánceres P50 CA062924 (EMJ, LZ), la Fundación Lustgarten (LZ), y las subvenciones del Centro de Cáncer Sol Goldman pancreático (KS , BHE, LZ).

Todos los experimentos con animales se ajustaban a las directrices del Comité para el Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Johns Hopkins, y los animales fueron mantenidos de acuerdo con las directrices de la Asociación para la Evaluación y Acreditación de Cuidado de Laboratorio (AAALAC). El procedimiento quirúrgico se realiza bajo condiciones estériles en un quirófano que sufre un mínimo de quince cambios de aire por hora. Todos los instrumentos son esterilizados en autoclave antes del procedimiento y de nuevo con etanol al 70% entre cada ratón durante el procedimiento. Todos los ratones que no llegará a la intervención quirúrgica son sacrificados bajo CO 2 durante 3 minutos seguido por dislocación cervical, mientras que todavía en la anestesia. 1. Preparación de la célula <ol><li> Resuspender las células cultivadas en Panc02 fosfato salino tamponado a 2 x10 7 células / ml, y mantener en hielo. </li></ol> 2. Preparación Ratón <ol><li> Administrar ketaminae (100 mg / kg) mezclado con xilazina (10 mg / kg) por vía intraperitoneal a 8-12 semanas de edad C57BL / 6 ratones hembra en dosis divididas. </li><li> Compruebe que la punta retirada pizca reflejo se abolió para asegurarse de que el ratón esté totalmente anestesiado. </li><li> Administrar dosis adicionales de ketamina (100 mg / kg) mezclado con xilazina (10 mg / kg) según sea necesario para anestesiar totalmente los ratones. </li><li> Aplicar Puralube Vet Ungüento para los ojos de los ratones para que no se seque mientras que los ratones están bajo anestesia. </li><li> Afeitar el área quirúrgica de los ratones para evitar la contaminación de la herida. </li><li> Preparar el área subcostal izquierdo de la incisión con etanol al 70% y luego yodo. </li><li> Coloque un paño quirúrgico alrededor del abdomen para mantener la esterilidad. </li></ol> 3. laparotomía <ol><li> Hacer una incisión subcostal izquierda en línea con el oído izquierdo a través de la piel y a través del peritoneo usando un escalpelo. </li><li> Expresar el bazo a través de la incisión aplicando p digitales simultánearesión a lo largo de los aspectos craneal y caudal de la incisión. </li><li> Localizar los vasos sanguíneos esplénicos en el extremo inferior del bazo. </li><li> Divida el bazo mediante la colocación de dos medianas clips de ligadura Horizon en el centro del bazo teniendo cuidado de no dañar los vasos sanguíneos del bazo en los polos del bazo. </li><li> Coloque el polo superior del bazo de nuevo en el peritoneo para evitar la contaminación. </li></ol> Inyección 4. Tumor <ol><li> Elaborar 150 l de solución salina tamponada con fosfato en un 26 T x 5/8 &quot;de la jeringa. </li><li> Elaborar 100 l de Panc02 (2 x10 6 células) en la misma jeringa manteniendo la jeringa en posición vertical en todo momento durante la inyección. </li><li> Sumergir la aguja en una solución de etanol al 70%. La aguja se sumerge en etanol al 70% para asegurar la esterilidad. </li><li> Inyectar las células lentamente en el hemispleen expuesta asegurándose la jeringa se mantiene en posición vertical en todo momento. El bisel de la Syringe debe observarse en todo momento a través de la cápsula esplénica para evitar la inyección de las células en el bazo. Un blanqueamiento del bazo y los vasos sanguíneos se debe observar después de la inyección. </li><li> Elevar el bazo y aplicar un medio Horizonte clip debajo del bazo para ocluir los vasos sanguíneos esplénicos. </li><li> Aplicar un pequeño clip Horizonte al aspecto más distal del páncreas y vasos esplénicos. </li><li> Ligar el páncreas y los vasos esplénicos de la hemispleen cortando por encima de los clips Horizon. </li><li> Coloca el ratón en su &#39;lado, y el riego de la incisión con agua destilada. </li></ol> 5. abdominal Clausura y recuperación de la anestesia <ol><li> Cierre del peritoneo con una puntada 4-0 consecutivo. </li><li> Aplicar una a dos clips de la piel para cerrar la incisión de la piel. </li><li> Administrar 0,1 mg / kg de buprenorfina o 5-10 mg / kg por vía subcutánea Carprofeno para aliviar el dolor post quirúrgico. </li><li> Coloca el ratón sobre una almohadilla térmica para recovery hasta móvil y el ratón demuestra patrones de respiración regulares. Los animales sólo se devuelven a la compañía de otros animales después de recuperarse plenamente de la intervención quirúrgica. </li></ol> 6. Necropsia Examen y cosecha del Hígado <ol><li> Entre 30 y 60 días después de la cirugía, los ratones comienzan a mostrar síntomas clínicos de metástasis y requerirán la eutanasia. Los signos de la enfermedad metastásica que requieren eutanasia humanitaria incluyen abdómenes agrandados y el desarrollo de ascitis. La eutanasia a los ratones por inhalación de CO 2. </li><li> Después de la inhalación, realice dislocación cervical. </li><li> Después de que el animal ha sido determinado que no responde, hacer una incisión a través del peritoneo para exponer el abdomen usando tijeras. </li><li> El uso de pinzas y tijeras, corte suavemente el hígado fuera del abdomen. </li><li> Coloque el hígado en compuesto OCT, y flash congelar con nitrógeno líquido. Guarde el hígado a -80 ° C. Alternativamente, el vivor puede fijarse en 16% neutros formalina tamponada a temperatura ambiente durante 24 horas y embebidos en parafina. </li></ol>

<ol><li>American Cancer Society. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Cancer+Facts+%26+Figures%22">Cancer Facts & Figures</a>. , American Cancer Society. Atlanta. (2013).</li>
<li>Clark, C. E., Beatty, G. L., Vonderheide, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunosurveillance+of+pancreatic+adenocarcinoma%3A+insights+from+genetically+engineered+mouse+models+of+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+letters%22%5BJournal%5D)">Immunosurveillance of pancreatic adenocarcinoma: insights from genetically engineered mouse models of cancer.</a> Cancer letters. 279, 1-7 (2009).</li>
<li>Rhim, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EMT+and+dissemination+precede+pancreatic+tumor+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">EMT and dissemination precede pancreatic tumor formation.</a> Cell. 148, 349-361 (2012).</li>
<li>Frese, K. K., Tuveson, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maximizing+mouse+cancer+models%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Maximizing mouse cancer models.</a> Nature reviews. Cancer. 7, 645-658 (2007).</li>
<li>Corbett, T. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+and+chemotherapeutic+response+of+two+transplantable+ductal+adenocarcinomas+of+the+pancreas+in+C57BL%2F6+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Induction and chemotherapeutic response of two transplantable ductal adenocarcinomas of the pancreas in C57BL/6 mice.</a> Cancer research. 44, 717-726 (1984).</li>
<li>Leao, I. C., Ganesan, P., Armstrong, T. D., Jaffee, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+depletion+of+regulatory+T+cells+allows+the+recruitment+of+mesothelin-specific+CD8+T+cells+to+the+antitumor+immune+response+against+a+mesothelin-expressing+mouse+pancreatic+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+and+translational+science%22%5BJournal%5D)">Effective depletion of regulatory T cells allows the recruitment of mesothelin-specific CD8 T cells to the antitumor immune response against a mesothelin-expressing mouse pancreatic adenocarcinoma.</a> Clinical and translational science. 1, 228-239 (2008).</li>
<li>Jain, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+effect+of+a+granulocyte-macrophage+colony-stimulating+factor-transduced+tumor+vaccine+and+systemic+interleukin-2+in+the+treatment+of+murine+colorectal+cancer+hepatic+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+surgical+oncology%22%5BJournal%5D)">Synergistic effect of a granulocyte-macrophage colony-stimulating factor-transduced tumor vaccine and systemic interleukin-2 in the treatment of murine colorectal cancer hepatic metastases.</a> Annals of surgical oncology. 10, 810-820 (2003).</li>
<li>Yoshimura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+targeting+of+antitumor+immune+responses+with+engineered+live-attenuated+Listeria+monocytogenes%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Selective targeting of antitumor immune responses with engineered live-attenuated Listeria monocytogenes.</a> Cancer research. 66, 1096-1104 (2006).</li>
<li>Yoshimura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+attenuated+Listeria+monocytogenes+effectively+treats+hepatic+colorectal+cancer+metastases+and+is+strongly+enhanced+by+depletion+of+regulatory+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+research%22%5BJournal%5D)">Live attenuated Listeria monocytogenes effectively treats hepatic colorectal cancer metastases and is strongly enhanced by depletion of regulatory T cells.</a> Cancer research. 67, 10058-10066 (2007).</li>
<li>Olino, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor-associated+antigen+expressing+Listeria+monocytogenes+induces+effective+primary+and+memory+T-cell+responses+against+hepatic+colorectal+cancer+metastases%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+surgical+oncology%22%5BJournal%5D)">Tumor-associated antigen expressing Listeria monocytogenes induces effective primary and memory T-cell responses against hepatic colorectal cancer metastases.</a> Annals of surgical oncology. 19, Suppl 3. 597-607 (2012).</li>
<li>Hingorani, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trp53R172H+and+KrasG12D+cooperate+to+promote+chromosomal+instability+and+widely+metastatic+pancreatic+ductal+adenocarcinoma+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+cell%22%5BJournal%5D)">Trp53R172H and KrasG12D cooperate to promote chromosomal instability and widely metastatic pancreatic ductal adenocarcinoma in mice.</a> Cancer cell. 7, 469-483 (2005).</li>
<li>Marion, A., Aoudi, W., Basarab, A., Delachartre, P., Vray, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+flow+evaluation+in+high-frequency%2C+40+MHz+imaging%3A+a+comparative+study+of+four+vector+velocity+estimation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasonics%22%5BJournal%5D)">Blood flow evaluation in high-frequency, 40 MHz imaging: a comparative study of four vector velocity estimation methods.</a> Ultrasonics. 50, 683-690 (2010).</li>
<li>Zheng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tyrosine+23+phosphorylation-dependent+cell-surface+localization+of+annexin+A2+is+required+for+invasion+and+metastases+of+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Tyrosine 23 phosphorylation-dependent cell-surface localization of annexin A2 is required for invasion and metastases of pancreatic cancer.</a> PloS one. 6, e19390(2011).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflicto de interés relevante para revelar.

Este modelo murino preclínica de la metástasis del cáncer de páncreas al hígado a través de una técnica de inyección hemispleen es el primer modelo descrito que refleja muchas de las condiciones clínicas e inmunológicas de los pacientes con enfermedad metastásica en el hígado. Este modelo ofrece varias ventajas sobre otros modelos murinos. En primer lugar, a diferencia de modelos transgénicos de cáncer de páncreas en la que sólo el 30% de los ratones desarrollan metástasis en el hígado y el momento de la formación de me...

Adenocarcinoma ductal pancreático (PDA) es la cuarta causa principal de muertes relacionadas con el cáncer en los Estados Unidos 1. La supervivencia de cinco años para los pacientes con PDA metastásico es 2-12% 1. Aunque la quimioterapia adyuvante y neoadyuvante para el cáncer de páncreas es hoy más eficaz que nunca, sigue existiendo una necesidad desesperada de nuevas terapias. El desarrollo de nuevas terapias requiere modelos animales preclínicos fiables. Aunque los modelos de tumores subcutáneos son sencillos de usar, inconvenientes incluyen la incapacidad de estos tumores y metástasis a imitar la progresión tumoral y microambientes visto en los cánceres humanos. Modelos de ingeniería genética, tales como el ratón ingeniería genética que contiene Kras y p53 knock-in mutaciones oncogénicas (el modelo KPC) 2 y el modelo KPC con un trazador de linaje YFP (el modelo PKCY 3) permiten el estudio de tumores que ocurren naturalmente en immunocompeteratones NT. Además, el microambiente tumoral se altera y se asemeja más estrechamente a la observada en la progresión tumoral humano. Por desgracia, el calendario de desarrollo de tumores es variable dentro de estos modelos, lo que hace difícil el estudio de terapias experimentales. Además, el retrocruzamiento de estos ratones requiere una cantidad significativa de tiempo y compromiso financiero, que no siempre es factible. Por último, los modelos de PDA xenoinjerto de ratón implantadas, requieran ratones, que han alterado o microambientes tumorales ausentes inmunocomprometidos. Como resultado, la eficacia de terapias experimentales demostrado en estos modelos preclínicos a menudo no son reproducibles en ensayos clínicos humanos 4. Este modelo de ratón hemisplenectomy utiliza células tumorales Panc02, que son una, inducida por metilcolantreno de páncreas línea celular de tumor altamente tumorigénico derivado de ratones C57BL / 6 5, 6. Además, otras líneas celulares PDA murinos derivan del micrófono KPCe se puede utilizar en este modelo. Schulick et al. Han desarrollado previamente una técnica hemisplenectomy y ha creado un modelo de ratón singénico de metástasis de cáncer de colon 7. Este modelo hemisplenectomy (Figura 1) ofrece la inoculación del tumor consistente e iguales en ratones inmunocompetentes se presta a la investigación de nuevos agentes terapéuticos 7-10.

<table><tbody><tr><td>Los medios y componentes</td><td></td><td></td> del cultivo celular <td>variarán en función de la línea celular</td></tr><tr><td>Solución salina tamponada con fosfato</td><td>Gibco de Life Technologies</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga de 15 ml</td><td></td><td></td> Tijera de operación curva Corning 430052 <td></td></tr><tr><td></td><td>Roboz Surgical Store</td><td>RS-6835</td><td></td></tr><tr><td>Micro Disección Pinzas Graefe</td><td>Roboz Surgical Store</td><td>RS-5130</td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas (regular)</td><td>World Precision Instruments, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sutura</td><td></td><td></td> 3-0 o 4-0 <td>cortesía del departamento de cirugía, Johns Hopkins</td></tr><tr><td>Aplicador de clip de ligado abierto Weck Horizon, pequeño, en ángulo</td><td>Teleflex</td><td>137085</td><td></td></tr><tr><td>Aplicador de clip de ligadura abierto Weck Horizon, mediano, en ángulo</td><td>Teleflex</td><td>237115</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de ligadura medianas Weck Horizon</td><td>Teleflex</td><td>002200</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de ligadura pequeñas Weck Horizon</td><td>Teleflex</td><td>001200</td><td></td></tr><tr><td>Jeringa, 1 cc, jeringa tb, punta deslizante de 3/8" Jeringa</td><td>309625</td><td></td><td>Becton Dickinson</td></tr><tr><td>, jeringa de 1 cc, tb, punta deslizante de 5/8"</td><td>Becton Dickinson</td><td>309597</td><td></td></tr><tr><td>Aplicador Autoclip de 9 mm</td><td>Mikron</td><td>427630</td><td></td></tr><tr><td>9 mm Autoclip</td><td>Becton Dickinson 427631</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Almohadilla térmica</td><td>Sunbeam</td><td>CAT93</td><td></td></tr><tr><td>70% Etanol</td><td></td><td></td><td>vendido por numerosos proveedores</td></tr><tr><td>Clorhidrato de ketamina &nbsp;</td><td>Hospira</td><td>22395DD</td><td></td></tr><tr><td>Clorhidrato de xilacina</td><td>Sigma</td><td>X1251</td><td></td></tr></tbody></table>

a preclínicos modelo murino de metástasis hepática

A Preclinical Murine Model of Hepatic Metastases

Se han desarrollado numerosos modelos murinos para estudiar los cánceres humanos y avanzar en la comprensión de tratamiento y desarrollo del cáncer. Aquí, se describe un modelo preclínico, de páncreas murino tumoral de las metástasis hepáticas por medio de una inyección hemispleen de las células tumorales pancreáticas murinos singénicos. Este modelo imita muchas de las condiciones clínicas en pacientes con enfermedad metastásica en el hígado. Los ratones desarrollan consistentemente metástasis en el hígado permitiendo para la investigación del proceso metastásico, las pruebas de terapia experimental, la investigación y la inmunología tumoral.

Panc02 células tumorales inyectadas en el hemispleen (Figura 1) metástasis de hígado en forma 100% de los ratones, mientras que de pulmón y las metástasis peritoneales no se observan si la técnica se realiza correctamente. Esta técnica se ha realizado en más de un centenar de ratones usando células Panc02 en múltiples experimentos independientes, y reproducible, todos los ratones no tratados mueren con metástasis hepáticas de entre 30 y 60 días después del procedimiento hemisplenectomy (Figura 2...

Un modelo preclínico, murino de metástasis hepáticas realiza a través de una técnica de inyección hemispleen.

A preclínicos modelo murino de metástasis hepática

Numerous murine models have been developed to study human cancers and advance the understanding of cancer treatment and development. Here, a preclinical, ...

El objetivo general de este procedimiento es crear un modelo preclínico que refleje las metástasis hepáticas del cáncer de páncreas mediante la técnica de hemiesplenectomía. Esto se logra primero creando una suspensión de células individuales a partir de células tumorales pan O2 cultivadas. El segundo paso del procedimiento consiste en exponer y dividir el bazo de un ratón completamente anestesiado.Los siguientes pasos consisten en inyectar células tumorales en un hemicriptón único y extraer el hemicriptón inyectado. El paso final es cerrar el abdomen y recuperar al ratón de la anestesia. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestren diferencias en la progresión de la enfermedad metastásica mediante el monitoreo de la supervivencia, seguido de necropsia hepática e imágenes no invasivas adicionales.Estas técnicas pueden ayudar a responder preguntas clave en el campo de la investigación del cáncer, como identificar factores importantes en el proceso metastásico, probar nuevos agentes terapéuticos y realizar investigaciones en inmunología tumoral. Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia el tratamiento del cáncer de páncreas porque ratones inmunocompetente

a-preclinical-murine-model-of-hepatic-metastases

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

En este artículo se describe un procedimiento para la inducción de tumores en el hígado ortotópico bioluminiscentes en ratones, y el posterior análisis del crecimiento del tumor confinado al hígado, con imágenes en directo toda la luminiscencia del cuerpo.

Murino hepática Bioluminiscente modelo tumoral

Este modelo ortotópico de cáncer de próstata humano permite la cuantificación del tamaño del tumor, las células tumorales circulantes, y formación de distinta metástasis al pulmón. Como las células deben escapar del órgano principal, entrar en el torrente sanguíneo, y se implanta en un sitio secundario, este modelo recapitula efectivamente el escenario en los seres humanos.

Un modelo murino de cáncer de próstata humano Metástasis ortotópico

La diseminación metastásica del cáncer es la principal causa de muerte por cáncer. Proporcionamos una descripción en profundidad de nuestra metodología de la cirugía de supervivencia para el establecimiento de un sistema de modelo de ratón singénico "-paciente como" ortotópico para el estudio de los mecanismos de la metástasis en tumores de órganos sólidos.

Un &quot;paciente-Like&quot; ortotópico Singénico modelo de ratón de carcinoma hepatocelular Metástasis

La capacidad de los clones metastásicos para colonizar sitios distantes depende de su capacidad de proliferación y/o de su capacidad para sobrevivir en el microambiente del huésped sin una proliferación significativa. En este trabajo se presenta un modelo animal que permite la visualización cuantitativa de ambos tipos de colonización hepática por clones metastásicos.

Avanzada modelo animal de colorrectal metástasis en hígado: Técnicas de imagen y propiedades metastásicas de los clones

Los modelos preclínicos que evalúan la terapia adyuvante dirigida a la metástasis del cáncer de mama están ausentes. Para tratar esto, se desarrolló un modelo murino de metástasis de adenocarcinoma mamario pulmonar de novo , en el que se pueden evaluar las terapias administradas en la configuración adyuvante (resección postquirúrgica de tumores primarios) en cuanto a eficacia en el impacto de metástasis pulmonares previamente sembradas.

Procedimientos quirúrgicos y metodología para un modelo murino preclínico De Novo Metástasis del cáncer mamario

Se desarrolló un procedimiento quirúrgico para administrar células tumorales mamarias al hígado murino mediante inyección en la vena porta. Este modelo permite la investigación de las etapas tardías de la metástasis hepática en un huésped totalmente competente para el sistema inmunitario, incluida la extravasación de células tumorales, la siembra, la supervivencia y el crecimiento metastásico en el hígado.

Una inyección Modelo vena porta del hígado para estudiar la metástasis del cáncer de mama

La aplicación de un modelo ortotópico de carcinoma de células renales en ratones inmunocompetentes proporciona el investigador un sistema clínicamente relevante definido por la presencia de una metástasis de tumores primarios de pulmón y renales en el mismo animal. Este sistema puede ser utilizado para probar preclínicamente una variedad de tratamientos in vivo.

Un carcinoma de células singénicas modelo de ratón de la renales metastásico para la evaluación cuantitativa y longitudinal de preclínicos sobre Terapias

Presentamos un modelo de cáncer de mama Murino ortotópico y mastectomía radical modelo con tecnología de bioluminiscencia para cuantificar la carga del tumor para imitar la progresión del cáncer de mama humano.

Generación de un modelo Murino ortotópico de cáncer de mama metastásico y la realización de mastectomía Radical murino

Aquí, describimos el desarrollo de un modelo murino clínicamente relevante de cáncer de hígado recapitulando las características inmunitarias típicas del cáncer hepatocelular (HCC).

Un modelo de ratón ortotópico inducido por hepatocitos oncogénicos que surge en el ajuste de la inflamación hepática y la fibrosis

Describimos en detalle un modelo de tumor de metástasis hepáticas de cáncer colorrectal clínicamente relevante (CRLM) y la influencia de la reperfusión de isquemia hepática (I/R) en el crecimiento tumoral y la metástasis. Este modelo puede ayudar a entender mejor los mecanismos subyacentes promoción inducida por cirugía del crecimiento metastásico hepático.

Modelo murino de tumores hepáticos metastásicos en el escenario de la lesión por reperfusión de isquemia

La inyección de organoides de cáncer colorrectal (CCR) en la vena porta genera metástasis hepáticas ricas en estroma. Este modelo de ratón de metástasis hepática del CCR representa una herramienta útil para estudiar las interacciones tumor-estroma y desarrollar nuevas terapias dirigidas al estroma, como las terapias génicas mediadas por virus adenoasociadas.

Inyección en la vena porta de organoides de cáncer colorrectal para estudiar la metástasis hepática del estroma

Aprende a establecer un modelo preclínico de metástasis hepática en ratones mediante inyección hemesplénica con células tumorales pancreáticas. Este método permite estudiar la progresión metastásica y evaluar nuevas terapias contra el cáncer.

A preclínicos modelo murino de metástasis hepática

Explorar más videos