Name: La manipulación de epileptiforme Electrocorticograms (ECoGs) y del sueño en ratas y ratones por acupuntura (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 6 s
Description: Aprende a evaluar la epilepsia y el sueño mediante acupuntura en modelos de roedores usando electrocorticogramas y electromiogramas. Este método permite estudiar tratamientos no farmacológicos para trastornos neurológicos.

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Este trabajo fue apoyado por las subvenciones del Ministerio de Ciencia y Tecnología (MOST) MOST104-2410-H-002-053 y NSC99-2320-B-002-026-MY3. Este manuscrito fue editado y corregido por el Sr. Brian Chang, quien tiene experiencia en la revisión de documentos profesionales.

Todos los protocolos experimentales son aprobados por el Comité Institucional de Cuidado de Animales y el empleo (IACUC) de la Universidad Nacional de Taiwán. 1. Cirugía estereotáxica para la implantación de electrodos ECoG, EMG electrodos, Brain termistor, y la Guía de inyección cánula <ol><li> Para las ratas (250-350 g, de 6 a 8 semanas de edad, las ratas Sprague-Dawley) <ol><li> Anestesiar las ratas por inyección ip con 50 mg / kg Zoletil. Confirmar la profundidad adecuada de la anestesia mediante la observación de una falta de respuesta después de pellizcar la pata trasera. Aplicar ungüento para los ojos, afeite la piel, y esterilizar la piel con una solución de povidona-yodo y 75% de etanol. Inyectar un antibiótico (penicilina G) para prevenir la infección. </li><li> Preparar escalpelos, tijeras, pinzas, gasas, y la máquina de cauterio para la cirugía. Esterilizar engranaje quirúrgico y gasas por un autoclave y la cauterización por 75% de etanol. </li><li> Coloque una barra de oído en el canal auditivo y montar la rata a la estereotaxia. </li><li> Utilizandoun bisturí, crea un aproximado de 2 cm incisión en el cráneo a lo largo de una línea entre dos de las orejas, moviéndose en sentido caudal. Cortar las aletas de la piel con pinzas hemostáticas para exponer el cráneo y extraer el tejido sobre el cráneo con un bisturí. </li><li> Perforar ocho orificios (F1, F2, P1, P2, O1, O2, R1, y R2), cada una de aproximadamente 0,7 mm de diámetro, sobre el cráneo con una herramienta rotativa. Tornillo de ocho electrodos ECoG sobre el frontal, parietal, occipital y los lóbulos y el cerebelo, tanto en los hemisferios derecho e izquierdo. Estos electrodos se utilizan para la detección de la epilepsia focal. <ol><li> Utilice las siguientes coordenadas para los electrodos de registro: frontal (F1 y F2): 2,0 mm anterior al bregma y 2,5 mm de la línea media, parietal (P1 y P2): -2.0 mm anterior al bregma y 3,0 mm de la línea media y occipital (O1 y O2): -5.5 mm anterior al bregma y 3,0 mm de la línea media. </li><li> Coloque dos electrodos de referencia (R1 y R2) en el cerebelo (-11,0 mm anterior al bregma y 4,0 mm de la midlinordeste). </li></ol></li><li> En unos grupos separados de ratas, haga tres agujeros y el lugar dos electrodos de EEG de tornillo sobre el frontal derecho (F2) y lóbulos parietales (P2) de las cortezas con las mismas coordenadas, como se describe en el paso 1.1.5.1. Colocar un tercer electrodo EEG sobre el cerebelo izquierdo (R1), que sirve para conectar a tierra el animal y reducir los artefactos de señal. Estos electrodos se utilizan para confirmar epilepsia generalizada y el análisis de las etapas de vigilancia. </li><li> Se separa la piel del cuello y los músculos e inserte dos electrodos de EMG en el músculo del cuello. </li><li> Perforar otro agujero en el cráneo y colocar una cánula guía microinyección en la izquierda CEA (AP, 2,8 mm del bregma; ML, 4,2 mm; DV, 7,8 mm con respecto al bregma) en ratas. Las coordenadas son una adaptación de la rata atlas de Paxinos y Watson 10. </li><li> Perforar un agujero más grande (con un diámetro de 1,6 mm) en el cráneo e insertar un calibrado termistor 30 kV en la superficie de la corteza parietal, que se consolidó después, a monitor la temperatura cortical en ratas. </li><li> Utilice una gasa y cauterio para detener el sangrado cuando se produzca. </li><li> Pase los cables con aislamiento de los electrodos ECoG y electrodos EMG a un pedestal y conectar el termistor a la correa de sujeción. Cimentar el pedestal y guiar la cánula al cráneo con acrílico dental. </li><li> El tratamiento de la incisión por vía tópica con polisporina (bacitracina de zinc / sulfato de polimixina B) para prevenir la infección. Dar a los animales tanto el ibuprofeno y la penicilina G en el agua durante una semana después de la cirugía. </li></ol></li><li> Para los ratones (20 - 30 g, de 6 a 8 semanas de edad, ratones C57BL / C) <ol><li> Anestesiar a los ratones por inyección IP con 50 mg / kg Zoletil y confirmar la profundidad adecuada de la anestesia mediante la observación de una falta de respuesta después de pellizcar la pata trasera. Aplicar ungüento para los ojos. Después de afeitar el pelo, esterilizar la piel con una solución de povidona-yodo y 75% de etanol. Inyectar un antibiótico (penicilina G) para prevenir la infección. </li><li> Coloque una barra de oído en el canal auditivo ymontar el ratón a la estereotaxia. </li><li> El uso de un bisturí, hacer un aproximado de 1.5 cm incisión en el cráneo a lo largo de una línea entre los dos oídos, moviéndose en sentido caudal. Clip los colgajos de piel con pinzas hemostáticas para exponer el cráneo y eliminar el tejido sobre el cráneo con un bisturí. </li><li> Meter dos agujeros en el cráneo con tijeras quirúrgicas y colocar dos electrodos ECoG alambre en el lóbulo frontal derecho (F2: +2,0 mm a bregma y 1,5 a la línea media) y el lóbulo parietal izquierdo (P1: -3,0 mm y -2,5 a bregma mm de la línea media). </li><li> Se separa la piel del cuello y los músculos e inserte dos electrodos de EMG en el músculo del cuello. </li><li> Conecte los cables con aislamiento de los electrodos ECoG alambres y electrodos EMG a los terminales hembra y un conector de 2,54 mm, y luego de cemento en el cráneo con acrílico dental. </li><li> El tratamiento de la incisión por vía tópica con polisporina (bacitracina de zinc / sulfato de polimixina B) para prevenir la infección. Dar a los animales tanto el ibuprofeno y la penicilina G en agua durante un week después de la cirugía. </li></ol></li><li> Permitir que todos los animales se recuperen durante siete días antes de la iniciación de los experimentos. </li><li> Casa ratas o ratones por separado, en jaulas de grabación individuales, en la sala aislada donde la temperatura se mantiene a 23 ± 1 ° C y la luz: oscuridad (L: D) el ritmo es controlado en un 12: ciclo de 12 h (40 W x 4 tubos de iluminación). Proporcionar alimentos y agua ad libitum. </li><li> Conectar el ECoG, EMG, y el termistor a través de una correa de sujeción a los amplificadores de una semana después de la cirugía para iniciar las grabaciones. </li></ol> 2. Establecimiento de TLE Focal Epilepsia, SE, y espontáneamente recurrentes Epilepsia <ol><li> Para las ratas <ol><li> Administrar 0,5 l de pilocarpina (2,4 mg / l) en el CEA izquierdo a través de la cánula guía de inyección usando una bomba de microinyección. La velocidad de inyección debe fijarse en 0,2 l / min para inducir TLE focal. </li><li> IP inyectar 300 mg / kg de pilocarpina para inducir epi generalizadaLepsy con recurrentes SE. </li></ol></li><li> Para los ratones <ol><li> IP administrar PTZ (0,035 mg / g de peso corporal del ratón) en un punto ZT particular, cada dos días. Cinco inyecciones consecutivas harán que el desarrollo de la epilepsia generalizada de forma espontánea y de forma recurrente. </li></ol></li><li> Por tanto en ratas y ratones <ol><li> Amplificar las señales de ECoG por 5.000 y el filtro de paso de banda de las analógicas entre 0,1 y 40 Hz. </li><li> Utilice una placa A / D conversión A para convertir las señales analógicas ECoGs en señales digitales con una tasa de muestreo de 128 Hz. </li><li> Utilice un software para la puntuación visual y analizar la aparición y la duración de la epilepsia. Medir la escala de tiempo con el fin de representar la duración. </li><li> Definir ECoG epilepsia por la aparición de puntas epilépticas con amplitudes mayores de 2 mV y con una duración de más de 30 s 13. </li></ol></li></ol> 3. Clasificación de Vigilancia Unidos <ol><li> Para las ratas<ol><li> Determinar los estados de vigilancia mediante el uso de los parámetros adquiridos de ECoGs, EMG, temperaturas del cerebro, y la locomoción a menos de 12 s episodio de grabación. Conectar el ECoG, EMG, y el termistor a través de una correa de sujeción a los amplificadores de una semana después de la cirugía para comenzar la grabación. Puntuación de los estados con un software hecho a medida de acuerdo a los pasos 3.1.5 - 3.1.7. </li><li> Medir la actividad locomotriz utilizando un detector de movimiento por infrarrojos, integrar las señales de cada 1 s, y almacenar las señales. </li><li> Medir la temperatura cortical y almacenar las señales. </li><li> Clasificar los estados de vigilancia de acuerdo con nuestros criterios previamente definidos 14. </li><li> Puntuación vigilia mediante el uso de las siguientes características: ECoGs de pequeña amplitud con espectros de alta frecuencia, mayor potencia delta (0,5 - 4,0 Hz), y menor consumo de energía theta (6,0 - 9,0 Hz); la actividad locomotora dominante; alta actividad EMG; y aumentando gradualmente la temperatura cortical. </li><li> Puntuación sueño NREM mediante el uso de la followincaracterísticas: g-ondas delta ECoGs dominantes con grandes amplitudes, se redujo la actividad EMG, la reducción de la temperatura cortical, y ninguna actividad locomotora. </li><li> Puntuación sueño REM mediante el uso de las siguientes características: disminución de la amplitud de ECoGs con la frecuencia dominante theta, de repente aumento de la temperatura cortical, la actividad EMG mínima y baja actividad locomotriz con contracciones nerviosas del cuerpo. </li></ol></li><li> Para los ratones <ol><li> Repetir la clasificación de los estados de vigilancia en los ratones como llevó a cabo en las ratas, excepto que no hay temperatura cortical grabado desde el termistor. </li></ol></li></ol> 4. Rendimiento de la acupuntura manual y EA en ratas <ol><li> La rata es anestesiada para el protocolo de EA. </li><li> Busque el punto de acupuntura por la anatomía y confirme la baja impedancia de la piel en el punto de acupuntura. La luz parpadea cuando se detecta la baja impedancia de la piel. Nota: los puntos de acupuntura Fengchi se encuentran a 3 mm de la línea media posterior seainterpolar las dos orejas, en el cuello. </li><li> Insertar agujas de acero inoxidable en los puntos de acupuntura en una profundidad de 2 mm. </li><li> Twitch las agujas insertadas 10 veces cada 5 min. </li><li> El uso de un estimulador eléctrico funcional, entregar un tren de pulsos bifásicos (150-mu s de duración cada una) con una intensidad de 1 mA a los puntos de acupuntura a través de la aguja. </li><li> Realizar una acupuntura falsa o simulada EA como control. </li></ol>

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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

La elección de un modelo animal de epilepsia viable es esencial para cada propósito experimental. Uno de nuestros objetivos es dilucidar los efectos de la EA en la supresión de la epilepsia. EA es una medicina alternativa que puede exhibir efecto terapéutico en la epilepsia y ha sido documentado en la literatura china antigua. Sin embargo, hay una falta de evidencia científica para demostrarlo. Para determinar los efectos de la EA en la epilepsia, nos hemos centrado principalmente en los efectos de la EA en la epilepsia...

La epilepsia es un trastorno neurológico común en el que se producen convulsiones recurrentes durante toda la vida de un paciente. La mayoría de las recurrencias epilépticos pueden ser bien controlados por los fármacos antiepilépticos (FAE). Sin embargo, aproximadamente 30% de los pacientes epilépticos desarrollar epilepsia refractaria 1. causas de la epilepsia, trastornos del sueño, que pueden exacerbar aún más la recurrencia. La evidencia demuestra que la epilepsia puede perturbar el sueño, ya sea por la noche o puede causar excesiva somnolencia durante el día 2,3. Nuestros estudios previos indican además que la epilepsia se produce en el momento zeitgeber (ZT) 0, es decir, el inicio del período de luz a la luz: oscuridad ciclo, disminuye el sueño; este es mediada por la hormona liberadora de corticotropina (CRH), un factor homeostático. Epilepsia en ZT13 (el comienzo del periodo de oscuridad) aumenta la expresión de otro factor homeostático, la interleucina-1 (IL-1), lo que aumenta el sueño. Sueño ritmos circadianos se alteran cuando la epilepsia se produce en ZT6, el medio de laperíodo de luz 4,5. Por otra parte, los problemas de sueño exacerbar aún más la progresión y recurrencia de la epilepsia 6. Sobre la base de la evidencia mencionada, tratamos de revelar un método terapéutico óptimo para controlar simultáneamente la epilepsia y prevenir las alteraciones del sueño en pacientes con epilepsia. Hemos encontrado previamente que la electroacupuntura (EA) con una frecuencia de estimulación de 10 Hz, en el que se suministra una cierta cantidad de corriente en el punto de acupuntura través de una aguja de acero inoxidable, suprime con éxito electrocorticograma (ECoG) actividades de epilepsia y trastornos del sueño epilepsia inducida 7 . EA con una frecuencia de estimulación de 100 Hz se deteriora aún más las actividades de epilepsia y trastornos del sueño en ratas 8,9. Este experimento exitoso depende de tres factores: en primer lugar, un modelo animal de epilepsia factible; en segundo lugar, un método para la grabación de sueño y el análisis en roedores; y en tercer lugar, el funcionamiento exacto de la acupuntura y la precisión del punto de acupuntura Locations. La epilepsia se ha clasificado en dos tipos principales: la epilepsia focal y epilepsia generalizada. Estamos interesados ​​en la epilepsia focal del lóbulo temporal (TLE), la epilepsia generalizada, estado epiléptico (SE), y la recurrencia de la epilepsia generalizada espontánea. Por lo tanto, diferentes manipulaciones se aplican para crear modelos de epilepsia adecuados para nuestros experimentos. Para establecer TLE focal, una dosis baja de pilocarpina se administra en el núcleo central de la amígdala izquierda (CEA). Para verificar este modelo, seis electrodos ECoG se implantan en el frontal (F1 y F2), parietal (P1 y P2), y occipital (O1 y O2) lóbulos en ambos hemisferios izquierdo y derecho, y otros dos electrodos de referencia (R1 y R2) se coloca sobre el cerebelo en ambos hemisferios. Una guía microinyección cánula adicional se implanta quirúrgicamente en el izquierdo CEA (AP, 2,8 mm de bregma; ml, 4,2 mm; DV, 7,8 mm con respecto al bregma). Las coordenadas son una adaptación de la Paxinos y Watlas rata atson 10. Si el TLE focal se induce con éxito, sólo la grabación desde el electrodo sobre la corteza parietal izquierda (P1), que está cerca del CEA izquierda, debería adquirir las ECoGs epileptiformes dominantes, sin ECoGs epileptiformes significativos registrados a partir de los otros electrodos ECoG. Intraperitoneal (ip) del pilocarpina en ratas inducen epilepsia generalizada y SE, pero esto puede ser fatal. Cinco inyecciones IP de pentilentetrazol (PTZ) con un intervalo de un día entre cada inyección inducen con éxito la epilepsia generalizada espontánea en ratones y también asegurar la supervivencia de los ratones. Dos electrodos ECoG alambre se implantan en la corteza frontal y parietal en los ratones para recibir señales de ECoG y para verificar la epilepsia de manera espontánea recurrente. La polisomnografía (PSG) es un método integral para registrar los cambios fisiológicos que se producen durante el sueño, y se puede clasificar de manera objetiva el sueño en diferentes etapas del movimiento no rápido de los ojos (NREM) yrAPID movimiento de los ojos (REM) del sueño. PSG registra los parámetros de las funciones del cuerpo, incluyendo las ondas cerebrales (electroencefalograma, EEG), los movimientos oculares (electrooculogram, EOG), tonos de músculo esquelético (electromiograma, EMG), ritmos cardíacos (electrocardiograma, ECG), y los niveles de oxígeno en la sangre y los parámetros respiratorios. En ratas, registramos ECoGs, EMG, la temperatura cortical y la actividad locomotora de clasificar los estados de vigilancia en la vigilia, el sueño NREM y el sueño REM. El análisis del sueño en ratones se llevó a cabo utilizando ECoGs, EMG, y los resultados de la actividad locomotora. Las ratas se implantan quirúrgicamente con tres ECoG tornillo de electrodos en el frontal, parietal, y la corteza cerebelosa contralateral por cirugía estereotáxica. determinación posterior a la adquisición de los estados de vigilancia (vigilia, sueño NREM y sueño REM) se lleva a cabo de acuerdo con los parámetros obtenidos de los ECoGs, EMG, la temperatura del cerebro, y la actividad locomotora. criterios detallados para categorizar el comportamiento del animal en ratas y ratones se describen en tél protocolo. Ambas ratas y ratones necesitan ser anestesiados con una dosis baja de Zoletil (25 mg / kg), que es la mitad de la dosis de los anestésicos normalmente administrados durante la cirugía estereotáxica, antes de realizar la acupuntura manual o EA. Esta dosis permite que los animales se despiertan de 30 a 35 minutos después de la inyección. Cualquiera de acupuntura manual o EA se lleva a cabo al comienzo del período de oscuridad, con un período constante de tiempo de 30 min, y cada animal se trata consecutivamente durante dos a tres días. Estimular las corrientes de EA son entregados en un punto de acupuntura particular a través de una aguja de acero inoxidable que se inserta en el punto de acupuntura. La corriente de estímulo es un tren de pulsos cuadrados bifásicos, en el que la duración del pulso es de 150 ms y la intensidad de estimulación es 1 mA. Si se utiliza una aguja seca para la acupuntura manual, la aguja insertada en los puntos de acupuntura se retorció 10 veces cada 5 min. La parte difícil de la acupuntura manual o EA es localizar los puntos de acupuntura en los roedores. el locación de los puntos de acupuntura en ratas o ratones es similar a su localización anatómica en los seres humanos. Por ejemplo, los puntos de acupuntura bilaterales Fengchi se encuentran 3 mm de distancia de la línea media posterior sobre el cuello, entre las dos orejas, que es similar a su localización anatómica en humanos 11. Por otra parte, los puntos de acupuntura con baja impedancia en la piel se pueden confirmar aún más. acupuntura o EA farsa manipulación simulada es necesario que la acupuntura o experimentos de EA. La acupuntura simulada o EA farsa deben llevarse a cabo en un punto de acupuntura no se encuentra cerca del punto de acupuntura, por ejemplo, cerca de la axila 12. Para investigar con éxito los efectos de la acupuntura o la EA sobre la epilepsia y los trastornos del sueño epilepsia inducida, los siguientes factores deben estar en su lugar: un posible modelo de epilepsia animal, el análisis preciso de ECoGs epileptiformes y la recurrencia de la epilepsia, un método para clasificar los estados de vigilancia y el funcionamiento exacto de la acupuntura o la EA en los roedores.

<table><tbody><tr><td><fuerte>Fármacos</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zoletil</td><td>Virbac</td><td></td><td>50 mg/kg i.p.</td></tr><tr><td>pilocarpina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6503</td><td>300 mg/kg i.p.; 1,2 mg microinyección</td></tr><tr><td></td><td>PTZ Sigma-Aldrich</td><td>P6500</td><td>0,035 mg/</td></tr><tr><td>polisporina</td><td>de ratón Pfizer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Surgery</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ECoG</td><td>electrodo Plásticos Un</td><td>electrodo de tornillo</td><td>E363/20</td> para ratas</tr><tr><td>Pedestal</td><td>Plastics One</td><td>MS363</td><td></td></tr><tr><td>Canula</td><td>Plastics One</td><td>C315G/spc</td><td></td></tr><tr><td>Thermistor</td><td>Omega Engineering</td><td>44008</td><td></td></tr><tr><td>Acrílico dental</td><td>Tempron</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereotaxic Instrument</td><td>Stoelting</td><td></td><td>Dural</td></tr> arms<tr><td>Recording equipments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ECoG amplificador</td><td>Colbourn Instruments</td><td>V75-01</td><td></td></tr><tr><td>A/D Board</td><td>National Instruments</td><td>NI PCI-6033E</td><td></td></tr><tr><td>Detectores de movimiento basados en infrarrojos</td><td>Biobserve GmbH</td><td>hecho</td><td></td>a medida</tr><tr><td>ICELUS</td><td>G-System</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AxoScope 10 Software</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acupuntura necesidades</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agujas de acero inoxidable</td><td>Shanghai Yanglong Medical Articles Co.</td><td>Calibre 32 x 1"</td><td></td></tr><tr><td>Funciones Estimulador eléctrico</td><td>I.T.O., Japan</td><td>Trio 300</td><td></td></tr><tr><td>AcuPen</td><td>Lhasa OMS</td><td>Pointer Excel II</td><td></td></tr></tbody></table>

la manipulación de epileptiforme electrocorticograms (ecogs) y del sueño en ratas y ratones por acupuntura

Manipulation of Epileptiform Electrocorticograms (ECoGs) and Sleep in Rats and Mice by Acupuncture

La antigua literatura china ha documentado que la acupuntura posee efectos terapéuticos eficientes sobre la epilepsia y el insomnio. Sin embargo, hay poca investigación que revele los posibles mecanismos detrás de estos efectos. Para investigar el efecto de la acupuntura sobre la epilepsia y el sueño, es necesario abordar varios problemas. La primera es identificar los puntos de acupuntura, que corresponden entre humanos, ratas y ratones. Además, es necesario determinar la profundidad de inserción de la aguja de acupuntura, el grado de torsión de la aguja en la acupuntura manual con aguja y los parámetros de estimulación para la electroacupuntura (EA). Para evaluar los efectos de la acupuntura sobre la epilepsia y el sueño, se requiere un modelo factible de epilepsia en roedores. Administramos pilocarpina en el núcleo central izquierdo de la amígdala (CeA) para simular la epilepsia del lóbulo temporal focal (TLE) en ratas. La inyección intraperitoneal (IP) de pilocarpina induce epilepsia generalizada y estado epiléptico (EE) en ratas. Cinco inyecciones IP de pentilenetetrazol (PTZ) con un intervalo de un día entre cada inyección induce con éxito la epilepsia generalizada espontánea en ratones. Los registros de electrocorticogramas (ECoGs), electromiogramas (EMG), temperatura cerebral y actividad locomotora se utilizan para el análisis del sueño en ratas, mientras que los ECoGs, EMG y la actividad locomotora se emplean para el análisis del sueño en ratones. Los electrodos ECoG se implantan en las cortezas occipital frontal, parietal y contralateral, y se implanta un termistor sobre la corteza cerebral mediante cirugía estereotáctica. Los electrodos EMG se implantan en los músculos del cuello y un detector de infrarrojos determina la actividad locomotora. Los criterios para categorizar las etapas de vigilancia, incluida la vigilia, el sueño de movimientos oculares rápidos (REM) y el sueño no REM (NREM), se basan en la información de ECoG, EMG, temperatura cerebral y actividad locomotora. Los criterios de clasificación detallados se establecen en el texto.

Existen diferentes modelos de rata y ratón para satisfacer las necesidades de los diferentes tipos de epilepsia. Para inducir la TLE focal, 0,5 l de pilocarpina se administra (2,4 mg / l) en el CEA izquierda. Los ECoGs epileptiformes predominantes se adquieren desde el electrodo de ECoG en el lóbulo parietal del hemisferio izquierdo (Figura 1A: b) se recogen, y las actividades epilépticos raras desde el resto de los electrodos ECoG (Figura 1A: a,...

Este artículo demuestra el rendimiento de la acupuntura, modelos de epilepsia y el análisis del sueño en roedores. Se describe el procedimiento de acupuntura y la identificación de los puntos de acupuntura. La pilocarpina o pentilenetetrazol (PTZ) se usa para inducir la epilepsia. Para el análisis del sueño se emplean el electrocorticograma (ECoG), el electromiograma (EMG), la temperatura cerebral y los registros de la actividad locomotora.

La manipulación de epileptiforme Electrocorticograms (ECoGs) y del sueño en ratas y ratones por acupuntura

Ancient Chinese literature has documented that acupuncture possesses efficient therapeutic effects on epilepsy and insomnia. There is, however, little ...

El objetivo general de este procedimiento es evaluar la epilepsia, el sueño y los efectos de la acupuntura en un modelo animal. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la neurociencia sobre cómo inducir epilepsia, analizar el sueño y realizar acupuntura en un modelo animal pequeño. Las principales ventajas de esta técnica son que los electrodos corticales laterales y los electrodos de miograma lateral pueden implantarse rápida y fácilmente mediante cirugía estereotáxica en ese semestre.Para demostrar este procedimiento, estará presente Yi-Jou Wu, un estudiante de posgrado de mis laboratorios. Después de confirmar la profundidad adecuada de la sedación mediante la ausencia de respuesta a un pellizco en el dedo del pie, aplique pomada ocular a una rata Sprague Dawley de seis a ocho semanas de edad y con un peso de 250 a 350 gramos del primer grupo. Utilice una máquina para cortar el cabello a fin de eliminar el vello de la parte superior del cráneo.Desinfecte la piel con aplicaciones sucesivas de solución de yodo-povidona y etanol al 75 por ciento, seguido de inyección de antibiótico para prevenir infecciones. A continuación, sujete al animal en una máquin

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Research

Investigación

JoVE Journal

Behavior

Comportamiento

Fuente: Kodani, S., et.al. Manipulación optogenética de circuitos neuronales durante el monitoreo de estados de sueño / vigilia en ratones. J. Vis. Exp. (2019)Este video demuestra la manipulación optogenética de los circuitos neuronales involucrados en la transición del sueño a la vigilia en ratones. El procedimiento consiste en implantar quirúrgicamente una fibra óptica y electrodos en el cerebro y los músculos para permitir la estimulación de la luz y el registro electrofisiológico. Al...

Manipulación optogenética de circuitos neuronales para la transición del sueño a la vigilia en ratones

Este video muestra un protocolo para implantar un conjunto de electrodos de electroencefalograma (EEG) y electromiograma (EMG) en un ratón anestesiado. El proceso consiste en asegurar el ratón en un marco estereotáxico, hacer una incisión en la línea media del cráneo, perforar agujeros para los electrodos y fijar la unidad de electrodos para el registro de la señal. Después de la recuperación, el comportamiento de sueño-activación del mouse se analiza utilizando las señales registradas.

Análisis del comportamiento del sueño en ratones a través de registros de electroencefalograma y electromiograma

Este video muestra un método para el registro de EEG de alta resolución en un modelo de rata de epilepsia focal. Describe los pasos involucrados en la preparación de la rata, conectando un mini-gorro de EEG multicanal al cuero cabelludo de la rata y registrando el EEG para identificar eventos relacionados con las convulsiones característicos del modelo de epilepsia.

Registro de electroencefalografía en un modelo de rata de epilepsia focal

Este video muestra el registro electroencefalográfico (EEG) de convulsiones epilépticas en ratas inducidas por epilepsia. Una rata con electrodos implantados en el hipocampo ventral se conecta al sistema de registro de EEG y se coloca en una cámara de plexiglás. Se permite que la rata se mueva libremente mientras se registra la actividad cerebral para controlar la ocurrencia de convulsiones.

Registro electroencefalográfico de convulsiones epilépticas en ratas inducidas por epilepsia

El registro del electroencefalograma (EEG) y el electromiograma (EMG) en ratones que se comportan libremente es un paso crítico para correlacionar el comportamiento y la fisiología con el sueño y la vigilia. El protocolo experimental descrito en este documento proporciona un sistema basado en cable para adquirir registros de EEG y EMG en ratones.

Poligráfico Procedimiento de Grabación en medición del sueño en ratones

Electroconvulsiva convulsiones (ECS) es un modelo animal experimental de la terapia electroconvulsive para la depresión severa. ECS a nivel mundial estimula la actividad en el hipocampo, a sinaptogénesis y plasticidad sináptica. Aquí, describimos los métodos para la inducción de ECS en ratas y para el fraccionamiento subcelular de sus hipocampos para examinar los cambios inducidos por la incautación en proteínas sinápticas.

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Aquí, describimos métodos de manipulación optogenética de determinados tipos de neuronas durante la monitorización de los estados de sueño/vigilia en ratones, presentando nuestro trabajo reciente en el núcleo de la estría terminal is como ejemplo.

Manipulación optogenética de circuitos neuronales durante la supervisión de los estados de sueño/vigilia en ratones

Este artículo describe un protocolo para la manipulación de dianas moleculares en la corteza cerebral utilizando virus adenoaso asociados y para monitorear los efectos de esta manipulación durante la vigilia y el sueño utilizando registros electrocorticográficos.

Registro electrocorticográfico de áreas de la corteza cerebral manipuladas con un virus adenoaso asociado dirigido a la cofilina en ratones

Aquí, presentamos un protocolo para la electroacupuntura (EA) eficiente y rápida en ratones o ratas jóvenes utilizando un soporte impreso tridimensional (3D). Esta técnica permite la operación simultánea en múltiples animales, ahorrando tiempo y aumentando la eficiencia experimental.

Operación de electroacupuntura a granel para ratones o ratas jóvenes

Este protocolo fue desarrollado para crear un sistema confiable y de fácil acceso para registrar EEG de roedores en movimiento libre.

Un protocolo rentable y mínimamente invasivo para el registro de electroencefalografía crónica multisitio en ratones que se mueven libremente

Aprende a evaluar la epilepsia y el sueño mediante acupuntura en modelos de roedores usando electrocorticogramas y electromiogramas. Este método permite estudiar tratamientos no farmacológicos para trastornos neurológicos.

La manipulación de epileptiforme Electrocorticograms (ECoGs) y del sueño en ratas y ratones por acupuntura

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