Summary
본 연구에서는 새로운 플랫폼을 개발하고 검증 된 양극성 장애 (BD)의 치료 반응의 intraneuronal 분자 서명을 조사합니다. BD 환자의 후각 상피 비강 생검을 통해 얻었다. 이어서 레이저 캡처 미세 절제가 BD 리튬 응답의 분자 특성을 조사하기 위해 실시간 RT PCR과 결합시켰다.
Abstract
양극성 장애 (BD)이 제대로 이해 병태 생리학과 심한 신경 정신 질환과 전형적 기분 안정제, 탄산 리튬으로 처리 하였다. 동물 연구뿐만 아니라 인간의 유전 연구는 리튬이 신경 세포의 성장, 생존과 성숙, 그리고 Wnt 신호에 관여 특히 분자에 관여하는 분자 표적에 영향을 미친다는 사실을 보여. 중추 신경계 (CNS)에서 리튬 응답과 연관된 동적 분자량 변화를 조사하는 뇌 생검 구하기 윤리적 도전 감안할 번이 goal.The 후각 상피 후각 수용체 뉴런을 포함 달성 후각 조직으로부터 수득 된 뉴런의 사용을 고려할 수있다 개발 및 신경교 유사 세포를지지하는 다른 단계에서. 이 안전하게 코 조직 검사에서 얻은 후각 조직을 사용, 신경 정신 질환을 가진 환자의 CNS의 역동적 인 변화를 연구하는 독특한 기회를 제공합니다. SUBST로 인한 단점을 극복하기 위해비 신경 세포와 후각 생검 조직의 antial 오염, 풍부한 신경 세포 인구를 얻을 수있는 새로운 접근 방식은 레이저 캡처 미세 절제와 코 생검을 결합하여 개발되었다. 이 연구에서, 신경 조직에 치료 - 관련 분자의 동적 변화를 조사하는 시스템은 리튬 치료 반응의 분자 메커니즘의 연구를 위해 모집 BD 환자의 작은 파일럿 샘플을 사용하여, 개발 및 검증 하였다.
Introduction
양극성 장애 (BD)이 기분 병리학 적 변화를 특징으로하는 심각한 신경 장애이며, 드라이브 및인지 1. BD의 치료에 사용되는 리튬은 동물 연구에서 두 유전자의 다수의 정상 상태의 mRNA 수준을 변경하기 위해 도시되었지만, 이들 분자 중 2 인간 임상 반응과 연관된 경우에는 알려지지 않았다. 리튬의 반응 메카니즘을 이해하는 것은 신경 조직에서의 리튬 - 유발 분자 변화를 조사 요구한다. 불행히도, BD 환자의 뇌 생검 전후 리튬 요법 리튬 반응 분자 서명을 식별하기 위해 수득 실용적이지 않다. 사후 뇌 조직은 BD 바이오 마커의 연구를 위해 사용 된, 그러나, 감정,인지와 이용시의 동적 변화와 관련 분자 마커를 평가하기 위해 사용될 수 없다; 소급 확인 리튬 치료 반응의 유효성이 문제가 될 수있다 (4). 림프구 및 기타 혈액 세포가 유용 할 수 있지만, 혈액 세포의 분자 변화는 신경 세포의 변화 3-5 반영되지 않을 수 있습니다. 뇌척수액은 질환 관련 약물 가역 본질적인 변화를 반영 할 수있다 세포 내 분자에 대한 정보를 얻을 불충분 할 수있다.
후각 상피 (OE)가 중추 신경계 (CNS)의 고유 부분이며, 변연 구조 (6)에 발생 학적으로 관련; 그리고 코 조직 검사를 통해 쉽게 액세스 할 수 있습니다. 그것은 이루어져 신경교 형상 개발 7-9의 다른 단계에서 (즉, sustentacular) 세포, 기저 세포 증식, 후각 수용체 뉴런지지. 따라서, OE는 접근 가능 신경 정신 질환 (7) 환자의 CNS의 역동적 인 변화를 연구하는 독특한 기회를 제공합니다. 연구는 그 OCC을 반영 질병 관련 사건을 조사하기위한 대리 조직으로 OE의 유용성을 입증하고 있습니다뇌 신경 세포 8,9에 urring. 예를 들어, 연구는 정신 상태 10-14과 관련된 분자 프로파일을 조사하기 위해 OE를 활용했다. 후각 시스템은 또한 정신 분열증 (15)의 음성 증상과 관련된 냄새 적자 임상 endophenoytpes을 식별하는 데 도움이된다. 또한, 신경 발달 과정은 정신 조건 8,9의 기본 병태 생리를 모델링 할 수있는 유용한 수단을 제공하고, 전 생애에 걸쳐 OE에서 계속합니다.
그러나,이 조직의 사용의 단점은 비 - 신경 세포와 함께 16 후각 생검의 실질적인 오염이다. 예를 들어, 이전의 연구에서 OE 유전자 발현 연구에 사용 된 총 RNA 비 신경 세포 (17)로부터 전체 RNA를 포함 비강 생검 조직에서 추출한 RNA를 함유 하였다. 따라서, 이전의 접근법은 세포의 품질에 의해 제한되어왔다. 이 문제를 극복하기 위해 새로운 접근 방식을 구하는 레이저 캡처 미세 절제 (LCM)와 비강 조직 검사를 결합하여 풍부한 신경 세포 집단은 18 개발되었습니다.
LCM은 적외선 레이저와 함께 19-21 UV 레이저 절삭을 사용하여 세포의 선택적 분리를 허용하는 기술이다. OE 방식과 결합 LCM함으로써 신경 세포 (18)의 농축을 강화, 비 신경 세포에 의해 OE 상당한 오염을 최소화 할 수 있습니다. 또한, 신경 층함으로써 염색에 대한 필요성을 제거 현미경 점막하 층으로부터 구별 될 수있다. 신경 세포 유형은 또한 관심 7 세포 유형에 의해 발현되는 일차 항체를 사용하여 다른 세포 집단 구별 될 수있다. 따라서,이 절차는 유전자 발현 연구, 면역 및 기타 형태 학적 연구에 사용할 수있는 거의 순수한 신경 세포 집단의 농축을위한 쉬운 방법을 확립한다.
ve_content는 ">이 연구는 질병 상태와 치료 반응과 관련된 후각 신경 세포의 분자 변화를 조사하기 위해 실험 플랫폼을 구축하는 것을 목표로하고있다.이 문제를 해결하기 위해, BD의 DSM-IV 진단 기준을 충족 금연 환자의 작은 세트에 기반 유전 연구에 대한 진단 인터뷰 (DIG) (22)는 두 개의 코 조직 검사를 받아야하는 채용되었다 : 리튬과 두 번째 생검 한 조직 검사 전처리, 경구 리튬 치료 6 주 후에 또한, 자격 BD 환자 수 있어야합니다. 우울증 증상 몽고메리 - ASBERG 평가 척도 (MADRS) (23) 투여 임상의 60에서 ≥10 득점에 따라 (YMRS) 경조증 또는 조증 증상, 젊은 매니아 평가 척도 투여 임상에 56 점 만점 점수 ≥10에 따라 . 24;. MADRS 모두 저울에 대한 임상의 간의 합의에의 YMRS있는 Rater-간 레이터 계수 모두 또는 ≥10는 조직 검사 후 신경 enri 0.96했다>는LCM에 의해 OE에서 CHED. 신경 조직 및 농축로부터 고품질의 RNA 추출을 위해, 추가의 품질 관리 방법에 따라 실시간 RT PCR은 관심 유전자의 사전 및 사후 처리의 발현 수준을 조사하기 위해 실시되었다. 다음의 섹션은이 방법의 유효성 검사에 대한 설명, 프로토콜의 최적화를 강조 표시하고 문제 촬영 프로토콜을 적용 된 전략이 포함되어 있습니다.Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
참고 :이 연구의 모든 연구 자원 봉사자는 하워드 대학의 심사위원회 (Institutional Review Board) 및 존스 홉킨스 대학의 승인을 동의 문서를 투여 하였다. 동의 문서에 서명함으로써 동의 만 참가자들은 연구에 등록되었다. 이 분석을위한 연구 기반을 구성 : 20 명 (12 BD 10 컨트롤, 30 % 남성)과 38.2 (14.1) 년의 나이 (SD)를 의미한다.
참고 : 유리 및 플라스틱 표면에서의 RNase 오염을 제거의 RNase 보내 겠 모든 표면을 스프레이.
1. 조직 검사 절차
- 연구 참가자의 비강에 국소 리도카인 (xylocaine) 액체 4 %와 oxymetazoline 염산 0.05 % 스프레이와 시간을 마비의 15 분을 할 수 있습니다.
- 리도카인과 oxymetazoline의 혼합물에 ½ × 3 인치 수술 cottonoids을 만끽하고 비중격의 우수한 부분을 따라 비강에 삽입하고 15 분 동안 앉아 할 수 있습니다.
- 30 ° 강성을 사용하여비강 내시경, 비강의 상부를 찾아 여러 개의 작은 표본을 고려하여 비중격의 우수한 부분에서 최대 물고 코 집게를 사용하여 코 점막을 제거합니다.
조직 블록 2. 제조
- 직전 생검 조직이 매체를 동결 표준 크기의 cryomolds를 입력합니다.
- 멸균 핀셋을 사용하여, 동결 배지에서 신선한 조직을 탑재하고 드라이 아이스상에서 정지. , 냉동 매체 cryoblock의 나머지 부분을 채우기 드라이 아이스에 cryoblock을 동결하고, -80ºC에서 저장 블록.
3. 냉동 절편
- 냉동 절편 직전 폴리에틸렌 나 프탈레이트 (PEN) 막 유리 슬라이드를 준비한다. 5 분의 RNase 보내 겠 솔루션으로 슬라이드를 스프레이. 그런 디 에틸 피로 카보 네트 (DEPC) 물에 슬라이드를 씻어 30 분간 자연 건조를 할 수 있습니다. 30 분 동안 UV 빛 아래 건조 슬라이드를 활성화합니다.
- 동결 절단 (Cryosections)는 각각 30 μm의에서 완전히 차단합니다. 건조 i에서 슬라이드를 유지CE 및 섹션은 가능한 한 많은 냉동. 완료시 -80 ºC에서 보관 슬라이드.
4. 레이저 캡처 이외에 Microdissection
- 직전 미세 절제에 슬라이드를 탈수하여 시작합니다. 60 % (2 ㎖, 15 초), 80 % (2 ㎖, 15 초), 95 % (3 ㎖, 25 초), 100 : 각 슬라이드에 다음 에탄올 시리즈를 적용 한 후 냉동 슬라이드하자 10 초간 해동하고, % (7 ㎖를, 60 초).
- 에 광 활성화 현지화 현미경 (PALM) 현미경을 켜고 설정 다음 조건에 : (82)에 에너지를 설정 10 배 배율의 경우, (74)에 초점을 맞추고 속도 25 - 30 20 배 배율의 경우, (63)에 에너지를 설정, 67에 초점 속도 및 5 - 6. 최적의 절단 결과를 얻기 위해 필요한만큼 조정한다.
- 시각적으로 20 배 또는 10 배의 배율을 사용하여 신경 세포를 식별합니다. 염색 과정의 사용없이 현미경 기본 서브 점막 표면 후각 뉴런 얇은 층을 구별. 조밀 한 기둥 모양 (18)로 신경 세포를 관찰합니다.
- 4.2 단계에서 상기 한 현미경에서 연필 기능을 사용하여 신경 층을 중심으로 추적. 레이저에서 신경 세포의 연소를 방지하기 위해 약간 떨어져 뉴런에서 추적합니다. 이는 고품질의 RNA를 얻기 위해 필수적이다. 그런 다음 레이저 유도 절단을 시작합니다.
- 좋은 팁 미세 절제 집게를 사용하여 절개 섹션을 들고 얼음에 100 μL 용해 버퍼를 포함하는 마이크로 튜브에 조직을 넣어. 하나의 샘플에서 얻은 모든 신경 부분에 대해 반복합니다. 50 분을 초과 할 수 없습니다 샘플 당 총 해부 시간.
- 해부가 완료 즉시 소용돌이 샘플 해물과 드라이 아이스 계속되면. 총 RNA 격리를위한 -80ºC에서 보관 샘플.
총 RNA 및 품질 관리 분석 5. 분리
- 얼음에 해동 샘플 해물. 볼 (수정없이 업체로의 프로토콜에 따라 DNase의-I의 불 활성화와 RNAqueous 마이크로 키트 총 RNA 분리를 수행합니다 <강한> 그림 1). 용출 총 부피는 약 20 μL이다.
- RNA의 농도를 측정하고 Bioanalyzer를 사용하여 RNA 무결성 번호 (RIN)와 RNA의 품질을 평가한다. 도 2의 품질 관리 기준을 만족 샘플 cDNA 합성에 사용될 수있다.
6. cDNA를 합성
- 검증 된 상용 키트를 사용하여 cDNA를 합성 (시약의 표 참조). 튜브 당 8 ㎕의 총 부피로 RNA (이용 가능성에 따라)의 RNase없는 물과의 NG 1.0 - 0.1를 조합하여 어닐링 공정을 수행한다. 그런 다음 10 μL의 총 볼륨, 튜브 당 혼합 올리고 D (T) 20 프라이머 1 μL, 10 mM의 dNTP의 1 μl를 추가합니다.
- 5 분 65 ° C에서 부드럽게 소용돌이와 원심 분리기 샘플 및 어닐링 샘플. 얼음에 반응이 종료 된 후, 즉시 냉각 샘플.
- 표 1의 사양에 따라 마스터 믹스 솔루션을 준비합니다. 그런 다음 9.5 μ를 추가각 튜브에 L 마스터 믹스 및 상업적으로 제조 된 역전사 효소 (RT)의 0.5 μL. 대신 RT의 관을 제어하는 0.5 μL의 RNA 분해 효소가없는 물을 추가합니다.
- 없이 자전거로, 50 분, 5 분 및 최종 4 ºC 유지를위한 다음 85 ºC 50 ºC에서 처음 배양과 RT 반응을 실행합니다.
- 물과 나누어 함께 5 배의 모든 샘플을 희석. -80 ºC에서 보관 샘플.
7. 리얼 타임 PCR - 신경 농축 확인
- . 표 2의 사양에 따라 마스터 믹스 솔루션을 준비 같은 GAPDH와 같은 내부 통제를 사용합니다. 신경 농축을 결정하기 위해 undissected 조직에 OMP 식 microdissected 조직에서 후각 마커 단백질 (OMP) 식을 비교.
참고 : OMP는 후각 신경 세포 마커입니다.
OMP 서열 포워드, 5'- CTGTCGGACCTGGCCAAG-3 '
, 역 5'-CACCCTCGCCAAAGGTGA-3 '
GAPDH 순서 : 앞으로, 5'-CATGAGAAGTATGACAACAGCCT-3 '
역, 5'-AGTCCTTCCACGATACCAAAGT-3 '. - cDNA를 각 웰 3 μL에 마스터 믹스의 7 μl를 추가하여 PCR 플레이트를 설정합니다.
- 300 XG (1,300 RPM)에서 5 분 동안 원심 분리 판. 이러한 SYBR 푸르 qPCR의 상업적인 수퍼 믹스 지정된 기본 열 사이클링 조건을 이용하여 실행을 리얼 타임 PCR 반응.
- 데이터를 (사양 그림 2 참조) 분석합니다.
8. 리얼 타임 PCR - 관심의 유전자의 발현
- 2 배 이상의 신경 세포의 농축을 보여 샘플을 수행합니다.
- 각 프로브 표 3의 사양에 따라 별도의 튜브 (이자 및 VIC 표지 GAPDH의 FAM 표지 프로브) 얼음에 마스터 믹스를 준비합니다.
- cDNA를 각 웰과 2 μL 8 μL 마스터 믹스 PCR 플레이트를 설정합니다.
- 300 XG (1,300 RPM)에서 5 분 동안 접시를 원심 분리기. DEF를 사용하여 실시간-PCR 반응을 실행제조자의 유전자 발현 마스터 믹스 프로토콜에 따라 AULT 열 사이클링 조건. 식의 결과를 (사양 그림 2 참조) 분석합니다.
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Representative Results
분자 서명의 연구에서 프로토콜 및 문제 해결 전략이 성공적으로 최적화되었다. RNA 샘플을위한 품질 및 신경 농축 기준 하류 리얼 타임 PCR 분석에 사용되는 표준화 하였다. RIN 및 RNA의 농도는 검출 된 발현 수준을 교란 요인으로 조사 하였다. 1에서부터 RINs 여러 샘플의 분석을 바탕으로 - (10)는, 상술의 ~ 3.0의 최소 RIN은 본 연구에서 분석 하류에 충분하다고 판단되었다. 결과적으로, cDNA의 합성을위한 RNA 량이 1.0 NG로 표준화 하였다. 따라서, 상기 RIN 고품질 시료 1.0 ~ 3.0 및 NG의 RNA 양의 cDNA로 변환시켰다. 0.1 샘플 - 적절한 샘플 크기가 구하기 어려운 경우 RNA 1.0 NG가 사용될 수있다.
신경 엔리치 실시간-PCR 분석을 사용하여 확인 하였다. microdissected 샘플 OMP 유전자 발현 수준은 undissected 시료와 비교 하였다신경 층이 농축 된 경우의 확인합니다. 비 해부 조직에 비해 두 배 이상 OMP 식 Microdissected 샘플이 사용됩니다.
따라서,이 기준을 적용하여, 검증 된 OE 뉴런의 분자량 변화를 연구하기위한 제안 된 방법의 타당성.도 3은이 방법을 나타내는, GSK-3β의 발현 수준은 리튬보다는 비특이적 외인성 인자에 의해 영향을받는 것을 도시한다 리튬 전과 치료 후 특정 분자량 변화를 탐지하기에 충분하다. 구체적으로는, BD 리튬 치료 반응과 관련된 서명의 분자량 변화는 임상 데이터와이 데이터를 결합 분자에 의해 해결 될 수있다.
그림 1. RNA 추출 및 DNase의 불 활성화 프로토콜. flowchart는 LCM 후 샘플에서 RNA를 추출하는 과정을 보여줍니다. 총 RNA는 약 20 μL의 부피 최대 RNA를 수득 두 번 용리. 용출 샘플은 다음 DNase의 불 활성화에 대한 DNase의 나는 치료를 받아야. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2. 프로토콜의 개요.이 그림은 연구 실험에 대한 전체 프로토콜을 요약 한 것입니다. 코 조직은 처음 생검 및 cryoblocks로 고정됩니다. 조직 절편의 후 뉴런 층 LCM을 사용하여 해부. RNA 추출 및 DNase의 불 활성화는 제조업체의 지침을 (그림 1 참조)를 사용하여 수행됩니다. 품질 관리 기준을 만족 샘플 (RIN 및 RNA 량) 우리의 cDNA를 합성하는 데 사용되는신경 농축 분석 에디션. 농축 샘플을 원하는 대상과 실시간-PCR 분석에 사용된다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
BD 및 제어 샘플에도 3 GSK-3β 발현이.이 도면은 제 1 및 제 2 생검 간의 대조 시료에서 GSK-3β 발현 수준 BD 샘플에서 GSK-3β 발현 수준의 변화 전후 리튬 처리 및 일관성을 도시한다. 함께 찍은, 이러한 데이터는 GSK-3β식이 리튬보다는 비 특정 외생 적 요인들에 의해서 영향을 받는다는 것을 보여줍니다.
| 시약 | 체적 |
| 10 × RT 버퍼 | 2 μL |
| 25 mM의의 MgCl | 4 μL |
| 0.1 M DDT | 2 μL |
| 의 RNase 아웃 | 0.5 μL |
| 첨자 III | 0.5 μL |
| 의 RNase없는 물 | 1 μL |
표 1의 cDNA 합성 마스터 믹스 솔루션.
| 시약 | X1 | X (샘플 수) |
| 템플릿 DNA | 3 μL | - |
| SYBR 그린 | 5 μL | |
| 프라이머 믹스 | 0.8 μL | |
| 물 | 1.2 μL | |
| 합계 | 10 μL | - |
표 2. 신경 농축 PCR 마스터 믹스 솔루션.
| 시약 | X1 | X (샘플 / 프라이머 #) |
| dWater | 2 μL | |
| 마스터 믹스 | 5 μL | |
| FAM 레이블이 프로브 | 0.1 μL | |
| VIC 레이블이 프로브 | 0.5 μL | |
| cDNA를 | 2 μL | - |
표 3. 대상 PCR 마스터 믹스.
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Discussion
코 조직 검사 및 LCM을 결합하여 풍부한 후각 신경 층을 얻기위한 새로운 플랫폼을 제시하고 본 연구에서 검증되었습니다. 이 기술은 광범위하게 영향을 미칠 수 있습니다. 이 분야에서 폭 넓은 영향을, 치료 반응을위한 것들을 포함 바이오 마커 연구, 및 다른 조건에 대한 신경 정신병 약물 발견 노력으로 적용될 수있다.
다운 스트림 응용 프로그램에 대한 의무 고품질의 신경 세포를 얻으려면 몇 가지 중요하고 문제 해결 단계를주의해야합니다. 적절한 샘플 크기를 갖도록 환자 당 후각 조직의 6 개 - 우선,도 4를 얻었다. 샘플 RNA 분해에 민감하기 때문에 둘째, 적절한 온도에서 조직을 유지 된 RNase 무료 장비와 표면, 사용 장갑 작업, 샘플을 통해 직접 흡입하지 않도록 할 것. RNA 품질이 여전히 낮은 경우, 50 분 이내에 완료 미세 절제를 고려하고 즉시 절개 또는 vort 후 RNA 추출을 수행전 시료는 즉시 -80 ° C에서 저장 될 때까지 드라이 아이스 계속. RNA의 수율을 증가시키기 위해, LCM 중 해부 섹션들의 수를 증가시킨다.
신경 정신 질환에서 뇌 관련 분자의 변화를 연구의 도전으로 인해 인간의 뇌를 연구하는 접근성의 부족으로 존재한다. 다른 방식의 접근은 말초 혈액 세포, 부검 뇌의 연구 및 유도 만능 줄기 (IPS) 세포를 포함한다. 혈액 세포는 질병 관련 신경 세포의 변화를 표현하지 않을 수 있습니다. 부검 뇌는 질병의 진행 및 약물 반응과 관련된 동적 상태 변화를 연구하는 자원이 될 수 없습니다. 이러한 흔적은 재 프로그래밍과 세포의 유지 보수 과정 중에 삭제 될 가능성이 있기 때문에 만능 줄기 세포는 직접, 상태의 변화를 반영하지 않을 수 있습니다. 따라서, OE 조직을 사용하는 장점은 신경 콘텍스트 모두 상태 및 동적 변화를 연구 할 수있는 능력이다. 특히, IPS는 신경 줄기를 도출세포는 적절하게 배양 및 재 프로그래밍 단계에 따른 리튬 치료 6 주,의 효과를 반영하지 않을 수 있습니다. 본 논문에서 제시하는 방법론은 우리가 처리 관련 분자의 변화를 연구하고 임상 증상의 변화에 관계 할 수 있습니다. 이는 적어도 현재, OE 조직에서 얻은 뉴런의 양이 분자 수준에서의 연구에 충분하지만, 면역 응용 프로그램을 통해 단백질의 특성에 한정되지 않을 수 있다는 점에주의해야한다. 따라서, 기술적 개선도 예상된다.
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Disclosures
저자는 상업적 이익과 재정적 관계를보고하지 않습니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tissue Preparation | |||
| Tissue-Tek Cryomold Molds | Sakura Finetek | 4557 | |
| Tissue-Tek O.C.T. Compound | Sakura Finetek | 4583 | |
| Cryosectioning | |||
| Membrane Slide 1.0 PEN (D) | Carl Zeiss Microscopy | 415190-9041-000 | |
| Rnase Zap | Ambion | AM9780 | |
| DEPC Treated Water | Quality Biological | 351-068-131 | |
| Microdissection | |||
| Microscope: PALM Series MicroLaser System | Carl Zeiss Microscopy | Model: Axiovert 200M Software: Robo v3.2 |
|
| No. 5 Dumont Microdissction Forceps | Roboz | RS-49085 | |
| RNA Extraction | |||
| RNAqueous Micro Kit | Ambion | AM1931 | |
| cDNA Synthesis | |||
| SuperScript III First Strand Synthesis Kit | Invitrogen | 18080-051 | |
| OMP qPCR | |||
| SYBR GreenER qPCR SuperMix | Invitrogen | 11760-500 | |
| Taqman qPCR | |||
| TaqMan Expression Assay Probes | Applied Biosystems | Various | |
| TaqMan Gene Expression Master Mix | Applied Biosystems | 4369016 | |
References
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