Waiting
Traitement de la connexion…

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Behavior
Click here for the English version

Behavior

Een methode om het effect van milieueisen op paring gedrag in te testen Published: July 17, 2017 doi: 10.3791/55690
Automatic Translation
1, 1
1Groningen Institute for Evolutionary Life Sciences, University of Groningen

Summary

We analyseren een analyse om de milieu- en genetische signalen te analyseren die invloed hebben op paringsgedrag in de vruchtvlieg Drosophila melanogaster .

Abstract

De seksuele aandrijving van een individu wordt beïnvloed door genotype, ervaring en milieuomstandigheden. Hoe deze factoren elkaar interpreteren om seksueel gedrag te moduleren, blijven slecht begrepen. In Drosophila melanogaster beïnvloeden milieuechnieken, zoals beschikbaarheid van voedsel, paring, die een tracteerbaar systeem biedt om de mechanismen te onderzoeken die seksueel gedrag moduleren. In D. melanogaster worden milieuechnieken vaak genoteerd via de chemosensorische damp- en olfactorische systemen. Hier presenteren we een methode om het effect van milieuchemische signalen op paring gedrag te testen. De test bestaat uit een kleine paring arena met voedingsmedium en een parenpar. De paringsfrequentie van elk koppel wordt 24 uur per dag gecontroleerd. Hier presenteren we de toepasbaarheid van deze test om milieuverbindingen uit een externe bron te testen via een persluchtsysteem, evenals manipulatie van de milieukomponenten direct in de parkeerplaats. De uHet zien van een luchtdruksysteem met drukwerk is bijzonder nuttig om het effect van zeer vluchtige verbindingen te testen, terwijl het direct manipuleren van componenten in de paringsarena van waarde kan zijn om de aanwezigheid van een verbinding te bepalen. Deze analyse kan worden aangepast om vragen te beantwoorden over de invloed van genetische en milieueisen op paringsgedrag en fecunditeit, evenals ander mannelijk en vrouwelijk voortplantingsgedrag.

Introduction

Reproductieve gedragingen hebben meestal hoge energiekosten, vooral voor vrouwen, die grotere gameten produceren dan mannen en moeten zorgvuldig de voorwaarden kiezen om hun ontwikkelende nakomelingen te verhogen. Vanwege de energiekosten is het niet verwonderlijk dat reproductie verbonden is met voedingsomstandigheden. Dit geldt bij de meeste, zo niet alle dieren, waaronder zoogdieren, waarvan de puberteit kan worden vertraagd door ondervoeding, en wiens seksuele aandrijving negatief kan worden beïnvloed door voedselbeperking 1 .

De reproductie van het genetisch model organisme Drosophila melanogaster wordt ook beïnvloed door voedingsomstandigheden. Mannelijk hof op hoger niveau in aanwezigheid van voedsel vluchtige stoffen 2 , en vrouwtjes zijn meer seksueel ontvankelijk in aanwezigheid van gist, een belangrijke voedingsstof voor eierproductie en nakomelingen 3 , 4 , 5 . DezeEvolutionaire geconserveerde voortplantingsrespons op voedsel biedt de mogelijkheid mechanismen te bestuderen die de beschikbaarheid van voedsel voor het milieu verbinden met seksuele voortplanting in een genetisch tracteerbaar en tijd-efficiënt organisme. Inderdaad, werk in D. melanogaster heeft de insulineweg betrokken als een belangrijke regelaar van de verband tussen voedsel en paringsgedrag 6 . Het heeft ook aangetoond dat de daad van paring zelf de voedselvoorkeur van vrouwen verandert, evenals de bijbehorende chemosensorische neuronen 7 , 8 , 9 .

Het is duidelijk dat voedselaanwijzingen het voortplantingsgedrag beïnvloeden in D. melanogaster . Deze effecten lijken vooral te beïnvloeden vrouwen, met name degenen die al 5 hebben gemoeid. Om deze acute effecten van milieuomstandigheden te testen, kan de analyse die klassiek gebruikt wordt voor vrouwelijk paringsgedrag echterNiet erg geschikt als gevolg van de lange onderbrekingen tussen paringsafspraken. In de klassieke herhalende test, maagd een maagdvrouw eerst met een mannetje, en wordt onmiddellijk geïsoleerd en gepresenteerd met een nieuw mannetje 24 tot 48 uur later. Deze klassieke test is met groot succes gebruikt om componenten van het mannelijke ejaculaat te identificeren die het vrouwelijke gedrag en de vrouwelijke respons 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 veranderen . De doorlopende paringstest die hier wordt aangetoond, is dus een aanvulling op klassieke paringsbepalingen die kunnen worden gebruikt om het acute effect van milieuomstandigheden op het voortplantingsgedrag te bestuderen.

Met behulp van de continue analyse voor paringsgedrag die hier wordt uitgelegd, hebben we eerder aangetoond dat een paar vliegen die blootgesteld zijn aan gist, sEeuwige tijden over een 24 uur observatieperiode 5 , 19 , 20 , 21 , terwijl vliegen die niet aan voedsel blootgesteld worden, zal slechts een keer 5 herstellen. Deze bevinding kan puzzelend zijn in het licht van een groot deel van de D. melanogaster literatuur die aangeeft dat vrouwen niet meerdere dagen na een eerste paring remitten (in referenties 10 , 11 onderzocht). Deze discrepantie kan echter gemakkelijk worden verklaard door testomstandigheden, waarbij een vrouw voor een tot meerdere dagen wordt geïsoleerde voordat er een nieuwe paringsgevoel wordt aangeboden. Als het paar niet in deze uurlange observatietijd voldoet, wordt het vrouwtje niet beschouwd als ontvankelijk. Bovendien moet de hoge paringsfrequentie niet verrassend zijn, aangezien de gegevens van wild gevangen vliegen aantonen dat vrouwtjes sperma bevatten van 4 tot 6 mannen in hun opslagorganen; Dus inDiceren dat vrouwtjes natuurlijk meerdere malen 22 , 23 remmen.

Hier demonstreren wij het gebruik van deze continue paring test om te ontrafelen hoe vliegen verzamelen en combineren van informatie over milieuomstandigheden om de paringsfrequentie te moduleren. Deze test maakt het mogelijk om een ​​relatief groot aantal parende paren te testen voor genetische studies en om de invloed van vluchtige en niet-vluchtige milieubeelden te testen. De test loopt typisch 24 uur, maar kan worden uitgebreid tot 48 uur, waardoor het testen van cyclische milieubeelden zoals de lichtdonkere (LD) cyclus mogelijk is. We tonen deze analyse aan door de invloed van vluchtige signalen uit een gistcultuur in een drukluchtsysteem te testen in combinatie met de beschikbaarheid van niet-vluchtige gistvoedingstof in het voedingssubstraat.

Het perslucht systeem pompt voortdurend vluchtige signalen in een parkeerplaats die bevatEen voedingssubstraat en een testpaar (waarvan het paringsgedrag wordt gecontroleerd). Om verder te bepalen welke specifieke eigenschappen gist beïnvloedt, testen we een belangrijke vluchtige verbinding van gist, namelijk azijnzuur 24 , in combinatie met een aminozuurgehalte dat overeenkomt met die van gist in het voedingssubstraat, in de vorm van pepton (amino Zuren afgeleid van enzymatische vertering van dierlijke eiwitten). Samen tonen deze experimenten aan hoe het effect van milieu-signalen op het paringsgedrag van D. melanogaster met deze test kan worden getest.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Milieu gecontroleerde paringsbox

  1. Om een ​​gecontroleerd en makkelijk te reinigen testgebied te verzekeren, moet u een keukenkast van roestvrij staal van 120 cm x 64 cm x 85 cm installeren zoals geïllustreerd in figuur 1A.
    1. Boor een gat aan de achterzijde van de kast net onder het plafond en vier sets van vier gaten in de zijkanten, elk met een diameter van 2 cm. Boor de eerste twee sets van vier gaten aan weerszijden van de doos op een hoogte van 7 cm van de bodem van de doos en met 12,5 cm tussen de gaten. Boor de andere twee sets aan elke kant van de doos op een hoogte van 35 cm van de bodem.
      OPMERKING: De vier sets van vier gaten worden gebruikt voor camera stroomkabels en luchtpompslangen om de kast in te voeren en te verlaten. Het achterhoofd wordt gebruikt voor de stroomkabels van een lichtbord.
    2. Bouw een lichtbord met 18 rijen van 40 afwisselende witte en rode lichtgevende diodes (LED) met 2,5 cm ruimte tussen elk licht. Monteer de witte en rode LED's in een circuiT met voeding. Verbind elke LED in serie met een weerstand van 560 Ω, 0.25W en 5% tolerantie.
      OPMERKING: De emissiegolflengten van het rode licht spannen van 590-661 nm met een scherpe piek bij 627 nm. De resulterende lichtintensiteit in het experimentele gebied is ongeveer 900 lux met beide lichten aan en 90 lux met alleen de rode lichten aan; Dit werd gemeten met behulp van een smartphone light meter app.
    3. Bevestig het lichtbord aan de bovenkant van het roestvrijstalen kast en steek de stroomkabels door het gat aan de achterzijde.
    4. Sluit de adapter van de witte LED's aan op een stroomregelaar, om de witte LED in de donkere fase van het experiment uit te schakelen. Sluit de adapter van het rode licht aan, welke vliegen blind zijn voor 25 , op een regelmatige voeding om deze gedurende de gehele duur van het experiment aan te houden.
    5. Bevestig een 110 cm en twee 54 cm lange metalen haakjes, elk met een breedte van 0,5 cm, aan de binnenkant van de doos op een hoogte van 50Cm van de bodem van de doos. Plaats een matglasdiffusieplaat (afmetingen van 119,0 cm x 54,5 cm x 0,5 cm) op deze haakjes.
    6. Voeg drie lagen filterpapier (120 cm x 50 cm) tussen het lichtbord en de glasplaat toe om het licht te diffuderen en de glans op het oppervlak van de parkeerplaatsen te beperken (beschreven in sectie 4). Plak twee filterpapierbladen op hun lange rand op 120 cm lange houten staven met magneten (aan de zijkant) om ze vast te houden aan de binnenkant van de metalen kast; Voer deze actie 3 keer uit.
    7. Bevestig vier ventilators aan de zijkanten van de doos om een ​​luchtstroom te creëren die de paringskast continu doorlaat. Bevestig de eerste set van 8 cm ventilatoren tussen het lichtbord en de glasplaat, met de inlaat van de lucht aan de linkerkant en de uitlaat aan de rechterkant van de doos, om de opbouw van warmte die door het lichtbord wordt gegenereerd te minimaliseren.
    8. Bevestig de tweede set van 12 cm fans 25 cm boven de bodem van de kast om een ​​uitwaartse luchtstroom te creëren die de iNside van de kast en koelt het naar een stal 26 ° C. Bevestig de ventilatoren aan de uitlaatzijde aan een zuigslang en leid de luchtstroom uit de kamer om te voorkomen dat de lucht in de kast opnieuw wordt gebruikt.
  2. Stel twee stands (ongeveer 48 cm lang) op met twee klemmen, een op 28 cm en een op 30 cm van de basis van de stand. Fixeer een webcam op elk van de klemmen. Sluit de 4 camera's aan op een computer die de monitoring software uitvoert.
  3. Plaats A4-lakens onder elke webcam. Gebruik onbedrukte witte lakens of lakens met voorgummerde ruiten van 7 bij 5 vierkanten met 4 cm assen om tegemoet te komen aan paringsarena's (beschreven in sectie 4).
    OPMERKING: een HD-webcam camera met 78 ° groothoekweergave en een resolutie van 5 miljoen pixels kan een gebied van 21 cm x 30 cm bedekken die overeenkomt met een A4-vel en een monitor tussen 20 en 35 parkeerplaatsen.

2. Flying en Collection

  1. Plaats 20 mannelijke en 20 vrouwelijke wild-type Canton-SVliegt in flesopvangflessen die 45 ml rijk vliegvoedingsmedium bevatten (zie rubriek 3) gedurende drie tot vier dagen. Breng dezelfde volwassenen drie keer door eerst ze te tikken en vervolgens in verse flessen.
    1. Plaats de flessen in een broeikas bij 25 ° C en 12 uur: 12 uur lichtdonkelcyclus met lampen om 09:00 (Zeitgeber tijd (ZT) 0). Een nieuwe generatie zal ongeveer 10 dagen later verschijnen.
  2. Verdoof de resulterende, nieuwe verduisterde vliegen op kooldioxide pads voor niet meer dan 5 minuten en haal ze in flesvoedselflessen op met een verfborstel.
    1. Verzamel maagden (nieuwe eclosed) vrouwelijke en maagdelijke mannen uit de wild-type Canton-S- voorraadflessen in 2,5 cm x 9,5 cm vlieghoogteflessen met 6,5 ml rijkvliegvoedselmedium.
  3. Leeftijd die vliegen in dezelfde geslachtsgroepen van 20 vliegt in 5 tot 8 dagen bij 25 ° C en 12 uur: 12 uur lichtdonk cyclus en licht om 09:00 (ZT 0).
  4. transfDe vliegen naar verse vliegende opvangflessen op de dag voor het experiment.

3. Voedselmedium Voorbereiding

  1. Bereid 1 liter rijk vliegmedium als volgt uit.
    1. Giet 1 liter kraanwater in een 2 liter glazen beker met een magnetische roerbalk en plaats de beker op een magnetische kookplaat. Houd het roeren af ​​en draai de verwarming tot 300 ° C tot de kooktemperatuur bereikt is.
      OPMERKING: Tijdens de lange kooktijd in de volgende stappen verdampt een deel water, maar samen met de toegevoegde ingrediënten resulteert dit protocol in 1 liter rijk vliegmedium bij kamertemperatuur van ongeveer 22 ° C.
    2. Roer de roer op tot 500 ronden per minuut (rpm) en voeg de volgende ingrediënten toe aan het kokende water: 10 g agar, 30 g glucose, 15 g sucrose, 15 g maïsmeel, 10 g tarwekiem, 10 g sojamel, 30 g Melasse, 35 g actieve droge gist. Wacht tot de gist krachtig schuimt en draai de temperatuur van de hete plaat afVeroudering tot 120 ° C.
    3. Na 10 min. Draai de kookplaat tot 30 ° C en laat het mengsel roeren totdat het afgekoeld is tot 48 ° C. Monitor temperatuur door een thermometer direct in het voedsel in te voegen.
    4. 2 g p-hydroxybenzoëzuurmethylester (tegosept, 100%) opgelost in 10 ml 96% ethanol. Voeg dit en 5 ml 1 M propionzuur toe aan het mengsel. Roer gedurende 3 minuten.
    5. Giet het vliegvoedingsmedium in de arena's (beschreven in sectie 4) om een ​​0,3 cm dikke laag aan de onderkant van de arena te maken.
      1. Gebruik een 200 ml glazen beker voor het gieten. Wanneer exacte hoeveelheden belangrijk zijn, gebruik een 10 ml serologische pipet.
  2. Bereid vliegmedium minus gist precies zoals beschreven in stap 3.1.1 tot en met 3.1.5, maar laat de gist in stap 3.1.2.
  3. Bereid medium met agar met of zonder pepton door 10 gram agar en 35 g pepton in 1 liter kokend water te mengen en stap 3.1.4 tot 3.1.5 uit te voeren.

4. MatinG Arena Voorbereiding

  1. Pierceer een gat ongeveer 0,3 cm in diameter aan de bovenkant van een 3,5 cm x 1,0 cm kunststof Petri-schotel met een verwarmde voorbereidingsnaald (verwarmd tot roodheid in een Bunsen-brander). Alternatief, gebruik een soldeerbout.
  2. Bij het bereiden van voedingsmedium met geurige verbindingen, eerste pipet 30 μL (1% van het uiteindelijke voedingsmedium, bijv. 100% azijnzuurzuurglazen) van de gewenste verbinding in de schotel voor de helft van de experimentele afwas. Laat de andere helft van de afwas legen ter vergelijking.
    OPMERKING: Met de hier beschreven beschrijving kan maximaal 140 arena's tegelijk worden getest.
  3. Giet met behulp van een 10 ml serologische pipet, 3 ml voedselmedium aan de onderkant van de schotel bovenop de gewenste verbinding. Bedek het met een kaasdoek om vervuiling te voorkomen en laat het medium ongeveer 1 uur bij kamertemperatuur stollen.
  4. Plaats een deksel op de afwas en plak ze aan beide kanten aan elkaar. Maak kleine paraffine filmproppen voor de gaten vanDe afwas door rollende stukjes paraffine film in 0,2 cm dikke rollen en snijd ze vervolgens in segmenten van 0,5 cm.

5. Gistcultuur voor geur

  1. Groei droge actieve gist op gistextractpeptondextrose (YPD) agar in een petroschotel van 14,0 cm x 2,06 cm. Draag handschoenen om contaminatie in deze stap te voorkomen.
    1. Bereid YPD agarplaten door 10 g gist extract, 20 g pepton, 22 g glucose (0 (+) - glucose monohydraat) en 15 g agar (zuiver) toe te voegen aan 1 liter kokend ultrauw water. Laag de bodem van de Petri-schotel wanneer alles is opgelost en in de koelkast bij 4 ° C, voor maximaal 2 maanden, opslaan.
    2. Sprinkel een paar korrels gedroogde gist op een YPD-mediumplaat, laat ze oplossen. Doe vervolgens de middelste plaat met een steriele lus. Bewaar de plaat in een 30 ° C incubator 's nachts. Bewaar daarna de cultuur in de koelkast voor maximaal 1 week.
  2. Bereid YPD vloeibaar medium iN 1 liter flesjes door 10 g gist extract, 20 g pepton, 22 g glucose (0 (+) - glucose monohydraat) en een roerbalk toe te voegen aan 1 liter ultraperout water.
    1. Autoclaaf gedurende 25 minuten bij 120 ° C en 1 bar druk. Bewaar daarna de flessen bij 4 ° C gedurende maximaal 2 maanden tot gebruik.
  3. Plaats open flesjes (4,5 cm) met een 0,35 cm dik siliconen septum.
    1. Knip twee kleine gaten in het septum om de barbedschroefkoppelingen goed te passen. Bevestig de kleine buis van polyvinylchloride (PVC) (diameters: buitenkant 0,8 cm en binnenkant 0,5 cm) aan beide uitlaten die de fles verlaten en op slechts een van de inlaten die de fles binnendringen. Zie afbeelding 1B voor illustratie.
    2. Wikkel de gemonteerde kappen en buizen in aluminiumfolie en autoclaaf gedurende 25 minuten bij 120 ° C en 1 bar druk.
  4. Draag handschoenen ter bescherming tegen verontreiniging in deze stap. Dip een steriele 100 μL pipettip in een van de gistkolonies van de YPD-agarplaat (dVerkleind in 5.1) en laat het in de geautoclaveerde YPD vloeibare medium fles.
    1. Cap deze gist-geïnoculeerde YPD vloeibare medium fles evenals een YPD medium controle fles (niet toegevoegd) met autoclave caps die gemonteerd zijn met in- en uitlaat (beschreven in stap 5.3). Zet beide flessen op afzonderlijke magnetische platen en roer bij 100 rpm bij kamertemperatuur gedurende 24 uur voor het begin van het experiment om de gistkweek te laten groeien.
    2. Verbind de inlappen van beide flessen om de aquariumpompen te scheiden om de gistcultuur te voorzien van lucht. Zorg ervoor dat u de uitlaat van de experimentele gistfles aansluit op een buis dat de gist ruikt uit de experimentele kamer om interferentie met het experiment te voorkomen.

6. Luchtpomp instellen

  1. Bevestig de grote PVC-buis (diameters: buitenkant 1,2 cm en binnenkant 0,9 cm) naar een persluchttoevoer en leid het door twee 1 L glas Erlenmeyer-flessen gevuld met geactiveerde houtskool aan de 800 mlLijn om de lucht te zuiveren. Gebruik ofwel lucht onder druk die gewoonlijk in laboratoria wordt geleverd als luchttoevoer, of koppel de buizen aan op een luchtpomp (hier werd de lucht gebruikt).
    OPMERKING: Slangmateriaal dient te worden geselecteerd op basis van de chemische eigenschappen van de vluchtige en getest om te voorkomen dat de vluchtige zich vasthoudt aan de voering van de buis (bijvoorbeeld polytetrafluoroethyleen, nylon of roestvrij staal).
  2. Maak twee luchtsplitsers uit 15 ml buizen en drie 1.000 μL pipettips elk.
    1. Maak drie gaten met een diameter van 1 cm. Eerst twee gaten verbranden, met een verwarmde voorbereidingsnaald (verwarmd rood in een Bunsenbrander), grenzend aan elkaar net onder het deksel van de 15 ml buis. Maak vervolgens het derde gat door de bodem van de buis te verwijderen.
    2. Plak de 1.000 μL pipetpunten in de gaten met het smalle uiteinde naar buiten gericht. Knip het uiteinde van de pipetstippen om een ​​grotere luchtstroom toe te staan.
  3. Sluit de grote PVC-buis aan op de uitlaat van de cKolen-gevulde Erlenmeyer-fles aan de pipetpunt onderaan de 15 ml buis. Voeg kleine PVC-buizen aan de twee horizontale pipetpunten toe en leid ze naar een controle en een experimentele fles.
  4. Om de verontreiniging van het YPD-medium tegen micro-organismen te voorkomen, bevestig de kleine buis aan een steriel injectiespuitfilter (0,45 μm poriegrootte) met een kunststof duw op de schroefdraadverbinding naar het filter en een schroef op een plastic schroefverbinding die het filter verlaat. Bevestig vervolgens de buis aan de inlaat van de YPD cultuurfles (zie figuur 1B ).
  5. Om te voorkomen dat luchtgist vanaf de kolffles naar de experimentele arena reist, bevestigt u een glazen buis (6,5 cm lang, buitendiameter = 0,5 cm en binnenste diameter = 0,3 cm) aan de uitlaat van elke YPD-cultuurfles met kleine buizen. Bevestig de PVC-buis aan de andere kant van de glazen buis en leid dit naar de onderste gaten (aan beide zijden geboord) van het proefdoos.
    1. Vul de buis met glasvezel en autoklaaf het voor gebruik.
  6. Voeg een andere 15 ml buisplitter (beschreven in punt 6.2) toe aan de kleine PVC-buis aan weerszijden van de proefkist om twee buizen in de doos op beide experimentele zijden te krijgen (dichtstbijzijnde uitlaat van de ventilatorluchtstroom rechts) En de bedieningszijde (dicht bij de inlaat van de ventilatorluchtstroom, links).
  7. Bereid 8x 25 ml serologische pipetten elk met 10 uitgangen om 80 paren paren tegelijkertijd te testen, dwz 40 voor elke luchtconditie.
    1. Breng 10 gaten met een diameter van 0,8 cm, 2 cm uit elkaar in de pipet.
    2. Knip het buitenste gedeelte van een 1 ml spuit in een kleine (2,5 cm) en een grote (5 cm) uitlaat.
    3. Plak deze afzettingen in de gaten met hete lijm.
    4. Wikkel een klein stukje plastic paraffinefilm rond het uiteinde van de afzettingen en bevestig een pipetpunt van 1000 μL. Diameter van de puntopening is 0,1 cm. Gebruik schone tips voor elk experiment.
    5. Bevestig twee serologische pipetten met behulp van een T-splitter met een buitendiameter ≥0,5 cm en korte stukken kleine PVC-buizen aan beide kanten aan beide kanten. Tape de pipetten plat op het wit papierblad (onder de camera's in de stalen doos).
    6. Met behulp van een luchtstroommonitor stelt u de luchtstroom in zodat de luchtsnelheid bij de uitgang van de 1000 μL pipetpunt 0,5 m / s bedraagt. Dit komt overeen met een luchtstroom van 0,0017 L / s per punt.

    7. Toezicht op paringsgedrag

    1. Gebruik een mondpipet (zoals beschreven in referentie 26 ) om 15:00 uur (ZT 6) een experimentele vrouw in een kleine Petri-schotel (beschreven in sectie 4) te plaatsen en haar 1 uur te acclimatiseren naar de parkeerplaats.
    2. Stel de experimentele doos (beschreven in sectie 1) als volgt op:
      1. Zet de lichten aan, dwz witte LED's op een 12 uur: 12 uur lichtdonkere cyclus aangesloten op een timer die deLicht om 09:00 (ZT0) en continue rode LED-LED's om toezicht te houden op de vliegen tijdens de donkere fase van het experiment. Zet de ventilatoren aan om de verwarming van de kast door de lichtbron te beperken en om te voorkomen dat overmatig geur buiten het testgebied wordt uitgezet.
      2. Sluit webcam camera's aan op een computer en start ze met de monitoring software voor beeldbewaking.
      3. Voor elke camera zet u de focus, helderheid en zoom in op de monitoring software.
        1. Klik met de rechtermuisknop op het camera scherm, open "camera eigenschappen" en unclick "automatische focus." Pas de "focus" aan om het raster of eventuele geschreven woorden op het papierblad te verduidelijken. Verander indien nodig de "helderheid" en "zoom".
      4. Stel het programma van de bewakingssoftware in om elke 2 minuten een foto te maken. Klik met de rechtermuisknop op elk camera scherm en kies 'bewerken camera' en dan de optie 'Acties'. Klik om de acties te starten "Bij gewone intErvals "en verander de tijd naar" 2 minuten. "Kies" Take Photo "voor selecte acties om te doen en eindelijk op" ok "te klikken.
      5. Klik met de rechtermuisknop op elk camera scherm en selecteer 'start monitoring'.
    3. Vervolgens na 1 uur (bij ZT 7) een wildtype-mannetje naar de Petri-schotel met behulp van de mondpipet, plaats de schotel op de A4-papierplaten onder de webcamcamera's en klik op 'Monitor monitoring' gedurende 24 uur. Voor het luchtpompexperiment plaatst u de schotel op zodanige wijze dat er een pipetuitgang is aangesloten op het ingangsgat van de parkeerplaats.
    4. Om het paringsgedrag van het echtpaar te analyseren, doe het volgende.
      1. Selecteer en open alle foto's in een beeldweergave-software en blad ze door in chronologische volgorde.
      2. Schrijf de datum, het experimentnummer, het schotelnummer en de starttijd in een spreadsheet in dezelfde rij in. Neem de starttijd van elke arena vanaf het moment dat het onder de webca staatM camera. Noteer de tijdstempel van de foto's.
      3. Markeer de starttijd van elke copulatie in dezelfde rij in de spreadsheet. Tel een paring als incident wanneer het mannetje het vrouwtje heeft gemonteerd en het paar blijft matig stationair en in dezelfde houding voor tenminste vijf opeenvolgende frames (10 min).
        OPMERKING: Dit criterium is gebaseerd op de gemelde lengte van de copulatie, variërend van 12 tot 27 minuten in D. melanogaster , en de waarneming dat copulaties van 10 min en meer vruchtbaar zijn 27 , 28 .
      4. Tel het aantal copulaties voor elke rij in de spreadsheet om de koppelingsfrequentie te bepalen. Als alternatief trekt u de starttijd van het experiment af vanaf de tijd van de eerste paring voor elke rij als maatregel van paring latency, of aftrek de tijd van de eerste paring vanaf de tijd van de tweede paring als maatregel om latentie te remmen.
        1. Om de rematietijd te berekenen, zorg ervoor datDefinieer de data van de eerste en tweede paring als opeenvolgende dagen in de spreadsheet software.
      5. Analyseer de gegevens met gemengde effectenmodellen, waarbij de normale verdeling van de gegevens wordt verondersteld en de datum van het experiment als een willekeurige factor wordt opgenomen, met behulp van een statistische software (zie de tabel van materialen) om de statistische betekenis van het onafhankelijke variabelen-voedselmedium te bepalen, Lucht type en interactie-zoals eerder beschreven 5 .
      6. Selecteer het beste uitlegmodel door de terugwaartse eliminatie van niet-significante onafhankelijke variabelen uit te voeren met behulp van log-waarschijnlijkheidsverhoudingstesten en de bijbehorende Akaike-informatie. Nadat u het model hebt uitgevoerd, inspecteert u de gegevensresiduen visueel om de normaliteit te bevestigen. Bevestig de homogeniteit van afwijkingen met behulp van de test van Levene. In geval van ongelijkmatige homogeniteit, transformeren de vierkante wortel de gegevens.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Met behulp van deze continue analyse, paringsgedrag en paringsfrequentie in specifiek, kan worden bepaald onder experimentele omgevingsomstandigheden. Om de omgevingsomstandigheden te beheersen, hebben we een roestvrijstalen keukenkast in een testgebied omgezet, met zijn eigen lichtbron en diffusie, die een hoge overvloed van licht en een minimale hoeveelheid schittering van de bovenkant van de parkeerplaatsen garandeert ( Figuur 1A ) . Het binnenste testgebied is volledig omhuld door roestvrij staal en glas, waardoor schoonmaken met organische oplosmiddelen, zoals hexaan of ethanol. Daarnaast is de kast voorzien van gaten die fungeren als inlaten voor buizen, waardoor vluchtige signalen van het perslucht systeem komen (zie figuren 1A en 1B ). Het persluchtsysteem, aangepast voor gistgeuren, bestaat uit een luchtstroom geleid door een vloeibare gistkweek voordat u de testarenen binnenkomt via 4 pipetplitters met10 uitgangen elk ( figuur 1C ). Het gehele systeem is luchtdicht en is voorzien van meerdere deeltjesfilters, zowel vóór als na het binnengaan van de gistcultuur, om verontreiniging met confounding geuren te minimaliseren ( Figuur 1B ).

Om het gebruik van deze test te demonstreren, hebben we getest of vluchtige signalen uit een gistcultuur paringsgedrag kunnen beïnvloeden. De lucht werd 24 uur door een vloeibare gistkweek geboekt en de luchttoevoeringen werden in de ingang van elke parkeerplaats geplaatst (zie figuur 2A ). In de helft van de parkeerplaatsen bevonden zich voedsel met gist (Food + yeast), en de andere helft bevatte vluchtvoedsel zonder gist toegevoegd (Food - Yeast). Een wildtype man en vrouw werden blootgesteld aan de geuren die afkomstig zijn van de externe gistkweek, en hun paringsfrequentie werd geregistreerd. Om te bepalen welke variabelen nodig zijn om de grafische resultaten te verklaren, hebben we gemengde effectenmodellen uitgevoerd, inclusief of excludDe onafhankelijke variabelen van voedselmedium, gistlucht, en een interactie van de twee. De gegevens in Figuur 2B worden het best weergegeven door een model dat de onafhankelijke variabelen van voedingsmedium (p = 0.001) en gistlucht (p = 0,061) bevat, maar er is geen verklaring voor interactie-effect. Ook al is de gistluchtvariabele niet significant in deze volledige dataset, is het nodig om de resultaten te verklaren. Analyse van gistlucht gescheiden voor voedingsmedium laat zien dat een paringspaar niet reageert op gistgeuren wanneer er geen gist aanwezig is in het voedingsmedium (lucht: p = 0,992), maar ze verhogen hun paringsfrequentie in gistlucht wanneer gist is Ook toegevoegd aan het voedingsmedium (lucht: p = 0,018). Samen tonen deze resultaten de toepasbaarheid van het persluchtsysteem om de invloed van milieu-geuren in combinatie met voedselmediumomstandigheden te testen.

We illustreren ook hoe het luchtpomp onder druk kan wordenGeadviseerd door milieu chemische aanwijzingen direct toe te voegen aan de test arena. Om aan te tonen welke specifieke gistverbindingen paringsfrequentie hebben beïnvloed, hebben we de hypothese getest dat het aminozuurgehalte van gist nodig is voor het effect op paring door een dosis pepton (gehydrolyseerde eiwitten) te plaatsen die overeenkomt met de aminozuren die door de gist in de agar worden geleverd Substraat voering van de paring arena. We hebben ook de noodzaak van azijnzuur, een van de belangrijkste vluchtige fermentatieproducten van gist, getest om de paringsfrequentie te verhogen. Dit werd gedaan door azijnzuur rechtstreeks toe te voegen aan het voedingsmedium. Een wildtype man en vrouw werden getest in arena's die agar of agar bevatten met pepton, met of zonder azijnzuur direct in het voedingsmedium ( figuur 3B ). Dit zorgt voor een zeer eenvoudig voedselmedium en een slechte omgeving; Daarom wordt de gemiddelde paringsfrequentie ook verlaagd in vergelijking met figuur 2B. De gegevens in Figuur 3B worden het best weergegeven door een model inclusief deOnafhankelijke variabelen van voedingsmedium (p = 0,002), azijnzuurlucht (p = 0.001) en de interactie van de twee (p = 0,022). Vrouwelijke ontvankelijkheid neemt toe op de aanwezigheid van azijnzuur, maar alleen in de toestand waarin pepton aanwezig is in het medium. Dit laat zien dat vliegen tegelijkertijd aminozuren en azijnzuur moeten aanvoeren om hun paringsfrequentie te verhogen ( Figuur 3B ). Dit toont aan dat het toevoegen van geurstoffen rechtstreeks op de test arena kan beïnvloeden paringsgedrag en dat die invloeden kunnen worden gedetecteerd in zeer eenvoudige omgevingsomstandigheden.

Figuur 1
Figuur 1: Diagram van de experimentele doos en het persluchtsysteem met gist. ( A ) Schematische illustratie van de milieu-gecontroleerde paringsbox beschreven in sectie 1. Beschrijving van de geannoteerde nummers en pijlen: 1. lichtbord met al Ternerende witte en rode lichten; 2. kleine ventilator; 3. 3 lagen filterpapier, elke laag bestaat uit twee filterpapierbladen; 4. Glasdiffusieplaat dat rust op haakjes die aan 3 zijden van de doos zijn bevestigd; 5. grote fan; 6. gaten voor buizen en kabels; 7. experimentele ruimte; Grote pijl, 50 cm naar de glazen plaat; Middenpijl, 35 cm hoogte voor de kabelgaten; En kleine pijl, 7 cm hoogte voor de buisgaten. ( B ) Schematische illustratie van de vloeibare gistkweek met luchtstroom, zoals beschreven in secties 5, 6.4 en 6.5. Beschrijving van de geannoteerde nummers: 1. disposable filter unit; 2. pet met siliconen septum en buiten- en inlaten; 3. vloeibaar medium; En 4. glasbuis met glasvezel. ( C ) Schematische illustratie van de luchttoevoeringen zoals beschreven in punt 6.7. Beschrijving van de geannoteerde nummers: 1. serologische pipet; 2. Slang gesneden uit 1 ml spuit en 3. 1000 μL pipet tip.Target = "_ blank"> Klik hier om een ​​grotere versie van deze figuur te zien.

Figuur 2
Figuur 2: Gist geur verhoogt de vrouwelijke ontvankelijkheid in de aanwezigheid van gist in het voedingssubstraat. ( A ) Schematische illustratie van een paringsarena met één mannetje en een vrouwtje en een pipetpunt uit de luchtafvoer in figuur 1C die door het ingangsgat komt. ( B ) Grafische presentatie van de respons in paringsfrequentie van een Canton-S koppel aan gistgeur met en zonder gist in het vliegvoedingsmedium (Voedsel - gist: medium lucht n = 12, gistlucht n = 13 en Food + gist : Medium lucht n = 24, gistlucht n = 23). Lijngrafiek met SEM-foutbalken en statistische uitvoer van gemengde-effectmodellen met lucht als de onafhankelijke variabele en de datum als zelfstandige willekeurige variabele voor elk voedingsmedium. De belangrijkste statisticaL model omvat voedsel (p = 0,001) en gistlucht (p = 0,061). Aangepast uit referentie 5 . Klik hier om een ​​grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3
Figuur 3: Azijnzuur in vliegvoedsubstraat verhoogt de vrouwelijke ontvankelijkheid in aanwezigheid van pepton. ( A ) Schematische illustratie van een paring arena, met vliegvoedingsmedium dat azijnzuur bevat en een plastic paraffine filmstop die het ingangsgat sluit. ( B ) Een grafische presentatie van de paringsfrequentie van een Canton-S parenpaar in reactie op azijnzuur, ook op agar of peptonen medium (agar: azijnzuur n = 52, + azijnzuur n = 40 en pepton: azijnzuur N = 28, + azijnzuur n = 25). Lijngrafiek met SEM foutbalkjes en de statiStieke uitvoer van het gemengde effect model met voedingsmedium (p = 0,002), azijnzuurlucht (p = 0.001) en voedsel * lucht (p = 0.022) als onafhankelijke variabelen en de datum als willekeurige variabele. Aangepast uit referentie 5 . Klik hier om een ​​grotere versie van deze figuur te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Dit protocol beschrijft een test om het 24-uurse gedragsgedrag te testen, terwijl de milieu-signalen voortdurend worden gecontroleerd dat een parenpar wordt verondersteld om te gebruiken om de paringsfrequentie te bepalen. Het is mogelijk om de paringsfrequentie te verhogen in reactie op gistlucht die via een persluchtsysteem wordt geleverd wanneer het medium ook gist bevat ( Figuur 2B ). Bovendien kan een soortgelijk antwoord in paringsfrequentie worden waargenomen met een vereenvoudigd voedingsmedium dat alleen agar-, pepton- en azijnzuurgeur direct in het medium bevat ( figuur 3B )

Met de hier getoonde experimenten kunnen alleen conclusies worden getrokken over het algemene paringsgedrag van het echtpaar, aangezien beide geslachten aan dezelfde milieuomstandigheden blootgesteld zijn. Uit het vorige onderzoek weten we echter dat 47% van de variatie in paringsfrequentie wordt bepaald door het vrouwtje, terwijl de mannelijke bijdrage slechts 11% van de variatie vertegenwoordigt20 . Daarom zijn de meeste veranderingen in de gemeten frequentie waargenomen waarschijnlijk een gevolg van vrouwelijke seksuele ontvankelijkheid. Verhoogde mannetjesviering verlaat het vrouwtje nog steeds om paring te accepteren of te weigeren, aangezien volwassen D. melanogastervrouwen succesvolle pogingen kunnen afbuigen 29 . Voor stevige conclusies en om specifiek verschillen in paringsfrequentie toe te kennen aan vrouwelijke seksuele ontvankelijkheid, is het nodig om extra parende paren te testen, waarbij het genotype van het vrouwtje is gevarieerd, maar dat van het mannetje constant wordt gehouden.

Dit protocol heeft twee manieren aangetoond om luchtsubstraten te leveren aan een parenpar, ofwel met een drukluchtsysteem of direct in het voedingsmedium. Het persluchtsysteem heeft het voordeel dat elk effect kan worden toegeschreven aan de verbindingen die door de lucht worden afgegeven, terwijl dit niet kan worden afgesloten wanneer de verbindingen direct in het voedingsmedium worden gebracht. Aan de andere kant, wHen geen effect is gevonden met het perslucht systeem, het betekent niet automatisch dat de cue het gedrag niet beïnvloedt. Het kan ook betekenen dat de verbinding niet efficiënt wordt afgeleverd via het persluchtsysteem. De samenstelling van de lucht bij de uitlaat van het luchttoevoersysteem kan worden geanalyseerd door een koolwaterstoffilter te plaatsen en het gevangen luchtgehalte te analyseren met gaschromatografie gekoppeld aan massaspectrometrie. Het perslucht systeem is een goede test om verbindingen te testen die gemakkelijk over een langer bereik kunnen worden gemaakt. Minder vluchtige verbindingen zouden mogelijk direct in het voedingsmedium moeten worden geplaatst. Een ander nadeel van het perslucht systeem is het effect lucht snelheid kan hebben op vlieggedrag. Vliegen stoppen te bewegen als de luchtsnelheid te hoog is (boven 0,7-1,6 m / s) 30 . Bovendien kan het drukluchtsysteem een ​​eenvoudige, lage kwaliteit omgeving ondraaglijk maken door het voedselmedium uit te drogen. In beide gevallen kunnen de vliegen misschien niet perfectionerenOrm even goed en geen conclusies kunnen dan worden toegeschreven aan de specifieke geteste verbindingen.

Verschillende stappen zijn essentieel tijdens de voorbereiding op het optimale uitvoeren van deze analyses. De eerste stap die aandacht vraagt, is de voorbereiding van het medium. Het is belangrijk dat het medium, inclusief geurige vluchtige verbindingen zoals azijnzuur, op de dag van het experiment wordt bereid en niet eerder om verdamping te vermijden. Ook moet het medium op een oppervlak verharden zonder extra luchtstroom (vermijd hiervoor dampkasten), omdat de luchtstroom de verdamping van de geur kan stimuleren. De tweede stap die speciale zorg vereist is de oprichting van het persluchtsysteem. De luchtstroom moet hoog genoeg zijn om de gistcultuur zachtjes te bellen zonder enige vloeistof naar de arena te brengen.

Dit protocol demonstreert een gedragsonderzoek met gistgeuren in combinatie met paringsgedrag. Dit systeem kan echter worden toegepast op elkeSoort geur, evenals andere vormen van gedrag. Om dit systeem te gebruiken voor andere geuren, is het nodig om het lucht- en geurmedium aan te passen om de overdracht van de verbindingen naar de afwas te optimaliseren. In het algemeen kan elke verbinding die met lucht overgedragen kan worden getest met dit systeem. Bovendien kan elk type gedrag, zowel bij mannen als vrouwen, getest worden, hetzij door gebruik te maken van hetzelfde type gerechten of door het aanbrengen van de buis om te bereiken en te verbinden met grotere of kleinere testgebieden. Bovendien, wanneer meer gedetailleerde gedragingen worden getest, moeten de framesnelheden en resoluties van de gebruikte camera's heroverwegen worden. In ieder geval, indien beide experimenten met en zonder de proefgeur tegelijkertijd en met dezelfde luchtbron worden uitgevoerd, kan elke reactie op de milieucur worden gedetecteerd, ongeacht veranderingen in druk of concentratie van het ene experiment naar de andere. Ten slotte kan de hier getoonde test voor minstens een andere LD-cyclus (tot 48 uur) worden verlengd, zolang de fOodtoevoer droogt niet uit.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben geen concurrerende belangen om bekend te maken.

Acknowledgments

Wij danken het Bloomington Drosophila Stock Center voor de vliegvoorraden; C. Gahr, JT Alkema en S. van Hasselt voor hun vroege poging tot het ontwikkelen van de luchtdrukonderzoek; Jasper Bosman voor advies over het cultiveren van gist; En Rezza Azanchi en Joel Levine voor het oorspronkelijk ontwikkelen van de time-lapse monitoring van Drosophila paring gedrag. JA Gorter werd gesteund door een subsidie ​​van de Neuroscience Research School BCN / NWO. Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de Nederlandse organisatie voor wetenschappelijk onderzoek (NWO) (referentie: 821.02.020) aan JC Billeter.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cabinet
Stainless steel kitchen cabinet Horecaworld 7412.0105
White LEDs Lucky Light ll-583wc2c-001 Cold white, 20 mAmp and 2 V
Red LEDs Lucky Ligt ll-583vc2c-v1-4da Wavelength between 625 nm, 20 mAmp and 6 V
Resistor Royal Ohm CFR0W4J0561A50 560 ohm, 0.25 W, 250 V and 5 % tolerance
Smartphone light meter app Patrick Giudicelli Light/Lux Meter FREE, version 1.1.1
Power timer Alecto TS-121
Metal brackets Sharp angle 5 by 5 mm,  2 x 5450 and 1 x 1100 mm long
Frosted glass plate 1190 x 545 x 5 mm
Filter paper sheets LEE filters 220 White frost
Small fan Nanoxia Deep silence 4260285292828 80 mm Ultra-Quiet PC Fan, 1200 RPM
Big fan Nanoxia Deep silence 4260285292910 120 mm Ultra-Quiet PC Fan, 650-1500 RPM
Webcam camera Logitech 950270 B910 HD WEBCAM OEM, Angle: 78-degree, resolution: 5-million-pixel  
Camera software DeskShare Security monitor pro
Name Company Catalog Number Comments
Fly rearing
Fly rearing bottles Flystuff 32-130 6oz Drosophila stock bottle
Flypad Flystuff 59-114
Wild-type flies Canton-S
Fly rearing vials Dominique Dutscher 789008 Drosophila tubes narrow 25x95 mm
Incubator Sanyo MIR-154
Magnetic hot plate Heidolph 505-20000-00 MR Hei-Standard
Agar Caldic Ingredients B.V. 010001.26.0
Glucose Gezond&wel 1019155 Dextrose/Druivensuiker
Sucrose Van Gilse Granulated sugar
Cornmeal Flystuff 62-100
Wheat germ Gezond&wel 1017683
Soy flour Flystuff 62-115
Molasses Flystuff 62-117
Active dry yeast Red Star
Tegosept Flystuff 20-258 100%
Peptone (bacto) BD 211677
Acetic Acid Merck 1000631000 Glacial, 100%
Small petridish Greiner bio-one 627102 35 x 10 mm with vents
Paraffin film Bemis NA Parafilm
Name Company Catalog Number Comments
Yeast and pressurised air set-up
Big petridish Gosselin BP140-01 140 x 20.6 mm
Ultrapure water Millipore corporation MiliQ
Yeast extract BD 212750
Agar (pure) BD 214530 bacto
Glucose (0(+)-glucose monohydrate)  Merck 18270000004
Open caps Schott 29 240 28  GL45
Silicone septum VWR 548-0662
Barbed bulkhead fittings Nalgene 6149-0002
Large PVC tubing diameter: outer 1.2 cm and inner 0.9 cm
Small PVC tubing diameters: outer 0.8 cm and inner 0.5 cm
15 ml tube Falcon
Aquarium pump Sera precision Sera air 110 plus, AC 220-240 V, 50/60 Hz, 3 W and pressure >100 mbar
Activated charcoal Superfish A8040400 Norit activated carbon
Disposible filter unit Whatman 10462100
Serological pipettes VWR 612-1600
Syringe BD Plastipak 300013
Hot glue Pattex
Syringe filter Whatman FP 30/pore size 0.45 mm CA-S
Name Company Catalog Number Comments
Analysis
Statistics software R lme4 package

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Hileman, S. M., Pierroz, D. D., Flier, J. S. Leptin nutrition, and reproduction: timing is everything. J. Clin. Endocrinol. Metab. 85 (2), 804-807 (2000).
  2. Grosjean, Y., et al. An olfactory receptor for food-derived odours promotes male courtship in Drosophila. Nature. 478 (7368), 236-240 (2011).
  3. Harshman, L. G., Hoffman, A. A., Prout, T. Environmental effects on remating in Drosophila melanogaster. Evolution. 42 (2), 312-321 (1988).
  4. Fricke, C., Bretman, A., Chapman, T. Female nutritional status determines the magnitude and sign of responses to a male ejaculate signal in Drosophila melanogaster. J. Evol. Biol. 23 (1), 157-165 (2010).
  5. Gorter, J. A., Jagadeesh, S., Gahr, C., Boonekamp, J. J., Levine, J. D., Billeter, J. -C. The nutritional and hedonic value of food modulate sexual receptivity in Drosophila melanogaster females. Sci. Rep. , 1-10 (2016).
  6. Wigby, S., et al. Insulin signalling regulates remating in female Drosophila. Proc. Biol. Sci. 278 (1704), 424-431 (2011).
  7. Ribeiro, C. The dilemmas of the gourmet fly: the molecular and neuronal mechanisms of feeding and nutrient decision making in Drosophila. Front. Neurosci. 7, 1-13 (2013).
  8. Walker, S. J., Corrales-Carvajal, V. M., Ribeiro, C. Postmating circuitry modulates salt taste processing to increase reproductive output in Drosophila. Curr. Biol. 25 (20), 2621-2630 (2015).
  9. Hussain, A., Üçpunar, H. K., Zhang, M., Loschek, L. F., Grunwald Kadow, I. C. Neuropeptides modulate female chemosensory processing upon mating in Drosophila. PLoS Biol. 14 (5), e1002455-e1002428 (2016).
  10. Avila, F. W., Sirot, L. K., LaFlamme, B. A., Rubinstein, C. D., Wolfner, M. F. Insect seminal fluid proteins: identification and function. Annu. Rev. Entomol. 56 (1), 21-40 (2011).
  11. Laturney, M., Billeter, J. C. Neurogenetics of female reproductive behaviors in Drosophila melanogaster. BS:ADGEN. 85, Elsevier. 1-108 (2014).
  12. Liu, H., Kubli, E. Sex-peptide is the molecular basis of the sperm effect in Drosophila melanogaster. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 100 (17), 9929-9933 (2003).
  13. Ram, K. R., Wolfner, M. F. Sustained post-mating response in Drosophila melanogaster requires multiple seminal fluid Proteins. PLoS gen. 3 (12), 2428-2438 (2007).
  14. Yapici, N., Kim, Y. -J., Ribeiro, C., Dickson, B. J. A receptor that mediates the post-mating switch in Drosophila reproductive behaviour. Nature. 451 (7174), 33-37 (2008).
  15. Yang, C. -H., et al. Control of the postmating behavioral switch in Drosophila females by internal sensory neurons. Neuron. 61 (4), 519-526 (2009).
  16. Häsemeyer, M., Yapici, N., Heberlein, U., Dickson, B. J. Sensory neurons in the Drosophila genital tract regulate female reproductive behavior. Neuron. 61 (4), 511-518 (2009).
  17. Rezával, C., Pavlou, H. J., Dornan, A. J., Chan, Y. -B., Kravitz, E. A., Goodwin, S. F. Neural circuitry underlying Drosophila female postmating behavioral responses. Curr. Biol. , 1-11 (2012).
  18. Haussmann, I. U., Hemani, Y., Wijesekera, T., Dauwalder, B., Soller, M. Multiple pathways mediate the sex-peptide-regulated switch in female Drosophila reproductive behaviours. Proc. Biol. Sci. 280 (1771), 20131938-20131938 (2015).
  19. Krupp, J. J., et al. Social experience modifies pheromone expression and mating behavior in male Drosophila melanogaster. Curr. Biol. 18 (18), 1373-1383 (2008).
  20. Billeter, J. C., Jagadeesh, S., Stepek, N., Azanchi, R., Levine, J. D. Drosophila melanogaster females change mating behaviour and offspring production based on social context. Proc. Biol.l Sci. 279 (1737), 2417-2425 (2012).
  21. Krupp, J. J., Billeter, J. -C., Wong, A., Choi, C., Nitabach, M. N., Levine, J. D. Pigment-dispersing factor modulates pheromone production in clock cells that influence mating in Drosophila. Neuron. 79 (1), 54-68 (2013).
  22. Imhof, M., Harr, B., Brem, G., Schlötterer, C. Multiple mating in wild Drosophila melanogaster revisited by microsatellite analysis. Mol. Ecol. , 915-917 (1998).
  23. Ochando, M. D., Reyes, A., Ayala, F. J. Multiple paternity in two natural populations (orchard and vineyard) of Drosophila. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 93 (21), 11769-11773 (1996).
  24. Becher, P. G., et al. Yeast, not fruit volatiles mediate Drosophila melanogaster attraction, oviposition and development. Func. Ecol. 26 (4), 822-828 (2012).
  25. Montell, C. Drosophila visual transduction. Trends Neurosci. 35 (6), 356-363 (2012).
  26. Ejima, A., Griffith, L. C. Assay for courtship suppression in Drosophila. Cold Spring Harbor Prot. 2011 (2), 5575 (2011).
  27. Crickmore, M. A., Vosshall, L. B. Opposing Dopaminergic and GABAergic Neurons Control the Duration and Persistence of Copulation in Drosophila. Cell. 155 (4), 881-893 (2013).
  28. Bretman, A., Fricke, C., Chapman, T. Plastic responses of male Drosophila melanogaster to the level of sperm competition increase male reproductive fitness. Proc. Biol. Sci. 276 (1662), 1705-1711 (2009).
  29. Dukas, R., Jongsma, K. Costs to females and benefits to males from forced copulations in fruit flies. Anim. Behav. 84 (5), 1177-1182 (2012).
  30. Yorozu, S., et al. Distinct sensory representations of wind and near-field sound in the Drosophila brain. Nature. 457 (7235), 201-205 (2009).

Tags

Gedrag nummer 125, Vrouwelijke seksuele ontvankelijkheid voortplantingsgedrag milieubeelden gist voeding paringsgedrag verveling
Een methode om het effect van milieueisen op paring gedrag in te testen<em&gt; Drosophila melanogaster</em
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Gorter, J. A., Billeter, J. C. A… More

Gorter, J. A., Billeter, J. C. A Method to Test the Effect of Environmental Cues on Mating Behavior in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (125), e55690, doi:10.3791/55690 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter