Summary

Site-verwiesene Immobilisierung von Knochen morphogenetische Protein 2 an feste Oberflächen durch Click-Chemie

Published: March 29, 2018
doi:

Summary

Biomaterialien, dotiert mit Knochen morphogenetische Protein-2 (BMP2) wurden als neue therapeutische Strategie zur Pseudarthrose Knochenbrüche zu heilen. Um Nebenwirkungen durch eine unkontrollierbare Freigabe des Faktors zu überwinden, schlagen wir eine neue Strategie zur Website-Faktors, wodurch Materialien mit verbesserten osteogene Funktionen direkt zu immobilisieren.

Abstract

Verschiedene therapeutische Strategien für die Behandlung von nicht heilenden lange Knochendefekte wurden intensiv untersucht. Derzeit verwendeten Behandlungen vorhanden mehrere Einschränkungen, die auf die Verwendung von Biomaterialien in Kombination mit knochenbildenden Wachstums-Faktoren, wie zum Beispiel Knochen morphogenetische Proteine (BMPs) geführt haben. Häufig verwendete Absorption oder Kapselung Methoden erfordern supra-physiologischen BMP2, was in der Regel in einem so genannten ersten Ausbruch-Release-Effekt, der mehrere schwere Nebenwirkungen hervorruft. Eine mögliche Strategie, um diese Probleme zu überwinden wäre, das Protein kovalent zum Schafott zu koppeln. Darüber hinaus sollten Kupplung in gewissem Sinne ortsspezifische durchgeführt werden, um einen reproduzierbaren Produkt Ergebnis zu garantieren. Deshalb haben wir eine BMP2 Variante, in der eine künstliche Aminosäure (Propargyl-L-Lysin) in den Reifen Teil des Proteins BMP2 Codon Usage Expansion (BMP2-K3Plk) eingeführt wurde. BMP2-K3Plk wurde an funktionalisierten Perlen durch Kupfer katalysierten Azid-Alkinen Cycloaddition (CuAAC) gekoppelt. Die biologische Aktivität des gekoppelten BMP2-K3Plk wurde in Vitro nachgewiesen und die knochenbildenden Aktivität der BMP2-K3Plk-funktionalisiert Perlen wurde in zellbasierte Assays nachgewiesen. Die funktionalisierten Perlen in Kontakt mit C2C12 Zellen konnten Expression der alkalischen Phosphatase (ALP) in lokal begrenzten Nähe des Wulstes induzieren. Damit, mit dieser Technik funktionalisierten Gerüste hergestellt werden können, können die Zelldifferenzierung in Richtung einer osteogene Abstammung auslösen. Darüber hinaus sind niedrigere BMP2 Dosen ausreichend durch die kontrollierte Ausrichtung der Site-verwiesene gekoppelten BMP2. Mit dieser Methode sind BMPs immer ihre Rezeptoren auf der Zelloberfläche in der entsprechenden Ausrichtung ausgesetzt, die nicht der Fall ist, wenn die Faktoren über Site-verwiesene Kopplungstechniken gekoppelt sind. Das Produkt Ergebnis ist höchst steuerbar und somit Ergebnisse in Materialien mit homogenen Eigenschaften, verbessern ihre Anwendbarkeit für die Reparatur von kritischen Größe Knochen Defekte.

Introduction

Das ultimative Ziel des Tissue Engineering und Knochen Knochenregeneration ist die Überwindung der Nachteile und Einschränkungen bei gemeinsamen Behandlungen der Pseudarthrose Frakturen auftreten. Auto oder allo-Transplantationen werden vorwiegend als aktuelle Therapiestrategien eingesetzt, obwohl sie beide mehrere Nachteile haben. Die ideale Knochentransplantat sollte Osteogenesis durch Osteoinduction sowie Osteokonduktion, führend zu die Osteointegration des Transplantats in den Knochen induzieren. Heute ist nur Auto-Transplantation als der “Goldstandard” betrachtet, da es alle Eigenschaften eines idealen Knochentransplantat bietet. Leider stellt es auch wichtige negative Aspekte, wie langen OP-Zeiten und eine zweite Trauma-Website, die in der Regel mehr Komplikationen (z.B., chronische Schmerzen, Hämatom Formationen, Infektionen, kosmetische Fehler, etc.) mit sich bringt. Allogene Transplantate, haben auf der anderen Seite suboptimale Eigenschaften für alle allgemeines1. Alternative Bone Graft Technologien wurden in den letzten Jahren, mit dem Ziel, die Gerüste herstellen osteoinduktiv, osteokonduktiv, biokompatibel, und bioresorbierbaren verbessert. Da viele Biomaterialien nicht all diese knochenbildenden Merkmale zeigen, wurden verschiedene Wachstumsfaktoren, vor allem BMP2 und BMP7, aufgenommen um das osteogene Potenzial des bestimmten Gerüst2zu verbessern.

Als ein wesentliches Kriterium sollten solche Wachstumsfaktor-Delivery-Systeme eine kontrollierte Dosis Version im Laufe der Zeit bereitstellen, um die wesentlichen Ereignisse wie Zelle Rekrutierung und Bindung, Zelle Einwachsen und Angiogenese zu erleichtern. Jedoch immobilisiert BMPs sowie andere osteogene Wachstumsfaktoren wurden häufig nicht kovalent3. Verlockende Falle und Adsorption Techniken erfordern den Einsatz von supra-physiologischen Mengen an Protein durch einen ersten Ausbruch-Freisetzung, führt zu schweren Nachteilen in-vivo, in der Regel Auswirkungen auf das umliegende Gewebe durch Induktion Knochen Wucherung, Osteolyse, Schwellung und Entzündung4. Somit kann die Beibehaltung der Wachstumsfaktoren an der Lieferstelle für längere Zeit durch kovalente Immobilisierung Methoden erreicht werden. BMP2 chemisch modifiziert (Succinylated5, Schimmelpilzschäden6 oder biotinylierte7) entwickelt Heterodimere8oder BMP2 abgeleiteten Oligopeptide9 entwickelt und verwendet, um die Beschränkungen zu überwinden wurden im Zusammenhang mit Absorption. Die Bio-Aktivität diese Konstrukte ist jedoch nicht vorhersehbar, da die Anordnung möglicherweise die Bindung des immobilisierten Liganden an den zellulären Rezeptoren hemmt. Wie zuvor dargestellt ist es wichtig, dass alle vier Rezeptor-Ketten beteiligt an der Gründung der aktivierten Ligand-Rezeptor-Komplexe mit den immobilisierten BMP2 interagieren, um vollständig alle nachgelagerten Signalisierung Kaskaden10aktivieren.

Um die Probleme der inhomogenen Produkt Ergebnis mit Einschränkungen in Bezug auf die Bioaktivität, Stabilität und Bioverfügbarkeit von immobilisierten Faktor zu überwinden, entwarfen wir eine BMP-Variante kovalent binden Gerüste in gewissem Sinne Seite gerichtet. Diese Variante, genannt BMP2-K3Plk umfasst eine künstliche Aminosäure, die durch genetische Codon Erweiterung11eingeführt wurde. Diese Variante wurde erfolgreich für Gerüste mit einer kovalenten Kupplung Strategie und gleichzeitig seine biologischen Aktivität verbunden.

Protocol

(1) Herstellung von BMP2 Variante BMP2-K3Plk Klonen von BMP2-K3Plk von Site-verwiesene Mutagenese mittels PCR 12 Menschliche Reife BMP2 zu verstärken (hmBMP2) aus einer p25N-hmBMP2-Vektor (siehe Tabelle der Materialien) mit einem forward Primer (5′ GACCAGGACATATGGCTCAAGCCTAGCACAAACAGC 3′) und eine rückwärts-Primer (5′ CCAGGAGGATCCTTAGCGACACCCACAACCCT 3′) Einführung einer Bernstein Stop-Codon ( TAG) an der Position der ersten Lysin Reife Teil …

Representative Results

In diesem Artikel beschreiben wir eine Methode, um eine neue Variante der BMP2, BMP2-K3Plk, kovalent an handelsüblichen Azid funktionalisiert Agarose Korne (Abbildung 1) zu koppeln. Die Bioaktivität der produzierten BMP2-K3Plk-Variante wurde durch die Induktion der Genexpression der alkalischen Phosphatase (ALP) in C2C12 Zellen überprüft. Der in-vitro- Test zeigt ähnliche ALP Ausdruck Ebenen induziert durch Wildtyp BMP2 (BMP2-WT) und BMP2-K3Plk …

Discussion

Tagged Protein Variantenbildung durch genetische Codon Expansion ermöglicht die Einführung von verschiedenen nicht-natürliche Aminosäure-Analoga prinzipiell an jeder Stelle die primäre Proteinsequenz. Im Falle von BMPs wie BMP2, gemeinsame Stichwörter wie ein 6-Histidin (His)-Tag kann nur N-Terminal eingeführt, da die Protein´s C-terminalen Ende ist innerhalb der tertiären Proteinstruktur begraben, und somit nicht von außen zugänglich ist. An anderen Positionen kann die Größe des eingeführten Tags sehr wahr…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren danken Dr. M. Rubini (Konstanz, Deutschland), für die das Plasmid Pyrrolysyl-tRNA kodieren und für die Bereitstellung von pRSFduet-PyrtRNAsynth die entsprechende Aminoacyl-tRNA Synthestase Codierung.

Materials

Material
1-Step NBT/BCIP Thermo Fisher 34042 Add solution to cells
3-Azido-7-hydroxycoumarin BaseClick BCFA-047-1 Chemical used for click reaction
Agarose low melting point Biozym 840101 Agarose for ALP assay 
Azide agarose beads Jena Bioscience CLK-1038-2 Beads used for reaction
BamHI (Fast Digest enzyme) Thermo Fisher Scientific FD0054 Restriction enzyme
BMP receptor IA (BMPR-IAEC) Produced in our lab
Coomassie Brilliant Blue G-250 Dye Thermo Fisher Scientific 20279 Chemical used for Coomassie Brilliant blue staining of SDS PAGE
Copper (II) sulfate anhydrous (CuSO4) Alfa Aesar A13986 Chemical used for click reaction
DNA Polymerase and reaction buffer  Kapabiosystems KK2102 KAPA HiFi PCR Kit
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) GlutaMAX Gibco 61965-026 Cell culture media
ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma Aldrich GmbH E5134-1kg Chemical used to stop click reaction
Isopropyl ß-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Carl Roth GmbH 2316.5 Bacteria induction (1mM final concentration) 
NdeI (Fast Digest enzyme) Thermo Fisher Scientific ER0581 Restriction enzyme
NHS-activated Texas Red Life technologies T6134 Coupled to receptor
P- Nitrophenyl Phosphate Sigma Aldrich GmbH N4645-1G Alkaline Phosphatase
p25N-hmBMP2  Plasmid kindly provided from Walter Sebald to J. Nickel
pET11a-pyrtRNA Provided by the Chair for Pharmaceutics and Biopharmacy, University Wuerzburg
propargyl-L-lysine (Plk) Provided by the Chair for Pharmaceutics and Biopharmacy, University Wuerzburg
pSRFduet-pyrtRNAsynth Provided by the Chair for Pharmaceutics and Biopharmacy, University Wuerzburg
Qiagen Gel Extraction Kit Qiagen 28704 Gel Purification
Qiagen PCR purification Kit Qiagen 28104 PCR Purification 
Sodium L-ascorbate Sigma Aldrich GmbH A7631-100G Chemical used for click reaction
T4 DNA Ligase ThermoScientific EL0011 Ligation 
tris(3-hydroxypropyltriazolylmethyl)amine (THPTA) BaseClick BCMI-006-100 Chemical used for click reaction
4-(1,1,3,3-Tetramethylbutyl)phenyl-polyethylene glycol Sigma Aldrich GmbH X100-1L Triton X 100 
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Amicon concentrating cell 400 ml  Merck KGaA UFSC40001 Concentrating unit
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units Merck KGaA UFC901024 Concentrating centrifugal unit
ÄKTA avant FPLC ÄKTA FPLC machine
Avanti J-26XP Beckman Coulter  393124 Centrifuge for bacterial culture
Bacterial Shaking Incubator Infors HT Shaking incubator for bacterial culture
FluorChem Q system proteinsimple Imaging and analysis system for SDS-PAGE
Fluorescent miscroscope Keyence BZ-9000 (BIOREVO)
Fractogel® EMD SO3 (M) Merck KGaA 116882 Ion Exchange Chromatography column material
Greiner CELLSTAR® 96 well plates Sigma M5811-40EA 96 well plates for cell culture (ALP Assay)
Heraeus Multifuge X1R ThermoScientific Centrifuge
M-20 Microplate Swinging Bucket Rotor ThermoScientific 75003624 Rotor for Microcentrifuge for plate during ALP staining
Microcentrifuge – 5417R Eppendorf Centrifuge
OriginPro 9.1 G  OriginLab software for stastic analysis of ALP assay data
Polysine Slides ThermoScientific 10143265 microscope slides
Rotor JA-10 Beckman Coulter  rotor for Avanti J-26XP centrifuge
Rotor JLA 8.1 Beckman Coulter  rotor for Avanti J-26XP centrifuge
Rotor JA 25.50 Beckman Coulter  rotor for Avanti J-26XP centrifuge
Tecan infinite M200 multiplate reader Tecan Deutschland GmbH Multiplate reader for ALP assay
Thermocycler – Labcycler Gradient SensoQuest GmbH PCR
TxRed – microscope filter Keyence Filter for fluorescent microscope 
Ultrafiltration regenerated cellulose discs 3 kDa Merck KGaA PLBC04310 used with amicon concentrating cell 400ml
Ultrafiltration regenerated cellulose discs 10 kDa Merck KGaA PLGC04310 used with amicon concentrating cell 400ml

References

  1. Giannoudis, P. V., Dinopoulos, H., Tsiridis, E. Bone substitutes: An update. Injury. 36, S20-S27 (2005).
  2. Oryan, A., Alidadi, S., Moshiri, A., Bigham-Sadegh, A. Bone morphogenetic proteins: A powerful osteoinductive compound with non-negligible side effects and limitations. Biofactors. 40 (5), 459-481 (2014).
  3. Luginbuehl, V., Meinel, L., Merkle, H. P., Gander, B. Localized delivery of growth factors for bone repair. Eur J Pharm Biopharm. 58 (2), 197-208 (2004).
  4. Haidar, Z. S., Hamdy, R. C., Tabrizian, M. Delivery of recombinant bone morphogenetic proteins for bone regeneration and repair. Part A: Current challenges in BMP delivery. Biotechnol Lett. 31 (12), 1817-1824 (2009).
  5. Hollinger, J. O., Uludag, H., Winn, S. R. Sustained release emphasizing recombinant human bone morphogenetic protein-2. Adv Drug Deliv Rev. 31 (3), 303-318 (1998).
  6. Uludag, H., et al. Implantation of recombinant human bone morphogenetic proteins with biomaterial carriers: A correlation between protein pharmacokinetics and osteoinduction in the rat ectopic model. J Biomed Mater Res. 50 (2), 227-238 (2000).
  7. Uludag, H., Golden, J., Palmer, R., Wozney, J. M. Biotinated bone morphogenetic protein-2: In vivo and in vitro activity. Biotechnol Bioeng. 65 (6), 668-672 (1999).
  8. Aono, A., et al. Potent ectopic bone-inducing activity of bone morphogenetic protein-4/7 heterodimer. Biochem Biophys Res Commun. 210 (3), 670-677 (1995).
  9. Suzuki, Y., et al. Alginate hydrogel linked with synthetic oligopeptide derived from BMP-2 allows ectopic osteoinduction in vivo. J Biomed Mater Res. 50 (3), 405-409 (2000).
  10. Knaus, P., Sebald, W. Cooperativity of binding epitopes and receptor chains in the BMP/TGFbeta superfamily. Biol Chem. 382 (8), 1189-1195 (2001).
  11. Wang, L., Xie, J., Schultz, P. G. Expanding the genetic code. Annu Rev Biophys Biomol Struct. 35, 225-249 (2006).
  12. Costa, G. L., Weiner, M. P. Rapid PCR site-directed mutagenesis. CSH Protoc. 2006 (1), (2006).
  13. Kirsch, T., Nickel, J., Sebald, W. Isolation of recombinant BMP receptor IA ectodomain and its 2:1 complex with BMP-2. FEBS Lett. 468 (2-3), 215-219 (2000).
  14. Tabisz, B., et al. Site-directed immobilization of BMP-2: Two approaches for the production of innovative osteoinductive scaffolds. Biomacromolecules. 18 (3), 695-708 (2017).
  15. Duong-Ly, K. C., Gabelli, S. B. Using ion exchange chromatography to purify a recombinantly expressed protein. Methods Enzymol. 541, 95-103 (2014).
  16. Brunelle, J. L., Green, R. One-dimensional SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (1D SDS-PAGE). Methods Enzymol. 541, 151-159 (2014).
  17. Brunelle, J. L., Green, R. Coomassie blue staining. Methods Enzymol. 541, 161-167 (2014).
  18. Kirsch, T., Nickel, J., Sebald, W. BMP-2 antagonists emerge from alterations in the low-affinity binding epitope for receptor BMPR-II. EMBO J. 19 (13), 3314-3324 (2000).
  19. Hein, J. E., Fokin, V. V. Copper-catalyzed azide-alkyne cycloaddition (CuAAC) and beyond: new reactivity of copper(I) acetylides. Chem Soc Rev. 39 (4), 1302-1315 (2010).
  20. Alborzinia, H., et al. Quantitative kinetics analysis of BMP2 uptake into cells and its modulation by BMP antagonists. J Cell Sci. 126 (Pt 1), 117-127 (2013).
  21. Paarmann, P., et al. Dynamin-dependent endocytosis of Bone Morphogenetic Protein2 (BMP2) and its receptors is dispensable for the initiation of Smad signaling. Int J Biochem Cell Biol. 76, 51-63 (2016).
  22. Pohl, T. L., Boergermann, J. H., Schwaerzer, G. K., Knaus, P., Cavalcanti-Adam, E. A. Surface immobilization of bone morphogenetic protein 2 via a self-assembled monolayer formation induces cell differentiation. Acta Biomater. 8 (2), 772-780 (2012).

Play Video

Citer Cet Article
Siverino, C., Tabisz, B., Lühmann, T., Meinel, L., Müller, T., Walles, H., Nickel, J. Site-Directed Immobilization of Bone Morphogenetic Protein 2 to Solid Surfaces by Click Chemistry. J. Vis. Exp. (133), e56616, doi:10.3791/56616 (2018).

View Video