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Électrophorèse capillaire (EC)
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Électrophorèse capillaire (EC)
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Analytical Chemistry
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JoVE Science Education Analytical Chemistry
Capillary Electrophoresis (CE)

3.11: Électrophorèse capillaire (EC)

99,842 Views
08:50 min
August 24, 2015
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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Source : Laboratoire du Dr B. Jill Venton - University of Virginia

Électrophorèse capillaire (EC) est une technique de séparation qui sépare les molécules dans un champ électrique selon la taille et de la charge. CE est réalisé dans un tube de verre appelé un capillaire qui est rempli d’une solution électrolytique. Analytes sont séparés en raison des différences dans la mobilité électrophorétique, qui varie en fonction de la charge, la viscosité du solvant et la taille. Traditionnel électrophorèse en gels est limitée au montant de tension qui peut être appliquée parce que Joule effets de chauffage va ruiner le gel et la séparation. Capillaires ont un surface zone-à-volume élevé et dissipent ainsi mieux la chaleur. Par conséquent, les tensions appliquées pour une expérience de l’électrophorèse capillaire sont assez grandes, souvent 10 000 – 20 000 V.

L’électrophorèse capillaire est utile pour des séparations de haute performance. Par rapport à la chromatographie en phase liquide, séparations CE sont souvent plus rapides et plus efficaces. Toutefois, l’électrophorèse capillaire fonctionne mieux pour séparer les molécules chargées, qui n’est pas une limitation de la chromatographie en phase liquide. EC a une plus grande capacité de pointe que la chromatographie liquide à haute performance (HPLC), ce qui signifie que les séparations sont plus efficaces et plus de pics peuvent être détectées. L’instrumentation peut être très simple. Cependant, HPLC est plus souple et beaucoup de phases stationnaires et mobiles ont été développés pour différents types de molécules.

Procedure

1. CE Instrumentation Setup

  1. Allumer l’instrument CE et l’ordinateur. En utilisant le logiciel de l’ordinateur, allumez la source de lumière pour l’analyse des UV pour lui permettre de se réchauffer. Un logiciel a un indicateur lorsque la lampe est prête à l’emploi (lampe icône devient couleur).
  2. Faire un fichier de méthodes. Définissez les paramètres importants pour le marquage CE en cours d’exécution. Dans cette analyse, les températures de stockage de la cartouche et échantillon sont 35 ° C. La longueur d’onde de détection UV est 214 nm.
  3. Écrire un programme de temps. Le programme se compose généralement des étapes de rinçage (pour nettoyer le tube capillaire avant l’analyse), étapes de l’injection, puis une étape de l’électrophorèse. Pour l’étape de rinçage, effectuer 2 rinçages pendant 1 min à l’aide de 20 lb/po2 de pression. Le premier rinçage est avec NaOH, qui permet de s’assurer que les groupes silanol sur la paroi capillaire sont déprotonés. Le second rinçage est avec exécution buffer (tampon de borate de 0,025 M ici) pour vous assurer que le tube capillaire est gauche équilibrée avec tampon.
  4. Pour l’injection, injection sous pression sert à 0,5 lb/po2 pendant 5 s.
  5. Pour l’étape de l’électrophorèse, les conditions étaient de séparation voltage : 20 kV, temps : 5 min, une polarité normale. Pour chaque étape, également indiquer quel flacon est l’entrée et quel flacon est la sortie. Enregistrez le fichier de méthodes après que tous les paramètres sont entrés.

2. préparation des normes et des échantillons de soude

  1. Faire des solutions mères de 500 ppm de l’aspartame, la caféine et l’acide benzoïque dans l’eau. Faire 50 mL de chacun, à l’aide d’une fiole jaugée.
  2. Préparer une solution standard de 150 ppm aspartame, caféine 150 ppm et 100 ppm d’acide benzoïque dans une fiole jaugée de 10 mL.
  3. Faites des solutions de caféine standard de 200 ppm, 100 ppm, 150 ppm et 50 ppm à un fioles jaugées de 10 mL.

3. exécuter les exemples sur le marquage CE

  1. Placer les flacons contenant des normes ou des échantillons de soude dans le porte-flacon échantillon. Assurez-vous d’écrire quel exemple se trouve dans quel slot. Deux machines à sous ont l’ion borate forme courir le tampon et la solution de rinçage de NaOH 0,1 M.
  2. Dans le fichier de la méthode, une entrée qui slot le premier flacon est dans.
  3. Acquérir un même essai, en veillant à saisir toutes les informations données le programme de visites.
  4. Continuer à acquérir des données, changer le flacon d’entrée pour chaque échantillon. Exécuter la combinaison standard, les 3 concentrations de caféine et un Pepsi et diète Pepsi échantillon.
  5. Insérez la cible dans l’instrument et choisir l’instrument approprié.
  6. Analyser les données sur l’ordinateur. Calculer des pics et les normes de superposition et les échantillons réels pour aider à identifier les sommets. Faire une courbe d’étalonnage pour les données de la caféine.

L’électrophorèse capillaire, ou CE, est une technique utilisée en analyse chimique pour séparer les molécules dans un champ électrique selon la taille et de la charge.

L’électrophorèse capillaire est réalisée dans un tube de diamètre submillimétrique, appelé un capillaire, qui contient une solution d’électrolyte qui coule. L’échantillon est injecté dans le tube capillaire, et un champ électrique est appliqué. Les molécules sont alors séparés basés sur la différence de leur vitesse, qui est influencée par l’accusation, la taille et la viscosité du solvant. CE est idéal pour la séparation des molécules chargées et a une résolution plus grande que la chromatographie liquide à haute performance, rendant plus efficace et plus sensible.

Cette vidéo va introduire les bases de l’électrophorèse capillaire et démontrer son utilisation en déterminant la composition d’une boisson gazeuse.

Dans CE, un champ électrique est appliqué à un capillaire rempli d’un électrolyte. Le champ électrique induit une charge positive à l’entrée du capillaire et une charge négative à la sortie.

Les flux de l’électrolyte dans le capillaire, induite par le champ électrique. Ce flux, appelé flux électro-osmotique, est causé par le mouvement d’une couche distincte des ions de sels chargées positivement le long de la paroi des capillaires charge négative.

Comme les pistes de courants électriques à travers le capillaire, les cations le long du mur se déplacent vers l’extrémité négative. Ce flux d’ion tire la solution dans le centre à travers le tube.

Les molécules sont alors séparés basé sur leur vitesse dans le tube capillaire. Cette vitesse, appelée la mobilité électrophorétique, dépend des molécules frais et taille, et combien il est attiré ou repoussé par un champ électrique.

Les molécules chargées positivement traversent plus vite le capillaire, car ils sont plus attirés par le potentiel à la sortie. Les molécules chargées négativement coulent beaucoup plus lentement, car ils sont plus attirés par le potentiel à l’entrée. Des molécules neutres sont transportés ainsi que le débit en vrac. Ainsi, l’ordre des molécules quittant le capillaire est chargée positivement, neutres et puis charge négative. En outre, le flux de l’électrolyte tire plus vite que les molécules plus grosses à cause des forces de friction des molécules plus petites.

Molécules sont enregistrés par un détecteur, comme UV-Vis, comme ils sortir de la colonne et sont visualisées dans une parcelle de l’intensité du signal détecteur par rapport au temps, appelée électrophorégramme.

Électrophérogrammes peut produire une gamme d’informations ; tels que la façon dont beaucoup de composés différents est présent dans un échantillon et la quantité de chaque substance.

Maintenant que vous avez vu un résumé succinct de l’électrophorèse capillaire, nous allons jeter un oeil à la façon dont elle est exécutée dans le laboratoire.

Tout d’abord, allumez l’appareil d’électrophorèse capillaire et l’ordinateur. Allumez ensuite le détecteur UV pour lui permettre de se réchauffer.

Définir les paramètres de l’expérience en cours d’exécution. En premier lieu, régler la température pour le stockage de la cartouche et l’échantillon à 35 ° C et la longueur d’onde de détection UV à 214 nm.

Ensuite, définissez les étapes de deux rinçage. Le premier rinçage est avec l’hydroxyde de sodium pour s’assurer que les groupes silanol sur la paroi capillaire sont protonés. Le second rinçage utilise la mémoire tampon en cours d’exécution se pour équilibrer le capillaire. Ensuite, définissez l’échantillon d’injecter à 0,5 lb/po2 pendant 5 s.

Définir l’étape de l’électrophorèse, en sélectionnant la tension de la séparation. Dans ce cas, utiliser 20 kV pendant 5 min à l’aide de polarité normale, ce qui signifie que le champ électrique est positive à l’entrée et négatives à la sortie.

Tout d’abord, préparer les solutions de l’aspartame de composants de soude, la caféine et l’acide benzoïque à 500 parties par million dans l’eau 50 mL.

De la solution mère, préparer une solution standard de 150 ppm aspartame, caféine 150 ppm et 100 ppm d’acide benzoïque.

Ensuite, faire 4 solutions étalons de caféine à 50, 100, 150 et 200 ppm. Ces échantillons serviront à faire une courbe d’étalonnage. Pour plus d’informations, voir la vidéo sur les courbes d’étalonnage de cette collection.

Enfin, préparer les échantillons de soude par leur dégazage avec de l’azote. Les échantillons de soude on analysera avec aucune dilution.

Placer les flacons contenant les échantillons standard ou de soude dans le porte-flacon. Placer les flacons contenant le tampon de l’exécution et la solution de rinçage d’hydroxyde de sodium dans le porte-échantillon aussi bien. Assurez-vous de noter l’emplacement de chacun.

Dans le logiciel instrument CE, indiquent quels slots contiennent les solutions de deux rinçage et le premier flacon. Maintenant, exécutez le premier échantillon.

Ensuite, exécutez la combinaison standard, les 4 concentrations de caféine et un habitué et le régime échantillon de soude en changeant le flacon d’entrée.

Lorsque toutes les solutions ont été séparés, analyser les données.

Tout d’abord, utiliser les normes pour identifier les pics dans les échantillons de soude. Une comparaison des trois pics observés dans l’échantillon de soude alimentaire aux normes montre que l’aspartame, la caféine et l’acide benzoïque sont présents dans le soda diète. Dans l’échantillon de soude ordinaire, seulement le pic de caféine est présent, mais pas l’aspartame et l’acide benzoïque pics.

Ensuite, calculer l’aire du pic pour chaque solution étalon de caféine et faire une courbe d’étalonnage. La courbe d’étalonnage pour la caféine peut être utilisée pour calculer la concentration de caféine dans chaque échantillon.

L’électrophorèse capillaire est utilisé pour plusieurs séparations spécialisés dans les milieux académiques et industriels.

CE est souvent utilisé comme une des composantes de l’industrie pharmaceutique contrôle qualité stable. Médicaments, comme des petites molécules ou des produits biologiques, peuvent être exécutés par le biais de l’électrophorèse capillaire pour voir si n’importe quel produits secondaires sont présents. Il peut également être utilisé pour déterminer si les protéines sont correctement pliés, que le pliage peuvent affecter la charge protéique.

CE peut également être utilisé pour séparer l’ADN. À l’aide d’une plaque de microtitration et plusieurs baies des capillaires, chercheurs peuvent augmenter le débit d’une expérience unique, tel qu’illustré ici. Fragments d’ADN ont été séparés selon la taille, avec une résolution jusqu'à 1 paires de bases. Cela permet des fragments de séquençage d’ADN, ainsi que la détermination des autres paramètres comme variantes de nombre de copie, qui est utilisé pour diagnostiquer des maladies génétiques éventuelles.

Une protéine peut être modifiée par divers groupes d’employés qui sont liés chimiquement à différents endroits. Différentes copies de la même protéine peuvent varier avec différentes modifications, ce qui vont changer la charge et la taille de chaque protéine. Traversant un CE qui est attaché à un spectromètre de masse de protéines purifiées peut séparer des protéines basés sur lequel les modifications sont présents et également d’identifier le type et l’emplacement de la modification.

Vous avez juste regardé introduction de Jupiter à l’électrophorèse capillaire. Vous devez maintenant comprendre comment CE sépare basés sur la charge et la masse des molécules et comment faire fonctionner un échantillon sur le marquage CE en laboratoire.

Merci de regarder !

Transcript

L’électrophorèse capillaire, ou CE, est une technique utilisée en analyse chimique pour séparer les molécules d’un champ électrique en fonction de leur taille et de leur charge.

L’électrophorèse capillaire est réalisée dans un tube de diamètre submillimétrique, appelé capillaire, qui contient une solution d’électrolyte en écoulement. L’échantillon est injecté dans le capillaire et un champ électrique est appliqué. Les molécules sont ensuite séparées en fonction de la différence de vitesse, qui est influencée par la charge, la taille et la viscosité du solvant. La CE est idéale pour la séparation des molécules chargées et a une résolution supérieure à celle de la chromatographie liquide haute performance, ce qui la rend plus efficace et plus sensible.

Cette vidéo présentera les bases de l’électrophorèse capillaire et démontrera son utilisation en déterminant la composition d’une boisson gazeuse.

Dans l’EC, un champ électrique est appliqué à un capillaire rempli d’un électrolyte. Le champ électrique induit une charge positive à l’entrée du capillaire, et une charge négative à la sortie.

L’électrolyte circule à l’intérieur du capillaire, induit par le champ électrique. Cet écoulement, appelé écoulement électro-osmotique, est causé par le mouvement d’une couche discrète d’ions salins chargés positivement le long des parois capillaires chargées négativement.

Lorsque le courant électrique traverse le capillaire, les cations le long de la paroi se déplacent vers l’extrémité négative. Ce flux d’ions tire la solution au centre à travers le tube.

Les molécules de l’échantillon sont ensuite séparées en fonction de leur vitesse dans le capillaire. Cette vitesse, appelée mobilité électrophorétique, dépend de la charge et de la taille des molécules, ainsi que de la mesure dans laquelle elles sont attirées ou repoussées par un champ électrique.

Les molécules chargées positivement s’écoulent plus rapidement dans le capillaire, car elles sont plus attirées par le potentiel à la sortie. Les molécules chargées négativement s’écoulent beaucoup plus lentement, car elles sont plus attirées par le potentiel à l’entrée. Les molécules neutres sont entraînées avec le flux en vrac. Ainsi, l’ordre des molécules sortant du capillaire est chargé positivement, neutre, puis chargé négativement. De plus, le flux d’électrolyte tire les molécules plus petites plus rapidement que les molécules plus grosses en raison des forces de frottement.

Les molécules sont enregistrées par un détecteur, tel que UV-Vis, à la sortie de la colonne, et sont visualisées dans un graphique de l’intensité du signal du détecteur en fonction du temps, appelé électrophérogramme.

Les électrophérogrammes peuvent fournir une gamme d’informations ; comme le nombre de composés différents présents dans un échantillon et la quantité de chaque substance.

Maintenant que vous avez vu un bref résumé de l’électrophorèse capillaire, voyons comment elle est réalisée en laboratoire.

Tout d’abord, allumez l’instrument d’électrophorèse capillaire et l’ordinateur. Allumez ensuite le détecteur UV pour lui permettre de se réchauffer.

Définissez les paramètres d’exécution de l’expérience. Tout d’abord, réglez la température de la cartouche et du stockage de l’échantillon à 35 ? C et la longueur d’onde pour la détection UV à 214 nm.

Ensuite, réglez les deux étapes de rinçage. Le premier rinçage se fait avec de l’hydroxyde de sodium pour s’assurer que les groupes silanol sur la paroi capillaire sont protonés. Le deuxième rinçage utilise un tampon de coulée pour équilibrer le capillaire. Ensuite, réglez l’échantillon à injecter à 0,5 psi pendant 5 s.

Réglez l’étape d’électrophorèse, en sélectionnant la tension de séparation. Dans ce cas, utilisez 20 kV pendant 5 min en utilisant une polarité normale, c’est-à-dire que le champ électrique est positif à l’entrée et négatif à la sortie.

Tout d’abord, préparez des solutions mères de 50 ml d’aspartame, de caféine et d’acide benzoïque à 500 parties par million dans de l’eau.

À partir des solutions mères, préparez une solution étalon de 150 ppm d’aspartame, 150 ppm de caféine et 100 ppm d’acide benzoïque.

Ensuite, préparez 4 solutions standard de caféine à 50, 100, 150 et 200 ppm. Ces échantillons seront utilisés pour réaliser une courbe d’étalonnage. Pour plus d’informations, consultez la vidéo de cette collection sur les courbes d’étalonnage.

Enfin, préparez les échantillons de soude en les dégazant avec de l’azote. Les échantillons de soude seront analysés sans dilution.

Placez les flacons contenant des échantillons standard ou de soude dans le support du flacon. Placez également les flacons contenant le tampon d’écoulement et la solution de rinçage à l’hydroxyde de sodium dans le porte-échantillon. Assurez-vous de noter l’emplacement de chacun.

Dans le logiciel de l’instrument CE, indiquez les fentes contenant les deux solutions de rinçage et le premier flacon d’échantillon. Maintenant, exécutez le premier échantillon.

Ensuite, exécutez l’étalon de combinaison, les 4 concentrations de caféine et un échantillon de soda régulier et diététique en changeant le flacon d’entrée.

Une fois que toutes les solutions ont été séparées, analysez les données.

Tout d’abord, utilisez les normes pour identifier les pics dans les échantillons de soude. Une comparaison des trois pics observés dans l’échantillon de soda light aux normes montre que la caféine, l’aspartame et l’acide benzoïque sont présents dans le soda light. Dans l’échantillon de soda ordinaire, seul le pic de caféine est présent, mais pas les pics d’aspartame et d’acide benzoïque.

Ensuite, calculez l’aire du pic pour chaque solution étalon de caféine et faites une courbe d’étalonnage. La courbe d’étalonnage de la caféine peut être utilisée pour calculer la concentration de caféine dans chaque échantillon.

L’électrophorèse capillaire est utilisée pour de nombreuses séparations spécialisées dans les milieux universitaires et industriels.

L’EC est souvent utilisé comme composant des tests de contrôle de la qualité de l’industrie pharmaceutique. Les médicaments, qu’il s’agisse de petites molécules ou de produits biologiques, peuvent être soumis à l’électrophorèse capillaire pour voir si des produits secondaires sont présents. Il peut également être utilisé pour déterminer si les protéines sont correctement repliées, car le repliement peut affecter la charge protéique.

L’EC peut également être utilisé pour séparer l’ADN. À l’aide d’une plaque de micropuits et de plusieurs réseaux de capillaires, les chercheurs peuvent augmenter le débit d’une seule expérience, comme illustré ici. Les fragments d’ADN ont été séparés en fonction de leur taille, avec une résolution allant jusqu’à 1 paire de bases. Cela rend possible le séquençage de fragments d’ADN, ainsi que la détermination d’autres paramètres tels que les variantes du nombre de copies, qui sont utilisés pour diagnostiquer des maladies génétiques potentielles.

Une protéine peut être modifiée par divers groupes fonctionnels qui sont chimiquement attachés à différents endroits. Différentes copies d’une même protéine peuvent varier avec différentes modifications, ce qui changera la charge et la taille de chaque protéine. Le passage des protéines purifiées à travers un CE attaché à un spectromètre de masse peut séparer les protéines en fonction des modifications présentes, et également identifier le type et l’emplacement de la modification.

Vous venez de regarder l’introduction de JoVE à l’électrophorèse capillaire. Vous devriez maintenant comprendre comment l’EC sépare les molécules en fonction de la charge et de la masse, et comment analyser un échantillon sur l’EC en laboratoire.

Merci d’avoir regardé !

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Électrophorèse capillaire CE analyse chimique molécules séparées champ électrique taille charge tube de diamètre submillimétrique capillaire solution d’électrolyte en écoulement vitesse charge taille viscosité du solvant résolution chromatographie liquide à haute performance efficacité sensibilité

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