-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

FR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

French

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Vidéo-oculographie chez la souris
Vidéo-oculographie chez la souris
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Video-oculography in Mice

Vidéo-oculographie chez la souris

Full Text
24,154 Views
09:43 min
July 19, 2012

DOI: 10.3791/3971-v

Marcel de Jeu1, Chris I. De Zeeuw1,2

1Department of Neuroscience,Erasmus MC, Rotterdam, The Netherlands, 2Department of Neuroscience,Royal Dutch Academy of Arts & Sciences (KNAW)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Vidéo-oculographie est une méthode très quantitative pour étudier les performances du moteur oculaire ainsi que l'apprentissage moteur. Ici, nous décrivons la façon de mesurer la vidéo-oculographie chez la souris. En appliquant cette technique sur la normale, pharmacologiquement traitées ou des souris génétiquement modifiées est un puissant outil de recherche pour explorer la physiologie sous-jacente des comportements moteurs.

Transcript

L’objectif global de cette procédure est d’effectuer une vidéo ou une iconographie chez la souris. Ceci est accompli en équipant d’abord la souris d’une construction de piédestal sur son crâne, ce qui permet l’immobilisation de sa tête dans un dispositif spécial de contention du corps de la tête. La deuxième étape consiste à placer la souris dans la configuration de l’ocul vidéo et à calibrer le système de suivi vidéo de la pupille.

Ensuite, les mouvements oculaires sont enregistrés pendant que le système oculomoteur est activé à l’aide d’un large répertoire de stimuli cinétiques vestibulaires et optiques. La dernière étape consiste à analyser ces mouvements oculaires. En fin de compte, l’iconographie vidéo O sur des souris normales, traitées pharmacologiquement ou génétiquement modifiées peut être utilisée pour explorer la physiologie des comportements moteurs.

Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur le système moteur oculaire, elle peut également être appliquée pour étudier les maladies d’origine cérébelleuse, vestibulaire ou oculaire en utilisant des mutants murins qui imitent les pathologies humaines. Pour commencer cette procédure, anesthésez la souris dans une chambre à gaz avec un mélange d’isof, de fluor et d’oxygène. Maintenez ensuite l’anesthésie en délivrant le gaz à travers un masque.

Ensuite, utilisez un coussin chauffant et un capteur thermique anal pour maintenir la température corporelle de la souris à 37 degrés Celsius. Par la suite, appliquez la pommade oculaire pour protéger les yeux du dessèchement, rasez la fourrure crânienne dorsale et nettoyez la zone chirurgicale. Ensuite, faites une incision médiane pour exposer la surface crânienne dorsale du crâne, nettoyez et séchez la surface.

Appliquez ensuite une goutte d’acide phosphorique de bgma sur Lambda. Après 15 secondes, retirez la gravure, puis nettoyez la surface crânienne avec une solution saline et séchez-la à nouveau. Appliquez une goutte d’opti bond prime sur le haut de la surface crânienne gravée et de l’air.

Séchez-le pendant 30 secondes. Ensuite, ajoutez une goutte d’adhésif opti bond sur l’opti bond prime. Faites-le durcir avec une lumière UV pendant une minute.

Après cela, recouvrez la couche adhésive d’une fine couche de composite charisma. Le connecteur avec trou de vis magnétique et sites de fixation est encastré dans le composite. Ensuite, durcissez le composite avec de la lumière UV.

Encore une fois, si nécessaire, appliquez des couches supplémentaires de composite et durcissez-les avec de la lumière. Laissez la souris récupérer pendant au moins trois jours après la chirurgie. L’étape suivante consiste à placer la souris dans la contention et à fixer sa tête à la retenue à l’aide de l’aimant et d’une vis, à monter la tête et le corps de la souris sur une plate-forme XY.

À l’aide de la plate-forme XY, placez la tête de la souris au-dessus du centre de la platine afin que la souris puisse être déplacée sur les axes de tangage Ya et de roulis. Placez ensuite sa tête dans le bon tangage ya et l’angle de roulis en alignant l’œil à l’aide de l’image visuelle de l’œil générée par le système de balayage oculaire. Maintenant, la platine est fixée à un moteur servocommandé à courant alternatif.

La position de la platine vinyle est surveillée à l’aide d’un potentiomètre fixé sur l’axe de la platine. La platine est recouverte d’un écran périphérique cylindrique avec un motif de points aléatoires, qui est également équipé d’un moteur servocommandé à courant alternatif. La position de l’écran cylindrique est surveillée par un potentiomètre fixé à son axe.

L’écran peut être éclairé par une lumière halogène. Le mouvement de la platine vinyle et de l’écran qui l’entoure est contrôlé par un ordinateur connecté à une interface d’entrée et de sortie. Les signaux de position de la platine vinyle et de l’écran environnant sont filtrés par une fréquence de coupure de 20 hertz numérisée par l’interface d’entrée et de sortie et stockée sur cet ordinateur.

L’œil de la souris est éclairé par trois émetteurs infrarouges. Deux sont fixés à la platine et le troisième est fixé à l’appareil photo. Ce troisième émetteur produit une réflexion cornéenne de référence, qui est utilisée lors de la procédure d’étalonnage et lors de l’enregistrement des mouvements oculaires.

Une caméra CCD infrarouge équipée d’un zoom est fixée à la platine vinyle et est focalisée sur la tête de la souris. Au centre de la platine. La caméra peut être déverrouillée et déplacée autour de l’axe de la plaque tournante sur exactement 20 degrés.

Pendant la procédure d’étalonnage. Le signal vidéo est ensuite traité par un système de suivi oculaire, qui peut suivre la pupille et faire référence à la réflexion cornéenne dans les directions horizontale et verticale à une fréquence d’échantillonnage de 120 hertz. Ensuite, les signaux de référence de la position de référence de la cornée, de la position de la pupille et de la taille des personnes sont numérisés par l’interface d’entrée et de sortie et sont stockés dans le même fichier que la table et les signaux de position de l’écran environnant pour calibrer les mouvements oculaires, ajuster la position de la tête de la souris avec la caméra de manière à ce que l’image vidéo de la pupille soit située au milieu du moniteur et la représentation de la référence cornéenne de référence est situé sur la ligne médiane verticale de l’œil directement au-dessus de la pupille.

Ensuite, déplacez la caméra plusieurs fois de 20 degrés de crête. Pic autour de l’axe vertical de la platine. Utilisez les positions de la pupille suivie et la référence cornéenne de référence enregistrée dans les positions extrêmes de la caméra pour calculer le rayon de rotation de la pupille.

Répétez ces étapes plusieurs fois dans différentes conditions d’éclairage afin de déterminer la relation entre la taille de la pupille et la rotation de la pupille. Composez ensuite une courbe de correction de la rotation de la pupille. Calculez maintenant la position angulaire de l’œil en mesurant la position de référence de la cornée, la position de la pupille et la taille de la pupille.

La valeur de rotation de la pupille peut être extraite de la courbe de correction de la rotation de la pupille et la position angulaire de l’œil peut être calculée à l’aide de la formule suivante. L’expérience de mouvement oculaire VVOR est démontrée ici. Maintenant, convertissez les positions des yeux, des tables et des écrans environnants en positions angulaires.

Ensuite, différenciez et filtrez les positions angulaires de la table des yeux et de l’écran environnant avec un filtre passe-bas Butterworth. En utilisant une fréquence de coupure de 20 hertz sub, supprimez le secod du signal de vitesse oculaire à l’aide d’un seuil de détection de 40 degrés par seconde. Ensuite, faites la moyenne des signaux de vitesse de la table et de l’œil à l’aide de chaque cycle individuel de l’essai, ajustez les signaux moyennés avec une fonction appropriée.

En général, une stimulation sinusoïdale de la vitesse est utilisée et les cycles moyens sont équipés d’une fonction de signe ou de cosinus. Cette vidéo montre comment les mouvements oculaires sont générés par la rotation de l’écran environnant pour provoquer un réflexe optocinétique faisant pivoter l’écran environnant sur une gamme de fréquences de 0,2 à un hertz avec une amplitude de 1,6 degré. Le système cinétique optique de la souris s’avère plus efficace dans la gamme des basses fréquences que dans la gamme des hautes fréquences.

Voici un autre film pour montrer comment les mouvements oculaires sont générés. En faisant pivoter la souris dans l’obscurité pour provoquer le réflexe oculaire vestibulaire, en faisant pivoter la platine sur une gamme de fréquences de 0,2 à un hertz avec une amplitude de 1,6 degré. Le système oculaire vestibulaire de la souris s’avère plus efficace dans la gamme des hautes fréquences que dans la gamme des basses fréquences.

Voici un autre film sur la façon dont les mouvements oculaires sont générés par la rotation de la souris dans la lumière pour provoquer un réflexe oculaire vestibulaire visuellement amélioré en faisant pivoter la platine sur une gamme de fréquences de 0,2 à un hertz avec une amplitude de 1,6 degrés tandis que l’écran environnant est bien éclairé, que la souris génère des mouvements oculaires compensatoires efficaces sur toute la gamme de fréquences. Et ce film montre comment l’apprentissage moteur a été accompli en augmentant de manière adaptative le réflexe oculaire vestibulaire. En utilisant un paradigme d’entraînement déphasé, la rotation de la platine par rapport à l’écran environnant augmente le gain VOR de cette souris.

Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’effectuer une vidéo ocul chez la souris.

Explore More Videos

Neuroscience Numéro 65 physiologie médecine des mutants de souris le suivi des élèves l'apprentissage moteur les performances du moteur le cervelet le système olivocerebellar réflexe vestibulo-oculaire réflexe optocinétique ophtalmologie oculographie

Related Videos

Imagerie par tomographie par cohérence optique pour l’évaluation de l’uvéite dans un modèle murin

03:12

Imagerie par tomographie par cohérence optique pour l’évaluation de l’uvéite dans un modèle murin

Related Videos

482 Views

Imagerie in vivo de la microglie rétinienne dans un modèle murin de glaucome

04:55

Imagerie in vivo de la microglie rétinienne dans un modèle murin de glaucome

Related Videos

354 Views

Imagerie in vivo de la rétine de souris par tomographie par cohérence optique

04:08

Imagerie in vivo de la rétine de souris par tomographie par cohérence optique

Related Videos

373 Views

Un modèle de souris induite par laser de l'hypertension oculaire chronique pour caractériser les défauts d'apparence

07:00

Un modèle de souris induite par laser de l'hypertension oculaire chronique pour caractériser les défauts d'apparence

Related Videos

13.3K Views

Tomographie par cohérence optique : Imagerie souris ganglionnaires rétiniennes cellules In Vivo

08:17

Tomographie par cohérence optique : Imagerie souris ganglionnaires rétiniennes cellules In Vivo

Related Videos

19.7K Views

In Vivo Imagerie des souris journaliste Cx3cr1gfp/gfp  avec domaine Spectral Optical Coherence Tomography et numérisation Laser ophtalmologique

06:19

In Vivo Imagerie des souris journaliste Cx3cr1gfp/gfp avec domaine Spectral Optical Coherence Tomography et numérisation Laser ophtalmologique

Related Videos

10.9K Views

Utilisant la tomographie par cohérence optique et réponse optocinétique comme lectures structurale et fonctionnelle de système visuel chez les souris et les Rats

07:08

Utilisant la tomographie par cohérence optique et réponse optocinétique comme lectures structurale et fonctionnelle de système visuel chez les souris et les Rats

Related Videos

10.3K Views

À long terme conflit sensoriel en comportement librement souris

06:12

À long terme conflit sensoriel en comportement librement souris

Related Videos

6.9K Views

Application de la tomographie par cohérence optique à un modèle murin de rétinopathie

08:22

Application de la tomographie par cohérence optique à un modèle murin de rétinopathie

Related Videos

4.7K Views

Alignement de fibrogrammes de tomographie par cohérence optique en lumière visible avec des images confocales de la même rétine de souris

07:02

Alignement de fibrogrammes de tomographie par cohérence optique en lumière visible avec des images confocales de la même rétine de souris

Related Videos

1.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code