Évaluation des biomatériaux pour l'augmentation de la vessie à l'aide des analyses cystométriques dans des modèles rongeurs Divers

L’objectif de cette procédure est d’évaluer l’utilisation de biomatériaux pour l’augmentation de la vessie en acquérant des données fonctionnelles par cytométrie. Ceci est accompli par d’abord aner mosin, l’échafaudage à un défaut créé dans la vessie. La deuxième étape de la procédure consiste à tunneliser le tube de cystostomie jusqu’à l’abdomen.

La troisième étape consiste à placer le tube de cystostomie dans la vessie augmentée et à le fixer sur le dos de l’animal. La dernière étape consiste à effectuer une cytométrie pour évaluer la vessie augmentée d’un point de vue fonctionnel. En fin de compte, les résultats peuvent montrer des changements dans la capacité et la compliance de la vessie, les pressions mictionnelles, les temps de cycle nutritionnel et les volumes résiduels post-mictionnels grâce à la cytométrie consciente.

Les implications de cette technique s’étendent au traitement des anomalies congénitales et acquises de la vessie ou de l’urètre qui entraînent une altération de la capacité, de l’observance et de la fonction globale de la vessie. Parce que les nouveaux biomatériaux utilisés pour l’augmentation de la vessie doivent être évalués fonctionnellement. Après avoir préparé un animal à la chirurgie abdominale, utilisez un scalpel pour faire une incision médiane inférieure à travers la peau.

À l’aide d’une pince dentée, élevez le muscle droit et disséquez la surface postérieure du muscle avec de fines mèches et des ciseaux baumiers pour mesurer le reste du muscle sur la ligne médiane sur toute la longueur que l’incision cutanée fait passer la vessie à travers l’endroit de la plaie incisionnelle. Une fois la journée, suturez à travers la paroi postérieure de la vessie, puis à travers la paroi antérieure de la vessie. Des sutures supplémentaires latéralement sur la vessie n’attachent pas ces sutures.

Lorsque les sutures sont tenues de travers, la vessie aura une configuration carrée mesurant environ un centimètre carré, la vessie longitudinalement à travers la paroi antérieure de la vessie, juste inférieure au dôme de la vessie le long de la ligne médiane. Attention à ne pas avoir trop de tension sur ces sutures car elles peuvent facilement être tirées à travers le tissu de la vessie. Pour cette étape, le grossissement en boucle est privilégié pour l’anastomose de l’échafaudage. À l’aide de ciseaux fins, coupez l’échafaudage en soie à la zone approximative du défaut de la vessie.

Commencez par un coin de l’échafaudage et suturez-le à la vessie en courant continuellement. Pour créer un joint étanche tout autour du défaut, il est très important pour le chirurgien d’effectuer une anastomose étanche sans tension de l’échafaudage à la vessie. Cela garantira le confinement de toute l’urine à l’intérieur de la vessie, car toute fuite intrapéritonéale entraînera probablement la mort des animaux.

À titre de test, utilisez une aiguille hypodermique de calibre 30 pour charger la vessie avec de l’eau. Si une fuite est détectée, fermez-la avec une suture interrompue supplémentaire. Ensuite, réduisez la vessie reconstruite dans l’abdomen avant la fermeture de la paroi abdominale.

Injectez du muscle droit et du tissu sous-cutané avec de la bupivacaïne pour l’anesthésie locale et fermez l’incision. Ensuite, utilisez une suture de course continue pour rapprocher le muscle droit et fermez la peau avec une suture de course continue. Après avoir nettoyé et séché l’incision, transférez l’animal dans une cage chaude et propre pour le réveil de l’anesthésie.

Avant de commencer, créez un ancrage à l’extrémité d’un tube PE 50 de 10 centimètres afin qu’il ne glisse pas hors de la vessie. Pour ce faire, évasez l’extrémité du tube en l’exposant doucement à une flamme. Deuxièmement, vérifiez que le tube n’a pas été obstrué.

Injectez l’extrémité non évasée avec du sérum physiologique et assurez-vous qu’elle coule. Après avoir préparé un animal à la chirurgie, avant d’exposer la vessie, faites une incision d’un centimètre sur le dos entre l’omoplate. À l’aide des ciseaux baume metson, développez un plan entre la peau et le muscle sous-jacent.

Placez ensuite les pointes des ciseaux dans le plan et écartez-les pour créer un tunnel sous-cutané vers l’abdomen ventral. Ensuite, retournez l’animal. Exposez et ramenez la vessie vers l’abdomen.

Pour en revenir à l’incision dorsale, placez une petite pince dans le tunnel sous-cutané. Utilisez vos doigts pour protéger le contenu intra-abdominal, puis utilisez les pointes de la pince pour percer la paroi abdominale. Maintenant, saisissez l’extrémité lisse du tube évasé avec la pince et tirez-la vers l’arrière à travers l’incision dorsale.

Ne tirez pas l’extrémité évasée de l’ancrage au-delà de la paroi abdominale avec le tube à travers l’incision. Placez un point de cordon de bourse sur le dôme de la vessie. Laissez une petite pince sur l’extrémité libre de la suture afin qu’elle ne soit pas tirée par inadvertance à travers le point.

De plus, ne tirez pas sur la suture tendue. Maintenant, une aiguille de calibre EU 18 pour percer la paroi de la vessie au centre de la suture du cordon de la bourse juste assez pour être intraluminale. Placez ensuite les pinces fines dans l’ouverture et étalez-les doucement pour élargir le trou.

Insérez l’extrémité évasée du cathéter dans le défaut de la vessie jusqu’à ce qu’il soit intraluminal. Tirez la suture du cordon de la bourse plus serrée autour du cathéter et attachez-la. Ensuite, enroulez une fois la suture libre autour du cathéter et attachez-la.

Maintenant, testez la vessie en y injectant lentement une solution saline via le tube. S’il y a un écoulement de l’urètre, aspirez la solution saline pour décompresser la vessie. Encore. Si une fuite est trouvée, celle-ci doit être réparée avec des sutures, une fuite d’urine peut entraîner la mortalité.

Fermez l’incision abdominale comme démontré précédemment. Procédez ensuite à la fermeture de l’incision dorsale. La procédure de fermeture de l’incision dorsale est différente pour les rats et les souris.

Pour les rats, utilisez des ciseaux pour couper le tube du cathéter au niveau de la peau. Insérez ensuite une aiguille à pointe émoussée de calibre 22 dans le tube. Utilisez des sutures pour fermer la peau sur le tube, laissant l’embout de l’aiguille extrudé.

Placez maintenant un capuchon de ligne intraveineuse sur l’aiguille émoussée et fixez l’extrémité du cathéter à la peau. Ensuite, nettoyez l’incision et laissez l’animal se rétablir dans un environnement chaud. Chez la souris, le cathéter doit être fixé comme suit, laisser le cathéter long et occlure l’extrémité du cathéter en le faisant fondre avec une flamme.

Enroulez l’extrémité du tube et laissez-le dans la poche sous-cutanée sur le dos de l’animal. Fermez la peau sur le tube de manière continue. Avant l’analyse cytrique, prévoyez au moins cinq à sept jours de récupération postopératoire pour les rats ou les souris.

Après récupération le jour de la cytométrie. Pour les souris, il est nécessaire d’ouvrir d’abord l’incision dorsale sous anesthésie et de retirer le tube enroulé de la poche sous-cutanée. Après avoir retiré le tube, fermez cette incision et attendez que la souris se réveille complètement de l’anesthésie avant d’effectuer la cytométrie en commençant par placer les animaux dans des cages métaboliques suspendues au-dessus de balances.

Accédez maintenant aux cathéters sus-pubiens à l’aide d’une aiguille de calibre 27 reliée via un ttu au transducteur de pression et à la pompe à perfusion. Commencer l’infusion de solution saline physiologique. Laissez le tracé du motif de vidange se stabiliser.

Au cours des 10 à 20 minutes suivantes, la pression de la vessie augmente d’abord, puis un vide. Enregistrez ensuite les cycles de tion pendant 15 à 120 minutes, ou au moins trois ou quatre cycles de miction pendant la procédure. Surveillez le pliage du cathéter et d’autres complications.

Les tracés urodynamiques peuvent ensuite être analysés pour dériver des paramètres tels que les volumes évacués, la conformité, les pressions de miction maximales en contraction, l’intervalle, la durée du cycle de miction et les volumes résiduels post-mictionnels. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’augmenter la vessie à l’aide de n’importe quel biomatériau. Vous saurez également comment évaluer la fonction de toute vessie de rongeur à l’aide d’une cytométrie consciente et non retenue.