Name: Spinal Cord Injury complète et cerveau Protocole Dissection pour Wholemount suite In Situ Hybridation dans des larves de la lamproie marine (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: Découvrez la technique de transection complète de la moelle épinière et de dissection cérébrale chez la lamproie marine pour étudier la régénération neuronale et l'orientation axonale après blessure.

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Soutenu par les subventions NIH NS14837, R01 NS38537, R24 HD050838 au Dr Michael E. Selzer ; Subvention de recherche Shriners SHC-85220 au Dr Michael E Selzer ; et la subvention de recherche Shriners SHC-85310 au Dr Michael I. Shifman. Le Dr Antón Barreiro-Iglesias a reçu le soutien de la Fundación Barrié (Espagne) et de la Xunta de Galicia (Galice, Espagne).

Voir le tableau 1 pour tous les matériaux utilisés dans ce protocole. Des expériences ont été approuvés par le soin et l&#39;utilisation des animaux Commission institutionnelle à l&#39;Université Temple. 1. Animaux <ol><li> Obtenir type sauvage larves de lamproie de mer (Petromyzon marinus L.), 10 - 14 cm de longueur (4 - 7 ans) des cours d&#39;eau qui alimentent le lac Michigan, des affluents de la rivière Delaware (Pennsylvanie) ou les cours d&#39;eau, dans le Maine. </li><li> Dans le laboratoire, maintenir les larves dans des groupes de 50 - 100 animaux dans les réservoirs d&#39;eau de 50 gallons à 16 ° C. Ligne des réservoirs avec un pouce de gravier pour les larves de terrier, et l&#39;eau est filtrée et conditionnée charbon de bois avec des pierres de l&#39;air pendant au moins 48 heures pour éliminer le chlore et d&#39;autres impuretés avant de placer les lamproies en eux. Il n&#39;est pas nécessaire de nourrir les animaux, qui recyclent leur propre détritus, jusqu&#39;à la journée d&#39;utilisation. </li></ol> 2. complète épinièreCordon Transection <ol><li> Avant la chirurgie de la moelle épinière préparer une solution de Ringer lamproie avec la composition suivante: NaCl 110 mM, KCl 2,1 mM, 2,6 mM de CaCl2, 1,8 mM MgCl 2 et du tampon Tris 10 mM; pH 7,4. </li><li> Pour effectuer la transection de la moelle épinière, les larves placer dans un petit récipient à anesthésiés avec 1% de méthanesulfonate de tricaïne dans une solution de Ringer à froid de glace. </li><li> Une fois lieu anesthésié les animaux dans une boîte de Pétri à moitié rempli d&#39;Sylgard (silicone) et utilisent 4 broches d&#39;insectes (0,15 mm de diamètre) pour maintenir les animaux en position pour la chirurgie (on est placé au museau de l&#39;animal, l&#39;un à la queue et deux au niveau de la 5 ème branchies). Remplissez la boîte de Pétri près au sommet avec une solution de Ringer. Mettez le plat avec la larve sur la glace pendant la chirurgie sous la loupe binoculaire. </li><li> Pour effectuer la transection de la moelle épinière dorsale, la ligne médiane, une incision longitudinale avec un scalpel (n ° 11) au niveau de la 5 èmebranchies de visualiser la moelle épinière. Initialement, la peau est ouverte par l&#39;insertion de la pointe de la lame de scalpel et ensuite vers le haut le tissu musculaire est coupé très doucement jusqu&#39;à ce que la moelle épinière peut être vu d&#39;en haut. Mode deux crochets des broches insectes et les utiliser pour maintenir les parois de la caisse ouverte tout en effectuant le sectionnement de la moelle épinière. </li><li> Complètement transect de la moelle épinière au niveau de la 5 ème branchies en utilisant une paire de ciseaux (Castroviejo n ° 8), insérer les ciseaux perpendiculairement à la moelle épinière. La moelle épinière doit être complètement sectionnée par une coupe franche. Visualisez les extrémités de la moelle épinière de coupe sous la loupe binoculaire pour confirmer que la moelle épinière a été complètement sectionné. Ensuite, aligner les extrémités de la moelle épinière après la coupe de sectionnement à l&#39;aide d&#39;une paire de pinces (5). </li><li> Après avoir effectué la transection de la moelle épinière fermer la plaie dans la paroi dorsale du corps avec une paire de pinces fines et met les larves sur de la glace pendant 1 heure pour permettre à la plaie de to sécher. Placer un morceau de papier-filtre entre la glace et les larves et les faire tremper avec une solution de Ringer lamproie. La basse température permet de maintenir les animaux vivants, en même temps qu&#39;il permet à la plaie de l&#39;air sec et donc aider à prévenir les infections. </li><li> Transférez ensuite les larves de petits réservoirs (1 larve par réservoir) avec de l&#39;eau glacée pendant 24 heures. </li><li> Examinez la lésion larves 1 jour après le sectionnement de la moelle pour confirmer comportemental qu&#39;il n&#39;y a pas de mouvement caudal au site de la lésion. Un sectionnement de la moelle épinière est considérée comme complète si la larve peut se déplacer que son rostre de la tête à l&#39;endroit de la blessure (au niveau de la 5 ème branchies). Si c&#39;est le cas, les larves peut maintenant être transféré dans des réservoirs (1 larve par réservoir) avec l&#39;eau douce à température ambiante (23 ° C) pour leur permettre de récupérer des points de temps choisis. </li><li> Au cours de la période de récupération de changer l&#39;eau tous les 2 à 3 jours. </li></ol> 3. dissection du cerveau et la préparation dele cerveau pour l&#39;hybridation in situ <ol><li> Aux points de temps souhaités après la blessure ré-anesthésier les lamproies larvaires et le lieu et les épingler dans la boîte de Pétri avec une solution de Ringer pour effectuer la dissection du cerveau comme ci-dessus. </li><li> Pour disséquer le cerveau, tout d&#39;abord faire une incision transversale avec le scalpel entre la narine et la glande pinéale. De là, commencer à couper le tissu entourant le cerveau en utilisant une paire de ciseaux Castroviejo en la tenant avec une paire de forceps. </li><li> Une fois que le cerveau est exposé, retirez le plexus choroïde en utilisant une paire de pinces et d&#39;utiliser les crochets pour répandre la tête de l&#39;animal et d&#39;exposer les nerfs crâniens. Ensuite, coupez la transversale de la moelle épinière avec des ciseaux de Castroviejo. Maintenir la moelle épinière avec une paire de pinces tout en utilisant une autre paire de pinces pour couper les nerfs crâniens pour disséquer le cerveau destination. </li><li> Après dissection, mettre le cerveau sur un petit morceau de silicone et le maintenir en position en insérant deux insect broches dans le bulbe olfactif et le 1 dans la moelle épinière. Ensuite, coupez la partie postérieure et commissures cerebrotectal du cerveau le long de la ligne médiane dorsale avec les ciseaux et dévier les plaques alaires latéralement et épinglez-les à plat sur ​​le silicone avec 4 broches d&#39;insectes (figure 2). </li><li> Transférer la pièce de silicone avec le cerveau dans un tube contenant 4% de paraformaldehyde dans du tampon phosphate salin (pH 7,4) d&#39;être fixé à la chambre temparature pendant 3 heures sur un agitateur. </li><li> Après fixation utiliser le cerveau pour wholemount hybridation in situ comme décrit précédemment (Swain et al., 1994). Brains des animaux de contrôle ou subi une opération fictive doivent être exécutés toujours en parallèle avec les cerveaux des animaux blessés. Le cerveau larvaire wholemounted peut être étudiée par hybridation in situ en raison de sa forme plate et mince et également en raison de l&#39;absence de 10 la myéline, ce qui rend le cerveau plutôt translucide. </li></ol>

<ol><li>Rodicio, M. C., Barreiro-Iglesias, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lampreys+as+an+animal+model+in+regeneration+studies+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Neurol%22%5BJournal%5D)">Lampreys as an animal model in regeneration studies after spinal cord injury.</a> Rev Neurol. 55, 157-166 (2012).</li>
<li>Davis, G. R. Jr, McClellan, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extent+and+time+course+of+restoration+of+descending+brainstem+projections+in+spinalcord-transected+lamprey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Extent and time course of restoration of descending brainstem projections in spinalcord-transected lamprey.</a> J Comp Neurol. 344, 65-82 (1994).</li>
<li>Jacobs, A. J., Swain, G. P., Snedeker, J. A., Pijak, D. S., Gladstone, L. J., Selzer, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+neurofilament+expression+selectively+in+regenerating+reticulospinal+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Recovery of neurofilament expression selectively in regenerating reticulospinal neurons.</a> J Neurosci. 17, 5206-5220 (1997).</li>
<li>Shifman, M. I., Selzer, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+netrin+receptor+UNC-5+in+lamprey+brain+modulation+by+spinal+cord+transection%5BTitle%5D)+AND+%22Neurorehabil+Neural+Repair%22%5BJournal%5D)">Expression of the netrin receptor UNC-5 in lamprey brain modulation by spinal cord transection.</a> Neurorehabil Neural Repair. 14, 49-58 (2000).</li>
<li>Barreiro-Iglesias, A., Laramore, C., Shifman, M. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+sea+lamprey+UNC5+receptors+cDNA+cloning%2C+phylogenetic+analysis+and+expression+in+reticulospinal+neurons+at+larval+and+adult+stages+of+development%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">The sea lamprey UNC5 receptors cDNA cloning, phylogenetic analysis and expression in reticulospinal neurons at larval and adult stages of development.</a> J Comp Neurol. 520, 4141-4156 (2012).</li>
<li>Shifman, M. I., Yumu, lR. E., Laramore, C., Selzer, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+repulsive+guidance+molecule+RGM+and+its+receptor+neogenin+after+spinal+cord+injury+in+sea+lamprey%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Expression of the repulsive guidance molecule RGM and its receptor neogenin after spinal cord injury in sea lamprey.</a> Exp Neurol. 217, 242-251 (2009).</li>
<li>Busch, D. J., Morgan, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synuclein+accumulation+is+associated+with+cell-specific+neuronal+death+after+spinal+cord+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Synuclein accumulation is associated with cell-specific neuronal death after spinal cord injury.</a> J Comp Neurol. 520, 1751-1771 (2012).</li>
<li>Shifman, M. I., Zhang, G., Selzer, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+death+of+identified+reticulospinal+neurons+after+spinal+cord+injury+in+lampreys%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Delayed death of identified reticulospinal neurons after spinal cord injury in lampreys.</a> J Comp Neurol. 510, 269-282 (2008).</li>
<li>Swain, G. P., Jacobs, A. J., Frei, E., Selzer, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+in+situ+hybridization+in+wholemounted+lamprey+brain+neurofilament+expression+in+larvae+and+adults%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">A method for in situ hybridization in wholemounted lamprey brain neurofilament expression in larvae and adults.</a> Exp. Neurol. 126, 256-269 (1994).</li>
<li>Bullock, T. H., Moore, J. K., Fields, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+of+myelin+sheaths%3A+both+lamprey+and+hagfish+lack+myelin%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Evolution of myelin sheaths: both lamprey and hagfish lack myelin.</a> Neurosci Lett. 48, 145-148 (1984).</li>
<li>Cohen, A. H., Kiemel, T., Pate, V., Blinder, J., Guan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperature+can+alter+the+function+outcome+of+spinal+cord+regeneration+in+larval+lampreys%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Temperature can alter the function outcome of spinal cord regeneration in larval lampreys.</a> Neuroscience. 90, 957-965 (1999).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Nous présentons ici un protocole détaillé pour effectuer un sectionnement de la moelle épinière complète et postérieure dissection du cerveau en larves de lamproie de mer. Cette procédure permet d&#39;analyser les différences dans l&#39;expression génique entre les neurones de la moelle épinière en saillie identifiables après une lésion de la moelle épinière par l&#39;intermédiaire d&#39;un cerveau entier de montage en hybridation in situ. L&#39;étape critique dans la procédure est la performance correcte de l&#39;une s...

Chez les mammifères lésion de la moelle épinière (SCI) est une maladie dévastatrice qui conduit à une perte permanente de la fonction ci-dessous le site de la lésion, car axones lésés ne se régénèrent pas dans la zone de traumatisme et se reconnecter à leurs cibles. Contrairement aux mammifères, les lamproies récupérer locomotion après une lésion complète de la moelle épinière. 1 Fait intéressant, les lamproies ont un ensemble de 36 moelle épinière projection neurones qui sont identifiables individuellement dans l&#39;ensemble du montage des préparations du cerveau en raison de leur grande taille 2,3 (Figure 1) . Tous ces neurones spinaux sont en saillie par un axotomisés complète transection de la moelle épinière de haut niveau. Des études antérieures de notre groupe et d&#39;autres ont montré que, même en présence de la récupération fonctionnelle après un traumatisme médullaire certains de ces neurones présentent une très faible capacité de régénération (ils sont considérés comme «mauvais régénérateurs»), tandis que d&#39;autres se régénèrent généralement leur axone à travers le site de la lésion (ils sont considérés comme «grégénérateurs ood »). 2,3 Cette caractéristique rend les lamproies un modèle vertébré intéressant d&#39;étudier les différences d&#39;expression génique entre le bien et le mal régénérateur neurones spinaux saillie qui à son tour conduire à des différences dans la capacité de régénération intrinsèque des neurones qui tentent de régénérer leurs axones dans le même environnement extrinsèque. 1 En utilisant ce modèle, nous avons précédemment montré que les neurones de projection de la colonne vertébrale avec une faible capacité de régénération axonale de montrer l&#39;expression des récepteurs de molécules de guidage comme UNC5 néogénine 4,5 et 6, qui assurent la médiation de l&#39;action inhibitrice de la nétrine et RGM respectivement. En outre, en utilisant cette méthode notre groupe a également montré que seules les bonnes régénérateurs montrent une récupération de l&#39;expression des neurofilaments après la lésion et au cours du processus de régénération. Récemment, Busch et Morgan 7 ont montré par immunofluorescence que les mauvaises régénérateurs montrent un increasexpression ée de synucléine après une blessure, qui a été rapporté par les auteurs sur le fait que les &quot;mauvais&quot; régénérateur neurones spinaux saillie meurent lentement après un sectionnement de la moelle épinière 5,7,8 complète. Ainsi, le modèle de la lamproie d&#39;une lésion complète de la moelle épinière a émergé comme un modèle très utile pour comprendre ce qui rend un cordon en saillie neurone spinal une «mauvaise régénérateur&quot; après axotomie. Pour mener nos études, nous effectuons un sectionnement de la moelle épinière protocole de chirurgie complète et une dissection postérieure du cerveau au niveau des points de temps souhaités après une blessure à effectuer wholemount hybridation in situ. Dans l&#39;article méthodologique actuelle, nous présentons un protocole détaillé pour la bonne exécution d&#39;une opération complète de lésions de la moelle épinière chez les lamproies larvaires, l&#39;entretien ultérieur des animaux et la dissection du cerveau finale et la préparation du cerveau pour une wholemount hybridation in situ. Un protocole détaillé de perform la wholemount hybridation in situ dans le cerveau des lamproies larvaires a été indiqué précédemment. 9 En outre, ce protocole en cas de blessure de la moelle épinière et le cerveau dissection peut être également utilisé pour traiter ensuite les cerveaux pour l&#39;immunohistochimie ou d&#39;autres méthodes histologiques.

<table><tbody><tr><td>Tricaïne méthane sulfonate</td><td>Spectrum</td><td>TR108</td><td>Solution saturée en benzocaïne dans du PBS pour le scalpel à sacrifice</td></tr><tr><td>#3</td><td>Outils de science fine (FST)</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>Lames pour scalpel : #11</td><td>Outils de science fine&nbsp ;</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo ciseaux #8</td><td>Fine Science Tools&nbsp ;</td><td>15002-08</td><td></td></tr><tr><td>Pince #4 & #5</td><td>Dumont, Suisse</td><td>Roboz RS4955</td><td>#4 pour la dissection de la moelle épinière ; #5 pour le décapage des menninges</td></tr><tr><td>Microscope de dissection</td><td>Olympus</td><td>SZ51</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard</td><td>Dow Corning Co.</td><td>184</td><td></td></tr><tr><td>Épingles à insectes 0,15, 0,20 mm</td><td>Austerlitz</td><td>Pas de catalogue #</td><td>0,15 mm pour l’épinglage du cerveau et de la moelle épinière ; 0,20 mm pour le corps</td></tr><tr><td>7 ml Tubes à scintillation en PEHD avec capuchons</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-337-1</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldéhyde 16 %</td><td>Microscopie électronique Science (EMS)</td><td>19210</td><td>Diluer à 4 % dans du PBS</td></tr></tbody></table>

spinal cord injury complète et cerveau protocole dissection pour wholemount suite<em&gt; in situ</em&gt; hybridation dans des larves de la lamproie marine

Complete Spinal Cord Injury and Brain Dissection Protocol for Subsequent Wholemount In Situ Hybridization in Larval Sea Lamprey

Après une lésion complète de la moelle épinière, la lamproie marine dans un premier temps sont paralysés en dessous du niveau de sectionnement. Cependant, ils récupèrent locomotion après plusieurs semaines, ce qui est accompagné par régénération à courte distance (quelques mm) des axones et des axones spinaux propriospinaux saillie du tronc cérébral. Parmi les 36 grands neurones spinaux saillie identifiables, certains sont bons régénérateurs et d&#39;autres sont mauvaises régénérateurs. Ces neurones peuvent le plus facilement être identifiés dans les préparations wholemount SNC. Afin de comprendre les mécanismes neuronaux intrinsèques qui favorisent ou inhibent la régénération axonale après une lésion du système nerveux central chez les vertébrés, nous déterminons les différences d&#39;expression génique entre les bons et les mauvais régénérateurs, et comment l&#39;expression est influencée par la moelle sectionnement de la moelle. Cet article illustre les techniques pour le logement des larves et des adultes lamproies récemment transformées en réservoirs d&#39;eau, la production de sections transversales de la moelle épinière complets sous vision microscopique, et la préparation de brain échantillons entiers et de la moelle épinière pour l&#39;hybridation in situ. En bref, les animaux sont maintenus à 16 &#160; ° C et anesthésiés dans 1% de benzocaïne dans lamproie Ringer. La moelle épinière est sectionnée avec iridectomie ciseaux par une approche dorsale et l&#39;animal est autorisé à récupérer dans les réservoirs d&#39;eau douce à 23 ° C. Par hybridation in situ, les animaux sont reanesthetized et le cerveau et la moelle éliminés par un abord dorsal.

Comme un exemple des résultats qui peuvent être obtenus en utilisant cette méthode, des images représentatives de cerveaux wholemounted montrant l&#39;expression des transcrits néogénine dans les neurones identifiables de la moelle épinière saillie de contrôle et 2 semaines après la lésion larves de lamproie de mer sont présentés dans la figure 2. Les lecteurs sont invités à une étude précédente 6 rapports de la relation entre l&#39;expression de la néogénine après un sectionnement de la moel...

Les lamproies récupérer locomotion après une lésion complète de la moelle épinière. Cependant, certains neurones spinaux en saillie sont de bons régénérateurs et d&#39;autres non. Cet article illustre les techniques de larves logements de la lamproie marine (et les adultes récemment transformées), la production complètes transections de la moelle épinière et le cerveau wholemount préparation et la moelle épinière pour l&#39;hybridation in situ.

Spinal Cord Injury complète et cerveau Protocole Dissection pour Wholemount suite<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridation dans des larves de la lamproie marine

After a complete spinal cord injury, sea lampreys at first are paralyzed below the level of transection. However, they recover locomotion after several ...

L'objectif général de cette procédure est d'effectuer une dissection complète de la moelle épinière, une section de la moelle et du cerveau afin d'étudier le guidage axonal après une lésion. Ceci est réalisé en sectionnant d'abord la moelle épinière d'un lamproie au niveau de la cinquième fente branchiale, puis en dissociant le cerveau et en le fixant sur du sylgard.Après avoir fixé le cerveau, il peut être conservé dans du méthanol ou utilisé immédiatement pour l'hybridation in situ. Des modifications de l'expression des récepteurs de guidage axonal peuvent ainsi être observées dans une vertèbre en cours de régénération après une lésion de la moelle épinière. L'avantage de la technique que nous allons démontrer aujourd'hui par rapport aux méthodes plus conventionnelles de coupe en paraffine ou au cryostat est qu'elle permet d'observer l'ensemble du cerveau, y compris les neurones qui projettent vers la moelle épinière, qui sont de grande taille et identifiés.La procédure est démontrée par le Dr Kathy Zang, scientifique chercheuse dans notre laboratoire. Des cours d'eau alimentant les affluents du lac Michigan jusqu'au fleuve Delaware en Pennsylvanie, ou des cours d'eau du Maine, d

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Spinal Cord Injury complète et cerveau Protocole Dissection pour Wholemount suite

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