15 décembre 2017
Spécifique à la cible sondes représentent un outil innovant pour l’analyse des mécanismes moléculaires, comme expression de la protéine dans divers types de maladie (p. ex., inflammation, infection et tumorigenèse). Dans cette étude, les auteurs décrivent une évaluation quantitative de tomographie tridimensionnelle d’infiltration de macrophages intestinaux dans un modèle murin de colite en utilisant la tomographie de F4/80-spécifique induite par fluorescence.
L'objectif général de cette approche d'imagerie in vivo ciblée est de visualiser les marqueurs moléculaires de l'activité de la maladie dans la maladie inflammatoire de l'intestin. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la maladie inflammatoire de l'intestin et à la recherche thérapeutique associée, notamment concernant l'influence de traitements expérimentaux ou d'événements cellulaires spécifiques sur l'inflammation. Le principal avantage de cette technique est que l'activité de la maladie peut être surveillée de manière longitudinale et non invasive.
Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur les troubles inflammatoires, elle peut également être appliquée à l'étude d'autres maladies, telles que le cancer ou les maladies liées au système immunitaire. Pour induire une colite, remplissez la réserve d'eau potable des souris expérimentales avec deux grammes de sulfate de dextrane sodique, ou DSS, dissous dans 100 millilitres d'eau potable stérilisée par autoclavage, en estimant cinq millilitres d'eau par souris et par jour. 24 heures avant l'analyse, chargez le cocktail d'anticorps d'intérêt dans une seringue stérile protégée de la lumière et injectez les anticorps par voie intraveineuse dans les veines de la queue des animaux expérimentaux.
Le jour de l'expérience, utilisez un rasoir électrique pour raser le pelage dans la région abdominale des animaux expérimentaux afin de minimiser la réflexion et l'absorption de la lumière. À l'aide d'un fantôme imitant les tissus, de taille définie et aux caractéristiques d'absorption connues, remplissez le fantôme avec un volume précis de la solution d'anticorps d'intérêt et mesurez la fluorescence sur l'appareil de tomographie à fluorescence. Ensuite, sur un appareil de tomographie à fluorescence vétérinaire, ou appareil FMT pour petits animaux, cliquez sur Nouvelle étude et incluez les traceurs pertinents dans la description de l'étude, y compris les paramètres d'imagerie et les doses.
Créez des groupes d'étude conformément au plan expérimental, en équipant chaque groupe du nombre approprié d'animaux. Une fois le système calibré pour les constructions marqueurs, placez la première souris anesthésiée en position dorsale dans une cassette d'examen chauffante réglée à 42 degrés Celsius. Insérez la cassette dans le système d'imagerie et sélectionnez l'échantillon approprié dans le groupe d'étude correspondant.
Sélectionnez le traceur administré afin de garantir un calcul correct des valeurs de concentration du traceur, puis acquérez l'image de réflectance de fluorescence à la longueur d'onde appropriée pour le balayage. Cliquez sur Acquérir l'image pour délimiter le champ de balayage et vérifiez que ce champ apparaît en superposition sur l'image de réflectance de fluorescence. Ajustez le champ de balayage jusqu'à ce qu'il entoure la région d'intérêt, en prenant soin d'éviter toute erreur ou les zones où subsiste du poil.
En fonction de la cible de l'image, sélectionnez une résolution du champ de balayage afin de définir le nombre de points de données d'image dans ce champ. Cliquez ensuite sur Balayer pour commencer l'acquisition d'image à la longueur d'onde sélectionnée. À la fin du balayage, retirez l'animal de la cassette afin de permettre à l'animal de se rétablir complètement sous surveillance avant de le ramener à sa cage.
Le TFM peut ensuite être répété à différents moments selon les besoins expérimentaux. Pour analyser les images acquises, ouvrez le logiciel d'analyse d'images approprié et sélectionnez les données brutes du premier balayage. À l'aide de l'outil de reconstruction, créez des cartes 3D de la distribution de la fluorescence.
Lorsque tous les scans ont été ajoutés au jeu de données de reconstruction approprié, ouvrez le premier jeu de données d'intérêt. Tous les scans effectués pour l'animal expérimental sélectionné seront affichés. Sélectionnez le scan approprié et cliquez sur Charger.
Une reconstruction 3D de la distribution du traceur apparaîtra en superposition de l'image de réflectance de fluorescence initialement acquise. Ensuite, identifiez les foyers d'accumulation non spécifique du marqueur sur les cartes 3D reconstruites et utilisez l'outil de mesure pour sélectionner la région d'intérêt. Le logiciel générera alors l'intensité de fluorescence pour la région d'intérêt, ainsi que des mesures en picomoles du traceur pour lequel le balayage a été calibré.
Dans cette expérience, un anticorps marqué par un fluorochrome dirigé contre la protéine murine F4/80 a été utilisé afin de visualiser directement les macrophages activés. Une accumulation significativement accrue de traceur fluorescent a été mesurée par tomographie à fluorescence dans les côlons de souris colitiques par rapport aux animaux contrôles non colitiques, indiquant une augmentation de l'infiltration de monocytes et de leur différenciation en macrophages actifs chez les animaux colitiques. En revanche, l'application d'un anticorps IgG marqué par un fluorochrome non spécifique n'a pas provoqué de réponse fluorescente détectable dans l'abdomen ou l'intestin, ni dans le groupe colitique ni dans le groupe contrôle non colitique, démontrant ainsi la spécificité de l'interaction sonde-cible de l'anticorps anti-F4/80.
Les mesures ex vivo de l'accumulation du traceur dirigé contre F4/80 dans les côlons prélevés confirment davantage l'origine colique de l'accumulation du signal du traceur F4/80 détectée in vivo. En effet, les quantités calculées d'anticorps liés corrélaient bien avec le nombre de macrophages infiltrants déterminé histologiquement, confirmant ainsi que l'imagerie in vivo avec des traceurs spécifiques peut être indicative de l'activité locale de la maladie. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée et analysée en quelques minutes si elle est effectuée correctement.
Les étapes de préparation, y compris la production de traceurs spécifiques à base d'anticorps, prennent généralement deux à trois jours. Lors de la planification d'une procédure expérimentale telle que celle-ci, il est important d'inclure des contrôles appropriés et fiables, tant pour l'anticorps que pour le modèle animal de maladie. Après cette procédure, d'autres méthodes, comme la coloscopie ou la cytométrie en flux, peuvent être réalisées afin de répondre à des questions supplémentaires et de valider ainsi que de quantifier les données.
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Cette étude présente une approche d'imagerie in vivo ciblée permettant de visualiser les marqueurs moléculaires de l'activité de la maladie dans la maladie inflammatoire de l'intestin. En utilisant une évaluation tomographique quantitative en trois dimensions, la recherche se concentre sur l'infiltration des macrophages intestinaux dans un modèle murin de colite.
L'imagerie longitudinale non invasive de l'infiltration des macrophages permet une détection précoce des réponses inflammatoires dans les modèles précliniques, réduisant ainsi la dépendance aux points terminaux et soutenant l'évaluation mécanistique des thérapeutiques anti-inflammatoires. La tomographie quantitative en fluorescence 3D offre une confiance prédictive quant à l'engagement de la cible et aux effets modificateurs de la maladie, guidant les décisions d'aller ou de ne pas aller de l'avant dans les programmes relatifs aux maladies inflammatoires de l'intestin (IBD) et aux affections immuno-médiées. Cette approche améliore la continuité translationnelle en alignant les résultats d'imagerie in vivo avec la validation histopathologique, optimisant ainsi le tri des projets et l'allocation des ressources au sein des voies de découverte.
La tomographie par fluorescence s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de cibles jusqu'à l'identification de composés prometteurs et aux tests d'efficacité préclinique, en particulier pour les composés immunomodulateurs dans l'inflammation gastro-intestinale.