31 באוגוסט 2009
חדש אמצעים למדוד עצבית אופטית באמצעות תחליפי דופמין ניאון.
הנוירוטרנסמיטר המדומה הפלואורסצנטי. FFN 511 הוא מונואמין פלואורסצנטי שיכול לשמש כסובסטרט עבור מוביל המונואמינים הסינפטי הפיזי בעת יישומם על פרוסות מוח. FN 511 נספג על ידי שלפוחיות סינפטיות דופמינרגיות באמצעות מוביל המונואמינים, וניתן להשתמש בו כדי להדמיאן ישירות שחרור של נוירוטרנסמיטורים מקצות פרה-סינפטיים של נוירונים מונו-אמריים, כגון אלה הנמצאים ב-S stratum. שחרור נוירוטרנסמיטורים מהקצות נראה בפרוסה כהפחתה באותות פלואורסצנטיים נקודתיים.
בסרטון זה, מוכנים פרוסות כתר (coronal) של המוח בערך בעובי 250 µm באמצעות ויברטום, נצבעות ב-FFN 511 ומדומיינות באמצעות מיקרוסקופ לייזר רב-פוטוני. מוצגים ניסויי גירוי החושפים הטרוגניות של שחרור iCal התלויה בתדר. שלום, אני HU מהמעבדה של David במחלקה לנוירולוגיה באוניברסיטת קולומביה.
שלום, אני מינרבה גם אני ממעבדת Soldier. היום נראה לכם פרוצדורה לסימון טרמינליות דופמין בחתכי מוח באמצעות מוליכים עצביים מזויפים פלואורסצנטיים. אנו משתמשים בפרוצדורה זו במעבדה שלנו כדי לחקור שחרור דופמין.
בואו נתחיל. לפני הכנת פרוסות סלריאקורט (acute sal slices), יש לחממצן את נוזל השדרה המוחית המלאכותי (A CSF) ולקרר אותו בקרח למשך 15 דקות לפחות לפני הוצאת המוח. במהלך הניתוח, יש לשמור על ה-A CSF קר מאוד ומחומצן. הוצא את המוח השלם מהעכבר והצמד אותו למגש הוויברטום (vibram tray), שהונח על הוויברטום, באמצעות דבק מהיר (crazy glue). הוצאת המוח והצמדתו חייבות להתבצע בתוך שתי דקות.
מלאו את המגש בפרוסות מוח חתוכות במישור קורונלי ישר או בנתחים, בעובי 250 micrometer בין +1.54 ל-+0.62, ב-A CSF מחומצן ומקורר. יתקבלו שלושה נתחים, אותם ניתן לחתוך לשישה חצאי נתחים באמצעות מחט. דגרו את פרוסות המוח ב-A CSF מחומצן בטמפרטורת החדר למשך שעה אחת לפחות בזמן שפרוסות המוח עוברות דגירה.
בתוך A CSF מחומצן, הכין תמיסת טעינה של FFN 511 בריכוז 10 µM על ידי הוספת תמיסת סטוק של FFN 511 בריכוז 10 mM ל-A CSF. לאחר מכן, הכין תמיסה של A-D-V-A-S-E-P 7 בריכוז 100 µM ב-A CSF. חמצן את שתי התמיסות למשך 15 דקות לפחות לפני הטעינה האינדיבידואלית לתוך הפרוסות. דגור כל פרוסת מוח עם תמיסת הטעינה של FFN 511 למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.
בשלב הבא, הסר את ה-di הקשור לרקמה החוץ-תאית על ידי דגירה של הפרוסה הטעונה ב-100 µM advers, seven A CSF מחומצן למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר. הפרוסות מוכנות כעת לדימות. צביעת FFN 511 תדומיים בפרוסות באמצעות מיקרוסקופ סריקה לייזר רב-פוטוני מסוג prairie Ultima. הנח את הפרוסה הטעונה ב-FFN 511 בתא ההקלטה ובצע פרפוזיה של A CSF מחומצן בקצב זרימה של 1-2 mL/min. לאחר מכן, הנח נבל פלטינה עם מיתרי ניילון על גבי הפרוסה כדי למזער תנועה.
במהלך הניסוי, כדי לצמצם תנועה עוד יותר, יש לאפשר לפרוסות להתייצב במשך 10 דקות לפחות בתא לפני הדימוי. יש להדמיות ולאתר את ה-dorsal stri AUM באמצעות לומניסנציה בשדה בהיר (brightfield luminescence) תחת עדשת טבילה במים 10 x; יש להניח ולממקם את אלקטרודות הטונגסטן המפותלות והדו-קוטביות באזור זה לצורך ביצוע ניסוי בגירוי. אזור הדימוי הפנוי נמצא בטווח של 300 micrometers.
בין שני הקטבים של האלקטרודה הביפולרית המעוררת, מקמו אזור זה במרכז התמונה של השדה הראייתי, כאשר ה-FFN 511 מסמן את ה-Sal terminals תחת עדשת מימיות אולטרה-סגולה 63 x. ה-FFN 511 מעורר באורך גל של 760 nanometers באמצעות לייזר mi tai מבית spectral physics. פלואורסצנציה אופטימלית של Sal terminals נראית דרך מסנן band pass; צלמו תמונות בפורמט 12 bit עם אזורי עניין (ROI) של 75 by 75 µm ברזולוציה של 512 by 512 pixels. תמונת דוגמה של Sal dopamine terminals המסומנים ב-FFN 511 מוצגת כאן.
ניתן להסיר את סימון ה-FFN 511 באמצעות ריכוזים גבוהים של potassium chloride amphetamine sulfate או באמצעות גרייה חשמלית בניסוי להסרת ה-FFN 511; כאשר מחלילים תמיסת CSF עם ריכוז גבוה של פוטסיום על פרוסת המוח, סימון ה-FFN 511 מוסר בתוך ארבע דקות. הקליטו תמונות XYZT כדי לעקוב אחר הסרת ה-FFN 511 לאורך זמן במקרה של הסרה באמצעות גרייה חשמלית. השגיאו סדרת תמונות בקרת זמן של ה-Zack לפני הגרייה למשך חמש דקות לפחות, כדי להבטיח תנועה מינימלית של הפרוסה והיעדר photo bleaching על ידי הלייזר לאחר רכישת תמונות הבקרה.
המשיכו בדימות ה-XYZT תוך כדי התחלת הגירוי בתדרים של 1, 4 או 20 hertz; גירויים מופעלים באופן מקומי בסטריאטום על ידי מבודד גירויים מסוג isof lex המופעל על ידי מחולל פולסים master eight באמצעות אלקטרודות בי-פולריות. סרטון זה מציג את ה-FFN 511 במהלך אקסוציטוזה בתוך פרוסה של מוח SAL. הכנה: כאשר טעינת ה-FFN 511 לתוך ה-SAL הושלמה, נצפו סימונים ענפים בסטריאטום, סימונים דלילים בקורטקס וללא סימונים ב-corpus callosum.
ניתן לגרום לדה-סיינינג (detaining) של סימון סלקטיבי של טרמינלים של דופמין באמצעות ריכוז גבוה של פוטסיום כלוריד, כפי שמוצג בתמונות מייצגות אלו לפני הפוטסיום כלוריד ושתי דקות לאחר יישום של 70 millimolar פוטסיום כלוריד. ניתן לבצע דה-סיינינג של סימון FFN 511 ב-CSF גם באמצעות אמפטמין. ותמונה זו מראה סימון FFN 511 בסטריאטום לפני מתן אמפטמין.
בעוד שתמונה זו מציגה את הסטריאטום 20 דקות לאחר שחרור (detaining) עם 20 µM amphetamine, שחרור של סימון FFN 511 על ידי גרייה חשמלית מקומית מודגם בתמונות אלו, המראות את סימון FFN 511 בסטריאטום לפני הגרייה, ובשניות 217 ו-514 לאחר תחילת הגרייה בתדר של 4 Hz. גרף זה של עוצמת פלואורסצנציה מנורמלת לאורך זמן מראה כי שחרור של FFN 511 תלוי בסידן ובתדירות; ביקורות, המיוצגות על ידי משולשים ריקים, לא קיבלו גרייה. שחרור בנוכחות cadmium chloride, המיוצג על ידי עיגולים ריקים, היה זהה לביקורות שלא עברו גרייה.
עקומות הדעישה עבור כל תדר גרייה, המיוצגות על ידי העיגולים הצבעוניים, הותאמו לפונקציית דעיכה מעריכית בודדת, וערכי זמן מחצית החיים חושבו כ-tau כפול 0.693. כעת הצגנו בפניכם כיצד להטעין נוירוטרנסמיטר פלואורסצנטי של כוח FFN five 11 לתוך טרמינלי דופמין בתוך פרוסה אקוטית של אל, וכיצד לשחרר אותו באמצעות אסיליום של אשלגן גבוה ולעורר את הגרייה. זוהי השיטה הראשונה שפותחה כדי לבחון אופטית שחרור של נוירוטרנסמיטרים ברמה של טרמינלים סינפטיים בודדים.
בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור לשמור על פרוסות בריאות מאוד ולהיות מודעים לזמן הטעינה, להבהרת הרקע ולארטיפקטים של תנועה; פרוסות המציגות FFN 5 11 תקין ניתנות לטעינה ולדימוי עד ארבע שעות לאחר הכנת הפרוסות. זהו כל הדבר. תודה שצפיתם ובהצלחה בניסויים שלכם.
מחקר זה מציג שיטה חדשנית למדידה אופטית של העברה עצבית באמצעות אנלוגים פלורסצנטיים של דופמין, ובייחוד FFN 511. הטכניקה מאפשרת ויזואליזציה ישירה של שחרור דופמין מטרמינלים פרה-סינפטיים בחתכי מוח.
ויזואליזציה ישירה של שחרור מוליכים עצביים בטרמינלים פרה-סינפטיים בודדים מאפשרת הפחתת סיכונים מכניסטית בתיקוף מטרות דופמינרגיות. שיטה זו תומכת בביטחון חיזוי על ידי כימות דינמיקת שחרור תלוית-תדירות והטרוגניות באוכלוסיות של שלפוחיות סינפטיות. היא מספקת מידע לקבלת החלטות בשלבים מוקדמים של הגילוי על ידי קישור התפקוד הפרה-סינפטי לפרמטרי גירוי ולמודולציה של רצפטורים.
השיטה משתלבת בתהליכי עבודה של שלבי הגילוי המוקדמים על ידי אספקת מדידה ישירה ובזמן אמת של שחרור דופמין מטרמינלים פרה-סינפטיים, ובכך היא תומכת בבדיקת השערות ובהפחתת סיכונים ביולוגיים לפני זיהוי המולקולה המובילה (lead identification).