7 בדצמבר 2010
יש לנו נגזרת אסטרטגיה לזהות התאגדות של אנלוגים רציפים thymidine (CldU ו IdU) לתוך רקמות של עכברים בוגרים לכמת שני סיבובים רצופים של חלוקת התא. אסטרטגיה זו שימושית כדי לזהות מחזור התא של חיים ארוכים רקמות, שינוי בשעור, או מעבר, הגברה תאים.
שלום וברוכים הבאים לפרוטוקול הצביעה Calor D-U-I-D-U. היום הסרטון שלנו יתחיל בשלב השלישי: רהידרציה, חדירה ושחזור אנטיגנים. התחילו על ידי העמסת ה슬יידים שלכם לתוך הנשא.
לאחר טעינת השקופיות, הניחו אותן באמבט של xylene למשך חמש דקות. לאחר מכן, העבירו אותן לאמבט xylene שני, שוב למשך חמש דקות.
המשיכו ברהידרציה (rehydration) של הנסליכים על ידי העברתם לתמיסות אתנול, החל מתמיסה של 100% ועד לתמיסה של 50%. השלימו את תהליך הרהידרציה של הנסליכים על ידי הנחתם למשך חמש דקות ב-1XPBS כדי להחדיר חומרים לממברנות התאים (permeabilization). טבלו את הנסליכים בתמיסת Triton X בריכוז 0.2% למשך חמש דקות. הכינו את הנסליכים לשחזור אנטיגן של רקמות באמצעות מיקרוגל על ידי הנחתם בביקר זכוכית עם נפח מספיק של באפר נתרן ציטראט בריכוז 0.01 molar, כך שהתמיסה תכסה את הנסליכים בגובה של חמישה סנטימטרים מעל פני השטח שלהם.
כדי לפצות על איבוד עקב אידוי, חמם את השקופיות במיקרוגל עד שהתמיס רותח. פעולה זו אמורה להימשך כ-3 עד 10 דקות בהספק מלא. ודא שהשקופיות רותחות.
הפחית את הספק המיקרוגל לבין 10% ל-80% והמשך להרתיח באיטיות את השקופיות למשך 20 דקות נוספות. לאחר ההרתחה, הנח את הכוס הכוללת את השקופיות על משטח העבודה כדי לאפשר להן להתקרר באיטיות במשך כשעתיים, עד שיגיעו לטמפרטורת החדר. ודא שהשקופיות נמצאות בטמפרטורת החדר.
טבול את השקופיות ב-1.5 חומצה כלורית טבעית למשך 40 דקות בטמפרטורת החדר. הוצא את השקופיות מחומצה הכלורית והנח אותן למשך חמש דקות בשטיפה של 1X PBS. לאחר מכן בצע שטיפה שנייה ב-1X PBS.
הוציאו את השקופיות מתמיס ה-one XPBS באמצעות עט שעווה חוסם נוזלי. סמנו במעגל כל נתח רקמה והחזירו את השקופית אל ה-PBS. הכינו תא דגירה לח על ידי הנחת מגבת נייר רטובה בתחתית של מכל אטום לאוויר.
הכינו תמיסת חסימה של 10% docking serum המדוללת ב-one XPBS. חשוב לכסות לחלוטין כל נתח רקמה בתמיסה, עבור נתחי רקמה שגודלם הטיפוסי הוא כ-1 על ידי 1.5 סנטימטרים. נפח של 50 µL של תמיסת חסימה הוא מספיק.
הכינו את הנוגדן הראשוני ל-IDU על ידי דילול אנטיסרום של עכבר נגד BRDU בסרום חמור בריכוז 5%. הוסיפו בריכוז של 1:250. טפטפו את התמיסה הראשונית על כל אחד מחתכי השקופית.
הניחו את השקופיות במקרר בטמפרטורה של 4°C. עבור דגירה למשך לילה, הכינו תמיסת שטיפה בעלת מחומרות גבוהה. TBST יעיל למטרה זו.
סידור השקופיות גב אל גב. העבירו את השקופיות לכ- 35 עד 40 milliliters של תמיסת TBST. הניחו את המבחנות באינקובטור לתרביות חיידקים עם ניעור בטמפרטורה של 37 °C.
השאר אותם לנער למשך 20 דקות ב-225 RPM. כעת העמס את השקופיות לתוך נשא. הנח את השקופיות ב-XPBS אחד לשטיפה ב-PBS למשך חמש דקות.
לאחר מכן תבוצע שטיפה שנייה ב-XPBS למשך חמש דקות. הכין את תמיסת הנוגדן הראשוני ל-CLDU על ידי דילול של rat anti BRDU בסרום חמור בריכוז 5%. הוסף ריכוז של 1:250, הנח את השקופיות על נייר סופג ולאחר מכן סמן אותן בעט שעווה.
השתמשו בפיפט כדי לכסות כל נתח רקמה בתמיסת CLDU ראשונית. השתמשו בכ-50 µL תמיסה כדי להבטיח שכל נתח רקמה מכוסה לחלוטין. הניחו את השקופיות במקרר בטמפרטורה של 4 °C לדגירה למשך לילה.
הניחו את השקופיות בנשא ולאחר מכן העבירו אותן לשטיפה ראשונה ב-1X PBS למשך חמש דקות. העבירו את השקופיות לשטיפה שנייה ב-1X PBS למשך חמש דקות. הכינו נוגדנים שניים על ידי דילול של נוגדני CY2 donkey anti-RAD ו-PS5 donkey anti-muse ב-5% Donkey serum. DPI ישמש גם לצביעת גרעין; כסו לחלוטין את חיתוכי הרקמה בנוגדנים השניים.
50 µL תמיסות אמורים להספיק כדי לכסות לחלוטין את הרקמה שלך. הנח את תא ההידרטציה במקום חשוך בטמפרטורת החדר לדגירה של שעה אחת. הנח את השקופיות בנשא ולאחר מכן העבר אותן לשטיפה אחת ב-XPBS למשך חמש דקות.
הנח את הנסקיות לשטיפה שנייה ב-XPBS למשך חמש דקות. הסר עודפי תמיסת PBS באמצעות נייר סופג. לאחר מכן, קח Prolonged Gold anti-fade mounting media והנח טיפה קטנה ממנו על כל נתח רקמה.
קחו זכוכית כיסוי והניחו אותה בעדינות על גבי נתחי הסלייד. השתמשו בנייר סופג כמשקולת כדי לדחוס החוצה בועות אוויר עודפות שייתכן ונלכדו בין נתחי הסלייד לזכוכית הכיסוי. לבסוף, השתמשו בקצה פיפטה כדי לדחוף החוצה בועות אוויר עודפות שייתכן שנותרו. דמיינו את הרקמה המבוקשת באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי המצויד במקור אור בעל אנרגיה גבוהה ובערוצי פלואורסצנציה מרובים לצורך כימות התוצאות.
התחילו בספירת מספר התאים החיוביים ל-Dabi. ספרו את מספר התאים החיוביים ל-CLDU באמצעות תמונת שני הערוצים של ה-SI. ספרו את מספר התאים החיוביים ל-IDU באמצעות תמונת חמשת הערוצים של ה-SCI.
לבסוף, ספרו תאים המסומנים באופן חיובי כפול על ידי מעבר בין קובץ התמונה של ערוץ SCI two לזה של ערוץ SCI five.
מאמר זה מציג שיטה לזיהוי שילוב רצפי של אנלוגים של תימידין (CldU ו-IdU) ברקמות של עכברים בוגרים, המאפשרת כימות של שני סבבים רצופים של חלוקת תאים. טכניקה זו בעלת ערך למחקר של תחלופת תאים ברקמות בעלות אורך חיים רב, טרנספורמציה אונקוגנית ותאים עם הגברה מעברית (transit-amplifying cells).
כימות מדויק של חלוקת תאים עקבית מאפשר הפחתת סיכונים מכניסטית בתהליך תיקוף המטרה (target validation) על ידי הבהרת הדינמיקה הפרוליפרטיבית במערכות הרלוונטיות למחלה. גישה זו תומכת בביטחון חיזוי במודלים פרה-קליניים על ידי הבחנה בין תגובות פרוליפרטיביות חולפות לכאלה מתמשכות, ובכך מספקת מידע לזיהוי מועמדים מובילים (lead identification) ולתיעוד ותעדוף של תיקי פיתוח. התאימות של השיטה לרקמות ארוכות חיים משפרת את גילוי הביומארקרים תרגומיים באונקולוגיה וברפואה רגנרטיבית.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מתיקוף המטרה דרך זיהוי מובילים ועד ליעילות פרה-קלינית, ומספקת מדדי התרבות התומכים בהחלטות go/no-go בכל שלב.