Summary
Здесь мы представляем метод выражения ацетилированных белков гистона с помощью расширения генетического кода и собираем восстановленные нуклеосомы в пробирке.
Abstract
Ацетилированные белки гистона могут быть легко выражены в Escherichia coli кодирования мутанта, Nε-ацетил-лизин (AcK)-специфический Метаносарчина Мази пирролизин тРНК-синтезаз (MmAcKRS1) и его cognate tRNA (tRNAPyl) для сборки восстановленных мононуклеом с сайта конкретных ацетилированных гистонов. MmAcKRS1 и tRNAPyl доставляют AcK на место мутации янтаря в мРНК выбора во время перевода в Escherichia coli. Этот метод широко используется для включения AcK на участках лизина H3. Пирролизил-тРНА синтезаз (PylRS) также может быть легко развивались для включения других неканонических аминокислот (ncAAs) для сайта конкретной модификации белка или функционализации. Здесь мы подробно метод для включения AcK с использованием системы MmAcKRS1 в гистон H3 и интегрировать ацетилированные белки H3 в восстановленных мононуклеозом. Ацетилированные восстановленные мононуклеосомы могут быть использованы в биохимических и связывающих анализах, определении структуры и многое другое. Получение модифицированных мононуклеом имеет решающее значение для разработки экспериментов, связанных с открытием новых взаимодействий и пониманием эпигенетики.
Introduction
Мы использовали PylRS и tRNAPyl для синтеза и сборки восстановленных мононуклеосом с конкретными ацетилированными гистонами. PylRS оказался бесценным в качестве инструмента расширения генетического кода для производства белков с пост-трансляционными модификациями (PTMs) и был генетически эволюционировал, чтобы включить около 200 различных ncAAs. PylRS включает в себя на янтарной остановке кодон, устраняя конкуренцию с другими аминокислотами во время перевода. PylRS был впервые обнаружен в метамфетаминовых археев, и с тех пор был использован в химической биологии для включения новых реактивных химическихгрупп в белки 1,2.
MmAcKRS1 был создан из метаносаркина mazei PylRS и часто используется в нашей лаборатории для синтеза ацетилированныхбелков 3,4,5,6. MmAcKRS1 поставляет AcK на место мутации янтаря в мРНК выбора во время перевода в Escherichia coli. Этот метод ранее был использован для включения AcK на K4, K9, K14, K18, K23, K27, K36, K56, K64, и K79 histone H3 лизин сайтов для изучения деятельности Sirtuin 1, 2, 6, и 7 на ацетилированных мононуклеозом4,5,6. Здесь мы подробно этот метод, чтобы выразить ацетилированные гистоны и восстановить ацетилированные нуклеосомы.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Плазмидная конструкция
- Начните с принятия решения, какой белок гистон будет ацетилирован и на котором лизин сайта. Мутировать сайт к янтарной остановки кодон (TAG) с помощью сайта направлены мутагенез.
ПРИМЕЧАНИЕ: Есть четыре ранее разработанных плазмидов, используемых для выражения гистона белков. Все четыре белка гистона были клонированы в вектор pETDuet-1 с тегом N-терминала гистидина. Histone H4 также включает в себя тег SUMO, происхождение репликации colE1 с номером копии около 40, ампициллин устойчивый, и T7 промоутер.- Дизайн вперед и обратной грунтовки, которые содержат мутации TAG в нужном месте (замена существующих лизин кодон с янтарной остановки кодон) в одном из четырех гистон белка плазмиды.
- Используйте цельноплазмический ПЦР для усиления TAG, содержащего плазмиду. Определите соответствующую температуру для грунтовок. В целом, температура плавления (Тм)грунтовки минус 5 градусов по Цельсию будет достаточной. При затруднении получения ПЦР-продукта для оптимизации температурной температуры для усиления можно использовать температуру температурыТ- м - 5 градусов по Цельсию.
ПРИМЕЧАНИЕ: В этом эксперименте в доме выраженный полимераза ПФУ использовалась в течение 30 циклов со следующими условиями: 94 градуса по Цельсию для 30 с (денатурация), температура анны 30 с, и 72 градусов по Цельсию в течение 6 минут (или 1 мин за килобазу-пары). Для получения более подробной информации об этом типе метода ПЦР см. Лю и Нейсмит7. - Очистите продукт PCR с помощью комплекта очистки ПЦР, следуя протоколу производителя. Проанализируйте продукт ПЦР с помощью электрофорезы агарозного геля и последующего окрашивания бромистого этидия.
- Ligate плазмид путем инкубации с T4 лигазы ночь при 16 градусов по Цельсию.
- Сначала превратите TAG, содержащий плазмид (AmpR)в химически компетентную палочку Escherichia. Выберите минимум 4 колонии из преобразования и очистить плазмиду. Сделать клеточные запасы каждого с глицеролом с помощью стандартных методов и хранить при -80 градусов по Цельсию. Отправить для секвенирования, чтобы подтвердить желаемую мутацию TAG.
- Как только последовательность подтвердится, совместно трансформировать TAG-содержащие плазмид (AmpR) с pEVOL-AckRS (ChlR) в химически компетентных CobB (единственный гистон лизин deacetylase известный в E. coli.) удаление BL21 клеток с использованием метода теплового шока. pEVOL является плазмид с серединой копии числа с низким числом копий p15A происхождения.
ПРИМЕЧАНИЕ: Серия плазмидов pEVOL была построена на основе предыдущих исследований, которые показали увеличение экспрессии пары orthogonal aaRS/tRNATyr было эффективным в снижении утоления белка и в увеличении общих урожаевбелков-мутантов 8. Если ячейки удаления CobB недоступны, протейте с химически компетентными клетками BL21. CobB является Sirtuin-как гистон лизин deacetylase и никотинамид может быть добавлен в 5 мМ окончательной концентрации во время экспрессии белка гистона для ингибирования КобБ в качестве альтернативного подхода9. - Сделать запас клеток и хранить при -80 градусов по Цельсию.
2. Ацетилированная экспрессия белка гистона
- Подготовь 1 л автоклавных 2YT-медиа (или громкости выбора) в культурной колбе.
- Прививка 20 мл 2YT-медиа, содержащего соответствующие антибиотики с совместно преобразованным клеточным запасом, который имеет ТАГ-содержащую плазмиду (AmpR)и pEVOL-AckRS (ChlR) и растет на 37 градусов по Цельсию до OD 0,6 (4-6 ч).
- Добавьте соответствующие антибиотики к 1 л автоматических 2YT-медиа и прививки с 20 мл стартер культуры. Рост на 37 градусов по Цельсию до OD 0,6-0,8 (2-3 ч).
- Добавьте индуцирующие агенты и ацетиллин (AcK) в окончательные концентрации IPTG 1 мМ, 0,2% арабинозы и AcK 5 мМ.
- Выращиваем культуру при 37 градусов по Цельсию за 6-8 ч.
- Пеллетные клетки по 2700 х г в течение 15 мин.
- Храните гранулы клетки при -80 градусов по Цельсию на ночь.
- С этого шага и далее держать образец на льду все время. Растворите клеточные гранулы в 50 мл буфера лиза гистона на 1 л культуры.
- Sonicate в соответствии со следующим циклом: 1 с, 1 с выключенным, всего на время: 3 мин при 60% амплитуды.
- Пеллет включения органов на 41600 х г в течение 45 мин.
- Отбросьте сверхнатантные и повторное включение органов в 30 мл буфера лиза гистона. Пеллет включение сулит на 41600 х г в течение 30 мин.
- Отбросьте сверхнатантные и повторное включение органов в 30 мл буфера для мытья гранул. Пеллет включения органов на 41600 х г в течение 30 мин.
- Отбросьте супернатант и растворите тела включения в 25 мл 6 M гидрохлорид Гуанидина (GuHCl) буфера. Инкубация с возбуждением при 37 градусов по Цельсию в течение 1 ч.
ПРИМЕЧАНИЕ: При необходимости органы включения могут быть инкубированы с возбуждением на ночь при 4 градусов по Цельсию. - Пеллет включение сулит на 41600 х г в течение 45 мин. Инкубировать супернатант с 1 мл смолы Ni-NTA equilibrated с 6 M GuHCl буфера на 2 ч.
- Продолжить очистку Ni-NTA в денатурированных условиях. Вымойте столбец с 3 объемами столбца буфера мытья. Elute ацетилированный белок гистона с 10 мл буфера элюции.
ПРИМЕЧАНИЕ: Попытка сконцентрировать белок здесь вариант, но ацетилированные гистоны очень непредсказуемы и могут легко осаждать. Не рекомендуется концентрироваться последние 2 мл в общем объеме. - Обширно диализ ацетилированного белка гистона против 5% буфер уксусной кислоты для удаления солей. Диалайз в течение 3 ч за один раз при 4 градусах Цельсия, обменивая на свежий буфер минимум 6 раз.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для улучшения чистоты белка, есть возможность диализует против чистой воды. Однако это приводит к значительным осадкам и снижению урожайности, что может быть нежелательно для низкоутяжеленных ацетилированных белков гистона. - Aliquot и лиофилизовать белок, и хранить на неопределенный срок при -80 градусов по Цельсию. Белки дикого типа гистон обычно дают 10-50 мг/л, в то время как ацетилированные белки гистона дают менее 10 мг/л в зависимости от конкретного участка лизина. Например, H3K79Ac в среднем 5 мг/л.
3. Выражение белка дикого типа гистона
- Чтобы собрать полные нуклеосомы, вырази все 4 белка гистона. При выражении и очистке дикого типа гистонов протокол такой же, как ацетилированные гистоны, за исключением следующих:
- Не выполняем совместной трансформации. Не используйте pEVOL-AcKRS для выражения дикого типа гистона. Отрегулируйте антибиотики соответствующим образом.
- Не используйте линию ячейки удаления CobB или добавить никотинамид, acK или арабинозу во время индукции клеточной экспрессии.
4. Подготовка 601 ДНК
ПРИМЕЧАНИЕ: Ранее разработанная оптимизированная последовательность ДНК для прямого нуклеосомного позиционирования собирается с гистоновыми октамерами для производства мононуклеосомы с высокой эффективностью. Эта последовательность называется 601 ДНК или последовательность Widom. Эта последовательность стала стандартной последовательностью ДНК для исследований в пробирке нуклеосом от хроматина ремоделирования анализов до измерения одной молекулы10.
- Чтобы подготовить значительное количество 601 ДНК для нуклеосомной сборки, превратите pGEM-3z/601 в топ-10 клеток и вырастит 10 мл культуры для плазмидного усиления и экстракции. Используйте комплект для извлечения плазмиды и следуйте рекомендации производителя.
- Для этого протокола усиления используйте для этого протокола усиления использование полимеразы PFU (более эффективной). Настройка реакции ПЦР: для реакции 250 йл, использовать 207,5 мкл autoclaved МЗ H2O, 25 йл 10x PFU Буфер, 5 йл Вперед Праймер: ctggagaatcccgggccg, 5 йл Обратный праймер: acaggatgtatatatctgacacg, 5 йл DNTP смеси, 2,5 L PFU фермента. Обычно мы запускаем 60 реакций одновременно, чтобы собрать достаточно ДНК.
- При использовании полимеразы ПФУ используйте аннальную температуру 52 градуса по Цельсию в течение 30 с и время расширения на 30 градусов. В противном случае следуйте рекомендованным производителям условиям.
- Как только ПЦР будет сделано, используйте PCR очистить комплект выбора для очистки продукта PCR.
5. Собрание октамера гистона
- Растворите алициты белковых гранул гистона H2A, H2B, H3 и H4, чтобы в GuHCl Buffer был отдельный запас каждого белка гистона общим объемом 100 йл.
- Рассчитайте концентрацию каждого белка гистона путем измерения поглощения A280.
- Если абсорбанс больше, чем 1 для любого белка, разбавить буфером GuHCl, чтобы получить более точную концентрацию.
- Объедините белки H2A и H2B в соотношении 1:1 моляра и разбавьте к общей концентрации белка 4 мкг/л. Повторите для H3 и H4.
- Диализ последовательно при 4 кк против 2 M TE буфера ночь, 1 M TE буфер для 2 ч и 0,5 МТ TE буфер для 5 ч.
ПРИМЕЧАНИЕ: Второй и третий этапы диализа вызывают нестабильные конформации белка, чтобы выйти. Ожидается, что на этих ступенях ожидаются обильные осадки. - Удалить осадки центрифугации при 16800 х г при 4 градусов по Цельсию.
- Опять же, рассчитать концентрацию гистон димеров (H2A/H2B смеси) и тетрамеров (H3/H4 смеси)измерения поглощения A 280.
- Смешайте димеры и тетрамеры в соотношении 1:1 моляров и отрегулируйте NaCl до 2 M путем добавления твердого NaCl.
- Октамер histone можно хранить при 4 градусах Цельсия и более стабилен, чем димеры и тетрамеры. Никогда не замораживайте октамер histone, так как это может привести к разборке.
- При сборке с ацетилированными гистонами, просто заменить белок дикого типа с ацетилированным белком в процедуре.
6. Нуклеосомная сборка
- Используйте 100x TE буфер и твердый NaCl для настройки 601 ДНК к 2M TE буфера. Добавьте ДНК 601 в буфере 2M TE к октамеру гистона в соотношении молар 0,85:1 к 0,90:1. Более низкое соотношение ДНК может быть добавлено, если свободная ДНК присутствует в анализе сдвига геля.
- Передача ДНК-гистоновой смеси в диализный мешок и поместите примерно в 200 мл буфера 2M TE (или больше, если сборка нескольких образцов) и очень осторожно перемешать при 4 градусах Цельсия.
- Установите перистальтический насос, чтобы очистить медленно капать в не соль TE буфера. Когда объем примерно удвоился, вылейте половину объема. Сделай это по крайней мере 4 раза в общей сложности. С насосом это может занять 4-8 ч в зависимости от стартового объема. Нуклеосомы образуются при снижении концентрации соли до 150 мМ (измеряется измеритым счетчиком солености).
- После снижения концентрации соли до 150 мМ, диасализует против 20 мМТ te буфера на ночь.
- Удалите осадки путем центрифугации и измерьте концентрацию нуклеосом с помощью чтения A260 с помощью считыватель пластин.
- Добавить его-TEV protease (TEV: нуклеосома 1:30, w:w ) и инкубировать на ночь при 4 кк, чтобы удалить все гистидин теги. Удалите примеси гистидина тега из нуклеосомного раствора смолы Ni-NTA съехать вниз.
- Чтобы распоят нуклеосому и гомогенизировать образец, инкубировать при 60 градусов по Цельсию в течение 1 ч.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для ацетилированных сайтов, которые являются особенно нестабильными, этот шаг не может быть целесообразным. - Храните нуклеосомы в течение короткого периода времени (несколько недель) при 4 градусах Цельсия.
- Для длительного хранения, диасоз нуклеозомы против буфера хранения и хранить при -80 градусов по Цельсию.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Димеры, тетрамеры и октамеры можно оценить, запуская гель SDS PAGE 12%(рисунок 1 и рисунок 2). Здесь вы можете видеть, что некоторые из ацетилированных теттрамеров имеют более низкую урожайность, чем другие(рисунок 1). На самом деле, чем ближе к основному региону, тем ниже наблюдаемая урожайность. Это, скорее всего, связано с ацетилированием, мешающих сборке тетрапера, чем ближе вы к основным областям. Аналогичное влияние наблюдается после сборки октамеров(рисунок 2). После сборки октамеров с 601 последовательности ДНК, нуклеосома может быть оценена с помощью 5% 1x TBE Родной PAGE гель следуют с окрашивание бромистого этидия(рисунок 3). Перед перевариванием TEV нуклеосомная полоса наблюдается вблизи отметки 10k базовой пары. После переваривания TEV нуклеосомная полоса смещается вниз по отношению к лестнице. Перед тепловым позиционированием наблюдаемые нуклеосомные полосы будут очень широкими, а возможно и полосами(рисунок 4).
Рисунок 1: Хистон димеры и тетраперы. Представитель 12% SDS PAGE гель дикого типа гистон димер (полоса 2) и H3 ацетилированные теттрамеры (полосы 3-9). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Октамеры Histone. Представитель 12% SDS PAGE гель H3 ацетилированные октагоне октамеры (полосы 2-11). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: Собран его помечены H3K64Ac нуклеосомный комплекс. Представитель 1x TBE Родной PAGE гель нуклеосомы H3K64Ac (полоса 2) по сравнению со свободным 601 ДНК (Лейн 4) визуализированы бромистого этидия. Лейн 3 показывает нуклеосому H3K64Ac после инкубации при 60 градусах Цельсия в течение одного часа. В полосе 3 наблюдается, что все нуклеосомы разобраны. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 4: Собранный TEV переваривается нуклеосомный комплекс. Представитель 1x TBE Родной PAGE гель дикого типа TEV переваривается нуклеосомный комплекс, и бесплатно 601 ДНК. Сравнение до и после нуклеосомного теплового позиционирования. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Важно следовать этому протоколу во всех деталях во время эксперимента. Нуклеосомы не очень стабильны, и при определении этого протокола было допущено много проб и ошибок. Это ключ к удалению осадков на каждом шагу (или при наблюдении), потому что частицы могут легко вмешиваться в процессы сборки. Всегда держите образцы гистона на льду. Если нуклеосомы хранятся при 4 градусах Цельсия слишком долго, они могут спонтанно разобрать. Не забудьте проверить любые образцы родной PAGE, если хранится при 4 КК в течение более 2 недель до использования в любом эксперименте. Избегайте вихревых октамеров и нуклеосом, так как это также может привести к их разборке. Если проблемы встречаются сборки димеров, тетрамеров или октамеров, это обычно свидетельствует о плохом качестве белка. Проверьте качество белка на 15% SDS-PAGE. Один из вариантов, если чистота белка низка, это диализуть белок против чистой воды. Это вызовет обильные осадки и значительно снизит урожайность белка, но даст более чище образца. Включение и нуклеосомная стабильность каждого места ацетилирования гистона варьируется в широких пределах. В общем, чем ближе сайт к N-терминал домена, тем ниже урожайность во время экспрессии белка гистона. Для нуклеосомной стабильности, чем ближе место ацетилирования к нуклеосоме ядра или ДНК связывающих участков, тем менее стабильна собранная нуклеосома. При решении проблем со стабильностью крайне важно всегда держать нуклеосомный образец на льду. Возможно, необходимо опустить этап нуклеосомного позиционирования при 60 градусов по Цельсию, так как это может привести к разборке или осадкам. Основным ограничением ацетилированных нуклеосом является их нестабильность. Это может быть невозможно преформировать анализы при более высоких температурах, таких как 37 градусов по Цельсию, не вызывая нуклеосомных осадков. Если позволяют экспериментальные процедуры, выполняйте их при 4 градусов по Цельсию, чтобы предотвратить осадки ацетилированной нуклеосомы.
Этот метод производства нуклеосом особенно полезен для производства модифицированных нуклеосом для обязательных экспериментов и определения структуры. Этот метод производит нуклеосомы с более высокой чистотой и известной нуклеосомной последовательностью ДНК, которая устраняет смешанные переменные, что приводит к лучшему контролируемым экспериментам и изображениям с более высоким разрешением. Крайне важно для определения структуры, что нуклеосомный образец однороден с известной последовательности ДНК, в противном случае это будет все, но невозможно получить изображения с высоким разрешением.
Существует обилие потенциальных применений этого метода. В частности, в области эпигенетики. Это может быть невероятно трудно получить модифицированные белки. Получение модифицированных белков имеет решающее значение для зондирования структуры и функции писателей, читателей и ластиков во многих эпигенетических путей, которые плохо понимаются. Ранее мы использовали этот метод для зондирования доступности нуклеосомной ДНК для пищеварения Pst1 на участках Ацетилирования H3 K18, K36 и K56, собирая каждый октамер мутантов с измененной последовательностью ДНК 601, которая содержит место пищеварения Pst1. Этот метод может быть дополнительно изменен для включения NCAAs, кроме AcK. PylRS могут быть разработаны для включения хозяйский ряд других NCAAs. Мы также включили N ε -(7-azidoheptanoyl)-L-лизин(AzHeK) янтарным кодоном в Escherichia coli для рекомбинантного выражения нескольких белков AzHeK, содержащих гистон H3, для исследования активности диацилляции гистона SIRT7 на нескольких участках ацетилирования. Этот подход показал, что SIRT7 имеет высокую активность к дециляции H3K36, а также каталитически активен для деацилата H3K37. Децициляция H3K36 была дополнительно показана как нуклеосомная зависимость и может быть значительно усилена путем добавления короткой двухструйной ДНК в акил-нуклеосомный субстрат, который имитирует преодоление ДНК между нуклеосомами в родномхроматине 6.
Этот метод также может быть изменен для производства нуклеосом дикого типа без изменений, которые могут быть полезны в различных сценариях. Наша группа недавно опубликовала структуру в сотрудничестве с группой д-ра Pingwei Ли, показывая плотную привязку циклической GMP-AMP синтазы (cGAS) к отрицательно заряженной кислой патч, образованный гистон H2A и H2B через свой второй сайтсвязывания ДНК 11. cGAS является датчиком dsDNA, который катализает синтез циклического динуклеотида cGAMP, который опосредует индукцию интерферонов типа I через сигнальную ось STING-TBK1-IRF312,13,14,15,16.
Преимущество использования полностью собранных нуклеосом больше напоминает родное состояние нуклеосом, выступающей в качестве лучшей модели для зондирования деятельности или связывающих способностей любого количества эпигенетических белков. Есть множество примеров ограниченной или полностью отсутствующей активности ферментов по отношению к обнаженной ДНК или гистон пептидных субстратов, что при зондировании с нуклеосомными субстратами резко меняет результаты. Как и в случае с приведенным выше примером, для SIRT7 был обнаружен новый сайт децицилирования с помощью нуклеосомного субстрата, который в противном случае был бы неизвестен. Очень важно использовать местные субстраты при зондировании этих типов систем. Этот метод может быть использован для зондирования чтения, письма и стирания активности или связывающей способности любой модификации, которая может быть включена в метод расширения пиролин генетического кода. Пирролизил-тРНА синтезазы уже родной беспорядочный и был разработан для множего других субстратов уже открывает двери для использования этой техники в любом количестве систем, что делает основным ограничивающим фактором творчества исследователя.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Нет конкурирующих финансовых интересов, которые декларирует кто-либо из авторов.
Acknowledgments
Мы хотели бы поблагодарить д-ра Уэсли Вана за то, что он заложил основу для этого протокола и его ценного наставничества. Эта работа была частично поддержана Национальными институтами здравоохранения (Grants R01GM127575 и R01GM121584) и Фондом Уэлча (Grant A-1715).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 0.5 M TE Buffer | NA | NA | 0.5 M NaCl, 20 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7.8 |
| 1 M TE Buffer | NA | NA | 1 M NaCl, 20 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7.8 |
| 100x TE Buffer | NA | NA | |
| 2 M TE Buffer | NA | NA | 2 M NaCl, 20 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7.8 |
| 20 mM TE Buffer | NA | NA | 20 mM NaCl, 20 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 7.8 |
| 6 M GuHCl | 6M guanidinium chloride, 20 mM Tris, 500 mM NaCl, pH 8.0 | ||
| Acetyllysine | |||
| Column Wash Buffer | NA | NA | 6 M urea, 500 mM NaCl, 20 mM Tris, 20 mM imidazole pH 7.8 |
| Elution Buffer | NA | NA | |
| Fisherbrand Variable-Flow Chemical Transfer Pump | Fischer Scientific | 15-077-67 | |
| His-TEV protease | |||
| Histone Lysis Buffer | NA | NA | 60 mM Tris, 100 mM NaCl, 0.5% Triton-X100 (v/v), 1 mM PMSF pH 8.0 |
| Ni-NTA Resin | 6 M urea, 500 mM NaCl, 20 mM Tris, 250 mM imidazole, pH 7.8 | ||
| PCR Clean-Up Kit | Epoch Life Sicences | 2360050 | |
| Pellet Wash Buffer | NA | NA | 60 mM Tris, 100 mM NaCl, pH 8.0 |
| petDUET-His-SUMO-TEV-H4 | |||
| petDUET-His-TEV-H2A | |||
| petDUET-His-TEV-H2B | |||
| petDUET-His-TEV-H3 | |||
| pEVOL-AckRS | Addgene | 137976 | |
| pGEM-3z/601 | Addgene | 26656 | |
| Storage Buffer | NA | NA | 20 mM NaCl, 20 mM Tris, 20 mM NaCl, 1 mM EDTA, 20% glycerol, pH 7.8 |
| Thermocycler |
References
- Srinivasan, G., James, C. M., Krzycki, J. A. Pyrrolysine encoded by UAG in Archaea: Charging of a UAG-Decoding specialized tRNA. Science. 296 (5572), 1459-1462 (2002).
- Wan, W., Tharp, J. M., Liu, W. R. Pyrrolysyl-tRNA synthetase: an ordinary enzyme but an outstanding genetic code expansion tool. Biochimica Et Biophysica Acta. 1844 (6), 1059-1070 (2014).
- Umehara, T., et al. N-Acetyl lysyl-tRNA synthetases evolved by a CcdB-based selection possess N-acetyl lysine specificity in vitro and in vivo. FEBS Letters. 586 (6), 729-733 (2012).
- Hsu, W. W., Wu, B., Liu, W. R. Sirtuins 1 and 2 are universal histone deacetylases. ACS Chemical Biology. 11 (3), 792-799 (2016).
- Wang, W. W., Zeng, Y., Wu, B., Deiters, A., Liu, W. R. A chemical biology approach to reveal Sirt6-targeted histone H3 sites in nucleosomes. ACS Chemical Biology. 11 (7), 1973-1981 (2016).
- Wang, W. W., et al. A click chemistry approach reveals the chromatin-dependent histone H3K36 deacylase nature of SIRT7. Journal of the American Chemical Society. 141 (6), 2462-2473 (2019).
- Liu, H., Naismith, J. H. An efficient one-step site-directed deletion, insertion, single and multiple-site plasmid mutagenesis protocol. BMC Biotechnology. 8 (1), 91 (2008).
- Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A., Schultz, P. G. An enhanced system for unnatural amino acid mutagenesis in E. coli. Journal of Molecular Biology. 395 (2), 361-374 (2010).
- Gallego-Jara, J., Écija Conesa, A., de Diego Puente, T., Lozano Terol, G., Cánovas Díaz, M. Characterization of CobB kinetics and inhibition by nicotinamide. PLoS One. 12 (12), 0189689 (2017).
- Lowary, P. T., Widom, J. New DNA sequence rules for high affinity binding to histone octamer and sequence-directed nucleosome positioning. Journal of Molecular Biology. 276 (1), 19-42 (1998).
- Zhao, B., et al. The molecular basis of tight nuclear tethering and inactivation of cGAS. Nature. 587 (7835), 673-677 (2020).
- Burdette, D. L., Vance, R. E. STING and the innate immune response to nucleic acids in the cytosol. Nature Immunology. 14 (1), 19-26 (2013).
- Barber, G. N. Innate immune DNA sensing pathways: STING, AIMII and the regulation of interferon production and inflammatory responses. Current Opinion in Immunology. 23 (1), 10-20 (2011).
- Ablasser, A., et al. cGAS produces a 2'-5'-linked cyclic dinucleotide second messenger that activates STING. Nature. 498 (7454), 380-384 (2013).
- Gao, P., et al. Cyclic [G(2',5')pA(3',5')p] is the metazoan second messenger produced by DNA-activated cyclic GMP-AMP synthase. Cell. 153 (5), 1094-1107 (2013).
- Zhao, B., et al. A conserved PLPLRT/SD motif of STING mediates the recruitment and activation of TBK1. Nature. 569 (7758), 718-722 (2019).
