1. 移動相を作る
2. コンポーネント ソリューションの作成
行わなければならない 3 つのコンポーネントは、カフェイン (0.8 mg/mL)、(1.4 mg/mL)、安息香酸カリウム、アスパルテーム (L-アスパルチル-L-フェニルアラニン メチルエステル) (6.0 mg/mL)。これらの濃度は、かつて同じ方法で希釈ソーダ サンプルで発見したレベルで基準を置きます。
3. 7 標準溶液を作る
すべての 3 つのコンポーネントがある異なる分配係数、どのフェーズの両方との相互作用に影響を与える。分配係数が大きいほど長期間の保存で静止した段階のコンポーネントを費やしている多くの時間回検出器に到達。
4. 高速液体クロマトグラフィー システムの初期設定をチェックします。
5. 手動で注入サンプルとデータ収集

図 1。3 つの部品のクロマト グラム。左から右へ, 彼らが安息香酸、アスパルテーム、カフェインです。
6. ダイエット ソーダのサンプル
ダイエットコーク、ダイエットペプシ、コカコーラゼロは「未知数」彼ら残されている、中性化を取り除くために一晩に開いた容器に泡が HPLC システムに適していません。これは、サンプルの任意のガスの十分に取り除きます。
7. 計算

図 2。曲線のピーク高さと幅、乗算するが、基本的な例 (ピーク高さ × 幅 ½)。
ソース: 博士ポール亭 - パデュー大学
高速液体クロマトグラフィー (HPLC) は、液体試料のコンポーネントを定量化する一般的に使用される重要な分析法です。この手法でソリューション (最初の段階) 多孔質微粒子のパッキングには表面にバインドされている 2 番目のフェーズが含まれている列をポンプでくまれます。2 つのフェーズにおける試料成分の異なる溶解性により、従ってこれらのコンポーネントの分離を作成する別の平均速度で列を移動するコンポーネントです。一方の列の段階は固定相と呼ばれる移動相ポンプのソリューションと呼びます。
静止したおよび/またはモバイル相採用の種類に応じて、液体クロマトグラフィーのいくつかのモードがあります。この実験は、逆相クロマトグラフィー固定相は非極性、移動相は極性を使用しています。採用する固定相は、3 μ m のシリカ粒子に結合して移動相はその溶出強度を変化させる追加極性有機修飾子 (アセトニ トリル) で緩衝水溶液 C18 炭化水素グループです。このフォームのシリカは、水溶性、アプリケーションの広い範囲を提供するサンプルに使えます。この実験ではダイエット飲料 (すなわちカフェイン、安息香酸、アスパルテーム) で頻繁に見られる 3 つの要素の混合物が分かれています。3 種の知られていた量を含む 7 つの準備ができてソリューションを使用し、彼らのクロマト グラムに記録されます。
1. 移動相を作る
2. コンポーネント ソリューションの作成
行わなければならない 3 つのコンポーネントは、カフェイン (0.8 mg/mL)、(1.4 mg/mL)、安息香酸カリウム、アスパルテーム (L-アスパルチル-L-フェニルアラニン メチルエステル) (6.0 mg/mL)。これらの濃度は、かつて同じ方法で希釈ソーダ サンプルで発見したレベルで基準を置きます。
3. 7 標準溶液を作る
すべての 3 つのコンポーネントがある異なる分配係数、どのフェーズの両方との相互作用に影響を与える。分配係数が大きいほど長期間の保存で静止した段階のコンポーネントを費やしている多くの時間回検出器に到達。
4. 高速液体クロマトグラフィー システムの初期設定をチェックします。
5. 手動で注入サンプルとデータ収集

図 1。3 つの部品のクロマト グラム。左から右へ, 彼らが安息香酸、アスパルテーム、カフェインです。
6. ダイエット ソーダのサンプル
ダイエットコーク、ダイエットペプシ、コカコーラゼロは「未知数」彼ら残されている、中性化を取り除くために一晩に開いた容器に泡が HPLC システムに適していません。これは、サンプルの任意のガスの十分に取り除きます。
7. 計算

図 2。曲線のピーク高さと幅、乗算するが、基本的な例 (ピーク高さ × 幅 ½)。
高速液体クロマトグラフィー(HPLC)は、液体混合物の成分を固定相とのさまざまな相互作用に基づいて分離する非常に汎用性の高い手法です。
HPLCは、カラムクロマトグラフィーを応用したものです。カラムクロマトグラフィーでは、カラムには固定相と呼ばれるマイクロスケールのビーズが充填されています。固定相ビーズは、ビーズと液体または移動相中に位置する混合物の成分との間の相互作用を誘発する化学基で官能基化されています。混合物がカラムを流れると、成分は固定相と異なる方法で相互作用します。
HPLCでは、カラムクロマトグラフィーは従来のカラムクロマトグラフィーよりも高い流速、つまり高い圧力で実行されます。これにより、表面積と体積の比率が大きい小さな固定相ビーズを使用できるようになり、固定相と移動相中の成分との相互作用が大幅に増加します。
このビデオでは、さまざまなダイエットソーダの成分の分離を実演することで、HPLCの操作の基本を紹介します。
ラボで使用されるHPLCには、分析用と分取用の2種類があります。分析HPLCでは、装置を使用して少量の成分を同定し、分析したサンプルは廃棄物として廃棄されます。分取HPLCでは、装置を使用して混合物を精製し、各成分の所望の量をフラクションに収集します。
HPLC装置は、一連のシンプルなコンポーネントで構成されています。まず、溶媒リザーバーに保持された移動相は、1 つ以上のポンプによって一定の流量でシステム内をポンプで送り込まれます。サンプルは、サンプルインジェクターによって移動相ストリームに注入されます。移動相で希釈されたサンプルは、HPLCカラムに送達され、そこでサンプルの成分が分離されます。その後、成分は検出器によって分析され、後で使用するために分画で保存されるか、廃ボトルに移されます。
HPLCカラムは、システムの主要コンポーネントです。これは、固定相のマイクロスケールビーズ、またはクロマトグラフィー樹脂が詰められた金属またはプラスチックのシリンダーで構成されています。サンプル混合物は、充填された粒子床を一定の流速で流れ、各成分は流れながら固定相と相互作用します。
化合物は固定相と異なる方法で相互作用するため、カラムの長さに沿って検出器まで異なる速度で移動します。成分がカラムから出る、つまり溶出するのに必要な時間は、保持時間と呼ばれます。その結果、保持時間対強度のプロット、またはクロマトグラムが得られます。保持時間は、コンポーネントを識別するために使用されます。ピークサイズ、特にピークの下の面積は、初期溶液中の化合物の量を定量するために使用されます。
固定相の選択は、サンプル混合物中の成分の特性によって異なります。最も一般的に使用される固定相はシリカビーズであり、マイクロスケールのビーズを形成する不活性な非極性材料であり、十分な充填密度を達成します。最も一般的なタイプのHPLCは逆相クロマトグラフィーで、疎水性の固定相、通常はビーズの表面にC18鎖が結合したシリカビーズを利用します。成分は極性が減少する順に溶出されます。
逆相クロマトグラフィーで使用される移動相は、通常、水とアセトニトリルなどの有機溶媒の混合物です。サンプルによっては、移動相を水と有機溶媒の比率を一定に保つことができます(アイソクラティックモードと呼ばれます)。しかし、これにより、水分含有量が高い場合はピークが広くなったり、有機物含有量が高い場合はピークが重なったりすることがあります。
移動相比は、分離中に直線的または段階的に変化させて、移動相の勾配を作成することもできます。グラジエント溶出により、極性の低い成分のピークブロードニングを防ぐことができるため、分離が改善され、溶出時間が短縮されます。
HPLCの基本が概説されたので、研究室でHPLC技術を実演します。この実験では、HPLCを使用して、ダイエットソーダの3つの一般的な成分を分離および定量化します。
まず、移動相を調製するために、1.5 L の精製脱イオン水に 400 mL のアセトニトリルを加えます。次に、2.4mLの氷酢酸を慎重に加えます。溶液を総容量2Lに希釈します。得られた溶液のpHは2.8〜3.2である必要があります。
校正済みのpHメーターを使用して、攪拌液に40%NaOHを滴下して加え、pHを4.2に調整します。
真空下で0.47μmのメンブレンフィルターで移動相をろ過し、溶液を脱気し、カラムを詰まらせる可能性のある固形物を取り除きます。気泡は固定相にボイドを引き起こしたり、検出器セルに流れ込んで測定が不安定になったりするため、溶液を脱気することが重要です。
ダイエットソーダの3つの典型的な成分であるカフェイン、安息香酸、アスパルテームの3つの成分溶液を準備します。次に、これらのコンポーネント溶液を使用して、未知化合物を決定するために使用される標準溶液を調製します。カフェインと安息香酸溶液500mLを調製します。
アスパルテーム成分溶液100mLを調製します。分解を防ぐため、使用しないときは溶液を冷蔵庫に保管してください。
次に、カフェイン、安息香酸、アスパルテームの濃度が異なる7つの標準溶液を調製します。各成分を適量をメスフラスコにピペットで移し、移動相で50 mLのマークまで希釈します。
最初の 3 つの溶液にはそれぞれ 1 つの成分が含まれており、ピークの同定が可能です。他の 4 つの溶液には、ピーク高さと濃度を相関させるために、3 つの成分すべての濃度の範囲が含まれています。
各標準溶液をサンプルラック内のラベル付きバイアルに注ぎます。サンプルラックにはサンプルと残りの溶液を冷蔵庫に保管してください。
まず、移動相と廃棄物容器をセットアップします。廃棄物ラインが廃棄物コンテナに供給され、移動相にリサイクルされていないことを確認してください。インレット移動相ラインが移動相コンテナに供給されていることを確認します。
移動相の流速が 0.5 mL/min に設定されていることを確認します。この流速により、すべての成分が 5 分以内に溶出しますが、個々のピークの分離を確保するには十分に遅くなります。
次に、溶媒送液システムの最小圧力と最大圧力を確認します。これらの設定は、それぞれ漏れや詰まりが発生した場合にポンプを停止します。
検出器のフロントパネルの「ゼロ」を押して、ブランクを設定します。100-をすすぎますか?Lシリンジに脱イオン水を入れ、次に7つの作業標準のうちの1つを数容量入れます。次に、シリンジにその溶液を入れます。各成分のピークを特定するために、3つの単一成分サンプルから始めます。
次に、インジェクターハンドルを負荷位置に置いて、手動で溶液を注入します。ゆっくりと100を注入しますか?セプタムポートを通る溶液のL。
データ収集プログラムが 300 秒間データを収集するように設定されており、3 つのピークすべてが検出器を通じて溶出するのに十分な時間を確保していることを確認します。試験を開始する準備ができたら、インジェクターハンドルを注入位置まで回転させて、サンプルを移動相に注入します。すぐに、データ収集プログラムの「トライアルを開始」をクリックします。スキャンが完了したら、7つの標準ソリューションごとにプロセスを繰り返します。最初の 3 つの標準試料のそれぞれについて、3 つのピークのうち 1 つだけが表示されます。コンポーネントの識別に使用されるピークの位置に注意してください。
3つのダイエットソーダサンプルを選択し、炭酸を取り除くために開いた容器に一晩置いておいてください。
一晩脱気した後、各ダイエットソーダを約3 mLをプラスチック製の注射器に引き込みます。次に、フィルターチップをシリンジに取り付け、ソーダをフィルターを通してガラスバイアルに押し込み、固体の微粒子を取り除きます。
各サンプルの 2 mL を移動相 2 mL で希釈して、ソーダ濃度を半分に減らします。
100を引く?ソーダサンプルの1つのLをシリンジに入れ、サンプルループに注入します。標準ソリューションと同じパラメーターで試用版を実行します。ソーダサンプルごとに繰り返します。
まず、標準サンプルのピーク面積を既知の濃度と相関させます。これを行うには、三角法を使用して、各標準サンプルのクロマトグラフのピーク面積を決定します。幅を高さの半分にしてピーク高さの時間を計算し、この値をピーク面積として使用します。
ピーク面積と既知の濃度を使用して、各成分の検量線を作成し、各検量線の最小二乗適合を決定します。
ピーク面積からダイエットソーダの各成分の濃度を計算します。ソーダはすべて、HPLCに注入する前に2倍に希釈されたことを忘れないでください。これらの結果に基づいて、12オンスのソーダ缶の各コンポーネントのmgを計算します。
当然のことながら、テストされた3つのソーダすべてに、ほぼ同量の防腐剤安息香酸塩が含まれていました。ただし、コーラ製品にはカフェインが多く含まれていました。すべてのコンポーネントの計算値は、メーカーによって報告された値とよく相関していました。
HPLCは汎用性の高い装置で、幅広い分析に使用されています。
HPLCは、ペプチド分子の精製によく使用されます。この例では、膜貫通型ペプチド複合体を調製し、次いでタンパク質をジスルフィド結合で酸化的に架橋することにより安定化させた。
次に、タンパク質をギ酸に溶解し、逆相HPLCを使用して精製しました。次に、2つの溶媒の線形グラジエントを使用してサンプルを溶出し、質量分析で純度を確認しました。
HPLCは、ラボで合成された有機化合物の同定にも使用できます。Miller-Urey実験では、原始地球での有機化合物の非生物的合成が研究されました。メタンやアンモニアなどの原始ガスは、初期の海をシミュレートして、水の入ったフラスコに導入されました。その後、原初の地球の稲妻を模倣して放電が加えられました。
次に、HPLCと質量分析を組み合わせて水を分析し、既知のアミノ酸標準と比較しました。この実験では、23種類のアミノ酸が合成され、同定されました。
JoVEのHPLCの紹介をご覧になりました。これで、測定器の実行と結果データの分析の基本を理解できました。
ご覧いただきありがとうございます!
高速液体クロマトグラフィーの実験では、高圧ポンプはインジェクターを介してリザーバから移動相を取る。それは成分の分離用逆相 C18 充填カラムを通過します。最後に、移動相は、220 nm で廃液ボトル終了吸光度が測定される検出器セルに移動します。インジェクターのポートから検出器まで移動するコンポーネントにかかる時間の量は、保存期間と呼ばれます。
液体クロマト グラフは、逆相カラムで分離を実行する、この実験で使用されます。柱寸法が 3 mm (内径) × 100 ミリメートルとシリカ C18 オクタデシルシラン (ODS) 修飾とはパッキング (3 μ m 粒子サイズ)。Rheodyne 6 ポート ロータリー射出バルブ最初の小さなループのサンプルを格納するため、バルブの回転によって移動相にサンプルを紹介します。
220 の波長吸収分光法による検出は nm。254 でこの実験を実行できる nm、検出器が変数でない場合。検出器からのデータは計測したデジタルマルチメータ (DMM) を使用して、アナログ電圧出力を持って、データ集録プログラム搭載コンピューターで読み取る。結果として得られるクロマト グラムは、サンプルのすべてのコンポーネントのピークを持っています。この実験では、すべての 3 つのコンポーネントは、5 分以内溶出します。
この実験は、単一移動相とのイソクラティック移動相と呼ばれるポンプを使用します。分離しにくいサンプルの場合は、グラデーションの移動相が使用できます。これは、初期の移動相は主に水性のものと、時間をかけて第二有機溶媒を徐々 に追加して全体的な移動相に。このメソッドは、コンポーネントの保持時間を削減し、ガスのクロマト グラフの温度勾配と同様に動作時間をかけてこの相の極性を発生させます。周囲温度の変動に伴う時エラー離れて任意の保持かかるどこ列は (通常は 40 ° C に加熱すると、いくつかのインスタンスがあります。
逆相 HPLC の充填カラム固定相は通常 C4、C8、または C18 パッキングします。C4 列は、C18 カラムは、ペプチドや低分子量の基本的なサンプルに対し大きな分子量の蛋白質のために主にです。
吸収分光法による検出は、成分の吸収スペクトルはすべて容易に利用できる、任意の検出方法では圧倒的に。いくつかのシステムの検出方法として電気化学的測定、電気伝導度や電流などを使用します。
この実験では、移動相は主に 20% アセトニ トリルと 80% (DI) 純水を精製しました。少量の酢酸は、微量の状態で静止した梱包段階で、シラノールを保つ移動相の pH を下げるに追加されます。これはテーリング、狭いピークを与えることから吸着ピークを低減します。その後、pH を上げるし、部品の保持時間を減らすを助けるのために 40% 水酸化ナトリウムで pH を調整します。
各グループは、濃度の異なる標準液 (表 1) を含む 7 バイアルのセットを使用します。各ピークを識別する最初の 3 の使用し、最後の 4 はコンポーネントごとに校正グラフを作成します。基準 1-3 は、校正チャートにも使用されます。
| 番号 | カフェイン (mL) | 安息香酸 (mL) | アスパルテーム (mL) |
| 1 | 4 | 0 | 0 |
| 2 | 0 | 4 | 0 |
| 3 | 0 | 0 | 4 |
| 4 | 1 | 1 | 1 |
| 5 | 2 | 2 | 2 |
| 6 | 3 | 3 | 3 |
| 7 | 5 | 5 | 5 |
表 1。在庫基準 (各標準の容量は 50 mL) 7、作業基準を準備するために使用のボリューム。
HPLC クロマト グラムが標準 (図 3) の較正曲線に基づいてすべてのサンプルの 3 つのコンポーネントのそれぞれを定量化することができます。
この実験セットからこれらのダイエット ソーダの 12 オンス缶に各コンポーネントの次に掲げる金額が含まれていることが確認されました。
ダイエット コーラ: 50.5 mg カフェイン。217.6 mg のアスパルテーム。83.6 mg 安息香酸。
コーラ 0: 43.1 mg カフェイン。124.9 mg のアスパルテーム。85.3 mg 安息香酸。
ダイエット ・ ペプシ: 34.1 mg カフェイン。184.7 mg のアスパルテーム。79.5 mg 安息香酸。
当然、すべて 3 いた約同量の安息香酸、防腐剤だけだと。コーラ製品がもう少しカフェインとコーラ ゼロを持っていた他の 2 つの炭酸飲料よりもはるかに少ないアスパルテームいくつか調味料のクエン酸も含まれています。
次の数字は、カフェインや 12 オンス缶 (カフェイン含有量は、コカ ・ コーラとペプシのウェブサイトから取得されました 3 ダイエット炭酸飲料中のアスパルテームの実績。アスパルテーム コンテンツから得られた LiveStrong.com そして DiabetesSelfManagement.com.)。
ダイエット コーラ: 46 mg カフェイン。187.5 mg のアスパルテーム
コーラ 0: 34 mg カフェイン。87.0 mg のアスパルテーム
ダイエット ・ ペプシ: 35 mg のカフェイン。177.0 mg のアスパルテーム
計算例 (表 2)。
STD #1 中のカフェインの濃度: カフェインのコンポーネント ソリューションいた 500 mL = 0.500 L → 0.800 グラム/L = 0.800 mg/mL に希釈してカフェインの 0.400 g。
STD #1 人 50.0 mL に希釈してこの溶液 1 mL
0.800 mg/mL * (1.0 mL/50.0 mL) = 0.016 mg/mL = 16.0 mg/l.
STD #2 いた 50.0 mL に希釈してこの溶液 2 mL
0.800 mg/mL * (2.0 mL/50.0 mL) = 0.032 mg/mL = 32.0 mg/l.
3 校正グラフ (図 4) から結果は、次の数式。
カフェイン ピーク面積 = 0.1583* [カフェイン mg/L] - 0.574
アスパルテームのピーク面積 = 0.02696* [アスパルテーム mg/L] - 0.405
安息香酸のピーク面積 = 0.1363* [安息香酸 mg/L] - 1.192
ダイエット コーラ: カフェイン ピーク面積 10.68 を = = 0.1583* [カフェイン mg/L] - 0.574
[カフェイン mg/L] = (10.68 + 0.574)/(0.1583) = 71.1 mg/L 注入されたサンプルで。
サンプルの 2 倍希釈し、以来、ダイエット コーラはカフェイン 141.2 mg/L をしていた。
12 oz あたりの量ことができます = (141.2 mg/L) (0.3549 mL/12 oz 缶) = 50.5 mg カフェイン/することができます。

図 3。5 標準および 3 のサンプルの HPLC クロマト グラム。

図 4。3 つの部品のそれぞれの検量線。

表 2。較正曲線を生成するために使用される高速液体クロマトグラフィー試験データ テーブル。
高速液体クロマトグラフィーは、分離・検出、多くのアプリケーションで広く使われている手法です。ガス ・ クロマトグラフィー (GC) 必要サンプルは、彼らの気相と非揮発性化合物に最適です。非揮発性化合物には、糖、ビタミン、薬、代謝物が含まれます。また、各コンポーネントをさらに分析 (質量分析法) などを収集することができます非破壊です。移動相は、実質的に限定されない良好な分解能を達成するために pH の極性を変更ことができます。グラデーションの移動相を使用は、実際の試験の間にこれらの変更できます。
人工甘味料アスパルテームと関連付けられるかもしれない可能な健康問題の懸念がずっとあります。現在製品のラベルでは、ダイエット飲料内のこれらのコンポーネントの量は表示されません。このメソッドは、カフェインと安息香酸、これらの量を定量化できます。
他のアプリケーションを含める; 水中における農薬の量を決定します。アセトアミノフェンやイブプロフェンの痛み緩和剤タブレットの量を決定します。パフォーマンス向上薬選手の血流の存在があるかどうかを決定します。または単に犯罪ラボで薬の有無を判定します。これらのサンプルの濃度と多くの場合、コンポーネントの id をすぐに決定することができます、1 つの制限は、共同溶出の結果時間同一保持の近くにいくつかのサンプルがあることです。
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