Name: プラナリアの固定化、部分照射し、組織移植 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-06T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 9 s
Description: 学ぶプラナリアの組織移植と部分照射による幹細胞挙動解析法。麻酔固定と鉛シールドを用いて再生過程における幹細胞とその子孫のin vivo挙動を詳細に観察し、再生生物学の理解を深める。

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著者らは、これらの技術の開発時に貴重な議論のためにプラナリア移植に関するアドバイスだけでなく、サンチェス·ラボの過去と現在のメンバーの千代子小林清和アガタに感謝します。この作品は、OCGおよびASAにNIH R37GM057260にNIHのトレーニンググラント（5T32 HD0791）によってサポートされていました。 ASAは、ハワードヒューズ医学研究所の研究者でもある。

注：このプロトコルは、潜在的に有害物質の使用（鉛とクロレトン）を示唆している。取得する、読み取り、およびすべての潜在的に有害物質のMSDSに従ってください。 1。動物の文化、選択、および準備<ol><li>動物の培養と取り扱い利用プラナリアの水（1Xモンジュイック塩9）とプラスチック製の転送ピペットのために。 </li><li>通常の培養条件10の下に、実験室で発生したときに性的なバイオタイプSchmidteaメディを使用することができます。必要なサイズの無性標本を生成するために、S.通常の条件9下、室温で提起されたメディは、使用前に1〜2ヶ月は通常の頻度（週に2-3回）トリプルをダブルで供給する必要があります。また、通常の周波数で供給無性生殖動物はそれらの平均サイズを増加させるために、無期限に摂氏10度に保つことができる。 </li><li> 1〜2 cmの間である動物を選択します。長さ2 mmのより広いその後、動物に使用する前に3-7日を飢えさせる。 </li><li>意図ホスト、ドナー、または部分的に照射された動物の任意の薬理学的または放射線治療を行う場合は、この時点で治療（s）を実行します。 </li><li>薬理学的治療法が動物の餌を必要とすることが行われた場合、動物に使用する前に、さらに3〜7日を飢えさせる。 </li></ol> 2。ソリューションと材料の準備<ol><li>プラナリアの水に0.1から0.2パーセントw / vのクロレトンを溶解し、氷の上でソリューションを冷却することによりクロレトンソリューション、軽度の局所麻酔薬を準備します。 </li><li>部分照射を行う場合にのみ、2.​​7に進みます。組織移植のために2.3の手順に進みます。 </li><li>ブンゼンバーナーを使用して、90に移植組織を切断するために使用さ0.75ミリメートル内径、および移植片を受け取るホストの穴を作成するために使用さ0.7ミリメートル外径、キャピラリーチューブを曲げる℃で1〜2 cmの角EAの端からchの管。材料を節約するために、それぞれ毛細管の両端を曲げて二つのツールを生成するために半分に分割します。炎管の非常に端をしないように注意してください。 </li><li>指定されたサイズ以下の用紙をカット。 <ul><li>黒濾紙（長方形約に切る。2.5センチメートル×1.5センチ） </li><li>ワットマン＃3濾紙（長方形約に切る。2センチメートル×0.5センチ） </li><li>キムワイプ（折りたたみとワッ約に切る。3センチメートル×0.5㎝×4プライ） </li><li>たばこ圧延紙（長方形約にガムストリップカットを削除します。3センチメートル×2センチ） </li></ul></li><li>変更されたHoltfreterの溶液（3.5グラム/ LのNaCl、0.2グラム/ L NaHCO 3を 、0.05グラム/ LのKCl、0.2グラム/ L MgSO 4で 、0.1グラム/ LのCaCl 2、pHが7.0から7.5）を準備し、カゼインはHoltfreterのソリューションと寒さの飽和4℃の両方</li><li>ペルチェクーラープレートまたは解剖顕微鏡下に位置する他の冷却装置でパラと場所の正方形に折りたたまれたキムワイプを添付してください。チルドHoltfとキムワイプを飽和reterのソリューションとキムワイプ上の2つの黒濾紙の長方形を配置します。 </li><li>ワットマン＃2濾紙に沿ったペトリ皿。 Holtfreterの溶液をろ紙を湿らせ、氷上で料理を冷やす。部分的な照射のために大きい皿と濾紙のライナーを使用することができます。 </li></ol> 3。麻酔と固定<ol><li>皿に冷やしたクロレトンソリューションとピペットワームのペトリ皿を記入してください。移植の1つだけのホストと同時に一人のドナーの麻酔。部分的な照射のための多くの（N&gt; 10）動物は、一度に麻酔をすることができます。 </li><li>彼らが動かないようになるまでのワームはクロレトン溶液に浸漬することができます（5-10分）。 </li><li>チルドHoltfreterの溶液で満たさ皿にそれらをピペッティングすることによりワームをすすいでください。 </li><li>ピンセットで冷やしたHoltfreterのソリューションと東洋それらの腹側を下で飽和させた黒のろ紙上にそれらをピペッティングにより動物を固定する。動物は、LOCにできる場合表参道、過剰Holtfreterのソリューションを浴び、わずかにペルチェまたはコールドプレートの温度を下げる、またはクロレトン治療の長さを増加させる。 </li></ol> 4。部分照射注：部分的な照射のために動物を準備し、次の手順に従います。代わりに移植を行う場合は、セクション5に進みます。 <ol><li>トップソースのX線照射装置の内部に収まるようにアイスバケットの氷の上でステップ2.7から冷やしたペトリ皿を置きます。 </li><li>それらが固定化されている黒のろ紙を移動してペトリ皿の中の麻酔動物を配置します。直接麻酔ワームを移動するために鉗子を使用して、それらを傷つけることがあります。 </li><li>トランスポートは、最上位ソースX線照射に動物を配置し、動物に陰極管からの距離は、このように実効線量率を最大化、最小化されているような氷のバケツを置く。 </li><li>動物と陰極の間に位置トンの鉛シールド（S）（ 図1）UBEは、必要に応じて。シールズは、325kVのX線ビーム11の97から99パーセントの減衰を可能にするために、厚さ4.5〜6ミリメートルでなければなりません。 </li><li> X線線量を提供します。非シールドの領域から完全に幹細胞のアブレーションが必要な場合は、X線照射を使用して、30 Gyの以上を提供します。参考までに、30 Gyのは、320キロボルトと30センチのフィールドからソースへの距離と精度X線株式会社XRAD320 10ミリアンペアで3.6分に相当します。 </li><li>直ちに投与後黒濾紙、チルドプラナリアの水への転送動物のワームを処理、完了です。プラナリアの水は黒濾紙から自分自身を取り除くために、室温や動物に温めることをお勧めします。部分的な照射の手順はこれで完了です。 </li></ol> 5。組織移植<ol><li>ピペットと鉗子を用いて、Peltiに冷却されたキムワイプ上で黒濾紙の独立した四角形の上に麻酔をかけ、ホストとドナーワームを手配するerまたは解剖顕微鏡下でクーラープレート。 </li><li> 0.75ミリメートル、内径キャピラリチューブを使用すると、ドナーからの移植プラグを切り取って、鉗子を使用して、ホストの道の部分のうちの上に置きます。移植材料はキャピラリーチューブにはまり込む場合は、鉗子で取り除く。 </li><li> 0.7ミリメートル外径キャピラリーチューブは、ホストからプラグを取り外して使用して、残された穴に鉗子の位置グラフトを使用します。 </li><li>ステップ2.7に調製したペトリ皿に、その黒濾紙の長方形に移植されたホストに転送します。 </li><li>カゼイン飽和Holtfreterのソリューションを転がり一枚の紙を濡らし、 図2Aに図解として移植されたホストの上に置きます。 </li><li>カゼイン飽和Holtfreterの溶液に、 図2Bに図解として移植されたホスト包むろ紙4枚を浸す。 </li><li>カゼイン飽和Holtfreterの溶液中でカットキムワイプの4ワッドを浸し、それを上に置くステップ5.6ろ紙（ 図2B）。蓋を交換し、氷の上にペトリ皿を置く。 </li><li>癒す、回復するためにプラナリア水にドナーワームを転送し、再生成します。 </li><li>すべての移植が完了したら、一晩10℃のインキュベーターに移植されたワームを配置します。 </li><li>次の朝、移植を乱すワームを発見し、プラナリアの水で満たされたペトリ皿に（その黒濾紙上）それを転送しないように注意しながら。 </li><li>どちらのワームは、ろ紙から自分自身を取り除くか、静かにピンセットでそれを削除することができます。 </li><li> 2〜3日ごとに一度プラナリア水を変更します。 </li></ol> 6。代表的な結果すぐに部分的な照射プラナリアの後は、通常の影響を受けないと表示されます。線量および使用シールドのジオメトリに応じて、照射された組織が ​​退縮し、さらに7を分解することができます。シールドされた組織はそのまま維持する必要があります。 Follにより組織の回帰と組織の整合性の損失は、芽が形成され、不足している構造（ 図3A）再生成されます。切断が部分的に照射領域で行われている場合は、照射組織（ 図3B）（すなわち、回帰または崩壊防止）救出されます。切断された非照射プラナリア（ 図3C）と比較して、両方に無傷と切断された場合、再生が遅れます。 30 GyのX線線量が配信された、部分的に照射された動物が無傷されている場合は、使用される鉛シールドに対応するパターンで成功した幹細胞のアブレーションは、幹細胞のためのin situハイブリダイゼーションによる部分照射後2〜3日を確認することができるマーカーSMED-PIWI-1 12（別名smedwi-1）（ 図4）。 移植、移植組織の成功した移植片は、次の朝は明白ワットでなければなりませんホスト（ 図5A）の背腹両面に付着した、ホスト組織をithin。時折、移植だけで腹側または背側表面に付着します。移植は完全に失敗した場合、移植の兆候は、ホスト（ 図5B）のいずれかの背側または腹側表面から見えなくなります。まもなくSMED-PIWI-1（ 図5C主に移植内で幹細胞が存在することを明らかにするためのin situハイブリダイゼーション致死照射13,14によって、幹細胞のアブレーションされたホストに非照射組織の成功した移植後の。）さらに、致死的に照射されたホストへの非照射組織の成功した移植片は宿主組織とホスト15の長期生存の救助になります。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4015/4015fig1.jpg" /> 図1。基本的なコンポーネントの一般的な配置部分的な照射のためのsは、トップに配置X線源（陰極管）とX線照射では、麻酔プラナリアは、照射野内で直接X線源の下に配置されています。 X線の線量率を最大にするために、プラナリアとX線源との間の距離は最小限に抑える必要があります。鉛遮蔽体は、実用としてワームの近くに、冷陰極管と麻酔ワームの間に配置する必要があります。鉛シールドは、設計、製造、およびそれを盾所望の組織が完全にワームの残りの部分を公開するように配置する必要があります。多くの商業的製造には、シンプルなデザイン·ダイアグラムからカスタム鉛シールドを生成します。我々は正常にAlphaシステム株式会社（Bluffdale、UT）を使用しています。リード線はシールドの所望の量を可能にするために十分な厚さでなければなりません。 320 kVのX線ビームの遮蔽を完全に近い所望される場合、例えば、鉛は厚さ4.5〜6ミリメートルでなければなりません。プラナリアとシールドに配置されていますHoltfreterの浸したろ紙は、氷のバケツにかかっているペトリ皿に並んでいた。十分な大きさのX線照射野と同じ鉛シールドの数を考えると、多くの標本は、部分的に1時間（図示せず）に照射されることがあります。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4015/4015fig2.jpg" /> 図2。回復室を構築しています。組織移植の回復室（A）分解図、カゼイン飽和Holtfreterの溶液に浸漬された後に互いの上に積層されているすべてのコンポーネントを示している。 （B）はほぼ完成し、回復室、治癒時の動きを防止するため麻酔プラナリア包むぴったり、ワットマン＃3濾紙の長方形の連動配置を示す。回復室の慎重な構造が迅速な治癒や組織の移植のより大きな効果を促進し、動物の動きや乾燥を防ぎます。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4015/4015fig3.jpg" /> 図3。シンプルな後部部分照射の代表的な成果。デュボア7に記載されているように、（A）プラナリアの後部半分が鉛でシールドして、X線照射に前方の組織を暴露された照射とシールドの間の境界に戻って退縮が観察された組織その時点で無着色blastemasが形成され、動物が生成し始めた。 （B）一方、動物は（）で行われた同じ部分照射後に断頭したときに、組織の退縮は認められなかったし、残りの照射前組織が救助された。部分的に照射した動物は（B）の頭を再生し斬首斬首された非照射コントロール（C）と比較して、しかし、再生が大幅に遅れた。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/4015/4015fig4.jpg" /> 図4。代表outco部分照射は、次の部分幹細胞アブレーションの私。ホールマウントin situハイブリダイゼーション （ウィッシュ）幹細胞のマーカーSMED-PIWI-1は、野生型のプラナリアは、前方の組織を除いて自分の体全体に分散した幹細胞を持って明らかにする光受容体（矢印）と適切な咽頭（アスタリスク）14。 （A）照射が完全にシールドされたコントロールでSMED-PIWI-1を望むプラナリアは、照射後3日は、野生型プラナリアのものから区別がつかない幹細胞の分布を示しています修正しました。 （B）一方、前部と後部に露出したまま、部分的にしかシールドされた動物のSMED-PIWI-1を願うだけでなく、幹細胞は、非シールドの領域からアブレーションされていることを照射ショー後3日修正されました。スケールバーは500ミクロンです。 <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/4015/4015fig5.jpg" /> 図5。エクサ成功および失敗した組織移植のmples。（）が正常に移植プラナリアの背腹ビュー移植後3日のライブ映像。移植は、（示されています）背腹両面にはっきりと表示され、移植片 - 宿主の界面での特性無着色組織で囲まれています。 （B）に対応して、失敗した移植は、移植部位（表示）で表示可能な移植組織を表示しない代わりに、失敗した移植から治癒、無着色、横方向の傷を示しています。 （B）他から見て背側または腹面のみに付着した一方の側から見たときに成功した移植（）似ている移植片と移植失敗した。 （C）野生型（wt）組織が ​​常駐し、幹細胞、移植幹細胞のアブレーションされた照射宿主に移植された場合、後で移植後SMED-PIWI-1の 2日間WISHによって明らかにされている移植の成功は、明確にのみ移植場所や周りの幹細胞（矢頭）の具体的な存在で表示されます。スケールバーは500ミクロンです。

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</ol>

利害の衝突が宣言されません。

固定化の重要性固定化ははるかにこれらのプロセスのいずれかが正常に完了するための最も重要なステップです。プラナリアが不適切な部分照射の前に固定化されている場合、それらは矛盾した交絡結果を生成し、鉛シールドの下に移動する可能性があります。動物が不十分移植後の固定化している場合はさらに、ホストのワームは、おそらくホストに適切に癒すために移植の失敗、その結果、移植組織から離れて移動します。適切な固定化はクロレトン治療とプラナリアの残りのろ紙の温度と水分の濃度または長さを調整することによって達成されます。 1時間半までの0.2パーセントでクロレトン治療は毒性であることが表示されません、しかし、その長さの治療は咽頭の放出を誘発する可能性があります。プラナリアは、この時間の長さの間にはまだ、部分的な照射の影響を受けやすいままになります。私たちの経験があることを示している乾燥しすぎや動物が乾燥するでしょう。あまりにもウェットと動物が簡単に移動 - 水分ではなく、クロレトンの治療よりも、最も重要な要因である。すべてのケースで濾紙が完全ではなく、コンテナ内または表面上に立って水を作成するためのポイントに飽和...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td>汎用ピペット</td><td>サムコ</td><td> 691 </td></tr><tr><td>キャピラリーチューブ（ID 0.75ミリメートル） </td><td> FHC </td><td> 30-30-0 </td></tr><tr><td>キャピラリーチューブ（外径0.7ミリメートル） </td><td> FHC </td><td> 30-50-08 </td></tr><tr><td>パラフィルムM </td><td> VWR </td><td> 52858-076 </td></tr><tr><td>キムワイプ34155 </td><td> VWR </td><td> 500029-891 </td></tr><tr><td>黒濾紙</td><td>シュライヒャー＆シュル</td><td> 10310809 </td></tr><tr><td>ワットマン＃2濾紙1002から055 </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 09-810B </td></tr><tr><td>ワットマン＃3濾紙1003から185 </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 09-820E </td></tr><tr><td>たばこローリングペーパー</td><td>ジグザグ、元の</td><td> NA </td></tr><tr><td>ペトリ料理</td><td> VWR </td><td> 82050-544 </td></tr><tr><td>鉗子デュモン、INOX第5位</td><td> FST </td><td> 11251から20 </td></tr><tr><td>クロレトン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 112054 </td></tr><tr><td>カゼイン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> C3400 </td></tr><tr><td>シールズをリード</td><td>アルファシステム（株）、Bluffdale、UT </td><td>カスタム設計</td></tr><tr><td> XRAD-320の生物照射装置</td><td>精密X線、北ブランフォード、コネチカット州</td><td> NA </td></tr></tbody></table>

プラナリアの固定化、部分照射し、組織移植

Planarian Immobilization, Partial Irradiation, and Tissue Transplantation

プラナリア、淡水扁形動物は、後生動物の再生と幹細胞生物学1,2を解剖するための強力なシステムであることが判明した。欠落または損傷した組織のプラナリア再生は成体幹細胞によって実現されていますneoblasts 3と呼ばれる。これらの幹細胞が決定的に多能性と全体の動物の4を再構成するの単独で可能であることが示されているが、幹細胞集団とそれらの細胞の行動のダイナミクス内の不均一性は、主に未解決のままである。多数とプラナリアのボディプラン全体の幹細胞の広範な分布のために、in vivoでの分子および機能的研究のための幹細胞の集団を操作するための高度な手法が必要とされている。 組織移植と部分的な照射プラナリア幹細胞の集団がさらなる研究のために分離することのできる2つの方法です。各手法は、異なる利点があります。 T問題移植のいずれかの本質的に遺伝的に異なっている、または以前に薬理学的に扱われているライブラリー - 全曲無料試聴できるホストに、幹細胞の導入を可能にします。また、部分照射は、創傷の導入や組織の整合性の任意の逆子なく、幹細胞を欠いている組織に並置ホスト内で幹細胞の単離を可能にします。これら二つのメソッドを使用して、1つは、増殖、分化、および移行などの幹細胞機能を制御する細胞自律非自律因子を調べることができます。 組織移植5,6および部分照射7の両方が、今日研究されて残っているプラナリアの再生に関する質問の多くを定義するのに歴史的に使用されている。しかし、これらの技術は、従来の方法の骨の折れると矛盾した性質のために十分に活用残っています。ここで提示されたプロトコルは、時間を減少させる前方に大きな一歩を表してND再現性100％に近い効能を持つグラフトまたは部分的に照射した動物を大量に生成するために必要な努力。我々は、大型動物の培養、固定化、部分的な照射のための準備、組織移植、動物の回復の最適化をカバーしています。さらに、ここで説明する作業は、最も広く研究されているプラナリア、Schmidteaメディで使用するための部分的な照射法の最初のアプリケーションを示しています。さらに、プラナリアに移植効率的な組織が ​​長い哺乳類8に成体幹細胞の可能性をアッセイの金の標準的な方法されている再投入アッセイにおけるナイーブまたは処理された幹細胞の集団の機能テストのためにドアを開きます。これらの技術の幅広い採用は組織の恒常性や再生中の成体幹細胞の細胞挙動の理解につながるのは間違いない。

プラナリアの間に定義された一貫性のある大きさの組織を移植するための効果的な方法が記載されている。も含まれて移植に使用される固定化技術が生きた動物の部分的な照射のために、鉛の盾と一緒に、適合させることができる方法の説明です。

淡水産扁形動物であるプラナリアは、後生動物の再生および幹細胞生物学を解明するための強力なモデル系であることが証明されています1,2。プラナリアは...

本実験の目的は、再生中の幹細胞およびその娘細胞の挙動をin vivoで解析するため、プラナリア内の幹細胞除去組織に隣接して健全な幹細胞集団を配置することである。これは、非照射または葉状に照射したプラナリアを麻酔して固定し、さらなる操作を可能にすることで達成される。次に、固定した非照射プラナリアの一部を鉛で遮蔽し、X線照射を行う。これにより、幹細胞が除去された組織と、遮蔽され幹細胞が保持された組織が隣接した、外傷のないプラナリアが作製される。あるいは、非照射のドナーから採取した組織片を、事前に照射したホストに移植することで、幹細胞が消失したホスト内に孤立した幹細胞集団を持つ個体を作製することも可能です。幹細胞が消失したホストにおいて、幹細胞マーカー遺伝子のホールマウントRNA in situ ハイブリダイゼーションを行った結果、幹細胞消失組織に隣接して孤立した幹細胞集団が存在することが確認されました。本稿で述べる手法は、移植パラダイムと部分放射線照射パラダイムの両方を用いて幹細胞の挙動を研究することにより、プラナリアの再生をより深く理解することを目的としています。これにより、周囲の組織や幹細胞が存在する局所環境が、これらのネオブラストまたは幹細胞の挙動に影響を与えるかどうかを検証することが可能になります。再生プロセスの間、実験の1〜2か月前から、付属の原稿に従ってプラナリアに給餌します。本デモンストレーションで目的とするサイズを得るために、体長1〜2 cmで幅2 mm以上のプラナリアを選択します。その後、使用する3～7日前から絶食させます。次に、0.1～0.2%（w/v）のクロトンを純水に溶解し、軽度の局所麻酔剤であるクロトン溶液を調製します。その後、溶液を氷上で冷却します。組織移植のため、ブンゼンバーナーを用いて、内径0.75 millimeterのキャピラリーチューブの端から1～2centimeterの位置を90度の角度に曲げ、移植組織を切り出すための器具を作成します。次に、外径0.7 millimeterの別のキャピラリーチューブの端から1〜2centimeterの位置を90度に曲げ、ホストにグラフト受容用の穴を作成するための器具を用意します。続いて、付属の原稿に記載されたサイズに従って、黒色のWhatman No.3フィルターペーパー、Kimwipe、および巻紙を切断します。その後、修飾Holt Fers溶液およびCaine飽和Holt Fretter溶液を調製します。両溶液を4 °Cまで冷却します。次に、折りたたんだキムワイプをパラフィルムの正方形に貼り付けます。解剖顕微鏡下で、それをペルチェ冷却プレートまたはその他の冷却装置の上に置きます。続いて、冷やしたHolt Fretter溶液でキムワイプを十分に湿らせます。その後、キムワイプの上に2枚の黒色

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Biology

生物学

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プラナリアの固定化、部分照射し、組織移植

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