Name: プラナリアで瞳の再生を研究するための外科切除アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: 学ぶプラナリアの眼杯切除法による再生メカニズム研究。インスリン針を用いて周囲組織への損傷を最小限に抑えながら眼組織を除去し、幹細胞の維持と分化メカニズムを解明する。

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著者らは、ペルチェプレートについては、この抗アレスチン抗体のための機能的アッセイの支援のために眼アブレーション技術、テイラー・バークホルツ、マイケル・レビン、及び淳二Morokumaを完成するためのミッチェル・デオッカンド感謝したいです。この作品は、WSBにウェスタンミシガン大学からSFSAの助成金によってサポートされていました。

1.動物文化と取り扱い注：このプロトコルは、一般的に再生研究のために使用されているSchmidteaメディ 、配列決定されたゲノム16と二倍体プラナリア種、17を使用しています。しかし、このアッセイは、Girardia tigrina及び（市販されている）Girardia dorotocephalaなどの他の種と同等に成功しています。 <ol><li> 超高純度（又は濾過脱イオン）中、0.5g / Lの海の塩から作られた「ワームの水」は、水にワームを維持します。ワームの水を保持するために、滅菌ポリプロピレンまたはガラス容器を使用します。参照してください。 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55594/Supplementary_File_1.docx" target="_blank">補足ファイル1</a>ワーム水の準備の詳細については、を。 注：石鹸などの容器（または他の消耗品）をきれいに石鹸を使用しないでくださいは、虫に対して毒性です。代わりに70％エタノールで拭いて空気乾燥させ。 &lt;オール&gt; <li>汚染から守るためにプラナリアと協力しながら、手袋を着用してください。 注：ワームは、石鹸、漂白剤、シャンプー、コンディショナー、ハンドローションを含め、環境有害物質や化学物質に非常に敏感です。 </li></ol></li><li>蓋付きポリプロピレン製食品容器の家コロニーは、〜20°C（室温）での空気交換のために、部分的に開いたまま。 （12ウェルプレート用のウェルあたり1つのワーム）ペトリ皿（100mmの皿当たり20のワーム）、または無処理の組織培養プレートのいずれかに保管実験ワーム。ストレスを減らすために、暗闇の中でコロニーと実験の両方を保持します。 注：コロニーはワーム水1リットル当たりがない以上500〜1,000未満のワームを持っている必要があります。気流がこれらの皿に設計されているので、実験のために、所定の位置に完全に蓋を残します。 </li><li>コンテナ全体の食品の滴を配置し、トランスファーピペットからピューレをドロップすることにより、ピューレ、有機牛肉や鶏肉肝臓で週に一度非実験ワームをフィード。食品を消費するワームに2時間を許可しますコンテナをクリーニングする前に、暗い（ステップ1.4を参照）。長期（数ヶ月）のためにC°、短期のために-20℃で保存ピューレ（週）を使用するか、または-80前。 （細菌が咲きやワームに害を及ぼすことができるように）再利用のためピューレを再凍結していません。 注：肝臓は何のホルモンや抗生物質を含まず、好ましくは、以前に凍結してはなりません。遠心凍結前にピューレ（または前送りする）は、空気を除去し、フローティングから食べ物を防止します。食品容器の底に沈むはずです。ピューレの1mLを500-1,000ワームのために十分です。 </li><li>コロニーと実験の両方のための新鮮なワーム水で週に一度交換水。コロニーコンテナもワームを飢え週1回（そのトラップ廃棄物を粘液残留物を除去するために）無漂白紙タオルで拭き、または週二回のワームを供給するためのする必要があります（2時間2日後に再び供給した後）。バイオフィルムを保持するために、コンテナの80％以上を拭かないでください。 </li><li> コンテナ（または手術setu間のワームを移動しますP）トランスファーピペットを使用して。コンテナの表面に付着した無料のワームに、表面からそれを解放するためにワームの背後に/上に水を噴出。ピペットの底インチ（薄い）部分内でワームを維持しようとしながら、ピペットにワームを吸い上げます。 <ol><li>それらを吸引する前に、ワーム少量の水とバックロードピペット。 </li><li>ピペットでタッチして、ソフトボディのワームを引き裂く防ぐために、むしろワーム自体よりも、ワームの周りに水を移動しよう。 </li><li>ワームを転送するか、水を交換しない限り、カバーされた実験の料理をしてください。 </li></ol></li></ol> 2.準備<ol><li> 実験前に少なくとも1週間ワームを送り停止します。 <ol><li> ≥1週間飼育し、長さが少なくとも5〜7ミリメートルですされていないされているワームを選択します。ウォーム水の完全なペトリ皿2/3にワームを転送し、そして皿の下に定規をスライドさせてウォームの長さを確認します。 wを測定オームズ完全に拡張し、移動しながら。 注：その後の免疫蛍光およびin situハイブリダイゼーション分析において 、より大きなワーム（8〜10 mm）を行うと作業が容易であるときに小さく（5~7 mm）の線虫が良く機能するが-特にときに切除するために学びます。 </li><li>ワームは、全体損傷していない、と最近再生されないことを確認してください。 注：再生成ワームは、通常、ワームに比べてはるかに軽い（または全くない）ヘッド中の顔料及び/又はテール領域があります。 </li><li>ワームに対するRNAiまたは薬理学的治療を行った場合は、この時点で行ってください。ワームは、治療（RNAiのためのような）の一部として供給した場合、2.2のステップに続行する前に少なくとも7日間の最後の給餌後に待ちます。 </li></ol></li><li> 作業スペースをきれいにし、70％エタノールで顕微鏡基盤を解剖し、それが完全に乾燥させます。スコープの左側に選択されたワームの皿を置き。スコープの右に、5/16インチのインスリン針1と＃5鉗子のペア、31 Gを配置mLシリンジ、およびクリーンなトランスファーピペット。 <ol><li>楽器は（汚染物質を導入する可能性）ベンチに触れてから保管されていることを確認してください。クリーン鉗子、針、およびピペットを保つために（たとえば、箸置きなど）は、剛性のアイテムを使用してください。また、新鮮な茶（無漂白）ペーパータオルの上に場所の楽器。 注：彼らは右利きの人に関係するとして、これらと後続の命令が書かれています。左利きの人は、左/右の方向を逆にする必要があります。 </li></ol></li><li>次のワークスペースに、リントフリーのティッシュワイプのボックス、新鮮なワームの水の供給源、および（ベンチトップから保護）いくつかの余分な転送ピペットを配置します。調剤を容易にするためにプラスチック製の洗浄瓶に入れワーム水。また、切除された動物を収集するためのスコープの右側に標識された12ウェルプレート（または100 ム・ペトリ皿）を置きます。 </li><li> ワームを固定するためにカスタムメイドペルチェプレートを使用する場合、Tの凹部にペルチェプレートを位置決め彼解剖顕微鏡のベースとペルチェプレートの作用面が十分に冷却されるまで、DC電源に出力を調整（典型的には約5 V）.Alternatively 1/2水と完全に100 ム・ペトリ皿を充填しコールドプレートを作ります少なくとも24時間凍結。蓋を捨て、解剖範囲のベースの上に100mmの皿の底に置き、次いで氷（図1A）の表面に直接逆さまに60 ム・ペトリ皿の蓋を置きます。 <ol><li>水が100 mmディッシュ中で凍結した後、氷の「火山」は、プレートの中央に表示されます。この問題が発生した場合、表面から任意の凹凸を取り除くために、氷のフラットをこすりするカミソリの刃を使用します。 注：手術中に氷がアブレーションがはるかに困難に、溶けてしまいます。事前にいくつかの氷の皿を準備し、そして、すぐに60ミリメートル皿のふたが浮い始まりとしてアッセイ中のものを溶融するため、冷凍ものを交換してください。 </li></ol></li><li> 作ります手術表面。プラスチックパラフィンフィルム5cmのX 10cmの片に切断（4 cm 2であればシャーレコールドプレートを使用）、固定装置の中心に置きます。リントフリーのティッシュを折っ平方およそ2cm角にワイプやフィルムの上に置きます。白い濾紙1.5-2センチ2の部分をカットし、ワイプの上に置きます。図1B-1Eを参照してください。 <ol><li>折りたたまれたホールド手袋をはめた指で所定の位置に拭き、軽くそれが折り畳まれたままであることを保証するためにワイプ減衰させるためにワームの水を使用しています。フラットワイプロールホールピペットの側面を使用してください。 注：冷たい温度が動くからワームを維持するのに役立ちます。作業する「乾燥」も固定化するのに役立ちます。組織は、（致死である）ワームは完全に乾燥させることなく、手術中に湿ったワームを保ち、濾紙を通して水を吸い上げるように作用するワイプ。 </li></ol></li></ol> 3.外科切除<ol><li> 上に置くために、転送ピペットを使用してください濾紙上に電子ワームの背側アップ。上の光源の電源を入れ、光がワームに焦点を当てているように、グースネックを指示。目がはっきり見えるように（全体のワームは、ビュー内にある必要はありません）解剖スコープの焦点と倍率を調整します。 5X倍率は良い出発点です。ヘッドは、（顕微鏡の正面に向かって）研究者に向かって指摘されるように、右に、角度付き30-40度をパラフィンフィルムを回転させてウォームを方向付けます。 <ol><li>過剰ワームの動きを防ぐために、明るい光の使用は避けてください。プラナリアは、負の走光性を表示し、明るい光を回避しようとします。 </li><li>ワームは（咽頭可視開口を有する）上向き腹側に位置する場合、緩やか（目可視で）ワームの背側を再配置する鉗子の鈍い面を使用。動物を再配置する際に軟組織を通じて引き裂くの可能性を最小限にするために鉗子の鋭い先端を動物に近づいて避けてください。 </li><li&gt;目の焦点が合って明確になるように顕微鏡の焦点を調整します。また、目や周囲の頭部組織の両方が視野にあることを確認してください。 </li></ol></li><li> それは（親指と人差し指の間）のペンであるかのように右手で新鮮な針/注射器を保持します。ペルチェプレート（またはペトリ皿コールドプレート）に対する左手の親指を支える、シリンジの底部が載るれるに支点（図2A）のように左手の親指を使用します。顕微鏡を通して見て、針のベベルが表示されていることを確認してください。 注：針は非常に鋭いです。それらを取り扱う際は注意してください。ラテックスまたはニトリル手袋を身に着けていることは、いくつかの保護を提供することができます。 <ol><li>手順を通して針/シリンジ安定を保持し、握手を避けるために左手の親指を使用してください。 </li><li>手術の表面安定を保持するのを助けるために左手の親指と（手術表面上の人差し指で）左の人差し指で約40°の角度をなします。 </li></ol></li><li> とともに（スプーンのように）上向き針のベベルは、眼（図2B）に直角に針を配置します。穏やかに右から左にすくい、眼の眼杯（白、無着色領域）を覆う組織の薄い層を貫通する針の先端を使用します。非常にゆっくりと底に穴をあけたり、光学カップの境界を破壊しないように注意しながら、光学カップ内に配置された任意の着色された組織を除去します。 <ol><li>ワームは手続き中の任意の時点で&gt; 1-2分間ろ紙にされている場合は、ワームを再水和するためにワームの水の一滴を追加します。 注：脱水は怪我をリッピングするワームの感受性を増加します。 </li></ol></li><li>繰り返し黒色着色組織（色素細胞）の全てまでステップ3.3、ならびに光学カップ（光受容細胞の樹状突起）の白色組織の全てが除去されます。丁寧に拭くティッシュで拭いて針の端部に付着し、切除した組織を削除します。二重の目ABLAた場合ンは、所望この時点で第2の眼を切除されています。 注：けがを避けるために、針はきれいなティッシュで針をつかんで洗浄することができ、その後、親指と人差し指から拭き取るを通じて針を引っ張るためにもう一方の手を使って、親指と人差し指で開催されたワイプ。あるいは、針は、ワイプウェットティッシュの表面上に拭い、清潔のために調べることができます。 </li><li> 完了したら、新鮮なワームの水を含有する標識された皿にワームを移動する移送ピペットを使用。グループのデータを分析した場合、単一の100ム・ペトリに20のワームまで置きます。時間をかけて同じ個体で再生を追跡する場合は、12ウェルプレートの各ウェルに1つのワームを置きます。すべてのワームが転送されると、皿/ウェルから全てのワーム水を除去し、より新鮮ウォーム水で置換することによりワームをすすぎます。 <ol><li>フィルタからワームを除去するために、ウォーム少量の水を有するピペットをバックロードし、ワームに水を放出します。これは、トンを持ち上げる必要がありますろ紙オフ彼ワームは、すぐに転送用のピペット内に吸引されます。 </li></ol></li><li>光から保護〜20°C（室温）での実験をインキュベートし、再生プロセスに従ってください。 注：ワームは、一定の温度を維持するために温度制御インキュベーター内に保存することができるが、これは厳密には必要ではありません。ほとんどの部屋の温度が再生成するワームの能力には影響しません5℃の、によってのみ異なります。 </li><li>所望される場合、および/またはin situハイブリダイゼーション （ 図3-4を参照）、免疫組織化学のためにワームを固定する遺伝子発現の解析。異なる固定方法は、プラナリア、免疫組織化学18、19、20及びin situハイブリダイゼーション 21、22、23のプロトコルに存在します。 </li><li>実験が締結され、sacrifiCEは皿からワーム水を除去し、70％エタノールで置き換えることにより、ワームを生きます。灰色がかっを溶解し、オンにするワームをチェックし、3-5分間ワームをインキュベートします。 </li><li>一度殺し通常の廃棄物の流れにおける非処理ワームを置きます。環境、特に非在来種へのライブワームを導入することは避けてください。 </li></ol>

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著者は、開示することは何もありません。

この眼アブレーション技術は、脳組織を除くと眼組織に主に切除を制限することによって（例えば、ホールパンチなど）現行の方法を改善します。練習では、この技術は、経験の浅いが、良心的な学部の学生にmicrosurgeriesに経験した技術者から、ほとんどの人によって行うことができます。なお、この技術は、前免疫組織化学によって、または眼のマーカー（S）4、5、13のためのin situハイブリダイゼーションのすべての眼組織の完全な除去の（可能な）確認を含む、実験にアブレーションを使用して何度も実施することが推奨されます。このプロトコルの中で最も重要なステップは、組織のうちすくいです。多すぎても少なすぎても組織のいずれかを削除しないことが重要です。これはワームの腹側に貫通を避けるために、針で深くすくっていないことで回避できます。旧姓の先端DLEは深さ約0.4ミリメートルを挿入しなければならない、と針のベベル部分が目を介してすべて...

プラナリアは、成体幹細胞媒介再生を研究するための強力なモデル生物です。これらの非寄生淡水扁形動物は、その中枢神経系および脳1を含む任意およびすべての不足している組織を、再生する能力を有しています。 （ インサイチュハイブリダイゼーション 、免疫組織化学、RNA干渉（RNAi）、およびトランスクリプトでは 、このような配列決定ゲノムなど）にまでさかのぼる過去10〜15年間プラナリア分野において1700年代2、技術の進歩などの検討は、この歴史的なモデル生物を更新しました。具体的には、プラナリアは最近、目の研究の3のための新たなモデルとして人気を得ています。 プラナリアは2つだけの組織タイプ、感光体の神経細胞と色素細胞との原型の目を持っています。これは、その目の幹細胞集団の特性を有効にし、同じ遺伝子の多くは、脊椎動物の眼ドを規制することを示しましたvelopmentはプラナリア4,5に保存されています。光学カップは視交叉を介して脳を背側に位置する感光体ニューロン及び半月黒色素細胞の白、無着色の樹状突起で構成され、目の神経支配されています。再生プロセス6を解明するためのモデルであることに加えて、プラナリア眼は光に対して視覚的機構7、行動反応の進化を研究に適している8、及び行動9の神経学的基礎（プラナリアは、負の走光性を表示します）。 断頭4、10以下のヘッド再生の一部として、ちょうど眼組織11の切除に続いて、12：プラナリアにおける眼の再生は、主に二つの主要な文脈で検討されています</SUP&gt;。それは単純明快であるとして、目の再生のほとんどのプラナリアの研究では、断頭メソッドを使用しています。いくつかの研究はまた、単に目（部分断頭）15の後ろに切断術を行っているがこれまでで最も一般的なプラナリア眼の切除方法は、細かいガラス毛細管13、14とパンチ穴を経由してきました。しかし、これらの方法の全ては、潜在的に結果の解釈を複雑に、（例えば、脳、腸、およびnephridiaなど）だけで、目以外の多くの組織の喪失を伴います。ここに提示眼アブレーションプロトコルは、眼に対してより特異的であるデータが得られた（具体的には脳を除く）眼組織への切除を制限します。また、給紙を開始するために7~14日かかる断頭ワームとは異なり、眼アブレーションワームperformeする（RNAiは食物を介して送達される）RNAi実験を可能にする、切除12の24時間以内に送ります同時にdは。 目のアブレーションが正常に断頭よりも実行することは技術的に難しいですが、目の切除を含む現在の研究では、その手順の詳細な手順を含めていません。このビデオの記事の目標は、一貫して基本的な脳組織を乱すし、できるだけ少ない他の組織を除去することなく、プラナリアの光学カップを削除するために、研究者を有効にすることです。この方法は、単一及び二重の両方の目の切除のために使用され、研究の広い範囲に適用可能であることができます。最も再生アッセイのような、眼の切除は、薬理学的および遺伝的（のRNAi）スクリーニング、ならびに行動研究の両方との組合せに適しています。ここでは、プラナリアコロニー、および眼のアブレーション技術自体を維持し、ワームの取り扱い方法について説明します。

<table><tbody><tr><td>インスタントオーシャンシーソルト</td><td>スペクトラムブランド&nbsp;</td><td>SS15-10</td><td>"10ガロン"ボックス&nbsp;(正味重量3ポンド)</td></tr><tr><td>Kimwipes EX-L 糸くずの出ないティッシュペーパー</td><td>Kimberly-Clark</td><td>34155</td><td>4.5 x 8.5 in&nbsp;</td></tr><tr><td>Whatman #2 濾紙</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>WHA1002125</td><td>円、直径125 mm、白色</td></tr><tr><td>のイージータッチインスリン注射器(針付き)</td><td>ペットヘルスマーケット</td><td>17175-04</td><td>&nbsp;U-100 1 ccシリンジ、31 G 5/16 針</td></tr><tr><td>100 mm ペトリ皿</td><td>VWR</td><td>25384-342</td><td>100 mm x 15 mm</td></tr><tr><td>60 mm ペトリ皿</td><td>VWR</td><td>25384-092</td><td>60 mm x 15 mm</td></tr><tr><td>デュモン #5&nbsp; 鉗子&nbsp;</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>11254-20</td><td>イノックス、ストレートチップ、11 cm</td></tr><tr><td>トランスファーピペット&nbsp;</td><td>サムコサイエンティフィック&nbsp;</td><td>225</td><td>目盛り付き、大型電球、7.5 mL、非滅菌</td></tr><tr><td>パラフィルムMパラフィンフィルム</td><td>ブランド&nbsp;</td><td>701606</td><td>&nbsp;4 in x 125 ft ロール</td></tr><tr><td>12 ウェル未処理組織培養プレート</td><td>VWR</td><td>15705-059</td><td>未処理、平底、滅菌、ファルコン ブランド</td></tr><tr><td>プラスチック食品容器 (コロニー用)&nbsp;</td><td>ジップロック</td><td>ラージレクタングル</td><td>2.25 qt(2.12 L)、10 "x 6 -3 / 4" x 3 -3 / 16"&nbsp;</td></tr><tr><td>Planaria (Girardia tigrina)</td><td>Carolina Biological</td><td>132954</td><td>「Brown」Planariaとして販売されています。ほとんどの場合、G. tigrina (aka Dugesia tigrina)ですが、G. dorotocephala (aka Dugesia dorotocephala); どちらでも機能します。</td></tr><tr><td>プラナリア(Schmidtea mediterranea)</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td>S. mediterraneaは市販されていません。現時点では、動物はそれらを使用し、追加の動物を飼っている研究所からのみ入手できます。</td></tr><tr><td>茶色のペーパータオル&nbsp;</td><td>グレインジャー</td><td>2U229</td><td>9-3/16 x 9-3/8" 1 層マルチフォールドペーパータオル、無漂白ウォ</td></tr><tr><td>ッシュボトル(ワーム水用)、オプションの</td><td>VWR</td><td>16650-275</td><td>ウォッシュボトル、低密度ポリエチレン、広口、500 mL</td></tr><tr><td>抗シナプシン抗体、オプション</td><td>の開発研究 ハイブリドーマバンク</td><td>3C11</td><td>上清</td></tr><tr><td>抗アレスチン抗体、オプション</td><td>該当なし</td><td></td><td>市販されていません。マイケル・レビン、タフツ大学</td></tr><tr><td>ナルゲン・ローボーイ・カーボーイ、スピゴット付き(ワーム水の貯蔵用)、オプションの</td><td>ナルゲ・ヌンク・インターナショナル・コーポレーション</td><td>2324-0015</td><td>15 L、&nbsp;ポリプロピレン、ロープロファイルはプラスチックコロニーコンテナの充填を容易にします&nbsp;</td></tr><tr><td>カスタムペルチェプレート、オプションの</td><td>ウィリアムズマシン、フォックスボロ、マサチューセッツ州&nbsp;</td><td>n/a</td><td>デザインの詳細は、タフツ大学の諸熊淳二氏による提供:&nbsp;ペルチェプレートは、標準的な熱電ヒートポンプ(例えば、All Electronics Corp Catalog # PJT-1, 30 mm2)で構成されています。正方形のヒートポンプは薄い鏡面で覆われ、円形のプレキシガラス形状(直径<~50mm)の30mmsup>2の正方形の穴の中に配置されます。この形状はヒートポンプと同様の厚さで、丸いヒートシンク(直径~115mm)の中央に設けられたウェルに平らに収まります。フォーム/ヒートポンプは&nbsp;シリコンベースのヒートシンクコンパウンドでシンクに「固定」されています。リード線は、フォームとヒートシンクの両方に開けられた穴に通されています。ヒートシンクの下半分は、顕微鏡のベースプレートの開口部に収まる「足」に工具で固定されています。</td></tr><tr><td>DC電源(ペルチェプレート用)、オプションの</td><td>B&K Precision</td><td>1665</td><td>安定化低電圧DC電源、1-18 V(DC)、1-10アンペア。</td></tr><tr><td>その他の一般的な消耗品</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>手袋</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>カミソリの刃&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>はさみ</td><td></td><td></td><td></td>グ</tr><tr><td>ースネック照明</td><td></td><td></td><td></td>付き解剖スコープ</tr><tr><td>チョップスティックレスト、オプション</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

プラナリアで瞳の再生を研究するための外科切除アッセイ

Surgical Ablation Assay for Studying Eye Regeneration in Planarians

成体幹細胞と再生機構の研究では、プラナリア扁形動物は、in vivoモデル系の主食です。これは彼らの豊富な多能性幹細胞集団と、ほとんどの動物のために壊滅的だろう怪我した後、すべての細胞や組織の種類を再生する能力に大きな部分的に起因します。最近、プラナリアは、目の再生のためのモデルとして人気を得ています。 （2つの組織タイプから成る：色素細胞及び光受容体）全体の目を再生する能力は、視覚系の再生を制御する機構の切開を可能にします。眼アブレーションは、再生だけで眼の組織に大きく制限されていることが最も重要なものの眼特異的経路およびメカニズムを調べるため（例えば断頭又は穴パンチのような）他の技術を超えるいくつかの利点を有します。このビデオの記事の目的は、確実に脳を乱すまたは組織を囲むことなく、プラナリアの光学カップを削除する方法を実証することです。ワームや確立コロニーのメンテナンスの取り扱いも記載されています。この技術は、外科的にコールドプレート上に固定化されたプラナリアの眼杯をかき出すために31 G 5/16インチのインスリン針を使用します。この方法は、アプリケーションの広い範囲を可能にする、目が1〜2週間以内に再生すると、単一及び二重の両方の目の切除を包含する。特に、このアブレーション技術は、容易に再生機構とその進化、目の幹細胞およびそれらの維持、及びphototaxic行動反応とその神経基盤のより良い理解のために、薬理学的および遺伝的（RNA干渉）スクリーンと組み合わせることができます。

最初の1-2時間後に手術のために、動物は、無傷のワーム（彼らはまだ移動するが）に比べて減少運動を示すことができます。所望であれば、ワーム（例えば、RNAiの供給のための）手術の24時間以内に食べるようになります。時間をかけて同じ個体では、目の再生を以下の場合は、手術前（未使用）にし、1時間後アブレーション（HPA）の両方で各ワームの写真を撮るようにしてください。 4日後に切除（DPA）によって再生色素細胞が表示され、そして14全体の目が完全に再生されているであろうDPA（ 図3A-B）でなければなりません。これは、光受容体ニューロンおよび脳（ 図3C）、ならびに視覚システム（ 図4A-C）の機能回復への神経支配を含みます。成功したアブレーションは、脳（ 図4D-E）の下にある組織を乱す、また動物（ 図5A）に他の傷害を紹介しません。失敗したアブレーション有する動物を含む：両眼（ 図5B）を...

このプロトコルは、一貫して、周囲の組織を乱すことなく、プラナリア目（光学カップ）を切除する方法を示しています。インスリン注射針と注射器を使用して、一方または両方の目のどちらかは、目の再生、視覚的な再生の進化、および光誘起行動の神経基盤を調節するメカニズムの調査を容易にするために、アブレーションさせることができます。

In the study of adult stem cells and regenerative mechanisms, planarian flatworms are a staple in vivo model system. This is due in large part to their ...

この手順の全体的な目的は、脳や周囲の組織を乱さずにプラナリアの眼杯を確実に除去する方法を実演し、あらゆる教育レベルの研究者や学生がこの技術を導入できるようにすることです。この手法は、生体内における内因性眼幹細胞の維持および分化を制御するメカニズムの解明など、再生分野における重要な疑問への回答に寄与します。この技術の主な利点は、他の組織への影響を最小限に抑えつつ、眼組織のみを除去できることです。一般的に、この手法に慣れていない人が、周囲の組織への焼灼を避けつつ、眼全体を焼灼して適切な量の組織を確実に除去できるようになるには、練習が必要です。まず、少なくとも1週間絶食しており、体長が5〜7 mm以上ある線虫を選択します。15〜30匹の線虫を、ワームウォーターが3分の2まで満たされた100 mmペトリ皿に移し、直ちに蓋を閉めます。虫の頭部や尾部が白いなど、組織の欠損や脱色素がないか観察し、損傷がなく、最近再生していないことを確認します。まず、作業領域と解剖顕微鏡のステージを70% ethanol溶液で拭き、完全に乾燥させます。選択した虫が入ったディッシュを顕微鏡の左側に配置します。次に、顕微鏡の右側に、5番鉗子1セット、1 mLシリンジを装着した31ゲージ 5/16インチのインスリン針、清潔な転送ピペット、および切除した線虫を回収するためのラベル付き12ウェルプレートを配置します。手術中にすぐに取り出せるよう、低リンターのティッシュワイプのボックス、新鮮な線虫用緩衝液を満たしたプラスチック製洗浄ボトル、および追加の転送ピペットを配置してください。解剖顕微鏡台の中心にペルチェプレートを設置し、線虫を固定するのに十分な低温になるよう、DC電源の出力を設定します。あるいは、ペルチェプレートの代わりに氷を満たしたペトリ皿を使用することもできます。手術面を準備するには、まず5 cm × 10 cmのプラスチック製パラフィンフィルムを切り出し、ペルチェプレートの中央に配置します。次に、低発塵ワイプを約2 cm四方に折り畳み、フィルムの上に置きます。次に、折りたたんだワイプを固定し、虫用の水で湿らせ、転送ピペットでワイプを平らに転がします。最後に、1.5～2 cm²の白いフィルターペーパーを切り出し、ワイプの上に置きます。手術を開始するために、転送ピペットを使用して、虫を1匹、背側を上にしてフィルターペーパーの上に置きます。照明を点灯させ、光を虫に合わせます。解剖顕微鏡のピントと倍率を調節し、虫の目がはっきりと見えるようにします。パラフィンフィルムを回転させて虫の位置を調整し、頭部が研究者側を向き、右側に30から40度傾くようにします。線虫が腹側を上にして配置されており、咽頭開口部が見えている場合は、ピンセットの鈍い側を使用して、線虫を優しく動かし、目が視認できる背側を上にした状態に変更してください。顕微鏡の設定を調整し、目に明確に焦点を合わせます。また、両眼と周囲の頭部組織がすべて視野に入っていることを確認してください。清潔なシリンジを、親指と人差し指で右手に保持します。シリンジの下部を、ペルチェプレートに押し当てた左手の親指で支えます。顕微鏡を覗き、針の面取り（ベベル）が見えていることを確認してください。処置中に表面が安定するように、左の人差し指を手術面に置き、左親指と40度の角度をなすようにします。針の bevel（針先斜面）を上に向け、眼に対して90度の角度に配置します。白く無色素の領域として見える眼の視神経乳頭（optic cup）上の薄い組織層を、針先でそっと貫通させます。右から左へすくい取るようにして、視杯内に存在する黒色の色素組織およびすべての白色組織を非常に慎重に除去します。両眼の切除を行う場合は、ここで2つ目の眼を切除してください。手術完了後、ピペットに少量のワーム用水を吸い込み、それをワームに滴下してフィルターペーパーから剥がします。すぐに転送ピペットで線虫を吸い出します。ラベルを貼った12ウェルプレートの、新鮮な線虫用水が3分の2まで満たされているウェルに線虫を移動させます。すべての線虫の転送が完了したら、ウェルの水を新鮮な線虫用水に交換して洗浄します。線虫を遮光した状態で20°Cのインキュベーター内で培養し、再生過程をモニタリングします。生きた線虫を固定する場合、プレートから線虫用水を排出し、70% ethanolに置換します。線虫を3〜5分間静置し、線虫が溶解して灰色に変化することを確認してください。ここでは、両眼切除および片眼切除を施したプランナリアの、手術前、手術4日後、および2週間後の写真を示します。これらの画像は、時間の経過に伴う再生の進行を示しています。切除された個体における目の再生は、アレスチンの免疫組織化学染色および新たに形成された光受容ニューロンによっても確認されました。両眼切除後のプランナリアにおける視覚系の回復について、野生型に見られる光忌避反応に基づく機能的アッセイを用いて検討しました。切除から24時間後、眼のない個体は光を避けることなく、明部に進入します。術後7日までに光忌避能が回復することから、再生した視覚系が機能していることが示されました。習熟すれば、1匹の虫の両眼を切除する手順は約3分で完了できます。切除の際は、両眼の間の組織を傷つけたり、眼の奥にある組織を後で引き裂いたりしないように注意しながら、色素および無色素の眼組織をすべて切除することが重要です。この手順の後、免疫組織化学やRNA干渉などの他の手法を用いることで、特定の遺伝子の役割とその再生プロセスを調べることが可能です。さらに、再生後の眼の機能を検証するために、行動解析を行うことができます。このビデオを視聴することで、周囲の組織を傷つけることなくプラナリアの眼を摘出する方法を十分に理解できたはずです。針を扱う際は危険が伴うため、手袋の着用や、針先を自分とは反対方向に向けて保持するなど、十分な注意を払ってください。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

ヒトの急性腎臓損傷（AKI）は腎臓のネフロンを構成する上皮細胞の損傷によって引き起こされる一般的な臨床上の問題であり、AKIは50から70パーセント1の高い死亡率に関連付けられています。この現象を導くメカニズムと限界がよくわかっていないままにかかわらず、上皮細胞の破壊に続いて、ネフロンは、再生する機能が制限されています。このビデオの記事では、我々はターゲットレーザーのゼブラフィッシュ胚の腎臓で腎臓のネフロン細胞の切除、または前腎のための私たちのテクニックを説明します。私たちの新しいメソッドは、AKIの腎毒性誘発性のモデルを補完し、腎臓のネフロンにおける上皮再生に関連付けられている細胞と分子の変化の高解像度の理解を得るために使用することができます。...

腎上皮再生を研究するためにゼブラフィッシュの前腎のレーザーアブレーション

生きた動物の中で幹細胞の分化を研究するための魅力的なモデルは、プラナリア扁形動物です。再生は簡単に基本的な実験室で行われる単純な切断実験により研究し、薬理学的および遺伝的（に適しているさ...

プラナリアの再生を操作するために薬理学的および機能的遺伝学的アッセイ<emジャポニカ> Dugesia</em

プラナリアの間に定義された一貫性のある大きさの組織を移植するための効果的な方法が記載されている。も含まれて移植に使用される固定化技術が生きた動物の部分的な照射のために、鉛の盾と一緒に、適合させることができる方法の説明です。...

プラナリアの固定化、部分照射し、組織移植

出典: Volpe, B. A., 他 ゼブラフィッシュ神経マスト細胞における共焦点顕微鏡ベースのレーザーアブレーションおよび再生アッセイ. J. Vis. Exp. (2020)...

共焦点顕微鏡法を用いたゼブラフィッシュにおけるレーザーアブレーションニューロマスト間細胞の回収率のモニタリング

神経学的および非神経疾患の多くのゼブラフィッシュモデルは成魚ではなく、胚/幼虫で研究されているため、我々は大人のゼブラフィッシュの疾患モデルに適用することができ、定量的側線再生アッセイを開発しました。アッセイは、1）感丘および2）個々の有毛細胞レベルでの解像度を含んだ。...

アダルトゼブラフィッシュ側線再生のためのアッセイ

ゼブラフィッシュは、脊椎動物の網膜変性・再生のメカニズムを勉強する人気動物モデルです。このプロトコルでは、ローカライズされた外傷の内側の網膜に最小の被害で網膜の外側を中断することを誘導する方法について説明します。その後、我々 は生体内で網膜の形態と網膜再生を通してミュラー...

ゼブラフィッシュの再生モデルと網膜変性のレーザー誘起のミュラー グリア細胞の活性化

プラナリアSchmidtea メディテラネアは、幹細胞と組織再生を研究するための優れたモデルです。この文書では、化学のアジに動物を公開することによって 1...

化学の切断とSchmidtea メディテラネアプラナリアの咽頭再生

レーザーアブレーションは、生物系の再生を研究するための広く応用できる技術です。提示されたプロトコルは、ゼブラフィッシュ横線で神経間細胞を再生するレーザーアブレーションとその後のタイムラプスイメージングのための標準的なレーザー走査共焦点顕微鏡の使用を記述する。...

ゼブラフィッシュインターニューロマスト細胞における共焦点顕微鏡ベースレーザーアブレーションと再生アッセイ

この記事では、網膜入力が視蓋の成長と発達にどのように影響するかを調査するための第一歩として、生きているゼブラフィッシュの幼虫から外科的に目を取り除く方法について説明します。さらに、この記事では、幼虫の麻酔、固定、および脳解剖に関する情報を提供し、続いて免疫組織化学および共焦点イメージングを行う。...

生きているゼブラフィッシュ幼虫の眼球除去による神経支配依存性の成長と視覚系の発達を調べる

このプロトコルは、トランスジェニックゼブラフィッシュモデルを用いて網膜色素上皮(RPE)を遺伝的にアブレーションする方法論を記載している。薬理学的化合物を用いたシグナル伝達経路調節を組み込むようにプロトコルを適応させることは、広範囲に詳述されている。色素沈着に基づいてRPE再生を定量化するためのMATLABプラットフォームが開発され、提示され、議論される。...

ニトロレダクターゼ/メトロニダゾール媒介アブレーションとゼブラフィッシュ網膜色素上皮の再生を研究するためのMATLABプラットフォーム(RpEGEN)

ここでは、角膜を神経支配する感覚線維を損傷する3つの異なる方法を提案します。これらの方法は、マウスの軸索再生の研究を容易にします。これら3つの方法は、他の動物モデルにも適応可能であり、角膜神経支配の生理学と再生の研究に最適です。...

マウス角膜の神経栄養性角膜炎と神経再生を誘導する3つの戦略

学ぶプラナリアの眼杯切除法による再生メカニズム研究。インスリン針を用いて周囲組織への損傷を最小限に抑えながら眼組織を除去し、幹細胞の維持と分化メカニズムを解明する。

プラナリアで瞳の再生を研究するための外科切除アッセイ

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