Name: フローサイトメトリーによるヒト好中球の核因子の活性を検出するために簡単で効率的な方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: 学ぶフローサイトメトリーによるヒト好中球の核因子活性化検出法。インテグリン刺激後のNF kappa B核内移行を定量化し、免疫応答における細胞内シグナル伝達を解析する効率的な手法です。

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著者は彼女の技術支援のためのナンシーモーラに感謝したいと思います。 この作品は、ConsejoナシオナルデCiencia yをTecnologia、メキシコからの研究助成金48573-Mおよび168098でかつ助成IN212308とIN205311-2 Direccionから一般デAsuntosデルパーソナルAcademico、国立大学自治デ·メキシコ、メキシコによって賄われていた。

1。ヒトの血液から好中球の分離（PMN） <ol><li>抗凝固剤としてヘパリン（10 U / ml）で約20mlヒトの血液を使用します。血液はvenopunctureによって成人の健康なボランティアから採取した。 UNAM - 全ての実験は、のInstituto de InvestigacionesBiomédicasにおける生命倫理委員会の承認の下で行われた。 </li><li> 15mlコニカル遠心チューブにPBSで6％デキストランT500の2ミリリットルを入れて、血液の10ミリリットルを追加します。チューブを反転することによって2倍または3倍を混ぜて、それが赤血球沈降を可能にするために45分間放置します。 </li><li>新鮮な15mlコニカル遠心管に5ミリリットルのFicoll-Paqueは置く。 </li><li>赤血球沈降の上方に形成された白血球血小板血漿を取り、慎重に第2層を形成するのFicoll-Paqueの上に移します。 2フェーズがあることを確認してください。 </li><li> 4℃で20分間、516×gで遠心分離し、遠心分離後、血漿とのFicoll-Paqueの相間での単核細胞の層がある。ねーutrophilsは、チューブの下部にあります。 </li><li>上清を取り除き、ラックに対してチューブをタップして、細胞ペレットを壊し、風邪の10ミリリットル（4℃）、PBS（注）追加することで、細胞を再懸濁する。ピペッティングにより細胞を再懸濁し、これがあまりにもあるのでダウンはお勧めしませんが細胞にダメージを与える。 </li><li> 4℃で5分間、290×gで50ミリリットルコニカル遠心チューブと遠心分離機に細胞懸濁液を移す</li><li>前と同じように細胞ペレットを破ると冷たい（4℃）赤血球を溶解するために低張液（0.2％のNaCl、1％BSA、20mMのHEPES、pH = 7.4）中の10 mlを加える。正確に1分間手で優しくチューブを回して混ぜる。 </li><li>冷（4℃）高張液（1.6％のNaCl、1％BSA、20mMのHEPES、pH = 7.4）に、ミックス、血球計算盤（通常&gt; 95％はPMNである）を用いて細胞をカウント10mlを追加します。 注：細胞をカウントしながら氷上で細胞懸濁液をチューブに保管してください。 </li><li>以前と同じように遠心分離し、10℃PMNを再懸濁寒さの中7細胞/ ml（4℃）をPBS。氷上で保存する。 注：好中球が4で約6〜8時間、℃で生存可能で機能的なままである。 </li></ol> 2。 PMNのアクティブ化<ol><li> 1.5mlのエッペンドルフチューブにPMNの懸濁液100μl（1×10 7細胞/ ml）を入れてください。 注：サンプルチューブが少なくとも重複で行われるべきです。いつものネガティブコントロールのみのみ一次抗体、二次抗体を含むべきである。 </li><li> 10μg/ mlで対応する抗インテグリンまたは抗Fc受容体モノクローナル抗体（mAb）を追加し、氷上で15分間インキュベートする。 </li><li> 1 mlの冷（4℃）、PBS、遠心機で1743×gで（4,500 rpm）で遠心分離し、上清を吸引する。を追加することにより、PMNを洗う</li><li>ラックに対してチューブの底をタップすることで、細胞ペレットを壊し、1ミリリットルの冷PBSを追加し、2回以上前のステップのように洗ってください。 注：これらは結合していない抗体を除去洗う。 </li><li>同じで再懸濁し、PMN（内暖かいのitial）体積（37℃）Fの60μg/ mlの（ab &#39;）2ヤギ抗マウスIgGを含むPBS。 注：二次抗マウスIgG抗体は、最初の抗受容体抗体に結合し、受容体の架橋を引き起こすでしょう。 </li><li>興味のある核因子に応じて1〜20分、37℃でインキュベートする。 NF-κBは通常15分間、通常はエルク-1で5分間。 注：37℃で細胞をインキュベート4では行われません°C誘導する受容体架橋、℃ </li><li> 1ミリリットルの冷PBSを加え、遠心機で1743×gで3分間遠心する。 </li><li>上清を除去</li><li> dry-ice/ethanol浴ですぐにPMNを凍結し、10分間そこに保管してください。 </li></ol> 3。核の単離および固定<ol><li> 100μlの冷（4℃）低張緩衝液（10mMのHEPES、10mMのKCl、1.5mMのMgCl 2、再懸濁し、凍結PMNペレットと 1mMのたて付加DL-ジチオスレイトール[DTT];でpH = 7.9）。それが1つdry-ice/ethanol浴1からチューブを取り出して、そして低張緩衝液を加える前にチューブの底をきれいに拭くことをお勧めします。 </li><li>氷の上に置き、トリパンブルーによる核懸濁液のアリコートを染色することによって核の整合性をチェックします。核は円形と青に見える。無傷PMNは、ステンド取得しないと、細胞の破片は、不規則な形状の青色粒子として表示されます。 注：核懸濁液は、多くの無傷細胞やゴミが含まれている場合、それは準備を破棄し、別のサンプルを使用して手順を繰り返すことをお勧めします。 </li><li>寒い部屋の中で10分間遠心機で775×gで（3,000 rpm）で核を遠心分離します。非常に壊れやすく、余分であるこの時点で核ケアはサンプルは低温に保ち、過度の力で遠心分離していない場合は注意が必要です。 </li><li>非常に注意深くピペッティングにより上清を除去します。 </li><li>核を修正するために、PBS中の冷たい4％パラホルムアルデヒドを100μlを加える。 注：ペレットは非常に緩んでいるDバッファを追加することで核を再懸濁するのに十分です。上下にピペッティングとは避けるべきである。 </li><li>氷上で20分間インキュベートします。 </li><li> Immunolabelフローサイトメトリーのための核または4で最大24時間のためにそれらを保つ℃に</li></ol> 4。フローサイトメトリー分析のための核免疫標識<ol><li> 1分間遠心機で1743×gで（4,500 rpm）で核を遠心し、非常に穏やかにピペッティングにより上清を除去します。 </li><li>風邪を100μl（4℃）0.1％トリトンX-100、PBS中の4％パラホルムアルデヒド核を透過性にするために追加します。 10分間氷上でインキュベートする。 </li><li>遠心機で1743×gで透過処理した核を遠心分離し、上清を注意深く除去します。この時点で核ペレットがチューブの底にうまく接続しないでください。これは、ペレットが緩ん得れば再度遠心操作することをお勧めします。 </li><li>非特異的結合部位をブロックし、氷上で20分間インキュベートし、PBS中の冷4％ウシ胎児血清（FBS）500μlに再懸核。遠心遠心機で3分間1743 xgで核と慎重に上清を除去する。 </li><li> 4パーセントFBSおよび興味のある核因子に対するmAbの2.5μg/ mlを含有する冷100μlのPBSに再懸濁し核。氷上で20分間インキュベートします。 注：通常のネガティブコントロールのみ抗核因子抗体が含まれ、FITC標識二次抗体のみ必要があります。 </li><li> 4パーセントFBSおよび3分間1743 xgで遠心分離して冷PBS500μlで2回洗浄する。 </li><li> 、非常に慎重に4パーセントFBSおよび対応するFITC標識二次抗体10μg/ mlを含有する冷100μlのPBSに再懸濁した核を上清を除去し、氷上で20分間インキュベートします。 </li><li>前のステップのように4％FBSを冷PBS500μlで二回核を洗ってください。 </li><li> PBS中で冷4％パラホルムアルデヒド400μlの中の核を再懸濁します。 注：核は、サンプルが汚染することなく、数日間保存できるようにパラホルムアルデヒドに配置されている血清の存在下で発生する可能性のある問題。 </li><li> 4℃の暗所では、フローサイトメトリーやストアによって直ちに分析℃で3日間までのC。 </li></ol> 5。フローサイトメトリー分析<ol><li>または同様の装置、フローサイトメーターなどFACスキャン（フランクリンレイクス、ニュージャージー州Becton Dickinson社製）で免疫標識核を分析します。 </li><li> 196でログスケールでSSC、およびドットプロットのゲート核、10-1でログスケールでFSC：に取得設定を調整します。 </li><li>サンプルあたり1万核を獲得。 </li><li> 400℃で対数スケールに設定FL-1チャネル（506 nm）を介して、FITC-染色された核の蛍光分析。 </li></ol>

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<li>Schnoor, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+non-viral+transfection+of+THP-1+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Meth%22%5BJournal%5D)">Efficient non-viral transfection of THP-1 cells.</a> J. Immunol. Meth. 344, 109-115 (2009).</li>
<li>Garcia-Garcia, E., Rosales, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+factor+activation+by+Fc%CE%B3R+in+human+peripheral+blood+neutrophils+detected+by+a+novel+flow+cytometry-based+method%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Meth%22%5BJournal%5D)">Nuclear factor activation by FcγR in human peripheral blood neutrophils detected by a novel flow cytometry-based method.</a> J. Immunol. Meth. 320, 104-118 (2007).</li>
<li>Garcia-Garcia, E., Nieto-Castaneda, G., Ruiz-Saldana, M., Mora, N., Rosales, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fc%CE%B3RIIA+and+Fc%CE%B3RIIIB+mediate+nuclear+factor+activation+through+separate+signaling+pathways+in+human+neuthophils%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">FcγRIIA and FcγRIIIB mediate nuclear factor activation through separate signaling pathways in human neuthophils.</a> J. Immunol. 182, 4547-4556 (2009).</li>
</ol>

著者らは、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

ここに記載の精製方法は、短時間で95％（顕微鏡観察により評価）、より高い純度を持つ非刺激好中球の分離（PMN）が可能になります。後者は完全に溶解されていない場合、時には好中球は、赤血球によって汚染することができます。赤血球及びPMNを簡単にフローサイトメトリーによって異なる細胞集団として区別することができるので、これは通常、技術に影響を与えません。隔離されたPMNはその後、特定のモノクローナル抗体で架橋する特定の受容体によって刺激することができる。実際には、PMNは、薬理学的手段によって、または様々な基材または他の細胞への接着によって刺激することができる。ここで紹介する方法は、細胞は実質的に関連する生物学的刺激によって活性化された後、PMN核における核内因子の変化につながるシグナル伝達経路の解析に使用できます。 PMNが刺激されると、この論文に記載された方法は、迅速かつefficiが可能免疫蛍光法およびフローサイトメトリー分析によるNF-κBのこれらの核中の核のと検出のための耳鼻咽喉科浄化、。特定の受容体のPMNの刺激後、細胞質におけるNF-κBは、その阻害剤IκBから解放された...

好中球は末梢血1に最も豊富に存在する白血球である。炎症や感染症、好中球の間に、彼らは防衛2の最初の行として働く場所患部に出現する最初の細胞である。好中球は貪食作用、活性酸素種の産生、脱顆粒によって溶菌酵素の放出、および4,5 -炎症性サイトカインの産生を含むいくつかの抗菌メカニズムの3を所有しています 。好中球は急速に様々な細胞表面の受容体からのシグナル伝達を介して活性化取得短命な細胞である。好中球は、その短い寿命のため、端末の細胞と考えられ、炎症過程6の間に活性化されない限り、彼らはアポトーシスを受けるので、それは、彼らはまた、特定の遺伝子の転写のレベルを変更することにより、それらの表現を変更できることが明らかになってきたが。サイトカイン5と7,8アポトーシスの阻害の生産は、i 2アール好中球の転写レベルで調節mportant活性化に依存した細胞機能。核因子κB（NF-κB）は、サイトカイン産生4の転写制御で、様々な種類の細胞における細胞生存とアポトーシス9-11の調節に関与している。 核因子の活性化につながるシグナル伝達経路は、通常、レポーター遺伝子アッセイにより、または電気泳動移動度シフトアッセイ（EMSA）によって研究されている。好中球は短命の細胞であるため、好中球のトランスフェクションのための効率的な技術が存在しないためしかし、これらの細胞における転写調節応答の研究は、レポーター遺伝子アッセイを使用して実行することはできません。 EMSAのアッセイは、核因子活性化12,13を探索するために好中球に使用されてきたが、それが放射性物質の使用を伴うので、しかしながら、この方法論は、複雑で高価である。クレオはsuccessfu使用されています別の技術であるLLY単球14をトランスフェクトする。したがって、少なくとも理論的には、核因子の活性化は、トランスフェクションによる好中球（低効率にもかかわらず）で検出することができた。しかし、この技術は、時間がかかり、おそらく少ない定量より高価になるだろう。免疫染色された細胞の顕微鏡分析はまた、核内で核内因子を検出するために使用することができる。実際、我々は核 ​​こうして15にNF-κBの転座を検出した。残念なことに、この手法はまた、時間のかかるレス定量的、かつ観察者バイアスの影響を受けます。 ここでは、フローサイトメトリーによって単離し、免疫標識核における核内因子の検出および定量化を可能にするシンプルで効率的な方法を提示する。我々は、F（フローサイトメトリーにより、ヒト末梢血から好中球を分離抗受容体抗体とインテグリンまたはFc受容体を介して、これらの細胞を刺激し、隔離し、immunolabel核を、核を分析するための手法について説明igure 1）。メソッドが成功し、NF-κB15および好中球の核内エルク-1 16核内因子を検出するために使用されています。この方法の感度は、核内の核因子レベルの小さな変化を検出することができます。また、この方法は、他の細胞型から核内転写因子のレベルを分析するために使用することができます。

<table><tbody><tr><td colspan="4">REAGENTS</strong</td></tr><tr><td>>Heparin </td><td>PiSA (Mexico)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dexrick T500</td><td>Pharmacosmos A/S (Holbaek, Denmark)</td><td>T1-Dextran T500</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque</td><td>Pharmacia</td><td>17-0320-01</td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム </td><td>Σ</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>リン酸ナトリウム 一塩基性</td><td>Sigma</td><td>S9638</td><td></td></tr>リン酸<tr><td>ナトリウム二塩基性</td><td>Sigma</td><td>S9390</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン(BSA)</td><td>ΣA2153</td><td>Cohn画分V</td><td></td></tr> <tr><td>HEPES</td><td>シグマ</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td></td><td>P9541</td><td></td></tr>塩化<tr><td>マグネシウム無水シ</td><td>グマ</td><td>M8266</td><td></td></tr><tr><td><サブ>DL</サブ>-ジチオスレイトール (DTT) </td><td>Σ</td><td>D9163</td><td></td></tr><tr><td>トリパンブルー (0.4 % 溶液)</td><td>Σ</td><td>T8154</td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>Σ</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>トリトン X-100 </td><td>Σ</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>GIBCO</td><td>10437-028</td><td></td></tr><tr><td>モノクローナル抗体 IV.3</td><td>メダレックス (ニュージャージー州アナンデール)</td><td>025-1</td><td>ヒト特異的抗FcRII(CD32)</td></tr><tr><td>モノクローナル抗体3G8</td><td>Medarex(ニュージャージー州アナンデール)</td><td>028-2</td><td>ヒト特異的抗FcRIII(CD16)</td></tr><tr><td>モノクローナル抗体 TS2/16</td><td>Dana Farber Cancer Research Institute(マサチューセッツ州ボストン)</td><td>マーティン・ヘムラー博士より寄贈</td><td>ヒト特異的抗薬-&#946;1インテグリン(CD29)</td></tr><tr><td>モノクローナル抗体IB4</td><td>カリフォルニア大学サンフランシスコ</td>校 <td>エリック・J・ブラウン博士より寄贈</td><td>ヒト特異的抗薬-&#946;2インテグリン(CD18)</td></tr><tr><td>F(ab')2ヤギ抗マウスIgG</td><td>カペル(オーロラ、オハイオ州)</td><td>55468</td><td></td></tr><tr><td>FITC標識F(ab')2ヤギ抗マウスIgG</td><td>カペル(オーロラ、オハイオ州)</td><td>55522</td><td></td></tr><tr><td>FITC標識F(ab')2ヤギ抗ウサギIgG</td><td>カペル(オーロラ、オハイオ州)</td><td>55665</td><td></td></tr>抗<tr><td>NF-&#954;B p50</td><td>Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA)</td><td>sc-114</td><td>ウサギポリクローナル抗体</td></tr><tr><td>抗NF-&#954;B p65</td><td>Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA)</td><td>sc-109</td><td>Rabbit polyclonal antibody</td></tr><tr><td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>15-ml 遠心分離管</td><td>Corning</td><td>430791</td><td></td></tr><tr><td>50-ml 遠心分離管</td><td>Corning</td><td>430291</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機, Sorvall 卓上</td><td>Dupont Instruments</td><td>RT 6000D</td><td></td></tr><tr><td>pH メーター</td><td>コーニング</td><td>340</td><td></td></tr><tr><td>ピペットマンピペット P-20</td><td>ギルソン</td><td>F123600</td><td></td></tr><tr><td>ピペットマンピペット P-200</td><td>ギルソン</td><td>F123601</td><td></td></tr><tr><td>ピペットマンピペット P-1000</td><td>ギルソン</td><td>F123602</td><td></td></tr><tr><td>血球計算盤</td><td>フィッシャー サイエンティフィック</td><td>0267110</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ニコン</td><td>エクリプス E600</td><td></td></tr><tr><td>倒立顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>TMS</td><td></td></tr><tr><td>ウォーターバスインキュベーター</td><td>Fisher Scientific</td><td>2IS-M</td><td></td></tr><tr><td>微量遠心機</td><td>Eppendorf</td><td>5414C</td><td></td></tr><tr><td>微量遠心機</td><td>Eppendorf</td><td>5418</td><td></td></tr><tr><td>Flow Cytometer</td><td>Becton Dickinson (Franklin Lakes, NJ)</td><td>FACScalibur</td><td></td></tr></tbody></table>

フローサイトメトリーによるヒト好中球の核因子の活性を検出するために簡単で効率的な方法

A Simple and Efficient Method to Detect Nuclear Factor Activation in Human Neutrophils by Flow Cytometry

好中球は、末梢血中に最も豊富に存在する白血球である。これらの細胞は、このように微生物を侵略に対する最初の防衛線となって、炎症や感染部位に最初に表示されています。好中球は、貪食作用、溶菌酵素の放出、活性酸素種の産生などの重要な抗菌機能を有する。これらの重要な防御機能に加えて、好中球などの炎症性サイトカインおよびアポトーシスの阻害の生産などの感染症に対応して他のタスクを実行します。サイトカインは、感染をクリアに役立つ他の白血球をリクルートする、アポトーシスの阻害は、好中球が感染部位で長生きすることができます。これらの機能は、転写レベルで調節されている。好中球は短命の細胞であるため、全く効率が存在しないためしかし、これらの細胞における転写調節応答の研究は、従来のレポーター遺伝子のメソッドで実行することはできません好中球のトランスフェクションのためcientテクニック。ここでは、フローサイトメトリーによって単離し、免疫標識核における核内因子の検出および定量化を可能にするシンプルで効率的な方法を提示する。我々は、ヒト末梢血から純粋な好中球を分離するための手法について説明抗受容体抗体で、これらの細胞を刺激し、隔離し、immunolabel核、フローサイトメトリーで核を分析します。メソッドが成功した好中球および他の細胞型から核内にNF-κBおよびエルク-1核内因子を検出するために使用されています。したがって、この方法では、種々の細胞型から単離核内転写因子の活性を分析するためのオプションを表します。

ここに記載の精製方法は、通常は95％（ 図1A）を超える純度を有する非刺激好中球（PMN）を提供しています。隔離されたPMNはその後、特定のモノクローナル抗体で架橋する特定の受容体によって刺激することができる。我々は、Fc受容体とインテグリン（ 図1B）を介してPMNを刺激してきた。一度刺激、PMNを溶解し、核を高収率で分離されています。核は、そのような特異的な抗体との核因子κB（NF-κB）、（ 図1B）などの特定の核因子に対して免疫標識されています。 核は簡単にドットプロット（ 図2A）とフローサイトメーターにそのままPMNの異なる集団として認識させることができます。休んPMNにおけるNF-κBの基底レベルは細胞核（ 図2B）で発見されます。架橋β1インテグリンによる刺激時には、NF-κBは核とこのincremへ移行している<html>核のNF-κBでENTは、蛍光（ 図2B）...

好中球は、血液中に最も豊富に存在する白血球である。好中球は、このような炎症性サイトカインとアポトーシスの抑制​​の生産などの転写調節機能を有する。これらの関数は、単離核で、フローサイトメトリーによって核内因子の検出および定量化を可能にするここに示す方法で研究することができる

Neutrophils  are the most abundant leukocytes in peripheral blood. These cells are the first  to appear at sites of inflammation and infection, thus ...

この実験では、フローサイトメトリーを用いて、ヒト末梢血から精製した好中球から分離し免疫ラベル化した核内の核タンパク質を検出および定量します。まず、デキストリンを用いて赤血球を除去し、次に血漿の密度勾配遠心分離を行います。その後、受容体抗体を用いて、インテグリンまたはFC受容体を介して精製した好中球を刺激します。核を単離し、目的の核因子（例：NF kappa B）に対する特異的抗体を用いて免疫標識するためのサンプル固定を行います。最終的に、核因子の活性化に伴う微小な変化を検出するために、フローサイトメトリーで核を解析します。その結果、インテグリンを介した好中球の刺激により、転写因子 NF kappa B の核内濃度が上昇することが示されます。核因子の活性化に至るシグナル伝達経路は、通常、初代細胞を用いたレポーター遺伝子アッセイまたは電気泳動移動度シフトアッセイによって解析されます。多くの場合、これらの手法は適切ではありません。フローサイトメトリーを用いることで、単離した核内の核タンパク質を迅速に検出および定量することが可能です。まず、健康な成人ボランティアから採取した新鮮な血液 10 milliliters を用意します。6%デキストリンT 500溶液2 mLを15 mLコニカル遠心チューブにピペットで分注します。次に、10 mLの血液を加え、チューブを2、3回反転させて混合し、新しい15 mLコニカル遠心チューブ内で赤血球が重力により沈降するまで45分間静置します。FIフィアルパックに5 mLを分注します。沈降した赤血球の上に形成された白血球富化血漿を回収します。これをファイアルパックの上に慎重に重層して2相を作り、4°Cで20分間、516 Gsで遠心分離します。上清を除去し、チューブをラックに軽く叩きつけて細胞ペレットをバラバラにします。次に、細胞を10 millilitersの冷PBSで再懸濁します。細胞懸濁液を50 milliliterのコニカル遠心チューブに移し、4 °Cで290 Gsにより5分間遠心分離します。前と同様に細胞ペレットをほぐし、赤血球を溶血させるために10 millilitersの冷低張溶液を加えます。チューブを1分間静かに回旋させて混ぜ合わせます。次に、冷えた高張溶液ミックスを10 milliliters加え、氷上で保存します。その後、遠心分離により好中球をペレット化した後、細胞数を計測します。PMNを10⁷ cells/mLの濃度で懸濁します。冷PBS中で細胞を氷上に保持します。PMN懸濁液100 µLを1.5 mLエッペンチューブに分注します。次に、10 µg/mLの対応するモノクローナル抗体を加え、氷上で15分間インキュベートします。細胞を洗浄するために、1 mLの冷PBSを加えて遠心分離し、上清を吸引除去します。その後、細胞ペレットを穏やかに懸濁させ、PBSでさらに2回洗浄します。未結合の抗体を除去するため、洗浄したPMNを、60 µg/mLのgo anti muse IgGを含む同量の温めたPBSに再懸濁し、目的の核因子に応じて37 °Cで1～20分間インキュベートします。次に、1 mLの冷PBSを加えます。遠心分離により細胞をペレット化した後、上清を除去し、細胞ペレットをドライアイス-エタノールバスで直ちに凍結させます。各サンプルについて、チューブをドライアイス-エタノールバスから取り出し、汚れを拭き取って再懸濁します。凍結したPMNペレットを100 µLの冷低張溶液に懸濁させます。すべてのサンプルを氷上に置き、核の完全性をモニタリングします。核懸濁液のアリコートをトリパンブルーで染色します。核懸濁液に無傷の細胞やデブリが多く含まれている場合は、調製物を廃棄し、別のサンプルで手順をやり直すことが望ましい。遠心分離により核をペレット化した後、上清を非常に慎重に取り除き、100 µLの冷えた4%パラホルムアルデヒド溶液で核を固定し、氷上でインキュベートする。核をペレット化した後、上清を慎重に取り除き、100 µLの冷えた透過バッファーを加え、サンプルを氷上で10分間インキュベートする。次に、遠心分離によって透過核を回収します。この時点では、核のペレットがチューブの底に十分にとどまりません。そのため、再度遠心分離を行うことが推奨されます。非特異的結合部位をブロックするため、核を500 µLの冷えた4%胎児牛血清（FBS）含有PBSに懸濁し、氷上で20分間インキュベートします。遠心分離により核をペレット化し、次に、4%FBSおよび2.5 µg/mLの目的の核因子のモノクローナル抗体を含む100 µLの冷PBSで核を再懸濁します。サンプルを氷上で20分間インキュベートした後、4%FBS含有の冷PBS 500 µLでサンプルを2回洗浄し、核を4%FBS含有の冷PBS 100 µLおよび10 µg/mLの対応するFZ標識二次抗体の中に懸濁します。氷上で20分間インキュベートし、2回洗浄した後、核を400 µLの冷えた4%パラアルデヒド含有PBSに再懸濁します。FactScanまたは同様の装置などのフローサイトメーターを用いて、免疫標識した核を解析します。取得設定を、FSC（対数スケール）10⁻¹、SSC（対数スケール）196に調整し、ドットプロットで核をゲートします。サンプルあたり10,000個の核を取得します。次に、logスケール400に設定したFL-1チャネルを用いて、fitsyで染色した核の蛍光を分析します。このPMN精製法により、通常95%以上の純度の未刺激好中球が得られます。PMN核は高収率で単離され、フローサイトメーターのドットプロットにおいて、刺激後の完全なPMNとは異なる集団として容易に識別できます。β1インテグリンを架橋させることで、NF-κBが核内に移行し、この核内NF-κBの増加が蛍光強度の増加として検出されます。同様に、β2インテグリンの架橋によるPMNの刺激も、蛍光強度の増加で示されるように、NF-κBの活性化を誘導します。本法の感度により、核因子のレベルのわずかな変化を検出することが可能です。実際に、フィブロネクチンなどの細胞外マトリックスタンパク質に結合するβ1インテグリンは、他細胞の接着分子に結合するβ2インテグリンよりも強力にNF-κBの活性化を誘導することが示されています。本法は、多くの異なる蛍光色素を使用でき、またさまざまな細胞種から核を調製できるため、非常に柔軟性が高く、多様な細胞種の核におけるタンパク質レベルの変化を伴うシグナル伝達研究において、簡便かつ経済的なアプローチとして利用可能です。

a-simple-efficient-method-to-detect-nuclear-factor-activation-human

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

好中球の接着を定量する方法が報告されている。この方法は、血管内に発生したものと同様の動的流れ環境を作成する。これは、せん断応力との生体内環境に似コンテキストで精製された接着分子（リガンド）のいずれかへの好中球の接着や内皮細胞基質（HUVEC）の調査を可能にする。...

ヒト好フローチャンバー接着アッセイ

ハイスループットアッセイが提示され、組み合わせてヒト好中球からのNET放出を定量するための優れたツールを提供します。...

ヒト好中球における細胞外DNAのリリースおよび定量NET形成のハイスループット測定<em&gt;インビトロ</em

簡単かつ信頼性のある方法は、異なるNK細胞サブセット内の脱顆粒、サイトカインおよびケモカインの産生などNK細胞機能のセットを分析するために、ここで説明されています。...

NK細胞の機能を監視するためのサイトメトリーに基づくアッセイを流します

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この記事では、全血からのチップ上の好中球単離と、単一のマイクロ流体チップ上の走化性試験とを統合することにより、迅速な好中球走化性アッセイを行う詳細な方法を提供する。...

血液滴からの迅速な好中球走化性解析のためのオールオンチップ法

流れ cytometry ベースの人間のナチュラル...

ヒト NK 細胞活性の評価の流れのフローサイトメトリーを用いた細胞毒性の試金

ここでは、固定/グリセリン組織学セクションで好中球の存在を検出し、ライブの精製された好中球の活性化状態を評価するためのプロトコルを提案する.特に、ムバーラク40ペプチドは、ラクトフェリンの好中球固有および第三紀の顆粒に存在をバインドします。透過や好中球活性化を介して顆粒内容の暴露は、好中球のマーキングが可能です。...

炎症の好中球を介したイベントの検出で使用するムバーラク40ペプチド

このプロトコルは、蛍光抗体法により三次元共焦点顕微鏡による ex vivo ネット形成の半自動定量化のための高感度・高スループット好中球細胞外トラップ (ネット)...

高スループット アッセイを行い好中球細胞外トラップ形成の定量化

このプロトコルは異なったシグナリング細道からの機能をカバーするスクリーニング方法として使用されるべき一組の好中球の機能試金を特色にする。プロトコルは好中球の細胞外トラップの細胞生存率、純度、活性酸素種の生産、実時間移動、食作用および予備の提案の初期および簡単な評価を含んでいる。...

好中球機能の概要を把握するための一連のスクリーニング技術

本稿では、膜透過性依存性二重色素アプローチと組み合わせた生細胞解析システムを利用して、好中球細胞外トラップ(NET)を定量する自動化されたハイスループット法を紹介します。...

ヒト好中球における好中球細胞外トラップ形成を定量化するリアルタイムハイスループット技術(英語)

この定義されたプロトコルは、 in...

ヒト好中球細胞外トラップ放出のリアルタイムハイスループット顕微鏡定量とアンタゴニストの薬理学の評価

学ぶフローサイトメトリーによるヒト好中球の核因子活性化検出法。インテグリン刺激後のNF kappa B核内移行を定量化し、免疫応答における細胞内シグナル伝達を解析する効率的な手法です。

フローサイトメトリーによるヒト好中球の核因子の活性を検出するために簡単で効率的な方法

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