Name: 新生豚のリンパ節の腸リンパトランクやコレクションの長期カテーテル法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: 学ぶ新生豚の腸リンパ管カテーテル法によるリンパ採取技術。脂質代謝や薬物動態の研究に有用なこの手術法は、腹正中アプローチでリンパ管にカテーテルを挿入し、長期的なリンパ採取を可能にします。

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この作業は、アルバータ州畜産食肉局からの資金提供と、S.D.プロクターへの自然科学研究評議会ディスカバリー助成金によって部分的に支援されました。

ビデオと原稿の両方で説明した実験動物でのすべての手順は、制度的動物実験委員会によって承認され、動物ケアのカナダ人評議会によって設定されたガイドラインに従いました。 1.外科麻酔や新生児ブタの外科的準備<ol><li>アザペロン（0.3ミリグラム/キログラム）、塩酸ケタミン（10mg / kgの）、デクスメデトミジン（15μgの/キログラム）：分離控室では、25キロの含有筋肉内鎮静麻酔薬カクテルと首の付け根の近くに豚をpremedicate。 注：強化された術中疼痛管理のためのプレ麻酔薬カクテルにブプレノルフィン（0.005から0.02ミリグラム/キログラム）を追加します。 </li><li>フェイスマスクを使用して（500ミリリットル、千ミリリットル/分のO 2で四から五パーセントイソフルラン）吸入イソフルラン吸入ガスと豚を麻酔。獣医の喉頭スコープ（17〜25センチメートル長いストレート刃）を使用して、声帯を視覚化し、ボーカルへの局所10％のリドカインの去勢を適用コー​​ド。リドカインスプレーは声帯の痙攣および気道閉塞の可能性を低減するために、挿管に30-60秒前に声帯に連絡することを許可します。 </li><li>声帯の間（5.0〜7.0ミリメートル内径（ID））カフ付き気管内チューブを渡すことで豚を挿管し、イソフルランガスで麻酔を維持（1,000〜2,000 mlの0.5から2.0パーセントイソフルラン/分O 2）が閉じを使用して、手術全体の麻酔システムを再呼吸回路。顎トーンによって麻酔のレベル、およびペダルと眼瞼反射応答の両方を評価します。期限切れの麻酔ガスを掃気し、手術室の外に排出されます。 </li><li> 70％イソプロピルアルコールリンスに続いて2.0％クロルヘキシジン手術用スクラブ溶液で耳の外面を清掃してください。手術中に、20 G静脈カテーテルを用いて、静脈内輸液（5〜10ミリリットル/ kg /時間乳酸リンゲル液）を提供するために、耳静脈をカテーテルを挿入。メッドの舌の粘膜表面にパルスオキシメータを確保iCalのテープは、心拍数および末梢血酸素飽和度（SpO 2）を監視します。 </li><li>背臥位で麻酔をかけた豚を置き、恥骨の腹側面に半ば胸部尾側から腹側腹部を剃ります。 2交互に2.0％クロルヘキシジン手術用スクラブし、滅菌水洗浄でこのエリアを清掃してください。 </li><li>手術室に麻酔豚を移し、70％イソプロピルアルコールリンスの最終的な手術用スクラブを適用し、それを乾燥させ、その後、動物を羽織ります。 </li><li>体温を監視するために、直腸内に、直腸温度プローブ約2〜4センチ挿入します。外科手術中に正常な体温（38-40°C）を維持するために、水の循環加熱パッド上豚を置きます。 </li><li>腹部の周りの上層象限パターンに配置された4タオルのカーテンで豚を羽織ります。約5℃、腹部の外側面に沿って第2のドレープ、剣状突起全体で最初のドレープを配置腹部正中線にメートルの横。骨盤の回腸稜と第四ドレープ全体で三ドレープを配置し、（反対側が）二ドレープのように、腹部の外側面腹部正中線に横約5cmに沿って配置されています。 </li><li>根底にあるタオルドレープの上に、手術部位へのアクセスを可能にするスリット開口と、大きなテーブルのドレープを置き、豚、全体の手術台をカバーしています。最終的なドレープは、大きなテーブルのドレープの上に配置された使い捨てsteriドレープです。 </li></ol>腸リンパ本幹の2腹部手術やカテーテル<ol><li>根本的な腹筋を公開するために手術用メスの刃で20センチの皮膚切開を行います。壁側腹膜を露出させるためにモノポーラ電気メス（20ワットの設定）で腹部の筋肉層を切開。腹部内臓やリンパ管にアクセスするためにMetzenbaumのはさみで頭頂腹膜20cmの直線セグメントを開きます。 </li><li&gt;手術中は開いた腹腔を維持するために外科的切開の頭蓋側面でリトラクタを配置します。 </li><li>全体の外科的処置のための暖かい（37°C）滅菌生理食塩水ですべての組織を湿ら。静かに腹腔から結腸、盲腸、回腸および空腸を含む小腸の大部分を持ち上げ、上腹部、肝臓やリンパ管にアクセスするには、豚の左脇腹にそれを体外に出します。優しく腸をサポートするためにスリングを形成するために追加のタオルドレープとの位置に体外に腸を固定します。 </li><li>リンパ管の位置を確認し、それが約4センチメートル右腎静脈、6センチメートル尾-medial-大静脈職長の腹側および膵臓22,36,37の近くに右肝葉の内臓の側面の下の頭蓋-内側を産みます。門脈36,37の右腹側セグメントに並置された半透明の構造としてリンパ管を識別します。 </li><li>リンパヴェスを切り離しエル優しくQチップアプリケーターで付着した組織を離れてからかうことにより、周囲の筋膜から。容器の外側の側面は、周囲の組織から分離されると、微鈍鉗子をひっくり返して容器の下の「トンネル」の開口部を作成します。 </li><li>細かいピンセットでリンパ管の下に3 2-0絹縫合糸を渡します。 、閉塞拡張とリンパで容器を埋めるために最初に最も尾側の縫合糸を結紮。意図的にリンパ管にカテーテルを固定する（4センチ）比較的長いこの縫合糸の端を残します。他の二つの縫合糸を配置し、互いから1.0センチメートルを分離し、保護された尾縫合糸に頭蓋約1.0〜1.5センチメートルです。血管内にカテーテルを速く確保を可能にするために &#39;一緩い結紮ネクタイ&#39;でこれら2本の縫合糸を残します。 注：（2頭蓋縫合の）ほとんどの尾側結紮縫合糸と中間縫合糸の間に位置するリンパ管のセグメントは、カテーテル挿入のためのサイトです。 suコマンドについて必要に応じて、トゥーレ材料は、2-0ポリグラクチン縫合糸は、2-0絹縫合糸の代わりにすることができます。 </li><li>アイリスハサミで容器に小さな穴をカットし、微鈍鉗子で血管を拡張。容器内に傾斜した端部に特殊なカテーテルチューブ（4.06外径（OD）X 2.31ミリメートルのID）の約1.0〜1.5センチメートルを挿入し、所定の位置にカテーテルを固定するための2つの頭蓋縫合糸を結びます。容器にカテーテルを固定するために尾縫合糸の長い縫合糸の端を使用してください。 </li><li>温かい生理食塩水のおびただしい量の体外に腸を洗浄し、静かに腸の正しい解剖学的な位置決めを確実に腹腔に戻します。 </li><li>左ミッド脇腹（腹側paralumbar窩5〜10センチメートル）でカテーテルを体外に出します。メスで皮膚切開を行い、カテーテルの具象化するための開口部を作成するために、皮膚表面に腹腔からトロカールを通過します。腹部CAVからカテーテルを体外に出すために、大きなケリー鉗子を使用しますトロカールの貫通開口性。 </li><li>ラウンド（テーパー）針で2-0ポリグラクチン縫合糸の単純連続縫合パターンで壁側腹膜を閉じます。ラウンド針に2-0ポリグラクチン縫合糸でシンプルな結節縫合パターンで腹部の筋肉層を閉じます。 </li><li>切断針に2-0ポリグラクチン縫合糸で表皮下のパターンで皮膚を閉じます。巾着縫合パターンおよび切断針上の2-0ナイロン縫合糸で皮膚に体外カテーテルを固定します。 </li><li>まだその配置を容易にし、リカバリ時に豚のストレスを軽減するために麻酔しながら、豚に特化したジャケットを置きます。 </li></ol> 3.手術後の回復とリンパコレクション<ol><li>前吸入麻酔の中止へ約10分で、即時術後の鎮痛を提供するために、筋肉内にbupenorphine（0.1ミリグラム/キログラム）を管理。 bupenorphineを続行（0.1ミリグラム/キログラム）24〜48時間を維持するために12時間ごとに術後の鎮痛。 </li><li>手術後の合併症のために7日間の期間ごとに8-12時間を豚を監視します。 </li><li>エチレンジアミン四酢酸（EDTA）でコーティングし、抗生物質を補充した500 mlのポリプロピレン製の洗瓶でリンパ液を集めます。ペニシリン（6000 IU）、ストレプトマイシン（6 mg）をアムホテリシンB（3 mg）を7日間ごとに12時間。 </li></ol>リポタンパク質ApoB48、トリグリセリド、コレステロールと総タンパクの4定量リンパから収集<ol><li> 4℃で5分間、1800×gでリンパサンプルを遠心します。上清を収集し、トリグリセリド、コレステロールおよび総タンパク質の定量化のためにそれを使用しています。 </li><li>希釈していないサンプル、サンプル希釈1：20蒸留水と1希釈した最終サンプル：蒸留水で100 3サンプルに上清を分割します。 </li><li>市販のキットを用いて、コレステロールレベルを測定するために希釈されていない上澄みを使用してください。 </li><li> 1時20分と午前1時10分を使用します0は、それぞれ、市販のキットおよびビシンコニン酸総タンパク質アッセイを用いてトリグリセリドおよび総タンパク質レベルを測定するため、サンプルを希釈しました。 </li></ol>リンパ38から収集したリポタンパク質ApoB48 5.定量化、 <ol><li>適応免疫ウエスタンブロッティング法38でリポタンパクApoB48の濃度を決定します。 3〜8％トリス - 酢酸塩、ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE）で区切り、総リンパ。 </li><li>ポリフッ化ビニリデン膜（0.45μmの）に分離したタンパク質を移し、アポB（1：4000）にヤギポリクローナル抗体でそれらをインキュベートし、その後、抗ヤギ二次抗体とそれをバインドします。 </li><li>精製されたげっ歯類ApoB48タンパク質標準との線形濃度測定の比較を用い​​て、化学発光とリポ蛋白ApoB48を定量化します。 </li></ol>

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</ol>

著者らは開示するものは何もない。

腸リンパを収集する様々な実験動物モデルにおいて、脂質8-12に関与する機構と薬物13-15代謝、癌転移16,17、細胞輸送及び免疫機能18-26を調査するための優れた方法です。実際に、長期間にわたって、末梢（求心性）と中央（遠心性と大きなトランク船）リンパを大量に収穫する能力は、免疫調節剤を18-22と課題以下の細胞集団で発生する時間的な変化を理解するために特に重要でした、25,26。同様に、中央のリンパのコレクションは、リポタンパク質代謝8-12に関連するプロセスの輪郭を描くのに役立つてきました。リンパコレクションのユーティリティは、カテーテル処置の成功とリンパ血管内カテーテルの開通性に依存しています。 に関与する主要なリンパ管のカテーテル法大型動物における腸管リンパドレナージは、一般に、3つの外科的アプローチのいずれかを使用しています。第一の技術は、一般的な頸静脈（牛胸管）5を覆う胸管を入力するために頭蓋...

リンパ系は、生理の​​understudied領域です。リンパカテーテル法の前臨床モデルは、異なる動物種1-8で発生し、脂質8-12および薬物代謝13-15、実験的治療17と癌転移16に関与するメカニズムを調査するために製薬産業や研究機関によって使用され、免疫機能18 -26。この研究は、リポタンパク質代謝の成分を測定するために、国内のブタモデルにおける腸管リンパトランクカテーテルの使用を探ります。リポタンパク質代謝を産生および分泌カイロミクロンの、ならびに関連する脂質および総蛋白質の変化に関与しています。一般的に使用される齧歯類モデルと人間の間のような脂質代謝の主要な違いがあるように、これらは私を、脂質を研究するためのより多くの比較可能な情報を提供することができる腸のリンパ節を収集するために豚のモデルを採用し、重要な考慮すべき事項であります人々 27-31でtabolism。 いくつかの外科技術は、大規模な動物種における腸管リンパを収集するために使用されている：頭蓋肩のアプローチ（ すなわち、胸管カテーテル法）5、横上部脇腹のアプローチ32-34、および腹側正中線またはparamedianアプローチ22,35。このビデオでは、具体的に腸のリンパトランクのカテーテル挿入のための腹側正中外科的アプローチを使用して、ブタにおいて外科的手順を説明します。慎重な手術法は、長期間にわたって大リンパの量とその成分を収集するためにリンパカテーテル法のこの方法が可能になります。 この技術は、様々な生理学的機能を調べる多くの分野への応用の無数を開きます。アプリケーションが含まれる可能性があり、これらに限定されないが、全身リポタンパク質と脂質代謝、免疫学、腫瘍の起源及び転移、腸機能、およびdevelopm耳鼻咽喉科や腸の炎症性疾患の進行。

<table><tbody><tr><td>ミラー喉頭鏡ブレード</td><td>ウェルチ アリン</td><td>68044</td><td>182 mm 長さ</td></tr><tr><td>サージベット アドバイザー: バイタル サイン モニター</td><td>サージ</td><td>V9203</td><td></td></tr><tr><td>直腸温度プローブ</td><td>サージ</td><td>V3417</td><td></td></tr><tr><td>モノポーラ電気手術発生器</td><td>バレー ラボ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>メッツェンバウム はさみ</td><td>ファイン サイエンス</td><td>14518-18</td><td></td></tr><tr><td>タフィレトラ</td>クタ <td>スティーブンス</td><td>162-11-676</td><td></td></tr><tr><td>蚊鉗子</td><td>スティーブンス</td><td>162-7-10</td><td></td></tr><tr><td>ケリー鉗子湾曲 (14cm)</td><td>スティーブンス</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>アリス組織鉗子</td><td>スティーブンス</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>鉗子ドレッシング - アイ (10.2cm)</td><td>スティーブンス</td><td>162-18-780</td><td></td></tr><tr><td>鉗子ドレッシング - アディソン (12.1cm)</td><td>スティーブンス</td><td>162-17-2510</td><td></td></tr><tr><td>ニードルドライバー</td><td>スティーブンス</td><td>162-V98-42</td><td></td></tr><tr><td>アイリスはさみ</td><td>ファインサイエンス</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>循環ウォーターポンプ</td><td>Jorvet</td><td>J-783X</td><td></td></tr><tr><td>Maxitherm-ビニールブランケット</td><td>Jorvet</td><td>J-784C</td><td></td></tr><tr><td>Q チップアプリケーター</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>22-037-960</td><td></td></tr><tr><td>カテーテル法&nbsp;チューブ (4.06 OD X 2.31 ID)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>MRE-160</td><td>マイクロレネタン注入チューブ</td></tr><tr><td>2-0 シルク縫合</td>糸 <td>Ethicon</td><td>LA556</td><td></td></tr><tr><td>2-0 ポリグラクチン縫合</td>糸 <td>Ethicon</td><td>J443H</td><td>2-0 vicryl</td></tr><tr><td>大型動物ジャケット</td><td>Lomir Biomedical Inc.</td><td>SSJ2YC</td><td></td></tr><tr><td>ポリプロピレンウォッシュボトルフィ</td><td>ッシャーサイエンティフィック</td><td>03-409-22C</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>D4333</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>60-00-4</td><td></td></tr>アム<tr><td>ホテリシンB</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>A2411</td><td></td></tr>ア<tr><td>ザペロン</td><td>エランコアニマルヘルス</td><td></td><td>ストレニル</td></tr><tr><td>デクスメデトミジン塩酸塩</td><td>Zoetis</td><td>6295</td><td>デキスドマイトール</td></tr><tr><td>イソフルラン</td><td>アボット アニマル&nbsp;Health</td><td>05260-5</td><td>IsoFlo</td></tr><tr><td>Ketamine hydrochloride</td><td>Zoetis</td><td>2626</td><td>Ketaset</td></tr><tr><td>Bupenorphine hydrochloride</td><td>Champion Alstoe Animal Health</td><td></td><td>DIN:02347510</td></tr><tr><td>6 mm 気管内チューブ</td><td>Jorvet</td><td>J-165d</td><td></td></tr><tr><td>10% リドカイン</td> スプレー <td>アストラゼネカ</td><td></td><td>DIN:02003767</td></tr><tr><td>4 % クロルヘキシジン サージカルスクラブ</td><td>Partnar Animal Health</td><td>PCH-011</td><td>希釈:2.0%溶液</td></tr><tr><td>3M 外科用ステリドレープ</td><td>3M Health Care</td><td>1040</td><td></td></tr><tr><td>SDS page gel</td><td>Invitrogen</td><td>EA0375BOX</td><td>3-8 % 酢酸トリス</td></tr>ポリ<tr><td>ビニリデンフッ化物膜</td><td>ミリポア</td><td>IPVH00010</td><td>0.45 &mu;m孔径</td></tr><tr><td>ApoB抗体&nbsp;</td><td>EMD Millipore</td><td>AB742</td><td>1:4000希釈ロ</td></tr><tr><td>バ抗ヤギIgG-HRP</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>Sc-2304</td><td></td></tr><tr><td>ECL Prime Western Blotting Reagent</td><td>GE Healthcare LifeSciences</td><td>RPN2232&nbsp;&nbsp;&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>トリグリセリドキット</td><td>和光ピュアケミカル</td>ズ <td>998-40391/994-40491</td><td></td></tr><tr><td>総コレステロールキット</td><td>和光ピュアケミカルズ</td><td>439-17501</td><td></td></tr><tr><td>総タンパク質</td><td>&nbsp;ピアス&nbsp;</td><td>23225</td><td>ビシンコニン酸アッセイ</td></tr></tbody></table>

新生豚のリンパ節の腸リンパトランクやコレクションの長期カテーテル法

Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

新生児ブタの腸リンパ幹のカテーテル法は、大量の腸(中枢)遠心性リンパ液の長期収集を可能にする技術です。重要なことに、腸から中枢リンパ液を採取することで、研究者は脂質代謝、腸管炎症、がん転移に関連するメカニズムと脂質組成、および免疫機能と免疫監視に関与する細胞の両方を研究できます。腹側正中線外科的アプローチは、頭蓋腹部への優れた外科的露出を可能にし、膵臓と右肝葉の内臓面の下にある門脈の右腹側セグメントの近くにある腸リンパ幹血管への比較的容易なアクセスを可能にします。血管は細心の注意を払って解剖され、周囲の筋膜から解放され、その後縫合糸で拡張され、カテーテルが血管に挿入され、その後固定されます。カテーテルを外部に出し、7 日間で約 1 L/24 時間のリンパ液を採取します。この技術は、長期間にわたって大量の中枢リンパを採取することを可能にしますが、その成功は、慎重な外科的解剖、組織の取り扱い、および適切な外科的技術への細心の注意にかかっています。これは、リンパ管が簡単に裂け、外科的および実験的失敗につながる可能性があるため、若い動物の手術では特に重要です。このビデオは、腸管リンパの採取のための優れた手術技術を示しています。

<html>新生児の豚の腸リンパ本幹のリンパカテーテル法は、7日間にわたって中央リンパの約1 L / 24時間の収集を可能にします。この実験で収集さリンパは、脂質代謝、すなわち総リンパタンパク質、ApoB48リポタンパク質、トリグリセリド、総タンパク質、およびコレステロールの成分を含有していました。表1のハイライト3匹のブタのプールされたリンパサンプルからこれらの脂質成分の代表的な量。特に、リンパの流れと脂質成分は、インライン腸リンパ管のカテーテル法以下の他の研究者によって報告された中央のリンパの値を持つ（リンパ節は570±158から979±284ミリリットル/ 24時間25、360±120 MLL / 24時間に流れています1080 720ミリリットル/ 24時間26±;トリグリセリド687±110ミリグラム/ dLの9;コレステロール63.1±5.6ミリグラム/ dLの9）。リンパ血管内カテーテルの適切な配置を示します。 1 &quot;&gt;：&quot; =キープto...

私たちは、遠心性リンパ液から大量の脂質代謝成分を採取するために、新生児ブタの腸管リンパ幹をカテーテル挿入する外科的処置を提示します。

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal ...

リンパ管カテーテル挿入術は、脂質や薬物の代謝、がん転移、および免疫機能に関与するメカニズムを調査するための重要な手法であり、さまざまな動物モデルから大量のリンパ液を採取することで、研究者はこれらのプロセスを研究することが可能になります。本ビデオでは、腹側正中アプローチを用いて、新生子ブタの腸管リンパ幹にカテーテルを挿入するための外科的手順を詳細に解説します。すべての手順は、アルバータ大学の機関動物ケアおよび使用委員会によって承認されました。リンパ管にアクセスするため、腹腔を開いた。切開設定の電気焼灼器を用いて筋肉層を開いた。処置の間、腹壁を開いたまま保持するためにリトラクターを配置した。リンパ管の特定を容易にするため、主要な腹部臓器を確認します。小腸および結腸のリンパ管セグメントへのアクセスを向上させるため、これらを体の左側に外在させます。肝臓および門脈の右腹側セグメントを特定し、リンパ管の目印とします。新生仔豚のリンパ管は繊細で破れやすいため、綿棒や鈍的な器具を用いて細心の注意を払って剥離する必要があります。これが腸管のリンパ管です。現在、鈍的鉗子を用いてリンパ管の下に縫合糸を通しています。これで、リンパ管の下に3本の2-0シルク縫合糸が通された状態になります。最も尾側の縫合糸は、血管を拡張させ、カテーテルを血管に固定するために使用します。頭側の縫合糸は、血管内にカテーテルを固定するために使用します。リンパ管に小さな切開を加え、鈍的鉗子で管腔を拡張させます。その後、カテーテルを管内に挿入します。この操作は、リンパ管が破裂しないよう慎重に行う必要があります。カテーテルが確実に固定されるように、最も頭側の縫合線を越えて挿入する必要があります。3本の2-0シルク縫合糸を用いて、カテーテルをリンパ管に固定します。重要な点として、まず2本の頭側縫合糸でカテーテルを血管に固定し、その後、最も尾側の縫合糸でカテーテルを係留させることで安定性を高めます。腹腔を閉じる前に、リンパの流れが良好であることを確認することが重要です。カテーテルはブタの左側腹部中央に外在化させます。大きな鉗子を用いて、カテーテルを腹腔内からブタの側面の体表へ引き出します。筋肉層は、テーパー針を用いた2-0 vicryl縫合糸により、単純結節縫合で閉鎖します。皮膚は、カッティング針を用いた2-0 vicryl縫合糸により、皮下連続縫合で閉鎖します。カテーテルの出口の切開部において、カテーテルを皮膚に通し、カッティング針を用いた2-0 nylon縫合糸により、巾着縫合で閉鎖します。この密閉により、カテーテルに沿って内側に遡上する感染を防ぐことができます。リンパ回収ボトルを保持するジャケットは、豚がまだ麻酔下にある間に装着します。カテーテルを回収ボトルに挿入し、豚を覚醒させる前にリンパの流れが良好であることを確認します。豚は処置後良好に回復し、実験期間を通じて優れたリンパ流が維持されました。表は、リンパ管から採取したリンパの成分を示しています。これらの成分には、Apolipoprotein B48、トリグリセリド、およびコレステロールが含まれます。ウェスタンブロットの結果から、採取したリンパ試料中にアポリポタンパク質B48と、少量の血漿由来アポリポタンパク質B100の両方が存在していることがわかります。若齢豚におけるリンパ管カニューレ挿入は、リンパ管が非常に繊細で脆いため技術的に困難な場合がありますが、本ビデオでは、適切かつ慎重な外科的手技を用いることで、腸管リンパを採取するための優れたモデルを研究者に提供できることを実証しています。

long-term-catheterization-intestinal-lymph-trunk-collection-lymph

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

我々は羊の回腸内に"腸のループを"catheterizingのための新しい手術方法を説明します。一度動物は手術から回復し、抗生物質と鎮痛薬をクリアして、複数の治療は、カテーテルを介してループに直接堆積することができます。...

反芻動物の腸ループのカテーテル

このビデオは、ラットの腸間膜リンパ管をカニューレ挿入する技術を示しています。この方法により、リンパ液中に存在する全量の成分に直接アクセスできます。...

リンパ液を採取するためのラットモデルにおける腸間膜リンパ管カニューレ挿入

ここでは、ラットの腸間膜リンパ管をカニューレ挿入する技術について説明し、これにより、腸管送達後のリンパ系を介した脂質および薬物輸送の定量化を可能にします。この技術は、腸間膜リンパの濃度および/または体液、免疫細胞、ペプチド、タンパク質、親油性分子の輸送を評価するために適応させることができます。...

腸間膜リンパダクトカニューレを挿入ラットモデル：腸のリンパ医薬品輸送の評価への応用

ここでは、経胸管リンパ球を採取し、ラット・ペイアーのパッチ中の腸管リンパ球の移動をタイムラプス写真を用いて3時間観察するための正確な方法について述べた。この技術は、炎症性条件下でリンパ球の動態がどのように影響を受けるかを明らかにすることができる。...

ラット・ペイアーのパッチにおけるリンパ球ダイナミクスの顕微鏡観察

本プロトコールは、マウスにおける十二指腸内栄養注入に応答して流れる腸リンパを単離するための詳細な外科プロトコールを記載する。これにより、様々な実験栄養素に応答した総腸脂質吸収およびカイロミクロン合成および分泌の生理学的決定が可能になる。...

食事脂質吸収とカイロミクロン分泌の in vivo 動態を定量化するためのマウスにおける流れる腸間膜リンパの分離

豚の長期血管アクセスのためのトンネル型ヒックマンカテーテルの挿入と維持のための信頼性と再現性のあるアプローチが説明されています。中心静脈カテーテルを留置することで、覚醒した動物からの全血を毎日採取し、薬物や水分を静脈内投与することができます。...

ヒックマンカテーテルによる前臨床豚モデルにおける長期血管アクセスのための使用

このプロトコルは、気管支肺異形成の分子トリガーの理解を促進し、治療翻訳を強化するために、不十分な界面活性剤量、高酸素、高圧換気、炎症など、早産肺で発生する初期の病原性事象をモデル化する急性肺損傷の新生児子豚モデルの開発について説明しています。...

早産児肺の初期環境を再現した新生児子豚急性肺損傷モデルの開発

この実験プロトコルは、頭部からのリンパ管排出を直接的かつ定量的に評価できる深部頸管リンパ管カニューレッドモデルを示しています。このモデルは、中枢神経系(CNS)由来の溶質、免疫細胞集団、そしてCNS標的治療薬の分布とクリアランスの詳細な解析を促進します。...

頭部および脳からのリンパ輸送を評価する頸部リンパ管カニューレドラットモデル

この実験プロトコルは、肝リンパ管カニューレラットモデルを記述し、肝リンパおよび血管排出の直接的かつ定量的な評価を可能にします。このモデルは肝リンパと全身血を同時にサンプリングし、肝輸送、代謝、免疫シグナル伝達を調査し、薬物薬理動態学や肝臓特異的生物学の研究を支援します。...

リンパおよび血液血管の同時サンプリングによる肝輸送経路評価のための包括的なラットモデル

蛍光イメージングは​​、外科腫瘍学における画像誘導手術のための有望な革新的なモダリティである。このビデオでは、婦人科oncologicyで展示として、蛍光イメージングを用いたセンチネルリンパ節の検出のための技術的な手順を説明します。蛍光剤と一緒にマルチスペクトル蛍光カメラシステム、インドシアニングリーン、適用されます。...

婦人科腫瘍におけるセンチネルリンパ節の術中検出のためのマルチスペクトルのリアルタイム蛍光イメージング

学ぶ新生豚の腸リンパ管カテーテル法によるリンパ採取技術。脂質代謝や薬物動態の研究に有用なこの手術法は、腹正中アプローチでリンパ管にカテーテルを挿入し、長期的なリンパ採取を可能にします。

新生豚のリンパ節の腸リンパトランクやコレクションの長期カテーテル法

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