Name: ケモスタットを用いた微生物の適応研究所進化のための手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-20T08:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: 学ぶケモスタット培養による大腸菌の適応的実験室進化法。制御された条件下で微生物を進化させ、ストレス応答と代謝工学への応用を探索する。ゲノム解析で適応メカニズムを解明し、微生物学の研究に貢献する。

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この研究は、韓国の科学・ICT・未来計画省(インテリジェント合成生物学センタープログラム2012M3A6A8054887)の財政的支援を受けました。P. Kimは、韓国カトリック大学のフェローシップ(2015年)の支援を受けました。

1.機器の準備<ol><li>入口ポートと出口ポートを含むケモスタットジャー（150〜250 ml）または三角フラスコ（250ml）に取得します。シリコンチューブ10〜100ミリリットル/ hrの流量を可能にするとポートを接続します。任意に、エアベント、吹出口、および温度制御された水の入口および出口ポートを使用します。 </li><li>攪拌および温度制御を提供するケモスタットジャーに適した装置を得る（または回転振とう培養器を使用します）。 </li><li>新鮮な培地を提供し、文化を収集するために、2つの蠕動ポンプを取得します。 </li><li>媒体排出口と吸気口を含む貯蔵瓶（10〜20 L）を得ます。 </li><li>希釈率（; L / S 13チューブすなわち 、ID 0.8ミリメートル、流量範囲0.06〜36ミリリットル/分）に適したシリコンチューブを入手します。 </li></ol> 2.ミディアム調製と滅菌<ol><li>初期ミディアム<ol><li> 0.3グラムのグルコース0.08 gでNH 4を溶解Cl、0.05グラムのNaCl、0.75グラムのNa 2 HPO 4・2H 2 O、および0.3グラムのKH 2 PO 4 90 mlの蒸留水ケモスタットジャー中（DW）。 </li><li>クランプを使用してチューブと一緒にケモスタットジャーを封印。通気口を密閉しないでください。 </li><li> 121℃で15分間オートクレーブ中でケモスタットの瓶を滅菌します。滅菌後、室温でケモスタットjarファイルを格納します。 </li><li> 0.02 gでのMgSO 4・7H 2 O 0.01グラムのCaCl 2、及び10mlのDW（溶液A）中の0.1mgのチアミンを溶解します。 </li><li>シリンジおよび予め滅菌シリンジフィルター（0.45μmの細孔のフィルター）を使用してフィルタソリューションA。 </li><li> Aは、ケモスタットジャーにろ液溶液を加えます。 </li></ol></li><li>ストレスミディアム<ol><li> 30gのグルコース8 gでNH 4 Clで5 gでのNaCl 75 G 2のNa HPO 4・を溶解2H 2 O、30gのKH 2 PO 4、300gをコハク酸二ナトリウム六水和物（ 硫酸ナトリウム・コハク・6H &lt;サブ&gt; 2 O;貯留瓶で9.9 L DWで、この実験で使用したスト​​レッサー）。 </li><li>クランプを使用してチューブと一緒に貯留瓶を密封します。通気口を密閉しないでください。 </li><li> 121℃で15分間オートクレーブ内の貯留瓶を滅菌します。滅菌後、室温でjarファイルを格納します。 </li><li> 2 gでのMgSO 4・7H 2 O、1gのCaCl 2を、100mlのDW（溶液A）中の10 mgのチアミンを溶解します。 </li><li>シリンジおよび予め滅菌シリンジフィルター（0.45μmの孔径フィルタ）のフィルタ溶液A。 </li><li> Aが貯留瓶に濾液溶液を加えます。 </li><li>無菌的に貯留瓶に滅菌シリコンチューブを接続し、蠕動ポンプを取り付けます。 </li></ol></li><li>高ストレスミディアム<ol><li>セクション2.2のようにメディアを準備したが、ストレッサーの高い濃度で（ すなわち 、コハク酸適応3-5 G / L以上）。 注：このプロトコルは、ストレス番目への適応のためのものですATは、媒体を介して配信することができます。例えば、温度、攪拌、または照明などの物理的ストレス因子の場合には、栽培はそれに応じて設計する必要があります。 </li></ol></li></ol> 3.初期栽培<ol><li>野生型E.の単一コロニーを接種します初期の培地4mlを含有する15mLの試験管中で大腸菌 。 </li><li> 37℃で12時間および220 rpmで振盪インキュベーター中で試験管をインキュベートします。 </li><li>無菌的に転送ケモスタット瓶に前培養液の1ミリリットル。 </li><li> 6時間37℃で、通気（空気50ml /分）、撹拌（200rpm）しを提供する、ケモスタットの瓶をインキュベートします。 </li></ol> 4.ストレス適応<ol><li>無菌的ケモスタットジャーにポンプからシリコンチューブの端を接続します。 </li><li>出口ポンプ（10ミリリットル/時以上）を起動し、文化を集めます。 注意：文化は、通常、4-8時間の初期培養後、対数期にあるべきです。 </li><li> Chの出口管から培養物の光学密度（600 nm）をECK。 </li><li> （0.1時間-1の希釈率に対応した10ミリリットル/時）入口ポンプを起動します。 </li><li> 24時間毎にチューブコンセントから600nmでの培養物の光学密度を確認してください。 </li><li> 96時間（9.6倍の売上高）以上のためのケモスタットを操作します。光学濃度が安定している場合、高負荷培地を含有するリザーバーを交換します。光学濃度が0.2未満である場合には、6時間供給入口ポンプを停止させます。入口ポンプを再起動し、光学濃度が0.2以上であることを確認してください。 </li><li>徐々に高いストレッサー濃度を含有するリザーバーに変更することにより、ストレッサーの濃度を高めます。 </li><li>それはマイルストーンに到達するたびに適応文化のサンプルを取る（ 例えば 、100グラム/ Lのコハク酸ストレスに適応株）さらなるゲノム解析のために、と店。 </li><li>サンプル保存のために、滅菌した80％グリセロールsolutiで培養試料（0.5ミリリットル）を混ぜます（0.5ミリリットル）に、-80℃で保管してください。 注：微生物がALE処理中にストレッサーを分解する能力を取得した場合、発酵ジャーの中ストレッサー濃度は、新鮮な貯水池のものと同じではありません。 </li></ol>ストレスに適応した株の5シングルコロニーの分離<ol><li>同じストレッサーを含む寒天平板培地（1.6％寒天）を準備し、媒体の同一濃度で。 </li><li>ケモスタットからの出口文化（0.1 ml）をプレートし、16時間37℃でインキュベートします。 </li><li>滅菌爪楊枝を用いてプレートから単一コロニーを選択し、同じストレッサーを含む15ミリリットル試験管内およびケモスタットと同じ中濃度でそれらを接種し、6時間インキュベートします。 </li><li>転写培地50 mlを含む250 mlの三角フラスコに培養液1 mlです。収穫培養液0.5ミリリットル毎に1時間、および600nmでのODを測定します。適応straiの成長率を比較ストレッサー与えられた野生型株のものとn個。 </li></ol>

<ol><li>Rando, O. J., Verstrepen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Timescales+of+genetic+and+epigenetic+inheritance%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Timescales of genetic and epigenetic inheritance.</a> Cell. 128, 655-668 (2007).</li>
<li>Kim, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-term+differential+adaptation+to+anaerobic+stress+via+genomic+mutations+by+Escherichia+coli+strains+K-12+and+B+lacking+alcohol+dehydrogenase%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Short-term differential adaptation to anaerobic stress via genomic mutations by Escherichia coli strains K-12 and B lacking alcohol dehydrogenase.</a> Front Microbiol. 5, 476(2014).</li>
<li>Mendizabal, I., Keller, T. E., Zeng, J., Yi, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+and+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22Integr+Comp+Biol%22%5BJournal%5D)">Epigenetics and evolution.</a> Integr Comp Biol. 54, 31-42 (2014).</li>
<li>Lee, J. Y., Seo, J., Kim, E. S., Lee, H. S., Kim, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+evolution+of+Corynebacterium+glutamicum+resistant+to+oxidative+stress+and+its+global+gene+expression+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Lett%22%5BJournal%5D)">Adaptive evolution of Corynebacterium glutamicum resistant to oxidative stress and its global gene expression profiling.</a> Biotechnol Lett. 35, 709-717 (2013).</li>
<li>Lee, J. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Artificial+oxidative+stress-tolerant+Corynebacterium+glutamicum%5BTitle%5D)+AND+%22AMB+Express%22%5BJournal%5D)">Artificial oxidative stress-tolerant Corynebacterium glutamicum.</a> AMB Express. 4, 15(2014).</li>
<li>Narang, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+steady+states+of+microbial+growth+on+mixtures+of+substitutable+substrates+in+a+chemostat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Theor+Biol%22%5BJournal%5D)">The steady states of microbial growth on mixtures of substitutable substrates in a chemostat.</a> J Theor Biol. 190, 241-261 (1998).</li>
<li>Kwon, Y. D., Kim, S., Lee, S. Y., Kim, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+continuous+adaptation+of+Escherichia+coli+to+high+succinate+stress+and+transcriptome+analysis+of+the+tolerant+strain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biosci+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Long-term continuous adaptation of Escherichia coli to high succinate stress and transcriptome analysis of the tolerant strain.</a> J Biosci Bioeng. 111, 26-30 (2011).</li>
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<li>McKenna, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Genome+Analysis+Toolkit%3A+a+MapReduce+framework+for+analyzing+next-generation+DNA+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">The Genome Analysis Toolkit: a MapReduce framework for analyzing next-generation DNA sequencing data.</a> Genome Res. 20, 1297-1303 (2010).</li>
<li>Deatherage, D. E., Barrick, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+mutations+in+laboratory-evolved+microbes+from+next-generation+sequencing+data+using+breseq%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification of mutations in laboratory-evolved microbes from next-generation sequencing data using breseq.</a> Methods Mol Biol. 1151, 165-188 (2014).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

微生物は、それらの急速な成長率と遺伝的多様性のほとんどすべての環境に適応することが可能です。適応研究室の進化は、与えられた条件の下で有益な自然突然変異を保有する生物個体を選択する方法を提供している、設計条件の下で進化した微生物を可能にします。 ケモスタット法は、以下の理由により転送技術より人工的に駆動される進化を達成するために、より堅牢である：（a）定常環境 - 転写技術は、固体のまたは液体培地のいずれかでバッチ培養に基づいているため、細胞の環境は、バッチ中に変化します文化ケモスタットの環境ストレスが安定している一方で、 （b）はより大きな集団と連続選択 - ケモスタットのより大きな集団は、転送技術の小さい人口よりも多くの遺伝的多様性を提供します。 CHの連続選択emostat技術は、転送技術の断続的な選択よりも進化を達成するためのより高速な方法です。ケモスタット培養は、ALE手順の間に他の微生物によって汚染されないことが重要であり、無菌状態をケモスタット培養全体で必要とされます。 ALE手順は、酸化ストレス、浸透圧ストレス、および毒性産物のストレスなどのストレス要因の変化により変...

微生物が生存し、多様な環境に適応することができます。重度のストレスの下では、適応はランダムなゲノム変異とそれに続く正の選択1-3により有益な表現型の買収を経て発生する可能性があります。したがって、微生物細胞は、「適応進化」と呼ばれる最適な成長のために代謝または調節ネットワークを変更することにより、適合させることができます。このようなスーパーバグや堅牢な微生物株の発生の発生などの最近の重要な微生物の傾向は、非常に密接にストレスの多い条件下での適応進化に関連しています。定義された実験室条件の下で、我々は分子進化のメカニズムを研究、さらには様々なアプリケーションのための微生物の進化の方向を制御することができます。多細胞生物とは異なり、単細胞生物は、次のような理由から、適応実験室進化（ALE）に適しています：彼らは多くの人口を維持するため、すぐに再生成し、それはホーンを作成し、維持するのは簡単ですogeneous環境。 DNA配列決定技術と高スループット技術の最近の進歩と組み合わせることで、ALEは、全身規制の変更につながるゲノム変化を直接観察することができます。変異動態​​と人口の多様性も観測可能です。遺伝子工学戦略はALE株4,5の分析から決定することができます。 ケモスタット培養は定常状態の細胞を取得し、発酵工程6の生産性を増加させるために使用される方法です。新鮮な培地を加​​え、培養液は、工程（後者は、媒体とバイオマスを含む）中に回収されます。長期ケモスタット培養は、しかし、文化の定常状態の生産性を変化させ、培養物（ 図1a）の間に自然突然変異と選択の蓄積をもたらします。様々な選択圧（ストレス）下で、突然変異の蓄積が促進されます。長期的にストレスの緩やかな増加<html>ケモスタットは、コロニーの固体培地からの転送と、液体媒体からシリアル転送（繰り返しなど 、温度、pH、浸透圧、栄養飢餓、酸化、有毒な最終製品として、与えられたストレス因子に対して機能変異の連続選択を提供しますバッチ培養）は、研究者が進化した微生物（ 図1Bおよび1C）を取得することを可能にします。ケモスタット培養は、複雑な方法が必要ですが、多様性のプール（複製と集団サイズの数）は、コロニー転送とシリアル転送技術によって得られるものよりも高くなっています。個々の細胞への安定的なストレス暴露とケモスタット培養物（定常状態）の間、細胞状態の変化を減少させたバッチ培養ベースの技術と比較して、ALEの他の利点です。高コハク酸条件にさらされた大腸菌のストレス誘発ALEは、この記事で紹介されています。 ジル/ ftp_upload / 54446 / 54446fig1.jpg &quot;/&gt; 図1：適応実験室進化の方法 （A）ケモスタット;。 （B）シリアル転送。 （C）コロニー転送。トップ数字はALEのための方法の概念を示し、下部の図は、ALEの間に成長した細胞の数を示している。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54446/54446fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

<table><tbody><tr><td>ミニケモスタット発酵槽</td><td>Biotron Inc.</td><td>-</td><td>特注</td></tr><tr><td>シリコンチューブ</td>で製造 <td>Cole-Parmer</td><td>Masterflex L/S 13</td>チューブは、<td>希釈率や発酵ジャーのサイズによってサイズを変えることができます。</td></tr><tr><td>リザーバージャー</td><td>Bellco</td><td>Media Storage Bottle</td><td>20 L</td></tr><tr><td>化学薬品</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>-</td><td>試薬グレードの</td></tr><tr><td>グルコース</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5767</td><td>ACS 試薬</td></tr><tr><td>NH4Cl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9434</td><td>分子生物学用、細胞培養に適しています。99.5%</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>746398</td><td>ACS試薬、&ge;99%</td></tr><tr><td>Na2HPO4&middot;2H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>4272</td><td>98.5-101%</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>795488</td><td>ACS試薬、&ge;99%</td></tr><tr><td>MgSO4&middot;7H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>230391</td><td>ACS試薬、&ge;98%</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>793639</td><td>ACS試薬、&ge;96%</td></tr><tr><td>チアミン&ミッドドット;HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4625</td><td>試薬グレード、&ge;99%</td></tr><tr><td>Na2&middot;コハク酸&ミッドドット;6H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2378</td><td>ReagentPlus, &ge99パーセント</td></tr></tbody></table>

ケモスタットを用いた微生物の適応研究所進化のための手順

Procedure for Adaptive Laboratory Evolution of Microorganisms Using a Chemostat

自然の進化は、環境の変化や小さな集団間の選択などの遺伝的多様性を伴います。適応実験室進化(ALE)とは、制御された条件とストレッサーの下で生物を使用して進化が観察される実験状況を指します。それにより、生物は人為的に進化的な変化を強いられる。微生物は環境中のさまざまなストレッサーにさらされており、特定のストレス誘発性タンパク質を調節して生存の可能性を高めることができます。自然発生的な突然変異は、微生物のゲノムに変化をもたらし、生存の可能性に影響を与えます。ケモスタット培養への長期曝露は、自然突然変異の蓄積を引き起こし、最も適応性の高い株を優勢にします。コロニー移設法や逐次移入法と比較して、ケモスタット培養は細胞分裂の数が最も多く、したがって、多様な集団の数が最も多くなります。ALEのケモスタット培養には、より複雑な培養装置が必要ですが、手術が始まると手間がかかりません。適応株のゲノム解析とトランスクリプトームの比較解析は、ストレスを克服する突然変異にストレッサーがどのように寄与しているかについての進化の手がかりを提供します。本論文の目標は、制御された実験室条件下で微生物の進化を加速させることです。

高コハク酸のストレス適応のため、野生型E.大腸菌 W3110株は、D = 0.1時間-1 270日間（ 図2）でケモスタットで培養しました。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54446/54446fig2.jpg" /> 図2：Eの高コハク酸ストレス適応ケモスタット培養を使用して大腸菌 W3110。細い矢印は、ストレッサーの濃度が増加した時刻を示し、太い矢印は、培養物を保存した時刻を示しています。矢印の付いた数字は、ストレッサー、コハク酸二ナトリウム六水和物の濃度を示しています。 ALE中のバイオマスの変化とストレッサーの濃度が表現されます。この図は、Jから変更されましたBiosci。 Bioeng 7は、 <a href="https://www.jove.com...

ここでは、ケモスタット培養を使用した条件下での微生物の適応実験室進化を取得するためのプロトコルを提示します。また、進化した株のゲノム解析について説明します。

Natural evolution involves genetic diversity such as environmental change and a selection between small populations. Adaptive laboratory evolution (ALE) ...

この手順の全体的な目的は、微生物が実験室条件下で進化することを可能にすることです。この手法は、副腎機能の相関関係、ストレス応答、代謝工学、そしてもちろん進化といった、微生物学分野における重要な疑問への回答に役立ちます。この技術の主な利点は、特定の実験室条件下で、最も適応した後代を連続的に選択できることです。テキストプロトコルに従い、装置の準備、および初期培地、ストレス培地、高ストレス培地の作製から本手順を開始してください。初期培地 4 mL を含む 15 mL 試験管に、単一のコロニーまたは野生型 E.coli を接種します。この試験管を振盪インキュベーターに入れ、37 °C、220 rpm で 12 時間培養します。通気および攪拌を行いながら、ケモスタット瓶を37 °Cで6時間インキュベートします。インキュベーション後、ポンプからのシリコンチューブの端を、無菌的にケモスタット瓶に接続します。前培養液1 mLを無菌的にケモスタット瓶に移します。流出口ポンプを始動し、対数増殖期の培養液を回収します。流出チューブから培養液を採取し、600 nmにおける光学密度を確認します。その後、流入ポンプを始動します。24時間ごとに、流出口チューブから培養液を採取し、600 nmにおける光学密度を確認します。ケモスタットを96時間（完全置換9.6回分）運転させた後、リザーバーを高ストレス培地の最低濃度に交換します。リザーバーを高ストレス培地に交換すると、細胞にショックが与えられる場合があります。細胞密度が低すぎる場合は、細胞密度を回復させるために、高ストレス培地の供給をしばらく停止してください。吸光度が0.2未満の場合は、供給入口ポンプを6時間停止させます。その後、入口ポンプを再始動し、吸光度が0.2を超えていることを確認してください。より高濃度のストレス因子を含むリザーバーに段階的に変更することで、ストレス因子の濃度を徐々に上昇させます。適応培養物がストレス適応の節目に達するたびにサンプルを採取し、後のゲノム解析のために保存します。サンプルの保存には、0.5 milliliterの培養サンプルを滅菌済みの80%glycerol溶液0.5 millilitersと混合し、80 degrees celsiusで保存してください。培地と同じ濃度で同じストレス因子を含む1.6%アガープレート培地を調製します。ケモスタットからの流出培養液0.1 millilitersをプレートに播種し、37 degrees celsiusで16時間インキュベートします。インキュベート後、滅菌したピックを用いてプレートから単一コロニーを採取し、ケモスタットと同じストレス因子および培地濃度を含む15 milliliter試験管に接種します。6時間インキュベートする。培養液1 mLを、50 mLの培地を含む250 mLエルレンマイヤーフラスコに移す。1時間ごとに培養液0.5 mLを回収し、600 nmにおける光学密度を測定する。ストレス因子を加えた条件下で、適応株の増殖速度を野生型株と比較します。野生型E.coli株を、高コハク酸ストレス条件下で270日間、すなわち約930世代にわたって進化させました。コハク酸ストレスを高めるたびに、バイオマス濃度は一時的に低下し、その後回復しました。ここでは、高濃度のコハク酸ストレスに対して耐性を持つ変異株を用いたケモスタットの模式図を示しています。ストレス条件下では、ほとんどの野生型細胞が洗い流され、変異株がより増殖します。最終的に、変異株の系譜の個体群が増加します。2番目および3番目の変異が継続的に選択され、最終的にケモスタット内で優占します。この図は、適応株が高濃度のコハク酸ストレス条件下で遅延なく増殖したのに対し、野生型株はそうではなかったことを示しています。同様の戦略を、ストレス因子の種類を変化させたケモスタットを用いた適応的実験室進化に適用することが可能です。このビデオを視聴することで、指定された条件下で微生物を採取し、進化させる方法について十分に理解できるはずです。この手法を習得すれば、数ヶ月で完了させることができます。本手順を実施する際は、一度に過度なストレスを与えてケモスタット内の細胞を洗い流さないように注意し、毎日吸光度を確認することを忘れないでください。この手順に続き、どのような変異がストレス耐性の進化に寄与しているかといった追加の疑問に答えるために、ゲノム解析やトランスクリプトーム解析などの手法を実施することができます。

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Research

JoVE Journal

Genetics

遺伝学

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微生物微小液滴培養システムを用いた細菌の適応進化

出典: Jeong, H. ほかケモスタットを用いた微生物の適応的実験室進化の手順。 J. Vis.

単一コロニー選択によるストレス適応細菌の単離

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我々が開発し、低コストで容易に入手できる部品から構築ミニチュアケモスタットのフットプリントの小さい配列を検証されています。生理学的および実験的な進化の結果は、大きなボリュームケモスタットに類似していた。...

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微生物微小液滴培養システム(MMC)を用いた微生物の自動培養と適応進化

このプロトコルでは、毎日の転送と定期的な凍結を実行して 大腸菌 長期進化実験(LTEE)を維持する方法と、進化した細菌の適応度の改善を測定するための競合アッセイの実施方法について説明します。これらの手順は、研究者が独自の微生物進化実験を開始するためのテンプレートとして役立ちます。...

大腸菌を用いた長期進化実験における毎日の移動、集団のアーカイブ、および適応度の測定

ここでは、低コストでエネルギー効率の高いベンチトップサーモミキサーをインキュベーターとして利用し、好熱菌に適応するための実験的進化プロトコルを紹介します。この技術は、最適な成長温度が75°Cの古細菌である Sulfolobus...

生命の極限状態での適応:極限環境微生物アーキオンSulfolobus acidocaldariusによる実験的進化

私たちはミリ流体連続培養装置(MCCD)のプロトコルを提示します。これは、一定の低栄養素条件(数百ナノモル濃度まで)または時間的な栄養素変動を極短の時間スケールで培養することを可能にします。...

低栄養素および変動する栄養条件下での 大腸菌 研究のための連続培養ミリ流体装置

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ケモスタットを用いた微生物の適応研究所進化のための手順

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