Name: ホルモン多電極アレイを用いた脊椎動物の神経回路網関数の開発化合物の影響の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-26T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
Description: 学ぶ多電極アレイを用いたヒヨコ胚神経回路のネットワーク活動評価法。内分泌攪乱化学物質の発達神経毒性メカニズムを解明し、環境毒素の脳発達への影響を評価する技術です。

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本研究は、NSF (HBCU アップ研究開始賞、HRD 1401426 と EPSCoR EPS 0814251) と NIH (COBRE 1P20GM103653 01A1) によってサポートされます。K. s. は、デラウェア州 INBRE III 6404 から交わりによってサポートされます。

下記プロトコル (初期) の胚発生に伴う BPA 暴露の影響をテストが標準化されて、BPS、BPF、またはひよこの萌芽期ニューロンの他の EDC を使用変更する場合があります。
このプロトコルは、デラウェア州立大学の制度政策と鳥類胚の NIH のポリシーに従います。また、プロトコルは DSU の材料と化学物質安全性ガイドラインの確認で。
1. 素材のセットアップ
<ol><li>1 mM 原液 (10% のエタノールのミリリットル当たり 0.23 mg) を作るために 10% のエタノール (v/v) で BPA (m. w. 228.29) を解散します。Neurobasal 媒体でその後希釈液 (0.1 μ M、0.5 μ M、1 μ M、5 μ M、10 μ M) を行います。 注意: BPA は、環境の毒素および粉体を処理するときに注意が必要があります。</li>
	<li>37 ° C で市販の卓上卵のインキュベーターでニワトリの卵を孵化します。E7 胚のため 7 日間卵を孵化させなさい。</li>
	<li>3 に 4 h の 70% エタノールに浸漬して高さ定置滅菌 MEAs の必要な数を準備し、BSLII フードに滅菌水約 10 mL で 3 回すすぎ。 注: 電極は、8 x 8 のグリッドに配置された 64 のナノ多孔質白金電極を含みます。電極径が 30 μ m と電極間隔が 200 μ m。MEA の腐食につながる電極を殺菌のため変性エタノールを使用しないでください。</li>
	<li>(無菌状態を維持) にふた付け滅菌コンテナーの内部電極を配置し、テーブルの上のインキュベーターに移動します。55 ° C で少なくとも 6 時間焼くこの手順が適切な殺菌のため重要であり、温度は 60 ° C を超えないようにしてください。無菌性を維持し、さらに使用するまでストレージのための BSLII フードに Mea を含んでいる皿を移動します。 注: 我々 はプラスチック製のふたでオーブン安全ガラスのグラタン皿を使用し、表面は 70% のエタノールと乾燥のための BSLII フードの場所でそれを殺菌します。</li>
	<li>細胞外マトリックス ECM ソリューションの約数。4 ° C でバイアルを一晩解凍し、-20 ° C で 100 μ 因数を凍結 注: ECM は冷凍で出荷されています。ECM 準備ができるまで [コートに室温で温めましたら、重合、一度コートに不可能だと部屋の温度にしないくるべきだった。成長因子なし ECM は未知の要因のための追加効果を防ぐために好まれる。</li>
	<li>(デュモン #5 鉗子、カーブタイプ鉗子、ハサミ、春はさみ) すべての解剖器械を滅菌と自己シール材 70% エタノールを解剖皿のコーティングし郭清のフードで乾燥させます。</li>
</ol>2. ひよこ萌芽期ニューロン文化とネットワーク活動
<ol><li>めっきの日、バイアルを削除-20 ° C のフリーザーから ECM の 70% エタノール スプレーし、氷の場所します。BSLII フード内 300 μ L 冷たい neurobasal 培地を追加することによって 25% に希釈します。</li>
	<li>P200 を使用して pipetteman は、電極に触れるし、表面に薄い膜を残してすぐに削除するように注意して、MEA の中心に 25% の ECM の 100 μ L を追加します。MEA をカバーし、ニューロンをプレートに準備が整うまで CO2インキュベーター (37 ° C、5% CO2) に置きます。</li>
	<li>E7 卵 (胚は日 7、37 ° C で 7 日間培養) の外殻を 70% エタノールで滅菌します。冷滅菌ハンクのバランスの取れた塩のソリューション (HBSS) カルシウムなしを含む Sylgard 底解剖皿に胎児の首をはねます。目の周りカット、目玉を取り外します。鉗子・ デュモン #5 を使用して罰金して前脳とファイバーの蓋を公開する皮膚の外側の層を削除春はさみ腹側に切開を行います。皮をむくし、軟膜を慎重に削除します。もう一つのシャーレに脳を転送し、春ハサミで約 2 mm の小さな断片にそれをカットします。 注: が軟膜を除去した後、脳に接続されているすべての血管をしないでください。可能であればだが滅菌郭清のフードでは、解剖を行うことが好ましいがフード外郭清を実行すると、楽器と郭清範囲は徹底的に 70% のエタノールで滅菌されている限り、かなり良い結果を得た.</li>
	<li>転送滅菌ピペットを使用して、15 mL 遠心管に前脳の部分を収集し、遠心管の底に前脳シンクの部分をさせることの後できるだけ多くできるだけ HBSS の削除します。</li>
	<li>0.05 %1 mL を加えてトリプシン/EDTA (37 ° C に加温) 37 ° C で 15 分間インキュベートし、。</li>
	<li>パスツール ピペットを使用して、慎重に組織の部分を乱すことがなくトリプシンを削除し、1 mL neurobasal 媒体を追加します。底にティッシュ シンクの作品を聞かせて、媒体を取り外します。この洗浄をもう一度繰り返します。この手順は、トリプシン/EDTA を洗浄することです。</li>
	<li>Neurobasal 培地 2 mL を追加し、triturating を開始します。製粉は、滅菌ファイアーポリッシュ パスツール ピペットを取って渡すそれを介して組織数回優しくティッシュのないのより多くの部分を見るまで含まれます。繰り返しのパスの後に任意の部分が残っている場合、底に沈殿するがまま。 注: は、triturating - 場合は泡が形成、停止および吸引により削除しながら泡を避けてください。</li>
	<li>再浮遊細胞 1:10 neurobasal 媒体を希釈し、トリパン ブルー色素と診断を使用して実行可能なセルを数えます。トリパン ブルー溶液 0.5 mL 遠心管中の 50 μ L で希釈した細胞のミックス 50 μ。Coverslip 上に置いた後、血球に 10 μ L を追加し、明るい明確な細胞 (青色のセル死んでいるし、カウントすべきではない) を数えます。 注: 1 と 5 x 107セル/mL の間単一の E7 こま範囲から典型的な細胞の数。</li>
	<li>プレート、解離 ECM のセルは 2,200 セル/平方ミリメートルの密度で測定をコーティングします。これは、MEA 体制 MEA あたり約 130,000 セルにということを意味します。Neurobasal 培地 1 mL に、MEA のボリュームをもたらすと細胞接着や神経突起の伸展 (図 1) のために夜通し CO2インキュベーターで Mea を配置するを追加します。 注: さまざまな分野、電極数の測定、異なるセル密度が試みたこと - 一般的には、細胞密度が高い大きいネットワーク活動の結果、また短い住まれていた文化に 。</li>
	<li>次の日は、手順 1.1 処理 MEA に 1 mM の在庫から neurobasal 中 10 μ M の最終的な集中に BPA を追加します。対照 MEA、同じ量の 10% エタノール水溶液 (v/v) に追加します。</li>
	<li>ネットワーク活動が増加すると 7 日間の in vitro (7DIV)、その後、毎日まで 10 μ M BPA 一日おきを含む neurobasal 培地で過ごした交換媒体。 注: ネットワークの活動が大きくなる代謝活性を増加させるし、メディアの変更より頻繁にする必要があります。オレンジを回す媒体をてはいけないです。</li>
</ol>3. 神経ネットワークの活動の記録
<ol><li>取得の日、新鮮な neurobasal 培地で培養液を交換し、録音の前に 2 時間の最小値のための CO2インキュベーターに電極を返します。録音ソフトウェアを起動し、温度のアイコンをクリックして、MEA の温度を 37 ° C に設定 (補足図 3.1a-b)。 注: 録画めっきの 3 日目には早く始めることができますが、文化が生きている限り続けることができます。</li>
	<li>(左のウィンドウ パネルの [ストリーム) の下の「ミューズ」アイコンを右クリックして集録パラメーターを設定「追加処理」と「スパイク検出器」を選択し、ポップアップ ウィンドウで [ok] をクリックします。「スパイク検出器 (6 x STD)"ファイル名の下に表示されます (補足図 3.2a-b)。</li>
	<li>次スパイク検出器を右クリックして、「追加処理」と「バースト検出器」を選択し、ポップアップ ウィンドウで [ok] をクリックします。「バースト検出器」(ISI) はミューズのアイコンの下に表示されます (補足図 3.3a-b)。</li>
	<li>次にバースト検出器を右クリックして、「追加処理」と「神経統計コンパイラ」を選択ポップアップ ウィンドウで、[ファイル ヘッダー、よく統計情報を集計および同期が選択されていることを確認します。[Ok] を。「統計コンパイラ」が下に表示されます (補足図 3. 4a-b)。 注: これは適応的しきい値交差 (6 x STD フィルター)、5、平均発火率検出 10 スパイク数の最小 100 ms スパイク間隔を設定 20 ms で同期パラメーターとあたり最小 0.083333 スパイクで最小スパイク率 s。</li>
	<li>下部に時計のアイコンをクリックして 5 分 (300,000 ミリ秒) の録音時間の予約録画を設定します。これは、5.1 分ごとを記録し、5 分間記録設定] セクション内の情報を変更することによって実現されます。これはすぐに開始されます、一度実行されます (補足図 3.5)。</li>
	<li>MEA を移動する前に、MEA の温度が 37 ° C に達していることを確認します。インキュベーターから MEA を削除、記録ユニット上に配置し、MEA をロックします。ネットワーク アクティビティを予約録画セクションの開始レコードまたは「ファイルの再生」ウィンドウでレコードのアイコンをクリックしてして録音を開始します。通常、5 分 (300,000 ミリ秒) の録音時間は最大 10 分間のより長い録音を得ることができるが、十分です。</li>
	<li>録音後、MEA をインキュベーターに戻ります。 注: する必要があります注意無菌性を維持し、MEA はインキュベーター外時間を最小限に抑えます。</li>
</ol>4. データ解析
<ol><li>生データの分析はオフライン記録ソフトウェアを使用して行うことができます。ファイルのプルダウン メニューをクリックし、録音を開きます。分析する生データ ファイルを選択します。必要なスパイキング パラメーターをキャプチャする生録音を再生します。</li>
	<li>スパイクの平均数を取得し、スパイク検出器モジュールを使用して、同期のインデックスを取得するため神経統計コンパイラ モジュールを使います。</li>
	<li>スパイク検出器、バースト検出器と統計コンパイラ モジュール (セクション 3) 前に、をロードします。</li>
	<li>スパイク検出器、バースト検出器と統計コンパイラ モジュール ウィンドウ内にあるプルダウン メニューからそれぞれスパイク、ネットワーク バースト リスト、および高度な指標を選択します。</li>
	<li>指示されたフォルダーで .csv ファイルを作成するデータ ファイルの録音を開始するレコードをクリックします。スパイク パラメーター スパイクおよび同調のインデックスの合計数は、.csv ファイルに記録されます。 メモ: プロセッサ時間と計算資源を消費する可能性がありますこれと、raw データを記録しながら、リアルタイム解析は推奨されません。</li>
</ol>

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</ol>

著者は、彼らは競争の興味があることを宣言します。

急速な成長の胚など開発フェーズは、BPA を含む様々 な内分泌かく乱化合物の有害な影響を特に受けやすい。体外の脊椎動物の神経ネットワーク モデルの BPA 暴露の影響を調べるため詳細なプロトコルを提供します。BPA を開発神経回路網 (図 2の b) の同期のインデックスと同様に、スパイク率下げることがこのプロトコルを使用して、設立
我々 の方法論は初期胚の BPA 暴露の研究に設計され、他の内分泌かく乱化学物質の効果を研究に簡単に合わせることができます。ひよこから神経胚の文化は、ラットやマウスなど他の脊椎動物モデルに比べて確立する比較的簡単です。また、別の動物室の必要はありません-実験室ベンチに単純なインキュベーターはこれらの試金を遂行するのに十分な。EDC は、BPA のネットワーク活動に及ぼす影響を評価するため多電極システム (MEA) の使用について述べる。ここで説明されているプロトコルは、他のシステムに適用できます。このプロトコルの重要な側面は、不妊のメンテナンスです。これは無菌条件下で胚の解剖が含まれています-70% エタノールと滅菌のハンクのバランスの取れた塩溶液の使用楽器を殺菌で十分です。週間の期間にわたってデータが収集される、電極の滅菌処理を維持するために重要です。一度確立された神経文化が培養する長期 - 最大 3ヶ月-、内分泌かく乱化学物質と神経ネットワークの他の化合物への長期露出を調べる場合に役立ちます。このプロトコルの別の重要な側面は、郭清からめっきまでの時間です。最適な時間は 30 分、トリプシンとティッシュの孵化を含みます。長い所要時間、細胞の予後。
ここで任意の化学的または行動と神経機能に影響を与える薬剤の評価に適用できる基本的なプロトコルについて述べる。ここでは、我々 は 2,200 mm2あたりのセル密度を使用しています。ただし、これは変更することができます、他の細胞の密度を使用できます。一般的には、細胞密度の増加増加するネットワークの活動 - 短い時間でより多くのスパイクがわかりました。メソッドは、説明、評価ネットワーク活動に及ぼす化学薬品に非常に役立ちますが、制限があります。メソッドの最大の制限の 1 つはこれらの培養される 2 次元は脊椎動物の脳の三次元のアーキテクチャを反映していない可能性があります。これは、スライスの録音を使用して解決できます。別の方法としてはによって、ニワトリ胚に治療法を適用する卵15の広範な最後のカットの小さいウィンドウの治療レジメンの終わりに脳を解剖、vibratome の厚いセクションの MEA の上に置くネットワーク アクティビティの記録です。
私達のプロトコルはネットワーク活動の発達に及ぼす内分泌かく乱化学物質の試験を有効に、これらの化学物質の影響の機構基礎の調査を提供しています重要です。

4, 4 '-イソプロピリデンジフェノールと呼ばれる、ビスフェノール A や抗酸化添加剤、BPA、さまざまなポリカーボネートで発見され感熱紙に至るエポキシ樹脂製品、Cd、および粉砕証拠ガラス内側にコーティング飲料缶。ビスフェノール A はエストロゲン1を模倣する内分泌撹乱剤であること知られているが、最後の 10-15 年間で毎日カジュアルな BPA 暴露による副作用に関する研究主出てきた。でも低レベルの BPA 暴露の影響は母親2,3の暴露により胚発生時など初期の発育期間の最も深遠です。子宮内への露出女性の胚の内分泌撹乱化学物質は、乳房がん4,5に腟からの増加の疾患感受性にリンクされています。動物の研究は、BPA への暴露は、非定型の脳の構造と機能異常動作6で明らかに実証しています。結果として、ヨーロッパと北アメリカでは、FDA を含む、最も規制機関で乳児の哺乳瓶で BPA の使用を禁止されています。規制に準拠するため、多くのメーカーは、4, 4'-sulfonyldiphenol またはビスフェノール S (BPS) に切り替えています。BPA と BPS、構造類似物と最近のレポートがエストロゲン転写7BPS の対等な効力を示した、という事実に基づく BPA を基準にこの化合物の毒性を検討することが重要です。
ここで私たちは脊椎動物モデル、ニワトリ胚を用いたニューロン回路網の BPA (と他の内分泌かく乱化学物質) の効果をテストするためのプロトコルについて説明します。体外培養ニューロンのシナプスを形成し、活動電位 (スパイクとも呼ばれる) を生成します。これらの文化のスパイクの活動は、多電極アレイ (MEA) システムを使用して記録できます。スパイクは、互いの 5 ms 内で発生したときに同期すると見なされます。最終的に同期初期のランダムな発火活動は神経ネットワーク8,9の開発の重要な機能です。さまざまなメソッドを使用して同期を測定ことができるし、いくつかのアルゴリズムは、文学9,,1011で説明。私たちの分析は、Paiva、同僚12は MEA の集録システムを駆動する録音ソフトウェア、統合によって開発されたアルゴリズムを使用します。鶏胚ニューロンの堅牢なスパイキング アクティビティは、ニューラル ネットワーク活動13に BPA の影響を研究するためのプロトタイプを提供します。スパイク活動を記録する多電極アレイを使用して、BPA 暴露が神経細胞のスパイク同期の9,14の開発を禁じることを見ました。ここでは、ニワトリ胚培養神経スパイク同期の開発に関する代表的な結果とともに文化のニワトリ胚ニューロンの BPA 暴露を勉強するため詳細な方法論を提供します。

<table><tbody><tr><td>#5 foreceps</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11251-10</td><td></td></tr><tr><td>アクシオン ミューズ MEA</td><td>アクシオン バイオシステムズ</td><td>M64-GL1-30Pt200</td><td>原稿で MEA システムと呼ばれます</td></tr><tr><td>アク</td><td>シオン バイオシステム</td><td></td><td>ズ 原稿で録音ソフトウェアと呼ばれます</td></tr><tr><td>BPA</td><td>シグマ アルドリッチ</td><td>239658-250g</td><td></td></tr><tr><td>湾曲した鉗子</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11272-50</td><td></td></tr><tr><td>EtOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>64-17-5</td><td></td></tr><tr>地元の農場からの<td>受精鶏卵</td><td>、またはSpafas</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Fisher</td><td>14170112</td><td></td></tr><tr><td>Hemacytometer</td><td>Fisher</td><td>&nbsp;02-671-6</td><td></td></tr><tr><td>マトリゲル成長因子の減少、フェノールレッドフリー</td><td>BD バイオサイエンス</td><td>356231</td><td>原稿では Extra Cellular Matrix (ECM) と呼ばれます</td></tr><tr><td>Neurobasal medium</td><td>BrainBits</td><td>Nb4-500</td><td></td></tr><tr><td>Neuroexplorer 統計ソフトウェア</td><td>Nex Technologies</td><td>Neuroexplorer version 5</td><td></td></tr><tr><td>Pasteur pipettes</td><td>Fisher</td><td>&nbsp;13-678-20A</td><td></td></tr><tr><td>ばねはさみ</td><td>ファインサイエンスツール</td><td>15514-12</td><td></td></tr>シル<tr><td>ガード底解剖皿</td><td>リビングシステムズインスツルメンテーション</td><td>DD-90-S-BLK-3PK</td><td></td></tr><tr><td>トリパンブルー染料</td><td>フィ</td><td>ッシャー15-250-061</td><td></td></tr><tr><td>トリプシンEDTA</td><td>フィッシャー</td><td>15400054</td><td></td></tr></tbody></table>

ホルモン多電極アレイを用いた脊椎動物の神経回路網関数の開発化合物の影響の評価

Assessment of the Effects of Endocrine Disrupting Compounds on the Development of Vertebrate Neural Network Function Using Multi-electrode Arrays

ビス フェノール、ビスフェノール A (BPA)、bis-フェノール-S (BPS) など、プラスチックおよび多数の日常製品の生産で広く使用されるエージェントを重合します。エストラジ オールのようなプロパティを持つ内分泌かく乱化合物 (EDC) として分類されます。内分泌かく乱化学物質、低用量で長期曝露は癌、行動障害、不妊症、初期の発育期間中に大きな脆弱性を含む様々 な健康の欠陥とリンクされています。BPA の神経機能の発達に及ぼす影響を研究するには、生体外で神経ネットワーク初期モデルとしてニワトリ胚脳から派生を使用しました。曝露がわかった BPA は具体的活動と同期をスパイクのネットワーク活動の開発に影響します。ネットワーク活動の変化は、分子標的薬または化合物と行動の結果への影響の重要なリンクです。多電極アレイ ネットワーク活動体外で薬剤の効果を研究する便利なツールがますますなっています。市場で利用できるいくつかのシステムがあるし、電極種類、電極の配列および分析ソフトウェアは、基本的な原則の質の数のバリエーションがありますが、データ取得が全体で同じです、さまざまなシステム。現在体外二次元文化の分析に限られていますが、これらの MEA システム ネットワークの活動生体内で脳スライスを有効に改良を行っています。ここでは、胚の露出と神経ネットワークの活動と同調、代表的な結果とともに記録の詳細なプロトコルを提供します。

BPA のニワトリ胚神経細胞培養における同調性開発に及ぼす影響を検討しました。アクティビティのスパイクの同期は、神経ネットワーク体外の正常な発達の指標です。お互いの 5 ms 内で 2 つのスパイクが発生すると、彼らは同期と見なされます。生体外で神経文化最初に表示ランダム スパイク活動-スパイクがランダムに発生し、スパイク間間隔が正規分布を示します。文化が成熟し、スパイクのアクティビティの同期になるより、スパイク間間隔は一定であります。文化の同期発火活動に同調インデックス (SI) を導出する録音ソフトウェア12を使用してスパイクの相互相関解析による測定しました。スパイクの活動と同調インデックス (図 2と2 b) を減らして BPA 暴露がネットワーク アクティビティの開発に影響を与える悪影響ことがわかった。要約すると、我々 は文化でひよこニューロンの同期開発によって評価することができます神経の機能を含む、その開発を胎児の BPA 暴露の有害な影響に影響を示しています。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56300/56300fig1.jpg"> 図 1:解離、めっき、およびネットワーク上のアクティビティを記録するひよこ前脳の解剖から手順を描いたプロトコルの概略図。<a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56300/56300fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56300/56300fig2.jpg"> 図 2:(A)スパイクの数の平均値は有意に低かった BPA 扱わ E7 ひよこ前脳文化制御文化と比較されたとき。スパイクの平均数は、録音ソフトウェアを使用して抽出しました。手段 (コントロール、14,890 ± 949.0、N = 15 と BPA、5,624 ± 465.9、N = 22) 有意差 (対になっていない t 検定, p &lt; 0.0001)。(B)平均同期インデックス (SI) が有意に低かった BPA 扱わ E7 ひよこ前脳文化制御文化と比較されたとき。SI は、レコーディング ソフトウェア内神経統計コンパイラ モジュールを使用して抽出しました。SI 手段 (コントロール、0.5159 ± 0.06547 N = 15 と BPA、0.1140 ± 0.01840 N = 22) 有意差 (対になっていない t 検定, p &lt; 0.0001)。エラーバーは標準偏差を表しています。<a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56300/56300fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

環境毒素への暴露鋭く胚に影響を与えることができます。内分泌撹乱化学物質ビスフェノール類の神経系に悪影響を与えると知られているようです。ここで初期胚の毒素の機能の影響を研究する脊椎動物 (ニワトリ)の in vitro神経ネットワーク モデルを用いたプロトコルについて述べる。

Bis-phenols, such as bis-phenol A (BPA) and bis-phenol-S (BPS), are polymerizing agents widely used in the production of plastics and numerous everyday ...

この実験プロトコルの全体的な目標は、ビスフェノールなどの内分泌かく乱化合物が、多電極アレイ上に確立された脊椎動物のニューロンネットワークのネットワークスパイキング活性に及ぼす影響をテストすることです。この方法は、発生神経生物学や環境毒物学における重要な疑問、例えば、胚性脳におけるネットワーク活動の発達に対する環境毒素の作用機序などに答えるのに役立ちます。この手法の主な利点は、平均発火率、スパイクの総数、スパイク振幅、同期性などのニューロンネットワークパラメータへの影響を研究できるようになったことです。私たちの以前の研究では、EDCがニューロンネットワークの直接的な出力である言葉や行動に影響を与えることが示されており、私たちのプロトコルは現在、これらのネットワークに対するEDCの影響を理解することを目指しています。ニューロンプレーティングの日に、マイナス20°Cの冷凍庫から細胞外マトリックスのバイアルを取り出し、70%エタノールをスプレーして氷の上に置きます。細胞外マトリックスを氷上で解凍してください。ECMは摂氏0度以上で重合するため、室温で解凍しないでください。BSL2フードで作業し、100マイクロリットルのアリコートに300マイクロリットルの冷たい神経基礎培地を追加することで、細胞外マトリックスを25%に希釈します。次に、P200ピペットを使用して、電極に触れないように注意しながら、多電極アレイの中心に100マイクロリットルの25%細胞外マトリックス溶液を追加します。すぐにECMを取り外し、表面に薄膜を残します。多電極アレイを覆い、ニューロンをプレートする準備ができるまで組織培養インキュベーターに入れます。ひよこニューロンの分離は、E7卵の外殻を70%エタノールで滅菌することから始めます。この時点から無菌状態を維持することが重要です。すべての機器が70%エタノールで滅菌され、溶液が滅菌されていることを確認してください。解剖フードを使用すると便利ですが、迅速に行えば解剖に絶対に必要というわけではありません。次に、胚を回収して斬首した後、目の周りを切って眼球を取り除きます。次に、デュモンの5番細い鉗子とスプリングハサミを使用して腹側を切開し、皮膚の外層を取り除き、前脳と視蓋を露出させます。ピールメンブレンを慎重に剥がし、剥がします。HBSSが入った別のシャーレに前脳を移し、スプリングハサミで約2mmの小片に切ります。滅菌トランスファーピペットを使用して、前脳の断片を15ミリリットルの遠心分離チューブに移します。前脳の破片が遠心分離管の底に沈んだら、HBSSをできるだけ多く取り除きます。次に、予め温めた0.5%トリプシンEDTAを1ミリリットル加え、摂氏37度で15分間インキュベートします。パスツールピペットを使用して、組織片を乱さずにトリプシンを慎重に取り除きます。1ミリリットルの神経基礎培地を追加し、組織の片を底に沈めます。培地を取り出して洗浄を繰り返した後、2ミリリットルの神経基礎培地を追加し、ティッシュがなくなるまで穏やかに滴下します。再懸濁した細胞を神経基礎培地で1〜10に希釈します。トリパンブルー色素と血球計算盤を使用して、生存細胞をカウントします。カウント後、解離した細胞をECMコーティングされた多電極アレイ上に、1平方ミリメートルあたり2,200細胞の密度でプレートします。翌日、神経基礎培地中の10マイクロモルBPAを治療した多電極アレイに加えます。取得当日は、培養培地を新鮮な神経基礎培地と交換し、アレイをCO2インキュベーターに最低2時間戻してから記録します。記録ソフトウェアを起動し、温度アイコンをクリックして、多電極アレイの温度を摂氏37度に設定します。取得パラメータを設定するには、左側のウィンドウパネルでストリームを選択し、museアイコンを右クリックします。次に、[処理の追加]と[スパイク検出器]を選択し、ポップアップウィンドウで[OK]をクリックします。Spike detector six by STDがファイル名の下に表示されます。次に、スパイク検出器を右クリックし、[処理とバースト検出器の追加]を選択して、ポップアップウィンドウで[OK]をクリックします。バースト検出器ISIは、ミューズアイコンの下に表示されます。次に、バースト検出器を右クリックし、[処理と神経統計コンパイラの追加]を選択します。ポップアップウィンドウで、ファイルヘッダー、集約ウェル統計、および同期が選択されていることを確認し、[OK]をクリックします。統計コンパイラが下に表示されます。画面下部の時計アイコンをクリックし、設定セクションの情報を変更して、5.1分ごとに記録し、5分間記録します。これはすぐに開始され、1回実行されます。インキュベーターから多電極アレイを取り出した後、記録ユニットに置き、所定の位置にロックします。スケジュールされた録画セクションの[録画の開始]をクリックして、ネットワークアクティビティの記録を開始します。通常、録音時間は5分で十分ですが、最大10分の長い録音も取得できます。記録後、多電極アレイをインキュベーターに戻します。BPA処理されたE7ニワトリの前脳培養では、対照培養と比較すると、スパイクの平均数は有意に少なくなります。BPAで処理されたE7ニワトリの前脳培養では、対照培養と比較すると、平均同期指数は有意に低くなります。このテクニックを習得すると、適切に行えば3時間未満で完了できます。この手順を試行する間は、スパイク活動を記録している間も、常に無菌状態を維持することを覚えておくことが重要です。この手順に従うと、抗てんかん薬や抗うつ薬などの潜在的な薬剤がネットワーク活動に及ぼす影響を、その作用機序を理解するためのステップとして評価できます。多くのEDCは、発達中に脳に微妙な影響を及ぼし、それが行動の変化として現れます。ビヘイビアは、基盤となるネットワークアクティビティの直接的な出力です。私たちのプロトコルは、これらの化合物がネットワーク活動に及ぼす影響を分析することを目的としています。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

このプロトコルは、セットアップの世話から、記録と電気的に多国間での文化を刺激するために必要な情報を提供します。...

どのように文化、レコードとマイクロ電極アレイで神経ネットワークを刺激する（多国間環境協定）へ

このビデオは、初期段階のニワトリ胚の前脳からニューロンを分離し、微小電極アレイ上でニューロンネットワークを形成する方法を示しています。...

多電極アレイ上でのニワトリ胚性ニューロンの単離と培養

このビデオは、ヒト人工多能性幹細胞(hiPSC)に由来するニューロンの電気生理学的活動を記録するために、微小電極アレイ(MEA)を使用する方法を示しています。ニューロン-アストロサイト共培養物を含むマルチウェルMEAからの電気生理学的活性は、ネットワーク内の複数のニューロンからの活動電位を検出するために記録され、hiPS細胞のニューロンへの分化が成功したことを確認しています。...

微小電極アレイを用いた神経回路網の電気生理活性の測定

このビデオは、マウス脊髄切片のニューロンネットワーク活動を研究するための微小電極アレイベースのアッセイを示しています。まず、スライスの表在性後角(SDH)からの電気生理学的活動が記録されます。次に、カリウムチャネル阻害剤を導入して脱分極を延長し、ニューロンネットワーク全体で同期したリズミカルな活動をもたらします。...

微小電極アレイを用いたマウス脊髄切片における神経回路の評価

このビデオは、初期胚のニワトリのニューロン培養に対する毒素の影響を研究するための多電極アレイ(MEA)の使用を示しています。MEAは、ニューロンネットワーク内のニューロンの同期活動を監視することにより、毒素曝露に応答したニューロンネットワークの機能ダイナミクスを捕捉します。毒素曝露による同期性と発火率の低下は、ニューロンネットワークの成熟と機能に対する有害な影響を浮き彫りにしています。...

多電極アレイを用いたニワトリ胚神経ネットワーク発生に対する毒素の影響の評価

異なる電極コーティングは、電気化学的、化学的および機械的特性の変化を介して神経記録性能に影響を与える。 in vitroでの電極の比較は、しかし、生体内反応の比較は、通常、電極/神経距離と動物間の変動によって複雑に、比較的簡単です。この記事では、神経記録電極を比較する堅牢な方法を提供する。...

神経電位電極の体系的電気化学的および電気生理学的評価方法

私たちは、ニューロンの応答プロファイルを研究し、刺激パラメータを最適化するために、多電極アレイ上で一次マウススパイラル神経節ニューロン外植片を培養するためのプロトコルを提示します。このような研究は、人工内耳のニューロン電極インターフェースを改善して、患者の聴覚とデバイスのエネルギー消費に利益をもたらすことを目的としています。...

マルチ電極アレイ上のらせん神経節ニューロン外植片培養と電気生理学

多電極アレイ上で培養されたマウス神経細胞は、電気刺激後の応答の増加を示す。このプロトコルは、ニューロンを培養する方法、活動を記録する方法、および刺激のパターンに応答するようにネットワークを訓練するプロトコルを確立する方法を示す。...

マイクロ電極アレイにおけるニューロン細胞培養の刺激に対するネットワーク応答の時間依存的増加

本研究では、HD-MEAを用いて、特に海馬、嗅球回路、ヒト神経回路における大規模な神経集団の計算ダイナミクスを掘り下げます。時空間活動を捉え、計算ツールと組み合わせることで、ニューロンのアンサンブルの複雑さに関する洞察を得ることができます。この手法は、脳機能の理解を深め、神経疾患のバイオマーカーや治療法を特定できる可能性がある。...

CMOS集積高密度微小電極アレイにおけるマルチモーダル大規模神経集団ダイナミクスの記録と解析

ヒト多能性幹細胞由来脳アッセンブロイドを用いたてんかんモデリングのための多電極アレイプラットフォーム

学ぶ多電極アレイを用いたヒヨコ胚神経回路のネットワーク活動評価法。内分泌攪乱化学物質の発達神経毒性メカニズムを解明し、環境毒素の脳発達への影響を評価する技術です。

ホルモン多電極アレイを用いた脊椎動物の神経回路網関数の開発化合物の影響の評価

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