Name: ベンサミアーナ タバコ葉蛋白質蛋白質の相互作用ダイナミクスの一過性の決定のための試金補完ルシフェラーゼ イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-11-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: 学ぶルシフェラーゼイメージングによるNicotiana benthamiana葉でのタンパク質間相互作用の定量解析。一過性発現システムを用いてシグナル伝達経路の動態を迅速かつ正確に評価する手法です。

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この作品は、江蘇自然科学財団 (BK20140919)、清 Lan プロジェクト、中国の国家自然科学基金 (31470375) 優先度学術プログラム開発の江蘇高等教育機関によって支えられました。

1. 植物 (8 週間) の準備
<ol><li>50ベンサミアーナ タバコ種子を 1 mL 5 %naclo と、0.1% トリトン X-100 (V/V) ソリューションおよび種子を殺菌する 5 分を残すを含む 1 つの 1.5 mL 遠心チューブに入れてください。</li>
	<li>リンスの種子滅菌水を 5 回と 200 μ L の滅菌水に種子を中断します。</li>
	<li>慎重に場所個々 の種 MS 寒天培地 (1 l: (KOH) 培地・培塩 10 g スクロース, pH 5.8 × 1 1% 寒天) 罰金のヒントと発芽を同期する 3 日間の 4 ° C で店中板の表面上に。 注: 微生物汚染を避けるためには、クリーン ベンチでこの手順を実行します。滅菌中がチューブを振るする必要はありません。</li>
	<li>10 日間の正常な成長条件 (22 ° C、80-90 µmolm-2の-1白い光強度) の下で中板を置き、土に発芽苗を転送します。 注: は土に苗の根を挿入することを確認し、根に損傷を与えない。透明なプラスチックのカバーで一晩湿度を維持するためにトレイをカバーします。</li>
	<li>16/8 h/明暗サイクルと 70% 湿度制御成長部屋の植物を育てます。7 週齢(名) 形質転換植物Agrobacteriumtumefaciens浸潤 (図 1A) の準備ができています。 注: 水の植物、植物を健康に保つために必要に応じて、害虫を制御します。</li>
</ol>2. (名) ベンサミアーナ葉 (7-10 日) 一過性発現
<ol><li>プラスミドの提供 150 ng (pEGAD HA リュック制御プラスミド、空のベクトル、およびライオンズ クラブ国際協会の構築されたプラスミドを試金、プラスミド構築の pCAMBIA1300 Nluc と pCAMBIA1300 Cluc を使用私たちこの場合) A. 根頭がんしゅ病菌の有能なセルにひずみと GV3101、標準的なエレクトロポレーション法。</li>
	<li>文化A. 根頭がんしゅ病菌ルリア ベルターニカミラ (LB) 寒天培地 (1 l: 10 g 食塩 5 g 酵母エキス 10 g トリプトン寒天培地 1.5%) 含む 50 μ G/ml カナマイシンのと 4 日間の 28 ° c リファンピシンの 50 μ g/mL。 注: 抗生物質の選択は、ベクターと使用A. 根頭がんしゅ病菌系統に依存します。</li>
	<li>1 つを接種してカナマイシンの 50 μ g/mL および 50 μ G/ml のリファンピシンを含む LB 液体培地 3 mL に各板からのA. 根頭がんしゅ病菌のコロニーを単一細胞培養を反映する 24 h 28 ° C で 220 回転で振る。</li>
	<li>15 ミリリットル新鮮な LB 液体培地カナマイシンの 50 μ g/mL および 50 μ G/ml のリファンピシン、200 倍希釈を含むに細菌文化 75 μ L を転送します。外径600 0.5 〜 1.0 の間まで約 8 時間、30 ° C で 220 rpm で細菌の文化.</li>
	<li>15 mL 遠沈管にA. 根頭がんしゅ病菌液体培養を転送、4,000 x g で 4 ° C、15 分破棄上清を遠心し、ペレットを洗浄する変換ソリューションの 15 mL にペレットを中断します。</li>
	<li>4,000 x g で 4 ° C、15 分管を回転し、上澄みを廃棄します。洗浄工程をもう一度繰り返します。</li>
	<li>変換ソリューション 5 mL にペレットを再懸濁します、室温で 2 時間維持します。外径600の最終濃度が 0.5、またはテスト対蛋白質の相互作用のための等しいボリュームとミックスの 2 つのサンプルになるまで変換ソリューションとA. 根頭がんしゅ病菌ペレットの密度を調整します。</li>
	<li>1 mL の無針注射器 (図 1B C) 7回葉に 4番目に浮遊細胞を浸透します。後、黒いプラスチックのカバーで植物をすぐにカバーし、12 時間暗闇の中でトレイを配置します。その後、リュックの活動を検出する前に 2 〜 4 日のいつものように植物を育てます。 注: は、同じようなサイズの健康的な葉を選択します。1 つの葉に 4 つの異なるゾーンの浸透は良いです。</li>
</ol>3. 検出ルシフェラーゼ活性 (1 日)
注意: ルシフェラーゼの活動を監視する 2 つの方法があります。1 つは、イメージングに基づいており、他ルシフェラーゼ活性を定量的に測定することです。
<ol><li>
イメージング法
	<ol>
<li>浸透した葉を外し、MS 寒天培地に全体のチラシを置きます。</li>
		<li>葉の向軸面にルシフェリン作業バッファーを 50 mL スプレー ボトルとスプレーします。クロロフィルの自家蛍光を癒やすための 5 分間暗闇の中で材料を維持します。</li>
		<li>低光の冷却 CCD 画像 (図 2) をキャプチャする装置 (-30 ° C に冷却) をイメージングを使用します。ライト下に露光時間は 50 ms と発光検出時間は 1 分。 注: は、機械のマニュアルによるとパラメーターを調整します。低温はイメージの質を改善する信号対雑音比を向上させます。</li>
	</ol>
</li>
	<li>また、商業ルミノで直接発光を測定します。<ol>
<li>慎重に(名) ベンサミアーナ葉の浸透面積から (約 0.25 cm2) 葉片をカット、白 96 ウェル プレート (図 3) で脱イオン水の 100 μ L にリーフ ディスクを浸します。</li>
		<li>ルシフェリン作業バッファーの 10 μ L を追加し、5 分のまま。タンパク質の相互作用ダイナミクスを研究するための特定の治療法を行います。 メモ: は、特定の治療下でのタンパク質間相互作用の動力学を表すルシフェラーゼ活性ダイナミクスを取得する異なる時点でルミノで発光を検出します。このメソッドには、同時に大量のタンパク質の組み合わせをテストするための利点があります。これらの商業ルミノなし、西部のしみによってルシフェラーゼ タンパク質組成を調べる、したがってリュック活動曲率を参照してください。光が必ずしも必要でない場合は、プレートを留めて、ルミノして異なる時点で発光を測定します。それ以外の場合、検出のギャップの中に成長の部屋にプレートを移動します。統計的に有意な結果を得るためには、少なくとも 3 つの生物学的複製を使用します。異なる浸潤ゾーンからリュック活動が異なりますが、その変化のパターンは正規化後一致しています。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Thines, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((JAZ+repressor+proteins+are+targets+of+the+SCF%28COI1%29+complex+during+jasmonate+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">JAZ repressor proteins are targets of the SCF(COI1) complex during jasmonate signalling.</a> Nature. 448, 661-665 (2007).</li>
<li>Chini, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+JAZ+family+of+repressors+is+the+missing+link+in+jasmonate+signalling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The JAZ family of repressors is the missing link in jasmonate signalling.</a> Nature. 448, 666-671 (2007).</li>
<li>Jones, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Border+control--a+membrane-linked+interactome+of+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Border control--a membrane-linked interactome of Arabidopsis.</a> Science. 344, 711-716 (2014).</li>
<li>Arabidopsis Interactome Mapping Consortium. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+network+evolution+in+an+Arabidopsis+interactome+map%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Evidence for network evolution in an Arabidopsis interactome map.</a> Science. 333, 601-607 (2011).</li>
<li>Yazaki, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+transcription+factor+interactome+networks+using+HaloTag+protein+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mapping transcription factor interactome networks using HaloTag protein arrays.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 113, 4238-4247 (2016).</li>
<li>Kenworthy, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+protein-protein+interactions+using+fluorescence+resonance+energy+transfer+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Imaging protein-protein interactions using fluorescence resonance energy transfer microscopy.</a> Methods. 24, 289-296 (2001).</li>
<li>Walter, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+protein+interactions+in+living+plant+cells+using+bimolecular+fluorescence+complementation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Visualization of protein interactions in living plant cells using bimolecular fluorescence complementation.</a> Plant J. 40, 428-438 (2004).</li>
<li>Chen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Firefly+luciferase+complementation+imaging+assay+for+protein-protein+interactions+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Firefly luciferase complementation imaging assay for protein-protein interactions in plants.</a> Plant Physiol. 146, 368-376 (2008).</li>
<li>Layton, C. J., Hellinga, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitation+of+protein-protein+interactions+by+thermal+stability+shift+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+Sci%22%5BJournal%5D)">Quantitation of protein-protein interactions by thermal stability shift analysis.</a> Protein Sci. 20, 1439-1450 (2011).</li>
<li>Schuck, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reliable+determination+of+binding+affinity+and+kinetics+using+surface+plasmon+resonance+biosensors%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Reliable determination of binding affinity and kinetics using surface plasmon resonance biosensors.</a> Curr Opin Biotechnol. 8, 498-502 (1997).</li>
<li>Huang, X., Ouyang, X., Deng, X. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beyond+repression+of+photomorphogenesis%3A+role+switching+of+COP%2FDET%2FFUS+in+light+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Current+opinion+in+plant+biology%22%5BJournal%5D)">Beyond repression of photomorphogenesis: role switching of COP/DET/FUS in light signaling.</a> Current opinion in plant biology. 21, 96-103 (2014).</li>
<li>Liu, B., Zuo, Z., Liu, H., Liu, X., Lin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+cryptochrome+1+interacts+with+SPA1+to+suppress+COP1+activity+in+response+to+blue+light%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis cryptochrome 1 interacts with SPA1 to suppress COP1 activity in response to blue light.</a> Genes Dev. 25, 1029-1034 (2011).</li>
<li>Lian, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blue-light-dependent+interaction+of+cryptochrome+1+with+SPA1+defines+a+dynamic+signaling+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Blue-light-dependent interaction of cryptochrome 1 with SPA1 defines a dynamic signaling mechanism.</a> Genes Dev. 25, 1023-1028 (2011).</li>
<li>Zuo, Z., Liu, H., Liu, B., Liu, X., Lin, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blue+light-dependent+interaction+of+CRY2+with+SPA1+regulates+COP1+activity+and+floral+initiation+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Blue light-dependent interaction of CRY2 with SPA1 regulates COP1 activity and floral initiation in Arabidopsis.</a> Curr Biol. 21, 841-847 (2011).</li>
</ol>

著者が明らかに何もありません。

ここで説明されているプロトコルはシンプルで留学生体内でタンパク質間相互作用、再現性と外因性治療中タンパク質の相互作用ダイナミクスを検出するために特に適して。(名) ベンサミアーナ浸透この試金の重要なステップであります。浸潤の成功を確保するため、植物は非常に健康でなければなりません。もう一つの重要な要因は、浸透後ルシフェラーゼ活性をチェックするタイミングです。この質問に対する正しい答えはありません。研究者は別日時間8変動タンパク質発現レベルを見ましたので、ルシフェラーゼを最高のレベルで表す場合を判断する後でルシフェラーゼ活性を監視することをお勧めします。
いくつかの実験で発光を検出ことがありますはありませんが可能です。適切なコントロールなし、偽陰性を除外されませんでした。フルレングス ルシフェラーゼ コントロールが浸潤およびルシフェラーゼ検出の動作を証明するために必要です。その後、まだ推定される蛋白質の相互作用のペアで発光がない場合、イムノブロットに 1 つまたは 2 つのタンパク質が正常に表現されな...

その環境と成長を調整するために、植物は感覚、変換、およびシグナリングのキューに対応するエレガントなシグナル伝達経路を進化してきました。リレー競技で走者のような蛋白質、植物シグナル伝達に必要な選手です。タンパク質間相互作用 (PPI) が携帯電話通信のための主要な役割を果たしていること広く認識されています。蛋白質のリン酸化、アセチル化、劣化がすべてターゲット蛋白質とその変更の酵素間の物理的な相互作用に依存しています。たとえば、ジャスモン酸 ZIM ドメイン蛋白質 (JAZ) ファミリーのタンパク質は転写因子 MYC2 との対話、その転写活性1,2を抑制します。PPI の重要性を与えられた植物の interactomes がされている大規模なタンパク質検討最近3,4,5です。さらにこれらインタラクトームの結果では、多様な細胞機能を調整する複雑な規制のネットワークを明らかにします。
PPI を監視するためいくつかの確立された方法があります。イースト 2 ハイブリッド (Y2H) 試金は、PPI 検出のため最も広く使用されている方法です。Y2H は、蛋白質の相互作用を調べる簡単なテストに適して行うには、簡単です。Y2H も広く、特定興味の蛋白質のための未知の相互作用パートナーをスクリーニングに使用されます。ただし、Y2H が酵母で実施して完全ので植物の本当のシナリオ細胞し、高い偽陽性率をもたらす反映できません。別の似たような戦略は、プルダウン試金です。一般に、2 つのタンパク質が表明したエシェリヒア属大腸菌のセルから浄化し混合し、蛋白質の相互作用を検出するため固定化します。この方法は時間がかかるが、それを取得できません体内の相互作用の結果か。生体内での相互作用目的のため co-免疫沈降 (co IP) は、最も人気のある試金、高品質 immunoprecipitate 興味の蛋白質に抗体を必要とし、間接 PPIs の可能性を除外することはできません。また、co IP で複雑な実験手順、結果通常の専門性と異なります。
記者による再構成の試金は大きく体内PPI の検出を進めます。蛍光共鳴エネルギー移動 (FRET)6、二分子の蛍光補完 (BiFC)7、イメージング (LCI) 試金8ホタル ルシフェラーゼ補完などの方法。これら 3 つのアプローチが co IP より生体内で直接反映するように PPI、フレット、BiFC 蛍光信号を検出する特定の顕微鏡を必要し、簡単に相互作用強度を定量化することはできません。対照的に、ライオンズ クラブ国際協会はその基質ルシフェリンと反応後光るホタルのルシフェラーゼの活用します。もっと重大に、ルシフェラーゼ活性値から PPI の強さを決定できます。したがって、ライオンズ クラブ国際協会だけではなく 2 つのタンパク質やないとの対話が治療の相互作用ダイナミクスに関する情報も提供するかどうかを示します。10,,の相互作用ダイナミクス (表面プラズモン共鳴または熱安定性変化に基づく)9を監視するためのいくつかの確立された方法がありますがこれらのアプローチは、繊細な楽器や特殊にラベリングを必要があります。対照的に、ライオンズ クラブ国際協会は、検出を行いやすくなっています。
ライオンズ クラブ国際協会のための原則 (N = リュックまたは C = リュックをそれぞれ命名) ルシフェラーゼのアミノ末端とカルボキシル末端の半分は、タンパク質 A と B、およびタンパク質が植物細胞に表現された同時にこれら 2 つの融合と融合しました。タンパク質 A とタンパク質 B やり取り場合、は、アクティブなルシフェラーゼ酵素をルシフェラーゼの 2 つの半分が再構成されるでしょう。ルミノまたは CCD カメラでルシフェラーゼ活性を検出できます。ライオンズ クラブ国際協会; の安定した形質転換体を取得する必要はありません。一過性発現は高品質の相互作用の結果を取得するのに十分です。
リング型 E3 ユビキチン リガーゼ構成 photomorphogenic 1 (COP1) はトランスクリプション要因の無数を操作し、26 s プロテアソーム11を通して彼らの劣化を促進します。これらの COP1 をターゲットとした転写因子のいくつかは、光形態形成過程の正の監督は。暗闇の中、COP1 フィトクロム COP1 E3 活動8を高める A-105 1 (SPA1) の抑制と対話します。光の知覚後、視細胞は COP1 活性を阻害し、安定 COP1 基板12,13,14COP1 SPA1 相互作用を反故します。この例では、PPI を勉強し、PPI ダイナミクスの決定の生物学的意義を示しています。

<table><tbody><tr><td>形質転換溶液</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 mM モルホリンエタンスルホン酸</td><td>VETEC</td><td>V900336&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>27.8 mM グルコース</td><td>VETEC</td><td>V900392</td><td></td></tr><tr><td>10 mM MgCl2&times;6H2O</td><td>VETEC</td><td>V900020&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>150 &mu;M アセトシリンゴン</td><td>ALDRICH</td><td>D134406&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>pH 5.7</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ルシフェリンワーキングバッファー</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 mM ルシフェリンカリウム塩</td><td>GOLD BIOTECHNOLOGY</td><td>LUCK-100</td><td></td></tr><tr><td>0.025% Triton X-100</td><td>VETEC</td><td>V900502&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>H2Oから10ml</スパン></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ベンサミアーナ タバコ葉蛋白質蛋白質の相互作用ダイナミクスの一過性の決定のための試金補完ルシフェラーゼ イメージング

Luciferase Complementation Imaging Assay in Nicotiana benthamiana Leaves for Transiently Determining Protein-protein Interaction Dynamics

蛋白質蛋白質の相互作用が最も細胞プロセスのシグナル伝達を中継するための基本的なメカニズムしたがって、新規タンパク質間相互作用のペアとタンパク質の相互作用ダイナミクスを監視の同定植物が環境要因および/または発達の信号に応答する方法を明らかにするため特に重要です。アプローチの茄多は、生体外でまたは生体内で蛋白質蛋白質の相互作用を調べるために開発されています。中でも、イメージング (LCI) 最近設立されたルシフェラーゼ補完アッセイは、体内のタンパク質-タンパク質相互作用を示すため最も簡単で最速の方法です。この分析では、蛋白質または蛋白質 B は、ルシフェラーゼのアミノ末端あるいはカルボキシ末端の半分と融合それぞれ。タンパク質 A とタンパク質 B やり取り、ルシフェラーゼの 2 つの半分が機能とアクティブなルシフェラーゼ酵素を形成する再構成されるでしょう。ルシフェラーゼ活性はルミノまたは CCD カメラで記録できます。LCI 分析他のアプローチと比較して、タンパク質-タンパク質相互作用定性的と定量的の両方を示しています。アグロバクテリウムベンサミアーナ タバコ葉の浸潤は、一時的な蛋白質の表現のため広く使われているシステムです。ライオンズ クラブ国際協会と一過性発現の組み合わせ、これらのアプローチは COP1 と SPA1 の間の物理的な相互作用にジャスモン酸治療後徐々 に短縮されたことを示します。

3 つの主要なステップは蛋白質蛋白質の相互作用生体内で植物の成長、タバコ浸潤、およびルシフェラーゼ アッセイを含む留学このルシフェラーゼ補完プロトコルで白羽できます。このプロトコルの最も重要なステップは、 (名) ベンサミアーナ葉 (図 1) に液体A. 根頭がんしゅ病菌を浸透させています。
ジャスモン酸 COP1 SPA1 相互作用を減らすことを確認この方法の有用性の例です。COP1 と融合したルシフェラーゼのアミノ末端とカルボキシル末端の半分 (COP1-NLuc) または SPA1 (CLuc SPA1)、それぞれ。COP1 SPA1 相互作用の機能的なルシフェラーゼの相補性の結果します。(図 2)、CCD カメラによるイメージを作成したルシフェラーゼ活性とルミノ (<str...

本稿では、ルシフェラーゼ活性の測定に基づく蛋白質蛋白質の相互作用を決定するための簡単かつ迅速な実験手順について説明します。

Protein-protein interactions are fundamental mechanisms for relaying signal transduction in most cellular processes; therefore, identification of novel ...

この手順の全体的な目標は、一過性発現システムにおけるタンパク質間相互作用を定量的に検出することです。この測定は、化学的または環境的処理後のタンパク質タンパク質の方向性を定量的に監視する方法など、量子シグナルトランザクション分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の主な利点は、ルミノメーターまたはCCDカメラを使用して、タンパク質タンパク質の方向強度を表すルシフェラス活性を検出するため、結果がより正確になることです。この手順を開始するには、5%次亜塩素酸ナトリウムとゼロポイント1%トリトン×100を含む溶液1ミリリットルを、種子を含む1ポイント5ミリリットルの微量遠心チューブに追加します。溶液を5分間休ませて、種子を滅菌します。次に、種子を滅菌水で5回洗います。洗浄した種子を200マイクロリットルの滅菌水に懸濁します。細いチップを使用して、個々のシードをめっきしたMS寒天培地の表面に慎重に置きます。プレートを摂氏4度で3日間保管し、発芽を同期させます。この後、ミディアムプレートを通常の成長条件下で10日間保管します。発芽した苗を土壌に移し、根を傷つけないように注意してください。トレイを透明なプラスチックカバーで一晩覆い、湿度を維持します。制御された成長室で7週間植物を育て、その後、アグロバクテリウム・トゥメファシエンスの浸潤の準備が整います。まず、150ナノグラムのプラスミドをa-tumefaciensコンピテントセルGV3101株に導入します。a-tumefaciens培養物を含むチューブをシェーカーに入れ、4時間インキュベートします。ガラス棒を使用して、培養物をチューブからLB培地に移します。a-tumefaciensとLB寒天培地を摂氏28度で4日間培養します。次に、各プレートから単一のa-tumefaciensコロニーを、3ミリリットルのLB液体培地を含む独自のチューブに接種する準備をします。280 RBMで摂氏28度で24時間振とうし、培養物を増殖させます。次に、75マイクロリットルの細菌培養物を、15マイクログラム/ミリリットルのカナマイシンと50マイクログラム/ミリリットルのリファンピシンを含む15ミリリットルの新鮮なLB液体培地に移します。OD600が0.5〜1になるまで、30°Cで220RPMで約8時間細菌を培養します。この後、培養物を15ミリリットルの遠心分離管に移します。重力4000倍、摂氏4度で15分間遠心分離します。上清を捨て、パレットを15ミリリットルの形質転換溶液に再懸濁します。重力4000倍、摂氏4度で15分間遠心分離します。その後、懸濁液と遠心分離のステップをもう一度繰り返します。上清を捨て、パレットを5ミリリットルの形質転換溶液に再懸濁します。再懸濁したパレットを暗所で室温で2時間休ませます。次に、OD600に形質転換溶液を0.5で加えるか、または2つのサンプルを等量のものと組み合わせて、対になったタンパク質相互作用を試験します。1ミリリットルの注射針を使用して、浮遊細胞を4番目から7番目の葉に浸潤します。この後、すぐに植物を黒いプラスチックカバーで12時間覆います。まず、成功を確実にするためには、植物は非常に健康でなければなりません。次に、浸透プロセス中に葉を傷つけないように注意してください。トレイを暗闇に12時間置いてください。次に、ルシフェラーゼ活性を検出する前に、通常の条件下で2〜4日間植物を成長させます。イメージング法を開始するには、浸潤した葉を切り離します。リーフレット全体をMS寒天培地のプレートに置きます。50ミリリットルのスプレーボトルを使用して、ルシフェロンワーキングバッファーを葉の同軸面にスプレーします。その後、クロロフィル自家蛍光を消光するために5分間暗所に置き続けます。マイナス30°Cに冷却された低光冷却CCD想像装置を使用して、光充填露光時間が50ミリ秒、発光検出時間が1分間の画像を撮影します。この後、N-benthamianaの葉の浸透領域から葉片を切り取ります。破片を100マイクロリットルの脱イオン水に浸し、96ウェルのホワイトプレートのウェルに入れます。10マイクロリットルのルシフェロン作業緩衝液を追加します。プレートを5分間休ませます。次に、タンパク質相互作用のダイナミクスを研究するために任意の特定の処理を行い、市販のルミノメーターで直接発光を測定します。ここに示されているのは、COP 1 SPA 1 の相互作用を表すルシフェラス活性のデモンストレーションです。発光によって検出される光明の活動は、CCDカメラによって画像化されます。COP 1 SPA 1の相互作用は、機能的なルシフェラーゼの銅変異をもたらすことが見られます。次に、ジャスミン8処理下のルシフェラーゼ活性を経時的に決定します。ルシフェラーゼ活性に代表されるCOP1 SPA1の相互作用は、暗闇では徐々に減少することが見られる。ジャスミン8で処理すると、これらの相互作用がさらに減少します。一度習得すると、この技術は、適切に実行されれば、植物の準備が整った後、1週間で行うことができます。この手順を試みる際には、健康な植物を維持することを覚えておくことが重要です。葉に注意深く浸透し、コントロールを適切に含めます。開発後、この技術は、シグナルトランザクションの分野の研究者がタンパク質タンパク質の相互作用ダイナミクスを迅速に探求するための道を開きます。このビデオを見た後、タバコ植物を育てる方法、タバコの葉にアグロバクテリアを浸透させる方法、および透明の活動を検出する方法についてよく理解しているはずです。

luciferase-complementation-imaging-assay-nicotiana-benthamiana-leaves

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

この記事では、タマネギ表皮細胞にプラスミドDNAを導入する遺伝子銃をヘリオス適切にBioRad社製を使用する方法を示して、どのように二分子蛍光相補性の原理（BiFC）に基づいて、タマネギの細胞におけるタンパク質間相互作用をテストする...

ヘリオス遺伝子銃を用いたタマネギの細胞における蛋白質 - 蛋白質相互作用のための二分子蛍光相補（BiFC）アッセイ

我々は、植物におけるタンパク質間相互作用をテストする手法を開発した。黄色蛍光タンパク質（YFP）がつの非オーバーラップフラグメントに分割されます。各断片は融合タンパク質の発現を可能にする、ゲートウェイのシステムを経由して目的の遺伝子にインフレームでクローニングされる。検死のタンパク質が相互作用するときにYFPシグナルの再構成にのみ発生します。...

ゲートウェイ互換二分子蛍光相補（BiFC）システムを使用してプラントにおけるタンパク質相互作用の検出

このビデオでは、タンパク質間相互作用を検出するための分割ルシフェラーゼ相補アッセイを実演しています。このアッセイでは、目的のタンパク質がルシフェラーゼ酵素の小さなフラグメントと大きなフラグメントにタグ付けされます。タンパク質が相互作用すると、大小の断片が結合して活性酵素複合体を形成し、特定の基質の存在下で測定可能な明るい発光を放出します。...

特異的なタンパク質間相互作用を同定するためのスプリットルシフェラーゼ相補アッセイ

アグロバクテリウムは、（タバコモザイクウイルスベース）の起動ベクタを運ぶと真空浸透に基づいてタバコ植物での一過性のタンパク質生産は、ワクチン抗原および治療 ​​用タンパク質を生産するための迅速かつ経済的なアプローチです。我々は、手順を簡略化し、細菌培養の条件を最適化する宿主種の選択、RNAサイレンシング抑制因子を共導入することにより、目標蓄積を改善した。...

最適化と利用の<em&gt;アグロバクテリウム</em中&gt;媒介一過性タンパク質産生<em&gt;タバコ</em

インビボでのタンパク質複合体の形成は、二分子蛍光相補性によって視覚化することができる。相互作用パートナーは、蛍光タグの相補的部分に融合し、一過性にタバコの葉で表現、2つのタンパク質の接近したとき、再構成可能な蛍光シグナルをもたらしている。...

タバコプロトプラストと葉で二分子蛍光相補性によって可視化し、タンパク質間相互作用

細胞内レベルでは、シグナル伝達イベントは発生的および環境的な手がかりによって動的に調節されます。ここでは、タバコの一過性発現システムを使用して、動的なタンパク質間相互作用を監視し、植物細胞におけるシグナル伝達の空間的構成を明らかにするプロトコルについて説明します。...

タバコ一過性発現系を使用したMAPKシグナル伝達経路の空間再編のイメージング

ここで提示されたプロトコルは、スプリットルシフェラーゼ相補アッセイの最新の変異体を用いて、生きた哺乳動物細胞におけるゴルジ常駐III型膜タンパク質と細胞質的に露出したN末端および/またはC末端との間の異種相互作用の発生を実証することを意図している。...

スプリットルシフェラーゼ相補アッセイを用いたゴルジレジデントIII型膜タンパク質によって形成される異種複合体の実証

ニコティアナ・ベンタミアナで一過性発現するIgG融合タンパク質の製造

ここでは、BiFCベースのFRET-FLIMアッセイによる蛍光タグ付きタンパク質を用いた3つのタンパク質パートナー間の三元複合体形成を可視化する方法を提示する。この方法は、...

BIFC-FRET-FLIMアッセイによるMADS型転写因子の2つのモノマーとカルシウムセンサタンパク質の三者間相互作用の測定

蛍光共鳴エネルギー移動(FRET)は、生細胞におけるタンパク質相互作用を検出するためのイメージング技術です。ここでは、ヒストン修飾酵素と、植物組織における遺伝子発現のエピジェネティックな調節のためにそれらを標的プロモーターに動員する転写因子との関連を研究するためのFRETプロトコルが提示されています。...

蛍光共鳴エネルギー移動による 生体内 におけるヒストン修飾酵素と転写因子の相互作用の解明

このプロトコルは、ウイルス-プラスモデスマタ相互作用またはプラスモデマーム輸送中にプラスモデスマタを標的とするタンパク質の共焦点顕微鏡法に基づく分析のための最適なプラスモデスママーカーの選択を説明しています。...

Nicotiana benthamianaにおけるPlasmodesmataへのタンパク質ソーティングの共焦点顕微鏡分析

学ぶルシフェラーゼイメージングによるNicotiana benthamiana葉でのタンパク質間相互作用の定量解析。一過性発現システムを用いてシグナル伝達経路の動態を迅速かつ正確に評価する手法です。

ベンサミアーナタバコ葉蛋白質蛋白質の相互作用ダイナミクスの一過性の決定のための試金補完ルシフェラーゼイメージング

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ベンサミアーナ タバコ葉蛋白質蛋白質の相互作用ダイナミクスの一過性の決定のための試金補完ルシフェラーゼ イメージング

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