Name: ヘリオス遺伝子銃を用いたタマネギの細胞における蛋白質 - 蛋白質相互作用のための二分子蛍光相補（BiFC）アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-12T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 39 s
Description: 学ぶBiFC法を用いたタマネギ細胞におけるタンパク質間相互作用の可視化。ヘリオス遺伝子銃によるDNA導入と蛍光顕微鏡観察で、転写因子SEUとLUHのin vivo相互作用を検出する実験手法を解説します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我々は、博士に感謝する。 35S用のスティーブマウントと小寧張：：GFP pGlowbug構造とHokensen博士フェローシップCH研究にZ. L&#39;の研究室では、米国国立科学財団（IOB0616096とMCB0744752）によってサポートされています。 ZLは部分的にメリーランド州農業試験場の大学によってサポートされています。

I.プラスミド調製砲撃のために使用されるプラスミドDNAは高純度と500ng/μl以上の濃度ででなければなりません。 BiFCは2つのプラスミドコンストラクトを含むために、各プラスミド25μgのが必要です。言い換えれば、2つのプラスミドの1:1のモル比は、カートリッジの準備のために50μgのプラスミドDNAの総を生じさせるために混合されるべきである。 50μgのより多くのDNAを追加すると金粒子の凝集を引き起こす可能性があり、避けるべきであることに留意してください。市販のプラスミドDNA抽出キットは、プラスミドDNAを単離するために推奨されています。 プラスミドベクターは、pUC19のようなサイズが比較的小さいはずです。我々は、それぞれ3、pUC19を- SPYNE及びpUC19 - SPYCEにSEUとLUH cDNAをクローニングした。 アグロバクテリウムによる形質転換用バイナリーベクターには大きすぎると爆撃には不向きです。 II。カートリッジの準備カートリッジの準備は、プラスミドDNAと続いて遺伝子銃のカートリッジホルダーにロードすることができる半インチ長い断片に切断されているプラ​​スチック製のチューブにそれらをロードするとコーティングの金粒子を含む。カートリッジの準備は別々のJoveの記事4に詳しく説明されていますので、ここでは説明されていません。タマネギの細胞の爆撃のために、我々は、1μgのDNA/0.25 MGゴールド/カートリッジで50カートリッジに約をもたらす準備あたりの金粒子、12.5 mgのプラスミドDNA50μgのを混合することをお勧めします。各カートリッジには、ワンショット用です。金粒子は、0.6μm以下または直径が1.0μmの（;バイオラッドカタログ番号1652262またはCat＃1652263）のいずれかになります。我々はまた、カートリッジの準備のためには0.5 mg / mlのPVP溶液を使用することをお勧めします。 BiFCの場合は、同じカートリッジの準備の各推定相互作用のパートナーの2つのプラスミドDNAを結合する。 カートリッジの準備の後、ペトリ皿の周りにラップされている正方形のパラフィルムに150から200 psiの間にヘリウム圧力で新たに作られたカートリッジを焼成してカートリッジをテストすることが重要です。金粒子は、カートリッジから効率的に推進することができればこれがテストされます。あ​​なたは、パラフィルム上でかすかな金粒子が表示されるはずです。これにより、各ショットがカバーする領域のアイデアを提供します。あなたが別のヘリウム圧力（150-200 psiの範囲にある）で、パラフィルムの上に推進さの金粒子の量が異なることがあります。有意差がない場合は、爆撃のためのより低い圧力を選択してください。 III。タマネギの組織の準備撮影の日に、大規模な黄色のタマネギから外側の皮膚が剥離してしまいます。クリーンで鋭いカミソリの刃を使用して、約2 × 8 cmの深さの矩形領域4から5層をカット。 、長方形のタマネギの組織を取り出し、外側の2つの層を捨てる、2X1.5 cm程度の小片にタマネギの残りの層をカット。ろ紙（ワットマン3MMペーパーに円にカット）を含むペトリ皿にタマネギの部分を配置するには、滅菌水で湿らせた。ペトリ皿をカバーし、彼らが行って準備ができている。 IV。砲撃<ol><li>白い丸いカートリッジホルダーにカートリッジをロードする。別のプラスミドコンストラクトを含むカートリッジは、別のカートリッジホルダーにロードする必要があります。各カートリッジホルダーは12枚で12カートリッジを収容できます。 </li><li>ヘリオス遺伝子銃にバッテリーと新鮮なバレルのライナーを挿入します。バレルライナーと銃の両方が接続されたそれぞれのO -リングを持っていることを確認してください。 </li><li>最初に、銃の上部が直面しているカートリッジホルダーのマーク＃12で、遺伝子銃に空のカートリッジホルダーを挿入する。アドバンスカートリッジホルダーは、一度か二度、それが正しく挿入されていることを確認する。 </li><li>ヘリウムタンクに銃を取り付け、150から200 psiの間の圧力を調整する。 </li><li>銃のチャンバーを一掃すると圧力が安定していることを確認するために、空のカートリッジホルダーに耳の保護と火災の銃を数回着用してください。 </li><li>空のカートリッジホルダーを取り外し、ロードされたカートリッジホルダーを挿入します。あなたが解雇するカートリッジはカートリッジホルダーの底部（6時位置）に配置されるように、カートリッジホルダーを進める。ここでタマネギの部分を撮影するとバックグラウンド蛍光の陰性コントロールのフォームが用意されています。 </li><li>上向きにタマネギの最も内側の層を持つ空のペトリ皿の中央にタマネギのピースを置きます。ペトリ皿上に遺伝子銃の銃身のライナーを置き、トリガーを引きながらサイドボタンを押したままにして拳銃を発射する。湿った3MM濾紙を含むペトリ皿に砲撃タマネギを転送する。 </li><li>次のカートリッジに進み、別のタマネギの部分を発生させます。玉ねぎ4〜5枚が撮影されるまで、この手順を繰り返します。各タマネギの部分は一度撮影されています。 </li><li>別のプラスミドまたは異なるプラスミドの組み合わせを含むカートリッジを搭載した別のカートリッジホルダーに変更。バレルライナーを変更してくださいsはよく汚れを防止する。四から五タマネギの部分を撮影。 </li><li>爆撃の後、perti皿にすべての玉ねぎを返します。蓋つきペトリ皿をカバーしています。乾燥を防ぐためパラフィルムでそれらをラップします。 16〜48時間、暗所で室温でタマネギの部分をインキュベートする。 </li><li>ヘリウムタンクから遺伝子銃をデタッチする前にガスと放出圧力をオフにします。ネジを外しバレルライナー、およびカートリッジのホルダーと（または未使用）使用済みカートリッジを取り外します。 </li><li>せっけん水とビーカーにそれらを沈めることによってカートリッジホルダーとバレルライナーのクリーニング。風呂のソニケーターにビーカーを置き、20分間超音波処理。その後、すべての石鹸の残留物を除去するために水ですすいでください。時間を70％エタノールでそれらを浸し、その後、ペーパータオルの上に乾燥させる。 </li></ol> V.観測<ol><li>室温で16〜20時間砲撃タマネギの部分をインキュベートした後、我々は本研究で使用されているようなツァイスAxioはObserver.z1として蛍光顕微鏡を用いてGFPまたはYFPの蛍光を観察することができます。 </li><li>タマネギの内側の表皮（直接砲撃中に銃を向く層）から単一細胞層皮をゆっくりと平らな端部と鉗子を使用してください。スライド上の水滴の上に皮を置きます。カバースリップを追加しますが、気泡を最小限に抑えるように注意してください。 </li><li>顕微鏡の明視野の下、最初の細胞が生きていることを確認するために細胞質流動を確認してください。そのためには、色素の移動を探してからタマネギの組織をウォームアップする数分間明るい場光にスライドを公開して。細胞質流動は、常に参照することは容易ではない、ので、何も表示されない場合落胆されません。 </li><li>蛍光検出の場合は、GFPまたはYFPのために適切な励起および検出フィルタを使用してください。このような非蛍光性プラスミドで撮影タマネギピースなどのネガティブコントロールを含めることは重要である。かすかな黄色の信号が傷ついた細胞、気泡、または破片から表示されることがあります。ポジティブコントロールを含めることも重要です。このような35Sのようなプラスミドを含む恒常的に発現蛍光レポーター：：GFPは、優秀なポジティブコントロールです。タマネギ表皮細胞（図1A、D）から見えるGFPシグナルは、カートリッジ、タマネギの組織、および遺伝子銃の発砲が適切に準備され、実行されていることが示された。 ：SEU - pSPYNEと35S：：：LUH - pSPYCEのDNAはその後、我々は、35Sの混合物を含むカートリッジが殺到タマネギの部分でSEU - pSPYNEとLUH - pSPYCE間の相互作用を観察した。かすかなYFPの蛍光が核内に一緒に分割YFPの断片をもたらしたSEUとLUH間の直接的な物理的相互作用を示し、（図1のB、E）のみ核内に観察された。 ：GFP：BiFCからYFPシグナルは35SからGFPの信号よりもはるかに弱いことに注意してください。 </li></ol>代表的な結果我々の研究では35S、ここで報告：：GFP陽性対照はプラスミド核と細胞質（図1A、D）の両方を含むセル全体を塗りつぶし、強い蛍光を発します。 GFPタンパク質は核局在化シグナルなしに核内に拡散するのに十分小さいです。対照的に、SEUとLUHは、以前に酵母two - hybridアッセイ2に相互作用するように、2つのシロイヌナズナの転写因子です。 SEU - pSPYNE（SEUはYFPのN末端 ​​フラグメントに融合）とLUH - pSPYCE（SEUはYFPのN末端 ​​フラグメントに融合）、核内に拡散するには大きすぎるの両方、核局在化シグナル2,5が含まれています。タマネギの細胞核（図1 B、E）で検出されたYFP蛍光シグナルは、SEU - pSPYNEとLUH - pSPYCEはタマネギの核で対話できることを示します。いいえ蛍光シグナルがYFPとLUH - pSPYCE（図1C、F）のN末端フラグメントを含有するベクタープラスミドpSPYNEのプラスミド混合が殺到玉ねぎに検出されない。 BiFC介したYFPの蛍光は35SからGFPを介した蛍光よりもかなり弱いです：：GFPプラスミド。私たちの研究では、彼らはまた、（Bと図1Aと比較）異なる細胞内局在性を示した。両方のパートナーのプラスミドが正常に入力すると、同じタマネ​​ギの細胞で発現しているときにBiFCのみ動作としてさらに、蛍光細胞の数は、BiFC著しく低いのが特色です。 <img src="/files/ftp_upload/1963/1963fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1蛍光（A、B、C）と明視野（D、E、F）タマネギの細胞のイメージが異なるプラスミドコンストラクトが殺到。 （A）と（D）、タマネギの細胞は、35Sが殺到：：GFP。 GFPは細胞質と核外を通して拡散する。 （B）と（E）、タマネギの細胞は、35Sの等モルミックスが殺到：：SEU - pSPYNE（SEUはYFPのN末端フラグメントに融合）し、35S：：LUH - pSPYCE（LUHは、C -末端断片に融合）プラスミドDNA。 SEU - pSPYNEとLUH - pSPYCE間の相互作用を蛍光核によって示されています。 （C）と（F）、ベクターpUC19 - SPYNEとLUH - pSPYCE plasmiのミックスが殺到タマネギの細胞を示す陰性対照DS。いいえ蛍光信号が検出されていません。

<ol><li>Hu, C. D., Chinenov, Y., Kerppola, T. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+interactions+among+bZIP+and+Rel+family+proteins+in+living+cells+using+bimolecular+fluorescence+complementation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">Visualization of interactions among bZIP and Rel family proteins in living cells using bimolecular fluorescence complementation.</a> Mol Cell. 9 (4), 789-789 (2002).</li>
<li>Sitaraman, J., Bui, M., Liu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LEUNIG_HOMOLOG+and+LEUNIG+perform+partially+redundant+functions+during+Arabidopsis+embryo+and+floral+development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">LEUNIG_HOMOLOG and LEUNIG perform partially redundant functions during Arabidopsis embryo and floral development.</a> Plant Physiol. 147 (2), 672-672 (2008).</li>
<li>Walter, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+protein+interactions+in+living+plant+cells+using+bimolecular+fluorescence+complementation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Visualization of protein interactions in living plant cells using bimolecular fluorescence complementation.</a> Plant J. 40 (3), 428-428 (2004).</li>
<li>Woods, G., Zito, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+gene+gun+bullets+and+biolistic+transfection+of+neurons+in+slice+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
<li>Azhakanandam, S., Nole-Wilson, S., Bao, F., Franks, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SEUSS+and+AINTEGUMENTA+mediate+patterning+and+ovule+initiation+during+gynoecium+medial+domain+development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">SEUSS and AINTEGUMENTA mediate patterning and ovule initiation during gynoecium medial domain development.</a> Plant Physiol. 146 (3), 1165-1165 (2008).</li>
<li>Zhang, X. N., Mount, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+alternatively+spliced+isoforms+of+the+Arabidopsis+SR45+protein+have+distinct+roles+during+normal+plant+development%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Two alternatively spliced isoforms of the Arabidopsis SR45 protein have distinct roles during normal plant development.</a> Plant Physiol. 150 (3), 1450-1450 (2009).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

<ol><li> ：GFPまたは35S：：：GUS、初めてユーザーのために、我々は、35Sのような単一のプラスミド構成レポーターで、カートリッジの準備から観察するために、全体の手順を練習することをお勧めします。我々は、35Sを使用：：プラスミドGFPは、博士から入手。スティーブ山と小寧張6（図1A、D）。 RioRad（猫165〜2244）で販売して遺伝子のショットコントロールのカートリッジは、植物には適していません。 </li><li> BiFCは、2番目のポジティブコントロールは、それぞれ、C末端とYFPのN末端フラグメントに融合つの既知の相互作用のパートナーで構成される必要のある、必要がある。 </li><li> BiFCの場合、それはいくつかのネガティブコントロールを含める必要があります：（1）蛋白質XがYFPのN末端フラグメントに加え、C末端断片をコードするベクターに融合された、（2）タンパク質YはC末端フラグメントに融合YFPプラスN末端断片をコードするベクターを、（3）ベクトルだけ。 </li><li>組織の損傷を減らすのに役立つショットを、発射時の拡散の画面は、ヘリオス遺伝子銃のバレルのベースに使用することができます。私たちの研究では、我々は拡散...

<table><tbody><tr><td>黄玉ねぎ</td><td>任意</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Helios Gene Gun</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GFPまたはYFP用の適切なフィルターを備えた蛍光顕微鏡</td><td>Zeiss, Nikon, Olympus</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ヘリオス遺伝子銃を用いたタマネギの細胞における蛋白質 - 蛋白質相互作用のための二分子蛍光相補（bifc）アッセイ

Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) Assay for Protein-Protein Interaction in Onion Cells Using the Helios Gene Gun

多様な生物の遺伝子機能の調査では、遺伝子産物が正常な細胞環境の相互作用についての知識に依存しています。二分子蛍光相補（BiFC）アッセイ<sup&gt; 1</sup&gt;研究者は生きた細胞におけるタンパク質間相互作用を可視化することを可能にし、不可欠な研究ツールとなっています。このアッセイは、それぞれの潜在的な相互作用タンパク質のパートナーに融合されている蛍光タンパク質（GFP）の2つのフラグメントの促進関連に基づいています。二つのタンパク質パートナーの相互作用は、蛍光につながる、N末端とGFPのC末端フラグメントの関連付けを容易にするだろう。植物研究者のために、タマネギ表皮細胞が原因タマネギの組織を取得し、準備の容易さと最小のバックグラウンド蛍光と蛍光の直接可視化のBiFCアッセイを実施するための理想的な実験系です。ヘリオス遺伝子銃（バイオラッド）は、一般的にタマネギの細胞にプラスミドDNAを砲撃するために使用されます。私たちは、の使用は対話する2つの用プラスミドコンストラクトを導入する遺伝子銃をヘリオス示す<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;転写因子、スース（SEU）とLEUNIGホモログ（LUH）<sup&gt; 2</sup&gt;とタマネギ表皮細胞でBiFCによって媒介それらの相互作用の可視化。

この記事では、タマネギ表皮細胞にプラスミドDNAを導入する遺伝子銃をヘリオス適切にBioRad社製を使用する方法を示して、どのように二分子蛍光相補性の原理（BiFC）に基づいて、タマネギの細胞におけるタンパク質間相互作用をテストする

ヘリオス遺伝子銃を用いたタマネギの細胞における蛋白質 - 蛋白質相互作用のための二分子蛍光相補（BiFC）アッセイ

多様な生物における遺伝子機能の解明は、正常な細胞内において遺伝子産物が互いにどのように相互作用しているかという知見に基づいています。

この手順では、2つのシロイヌナズナ転写調節因子であるSEU（SEUS）とLUH（LUHOLOG）の間のin vivoにおけるタンパク質間相互作用を検証します。バイオ分子蛍光相補法を利用し、SEUを黄色蛍光タンパク質（YFP）のN末端断片に、LUHをYFP DNAのC末端断片にそれぞれ融合させ、2つのプラスミド構築物を作成します。これらのSEU-NYFPおよびLUH-CYFPをタマネギ表皮細胞に粒子銃法で導入し、相互作用を検証します。SeussとLUHの相互作用により、核内でYFPの末端フラグメントとC末端フラグメントが結合し、核内でYFP蛍光が誘導されます。暗所で16から20時間インキュベートした後、蛍光顕微鏡下でタマネギ表皮剥離組織を観察し、蛍光を可視化します。こんにちは、メリーランド大学細胞生物学・分子遺伝学部、Zhi Lu博士の研究室のCourtney Hollanderです。本日は、BioRad Helios जीनガンを用いてタマネギ細胞でタンパク質間相互作用を検証する手順について解説します。当研究室では、植物細胞におけるタンパク質間相互作用およびタンパク質の局在を検証するためにこの手法を用いています。それでは始めましょう。本手順を開始するにあたり、WoodsおよびZeto（2008年）によるJoVEプロトコルに従ってHelios遺伝子銃用のカートリッジを調製します。当該プロトコルでは、各カートリッジの調製手順が詳細に示されています。BIFC用として、50 µgの全プラズミドDNAを12.5 mgの金粒子および0.5 mg/mLのPVP溶液と混合します。同様のカートリッジ調製法を用いて、相互作用すると推定される2つのタンパク質のプラズミドDNA、すなわちYFPのN末端半分に融合させたSeuss（略称：seus-NYFP）と、YFPのC末端半分に融合させたLU Homolog（略称：L-U-H-C-Y-F-P）を調製します。合計量は1回あたり50 µgであり、1カートリッジにつき0.25 mgの金に対し1 µgのDNAという条件で最大50個のカートリッジを作成できます。各カートリッジは1回限りの使用となります。カートリッジの調製後、金粒子が効率的に射出されるかを確認するためにテストを行ってください。パラフィルムの正方形の断片でペトリ皿を包みます。次に、ヘリウム圧力を150から200 PSIの間に設定し、新しく作成したカートリッジをパラフィルムの正方形に向かって発射します。パラフィルム上に淡い金粒子が観察されることを確認してください。ヘリウム圧力が異なると、パーフィン上に飛散する金粒子の量が変わる場合があります。ただし、有意な差がない場合は、低圧側でボンバードメントを行ってください。また、このテストによって、1回のショットでカバーされる領域を確認することができます。タマネギ組織を準備するために、清潔で鋭利なカミソリを使用して、大きな黄タマネギの外皮を剥きます。2×8 cmの長方形の領域を、4～5層の深さまで切り出します。切り出した長方形のタマネギ組織を取り出し、外側の2層を廃棄します。タマネギの残りの層を、約1.5 cm四方の断片に切り分けます。3 mmのフィルターペーパーの円形切り抜きを入れたペトリ皿に、タマネギの断片を置きます。滅菌水で湿らせ、ペトリ皿に蓋をします。タマネギの断片が粒子銃による処理（ボンバードメント）の準備に整いました。まず、白い円形のカートリッジホルダーにカートリッジを装填します。異なるプラスミド構築物を含むカートリッジを、それぞれ別のカートリッジホルダーに装填してください。各カートリッジホルダーには最大12本のカートリッジを装填でき、12回のショットが可能です。ここでは3種類の異なるホルダーをロードしています。最初のホルダーには、カリフラワーモザイクウイルス由来の強力かつ構成的なプロモーターである35 S-G-F-P-Aを含むカートリッジが入っています。このプラスミドは陽性対照として使用されます。2番目のホルダーには、同量のS-E-U-N-Y-F-PとL-U-H-C-Y-F-Pを含む実験用カートリッジを装填します。3番目のカートリッジホルダーには、puck spineベクターとLUH puck spiceを等モルで混合したカートリッジを装填します。これはネガティブコントロールとしても機能します。バッテリーと新しいバレルライナーをHeliosジーンガンに挿入します。バレルライナーとガンの両方に、それぞれのOリングが装着されていることを確認してください。次に、カートリッジホルダーの番号12のマークがガンの上側を向くようにして、空のカートリッジホルダーをジーンガンに挿入します。カートリッジホルダーを1〜2回進めて、正しく挿入されていることを確認します。次に、ガンをヘリウムタンクに取り付け、圧力を150〜200 PSIに調整します。耳栓などの聴覚保護具を着用し、サイドボタンを押しながらトリガーを引いて、数回テスト射撃を行います。カートリッジホルダーが空の状態で射撃することで、ガンチャンバー内が洗浄され、圧力が安定します。DNAを射出する前に、タマネギの断片を射出することで、背景蛍光のネガティブコントロールとすることができます。DNAをコーティングした金粒子を射出するには、空のカートリッジホルダーを取り外し、ポジティブコントロールが入った最初の充填済みカートリッジホルダーを挿入します。カートリッジホルダーを進め、射出予定のカートリッジがカートリッジホルダーの底部に位置するようにします。次に、タマネギの断片を空のペトリ皿の中央に置き、タマネギの最も内側の層を上に向けます。ジーンガンのバレルライナーをペトリ皿に密着させ、発射します。次のカートリッジに進み、別のタマネギ断片に対して射撃を行います。タマネギの断片を4〜5個射撃するまで、この手順を繰り返します。各タマネギ断片は、射撃後に一度だけ射撃されます。射撃したタマネギ断片を、実験用カートリッジを射撃するための、湿らせた3 mmフィルターペーパーを含むペトリ皿に移します。カートリッジをHoldenに変更します。2点目に、コンタミネーションを防ぐため、バレルライナーを交換することを忘れないでください。陽性対照として、先ほど示したように、タマネギの断片を4〜5個ショットします。次に、陰性対照DNAを含むカートリッジHoldenの3番に交換します。そして、再び4〜5個のタマネギ片を注入します。汚染を防ぐため、バレルライナーを交換します。照射後、タマネギ片が入ったペトリ皿に蓋をします。乾燥を防ぐため、パラフィルムで包みます。タマネギの断片を室温、暗所で16〜48時間インキュベートします。粒子銃による導入が完了したら、ガスを遮断して圧力を解放してから、ヘリウムタンクから粒子銃を取り外します。その後、バレルライナーを緩めて、カートリッジホルダーと使用済みのカートリッジを取り出します。最後に、カートリッジホルダーとバレルライナーを石鹸水の入ったビーカーに浸し、超音波洗浄します。20分間洗浄してください。その後、水ですすいで石鹸残渣をすべて取り除きます。70% ethanolに1時間浸した後、ペーパータオルで乾燥させます。粒子銃照射から16〜20時間後にタマネギ片の観察を行います。照射したタマネギ片を室温で16〜20時間培養した後、平先のピンセットを使用して、タマネギの内表皮から単層の細胞層をゆっくりと剥離します。これは、爆撃時に銃に直接面する層です。剥離させた層を、スライドカバー上の水滴の上に置き、カバーガラスで覆います。その際、気泡が入らないように注意してください。ここに示されているZEISS Axio Observer Point Z1などの蛍光顕微鏡を用い、顕微鏡の明視野下でGFPまたはYFPの蛍光を観察します。まず、細胞が生存していることを確認するために、細胞質流動を確認します。その手順は以下の通りです。スライドを数分間明視野光にさらし、タマネギ組織を温めた後、プラスミドの移動を確認します。細胞質流動は必ずしも容易に観察できるとは限りませんので、はっきりと見えなくても落胆しないでください。蛍光検出には、GFPまたはYFPに適した励起フィルターおよび検出フィルターを使用してください。また、非蛍光プラスミドを導入したタマネギ片であるネガティブコントロールについても確認してください。損傷した細胞やデブリ、およびタマネギから、かすかな黄色信号が現れることがあります。また、陽性対照を確認してください。これは、構成的に発現する蛍光レポーターを含むプラスミドです。GFP蛍光は一部の細胞で確認されますが、すべての細胞で見られるわけではありません。また、気泡によって背景蛍光が生じることがあります。タマネギ表皮細胞からGFP信号が確認できれば、カートリッジ、タマネギ組織、およびジーンガンの射撃が適切に準備および実行されたことを示します。ここでは、35 SGFP陽性プラスミドから観察される強い蛍光を示しています。強い蛍光は、核と細胞質の両方を含む細胞全体に見られます。明視野像により、対応する細胞と核の輪郭を確認することができます。すべての細胞が形質転換されるわけではありません。Seuss、NYFP、およびL-U-H-C-Y-F-Pの実験的な組み合わせをタマネギ細胞に粒子銃法で導入すると、タマネギ細胞の核にYFP蛍光シグナルが検出され、Seuss NYFPとL-U-H-C-Y-F-Pがin vivoで相互作用することが示されました。しかし、この相互作用に起因する蛍光は、陽性対照である35 SGFPによる蛍光よりも著しく弱くなっています。さらに、SEUSおよびLUH転写因子は核に局在しています。したがって、YFP蛍光は核内でのみ観察されます。また、蛍光細胞の数は、35 SGFPポジティブコントロールの数よりも有意に少なくなります。これは、BiFCが、パートナーとなる両方のプラスミドが同一のタマネギ細胞内で発現した場合にのみ機能するためです。陰性対照として予想される通り、puck spine、ベクター、およびL-U-H-C-Y-F-Pの混合物を含むカートリッジホルダー3で bombarded されたタマネギでは、蛍光シグナルは検出されません。以上で、BioRad Helios 遺伝子銃システムを用いて、タンパク質間相互作用をテストするためのタマネギ細胞への bombarded 方法を説明しました。この手順を行う際は、適切なポジティブコントロールおよびネガティブコントロールを使用することが重要である点に注意してください。また、BIFCの蛍光はシグナルが弱くなる可能性があり、蛍光を発する細胞数も少なくなる可能性があることを念頭に置いてください。以上です。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

bimolecular-fluorescence-complementation-bifc-assay-for-protein

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

このプロトコルは、FRETに基づく近接アッセイを使用してどのようにイメージタンパク質間相互作用について説明します。...

イメージングタンパク質間相互作用 in vivoで</em

タンパク質の細胞内局在は、細胞シグナル伝達の時空間制御を決定する上で重要です。ここで、我々は、細胞内のタンパク質の空間的な相互作用を監視するための簡単​​な方法として、二分子蛍光相補（BiFC）を記述する。...

二分子蛍光相補

我々は、植物におけるタンパク質間相互作用をテストする手法を開発した。黄色蛍光タンパク質（YFP）がつの非オーバーラップフラグメントに分割されます。各断片は融合タンパク質の発現を可能にする、ゲートウェイのシステムを経由して目的の遺伝子にインフレームでクローニングされる。検死のタンパク質が相互作用するときにYFPシグナルの再構成にのみ発生します。...

ゲートウェイ互換二分子蛍光相補（BiFC）システムを使用してプラントにおけるタンパク質相互作用の検出

二分子蛍光相補のフローサイトメトリー分析は、タンパク質 - タンパク質相互作用を研究するためのハイスループット定量方法を提供するものである。この方法は、マッピング·タンパク質結合部位およびタンパク質 -...

二分子蛍光相補のフローサイトメトリー分析：タンパク質 - タンパク質相互作用を研究するためのハイスループット定量法

インビボでのタンパク質複合体の形成は、二分子蛍光相補性によって視覚化することができる。相互作用パートナーは、蛍光タグの相補的部分に融合し、一過性にタバコの葉で表現、2つのタンパク質の接近したとき、再構成可能な蛍光シグナルをもたらしている。...

タバコプロトプラストと葉で二分子蛍光相補性によって可視化し、タンパク質間相互作用

タンパク質間相互作用は、二分子蛍光相補(BiFC)と光活性化局在顕微鏡(PALM)を組み合わせることにより、ナノメートルの空間分解能で細胞内で可視化されます。ここでは、個々のRas-Raf複合体のナノスケールクラスタリングと拡散を視覚化するためのU2OS細胞内のRas-Raf相互作用をイメージングするためのBiFC-PALMの使用について説明します。...

二分子蛍光相補性を持つ光活性化ローカライゼーション顕微鏡（BIFC-PALM）

本稿では、ルシフェラーゼ活性の測定に基づく蛋白質蛋白質の相互作用を決定するための簡単かつ迅速な実験手順について説明します。...

ベンサミアーナ タバコ葉蛋白質蛋白質の相互作用ダイナミクスの一過性の決定のための試金補完ルシフェラーゼ イメージング

従来の方法の難しさを克服するために植物の複数のキメラ蛍光融合タンパク質の共発現手法を開発しました。タンパク質の共発現を達成するためにカセットを表現する複数の機能的に独立して蛋白質を含んでいる単一発現プラスミドを使用する利点がかかります。...

植物の効率的な方法で複数のキメラ蛍光融合タンパク質の共発現

このプロトコルは、C.エレガンス生殖細胞リンにおけるその場でのタンパク質相互作用をプローブするための近接ライゲーションアッセイの使用を実証する。...

近接ライゲーションアッセイを用いたC.エレガンス生殖細胞系列におけるリボヌクレオプロテイン複合体集合体のSITU検出

ここでは、BiFCベースのFRET-FLIMアッセイによる蛍光タグ付きタンパク質を用いた3つのタンパク質パートナー間の三元複合体形成を可視化する方法を提示する。この方法は、...

BIFC-FRET-FLIMアッセイによるMADS型転写因子の2つのモノマーとカルシウムセンサタンパク質の三者間相互作用の測定

このプロトコルは、目的のタンパク質に融合したビオチンリガーゼへのビオチンの近接性に基づいて、タンパク質へのビオチンの in vivo...

インビボParamecium tetraureliaにおけるタンパク質相互作用研究のための近接ビオチン化

学ぶBiFC法を用いたタマネギ細胞におけるタンパク質間相互作用の可視化。ヘリオス遺伝子銃によるDNA導入と蛍光顕微鏡観察で、転写因子SEUとLUHのin vivo相互作用を検出する実験手法を解説します。

ヘリオス遺伝子銃を用いたタマネギの細胞における蛋白質 - 蛋白質相互作用のための二分子蛍光相補（BiFC）アッセイ

さらに動画を探す