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糸状菌の生細胞イメージングのための膜および細胞壁選択的蛍光色素の応用
糸状菌の生細胞イメージングのための膜および細胞壁選択的蛍光色素の応用
JoVE Journal
Biology
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JoVE Journal Biology
Application of Membrane and Cell Wall Selective Fluorescent Dyes for Live-Cell Imaging of Filamentous Fungi

糸状菌の生細胞イメージングのための膜および細胞壁選択的蛍光色素の応用

Full Text
22,970 Views
07:44 min
November 28, 2019

DOI: 10.3791/60613-v

Alexander Lichius1, Susanne Zeilinger1

1Department of Microbiology,University of Innsbruck

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

重要な蛍光色素は、現代の真菌細胞生物学における生細胞イメージング解析に不可欠なツールです。本論文では、糸状菌における血漿膜動態、エンド/エキソサイトーシスおよび細胞壁形態形成を追跡するための確立された、あまり知られていない蛍光色素の適用について詳しく述べる。

膜および細胞壁選択的蛍光色素は、細胞内ダイナミクスや生きた真菌細胞の解析に重要なツールです。当社のプロトコルは、真に重要な汚れとしてこれらの染料の選択の適用のための本質的な理論的背景と実用的なガイドラインを提供します。そのための重要なポイントは、高品質で長期間のライブセルイメージングに優れた信号対ノイズ比を提供しながら、飽和や色素毒性に関連する細胞アーティファクトを引き起こさない非常に低い色素濃度を使用することです。

医学大学核医学科の同僚と共に、最近、これらの染色技術を用いて、アパーギルス症の画像誘導診断のための新しいアプローチを開発しました。膜構造と細胞壁構造をリアルタイムで監視する能力は、実験薬化合物の取り込みダイナミクスを決定するために重要でした。この手順を開始するには、まず準備済みの前培養を取得する。

滅菌メスを使用して、前培養のコロニー端から非胞体を運ぶ小さな寒天ブロックを切断する。新鮮な固体培地プレートの中央に寒天ブロックを置き、実験培養を接種します。培養を意図した発達段階に従って実験培養をインキュベートする。

サンプル調製はやや繊細であり、画像取得設定の最適化はかなり複雑である。口頭で説明を伴う両方の手順の視覚的なデモンストレーションは、複製性を大幅に促進します。サンプルを取り付けるには、清潔な24 x 60ミリメートルのガラスカバースリップを準備し、18マイクロリットルの液体最小培地または生理塩溶液を中央に加えます。

蓋の中央にある液体に調製した20マイクロモル色素の作業溶液の2マイクロリットルを加え、気泡の生成を避けながら上下にピペット加工することによってよく混ぜます。きれいなメスを使用して、コロニーの周囲から15 x 15ミリメートルのサンプルを切り取り、カバースリップの中液滴の横に垂直に置きます。メスを使用してブロックの上端を支え、指でブロックの後部を所定の位置に保持します。

その後、液状に菌糸体を運ぶ側をゆっくりと下げる。準備したサンプルを顕微鏡のステージに取り付ける。まず、テキストプロトコルで概説されているように、個々の催眠術で立ちダイナミクスをキャプチャするために、基本的な画像取得設定を調整します。

エンドサイトーシス取り込みアッセイの場合、図1と表1のテキストプロトコルを参照して、顕微鏡システムで利用可能なFM 143またはFM 464の最適な励起および放出設定を特定し、システム内でこれらの設定を調整します。以前に調整した設定を使用して画像記録を開始し、結果を評価します。次に、実験に焦点を当てた血漿膜またはエンドサイトーシスダイナミクスの側面を捉えるために必要な空間的および時間的解像度に画像取得設定を最適化する。

セル壁ダイナミクスの場合、図4と表1のテキストプロトコルを参照して、適用された細胞壁色素に最適な励起および発光設定を特定し、顕微鏡システムの設定を適宜調整します。以前に調整した設定を使用して画像記録を開始し、結果を評価します。次に、実験に焦点を当てた細胞壁形態形成の側面を捉えるために必要な空間的および時間的解像度に画像取得設定を最適化する。

細胞プロセスを視覚化するだけでなく、ライブセルイメージングにより、記録されたデータから定量的な情報を抽出できます。FM 464取込アッセイの一例では、真菌サンプルはコロニーとして栽培され、逆方寒天ブロック法によって取り付けられる。このアッセイは、トリコデルマアトロビライドの真菌特異的タンパク質SFP2の遺伝子欠失および遺伝子過剰発現変異体におけるエンドサイトーシスの時空間組織における欠陥を同定した。

デンドサイトコンパートメントを標的とする蛍光融合タンパク質のFM464共染色の例をここに示す。この共染色は、膜貫通タンパク質にタグ付けされた2つの強化された緑色蛍光タンパク質の細胞内分布を、SFP2およびGPR1、トリコデルマアトロビライド中のエンドサイト経路に関連付けるために採用される。形態遺伝学的な違いを同定するためのFM 464共染色の一例は、この共染色が、敗血症および偏光性ヒphphal先端成長の形成などのいくつかの人身売買依存的プロセスの終わりまで、小麦粉に標識されたBUD-6極性複合体タンパク質の細胞内局在化ダイナミクスのさらなる関係を可能にすることを示している。

また、神経スポラ・クラッサの野生型と変異株の間の細胞内組織および催眠アーキテクチャの違いを特徴づける。代表的な細胞壁染色は、カルコフルオール白、ソロフェニルflavine、および細胞壁ポリマーを有するコンゴレッドの異なる相互作用特性が、デルタSFP2突然変異体とトリコデルマアトロビライドの野生型株との間の形態遺伝学的な違いを強調することを示している。色素濃度の上昇によって生じる細胞壁応力を高めることは、より迅速に起こり、野生型と比較して突然変異体でより顕著である。

さらに、同じ画像は、両方の株間の催眠直径および中隔距離に関する形態遺伝学的な違いを定量化することを可能にする。細胞壁生合成の代表的なリアルタイムモニタリングは、非常に低いカルコフルオール白濃度が色素分子による細胞壁の飽和を防ぎ、細胞壁生合成の定量的リアルタイムモニタリングを可能にすることを示している。これは、新しい細胞壁材料の堆積物が均一ではないことを明らかにするが、神経スポラ・クラッサにおける真核注入の前に細胞間の結合時に1細胞の相対的な変位に起因する局所的な物理的ストレスに非常に迅速に応答する。

少ない方が多いです。細胞プロセスで蛍光マーカーの干渉を排除するために、できるだけ少ない色素を使用してください。この手順に従って、光漂白実験後の蛍光回収を行い、輸送および生物発生性運動を定量化することができた。

ミレニアムの初めに糸状菌の膜と細胞壁染色の先駆的な導入は、文字通り私たちが真菌を見る方法に革命を起こしました。カルコフルオール白は眼刺激を引き起こす可能性があり、分類された癌性物質である。コンゴ赤は発火性と催奇性なので、これらの染料を扱うときは目と皮膚の保護を着用してください。

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生物学 問題153 蛍光バイタル染料 生細胞イメージング 糸状菌 トリコデルマアトロビライド ニューロスポラクラッサ 細胞壁染色 形質膜染色 エンドサイトーシス追跡 共焦点レーザー走査顕微鏡 定量画像解析

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