Name: 종양 미세 환경의 모방 : 세포 간 통신을 농축 세포 인구를 생성 및 조사를위한 간단한 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-20T08:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: 배우세요 종양 미세환경을 모방하는 간단한 공배양 모델을 통해 세포 간 통신을 연구하는 방법을. 이 기법은 형광 표지 없이 농축된 세포 집단을 생성하여 암 생물학 및 방사선 생물학 연구에 활용할 수 있습니다.

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이 연구는 New Jersey Commission on Cancer Research(Pre-Doctoral Fellowship DFHS13PPCO17), National Institutes of Health(CA049062) 및 National Aeronautics and Space Administration(NNX15AD62G)의 보조금으로 지원되었습니다.

문화 미디어와 세포의 1. 준비 <ol><li> 이글의 최소 필수 12.5 % (부피 / 부피)으로 보충 된 배지 열 활성화 된 우 태아 혈청 (FBS), 2 mM의 L- 알라 닐 -L- 글루타민, 페니실린 100 유니트 500 ㎖의 용액 당 스트렙토 마이신 100 μg의 준비. 주 : 성장 배지 및 보충 (들)을 쉽게 다른 세포 균주 또는 세포주의 성장 조건에 대해 교환 될 수있다. </li><li> 각각의 인서트 (6 웰 포맷 인서트)를위한 세포 배양 배지 70 ㎕를 준비 : 이글의 최소 필수 배지는 50 % (vol / vol) 열 활성화, FBS 2 mM의 L- 알라 닐 -L- 글루타민, 100 단위로 보충 페니실린과 스트렙토 마이신 ml의 당 100 μg의. 주 : 배지는 인서트의 바닥면 (즉, 하측)에 세포 부착을 용이하게하기 위해 50 % FBS가 보충된다. 성장 배지 및 보충 (들)을 쉽게 다른 세포 균주 또는 세포주의 성장 조건에 대해 교환 될 수있다. </li><li>인서트의 바닥면에 도금 될 운명 세포의 세포 현탁액을 준비한다. 주 : 여기에서, 결과 AG1522 75 ㎠로 세포 배양 플라스크에서 배양 정상적인 인간 섬유 아세포를 사용하여 수득하고, 이들 세포 따라서 세포 현탁액의 제조에 대한 설명이 분명 할 것이다. </li><li> 세포를 수집하기 위해, 성장 배지를 제거하고 5 ㎖ 1X 인산 완충 생리 식염수 (PBS)으로 세포 단층 배 씻는다. </li><li> PBS를 제거하고 RT (실온)에서 2 분 동안 세포를 실온 (RT)을 미리 예열 2.21 mM의 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA)과의 트립신, 0.25 % (부피 / 부피) 1 mL의 확산. </li><li> (단계 1.1에서 제조) 완전 성장 배지 9 ml의 트립신 활성을 켄 칭하고 부드럽게 플라스크에 10 배의 표면에 세포 현탁액을 피펫 팅하여 세포를 수집한다. </li><li> 혈구 전자 계수기를 사용하여 세포 농도를 결정하고 제공하기 것이다 세포 현탁액 부피 피펫전자 멸균 15 ML의 원심 분리기 튜브에 삽입 당 250,000 세포. </li><li> 원심 분리하여 세포 현탁액 (800 XG, 2 분) 펠렛. 70 μL 당 250,000 세포의 농도를 생성한다 (단계 1.2에서 제조) 성장 배지에서 세포 펠렛을 중지. 주 : 투과성 미다 공막 인서트의 세포 배양 물이 2 차원 기판에 근거 같이 세포가 초기에 부착을 촉진하는 50 % (부피 / 권) FBS를 포함하는 배지에 현탁한다 제외한 셀 시드가 마찬가지로 실행된다. </li></ol> 삽입 2. 준비 참고 : 세포 배양에 전념 층류 생물 안전 캐비닛에 무균 조건, 작업을 확인하십시오. <ol><li> 0.4 ㎛의 멤브레인 기공 크기 1 ㎛, 3 ㎛의로 선택 인서트 (기공 크기 실험이자 (들)에 의해 결정이 간 통신의 다른 모드의 역할을 조사하기 위해 사용될 수있다). 주 : 0.4 μm의 기공에 작은입니다L은 충분히 삽입 막의 양쪽 셀 간의 기능 차이 접합의 형성을 제한하는 요인에 의해 분비 세포 간 통신을 연구하는데 사용될 수있다. 반면, 1 ㎛ 내지 3 ㎛의 기공이 작동 갭 접합의 형성을 허용하기에 충분히 크고 갭 정션 분비 인자 모두 간 통신을 연구하는데 사용될 수있다. </li><li> 포장에서 개별 삽입물을 제거하고 동일한 크기의 멀티 잘 접시에 배치합니다. 참고 : 삽입 특정 애플리케이션 요구에 맞게 다양한 막 표면 영역을 사용할 수 있습니다 (예를 들어, 6 자, 12도, 24도 삽입.). 여기서, 결과는 6- 웰 인서트를 사용하여 수득 하였다, 따라서 모델 설명의 초점이 될 것이다. </li><li> 접시 뚜껑 인서트를 포함, 접시를 커버. 두 손으로 멀티 잘 접시를 잡고 부드럽게 삽입 바닥 (즉, 아래쪽은) 지금 위쪽으로 향하게되도록 접시를 반전. </li><li> 일을 제거인서트의 바닥면을 노출시키는 멀티 웰 접시의 바닥 E. 한 번에 하나의 삽입 작업, 포셉의 살균 쌍을 사용하여 조심스럽게 제자리에 삽입을 누릅니다. 무료 손으로, 25 만 세포를 포함하는 세포 현탁액 (단계 1.3-1.8에서 제조)의 70 μl를 그리는 넓은 입 팁 피펫을 사용합니다. </li><li> 세포를 플레이트에 삽입의 멤브레인의 중심을 부드럽게 피펫 팁을 배치하고, 천천히 막의 표면 주위 피펫 팁을 이동하면서 서서히 세포 현탁액 70 μL 피펫. 삽입의 가장자리에 피펫 팁 및 세포 현탁액을 연장하지 않도록주의하십시오. 주 : 인서트의 가장자리를 터치하면 첨부 동안 건조 셀에 이르는 세포 현탁액 모세관 장력의 손실을 초래할 수있다. </li><li> 주의를 행사하지 않을 가능성이 미생물 오염을 방지하기 위해 노출 삽입을 통해 직접 작업에, 나머지 삽입을 반복합니다. </li><li> 조심스럽게 다 잘 돌아갑니다접시 바닥은 삽입을 포함합니다. 반전 인서트 접시 유지 30-45 분 동안 37 ℃에서 5 % (부피 / 부피) CO 2의 가습 된 공기 분위기에서 배양한다. 주 : 삽입 콘택트 웰 바닥의 세포 현탁액을 조심스럽게 접시 바닥을 들어 올려이 약간의 각도를 형성하고, 접시의 표면 사이에 큰 거리를 생성되도록 접시 상부 가장자리에 나머지 경우 (세포를 시딩) 인서트의 바닥면. 이 대신 인서트의 웰의 표면에 부착로부터 세포를 방지한다. </li><li> 30 ~ 45 분 배양 시간에 따라 부드럽게 삽입이 들어있는 접시를 제거하고 층류 생물 안전 캐비닛에 넣습니다. </li><li> 두 손으로 꽉 접시 뚜껑을 유지하면서 부드럽게 부착 세포를 함유하는 인서트의 바닥면은 이제 아래로 향하도록 상기 접시를 다시 반전. </li><li> 3 μm의 기공이 migrati을 방지하기 위해 삽입을 위해 차분히 2 ㎖ (1 ml에 추가삽입의 바닥 침지되도록 미리 예열 완료 매체의 삽입 구멍)을 통해 세포에 (각 웰 단계 1.1)을 참조하십시오. </li><li> 삽입을 포함하는 모든 우물에서 성장 매체를 추가 한 후, 가습 인큐베이터에 다시 접시를 놓습니다. </li><li> 인서트 48 시간 동안 인큐베이터에 그대로 남아 있습니다. 48 시간 후, 웰의 바닥에서 중간의 2 ml의 흡입 신선한 성장 배지 2 ㎖를 첨가하여 세포를 공급. </li><li> 이러한 경우 (이미 바닥면에 성장하는 제 1 셀 인구 인서트의 상부면에 상기 제 세포군 현탁액 (~ 250,000 세포 / ml)의 잘 시드 1 ml의 하단에 새로운 배지를 첨가 한 후 실험은, AG1522 (대조군) 세포 암 (실험) 세포)는 인서트의 바닥면에 성장 될 운명 CAFs에 이미 AG1522 세포를 갖는 인서트의 상부에 도금된다. 가습 인큐베이터에 다시 접시를 놓습니다. 참고 : 만약 작품삽입물의 아래쪽에 잘 부착되지 않는 세포를 보내고,이 세포는 다르게 인서트의 상부면 상에 성장 될 수있다. </li><li> 웰의 삽입과 하단의 상부에서 배지를 흡인함으로써 인서트의 윗면에 셀의 두번째 집단을 시딩 한 후 24, 72의 중간 및 96 시간을 변경한다. 부드럽게 웰의 바닥에 인서트의 윗면에 새로운 배지 1 ㎖를 2 ㎖에 추가한다. 두 세포 인구 120 시간의 투과성 미세 삽입 막의 양쪽에 공동 문화에 남아있을 수 있습니다. </li></ol> 3. 트립신에 의해 삽입에서 세포를 수집 주의 : 농축 된 세포 집단을 수득하는 용이성에 더하여, 삽입 TME 모델은 유사한 실험 치료 가능 (예를 들어, 화학, 상기 주위 공기보다 낮은 산소 환경에 노출, 이온화 방사선 처리 등으로 배양) 등 다른 시험관 </em&gt; TME 공동 배양 모델. 또한, 투과성 삽입 공 배양 용 기재가 이미 표준 2D 조직 배양 모델 개발 과정에 의해 분석 될 수있다. 예를 들어, 세포 (시츄 면역 검출, 웨스턴 블랏에서 예) 다음에 엔드 포인트의 분석에 이용 될 수있는 고농축 집단을 얻기 위해 삽입 멤브레인의 양측에서 수확 될 수 있거나 후속 실험 36 전파. <ol><li> 세포를 수집하기 위해, 성장 배지로부터 삽입물을 제거하고 1 ㎖의 PBS를 함유하는 35mm 세포 배양 접시에 배치. 1 ml의 PBS로 삽입 1 배의 아래쪽과 위쪽을 씻으십시오. </li><li> PBS를 제거를 0.25 % 2.21 mM의 EDTA와 트립신 (부피 / 부피) 200 μl를 추가, RT에 미리 예열. <ol><li> 인서트의 바닥면에 성장 된 세포를 수집하는 경우, 35mm 접시에 트립신 용액을 넣고 부드럽게 RT에서 2 분 동안 트립신 용액으로 인서트의 바닥에 놓는다. </li><li> 세포를 수집하면삽입물의 상부면 상에 성장 S, A 35mm 접시에 삽입 배치하고, 삽입물의 상부에 트립신 용액을 첨가하고 실온에서 2 분간 배양한다. </li></ol></li><li> 완전 성장 배지 800 μl를 첨가함으로써 트립신의 활성을 해소. <ol><li> 인서트의 저면에 성장 된 세포를 수집하는 경우, 35mm 접시에 성장 배지를 추가하고 부드럽게 삽입이 약간 유지되면서 삽입 배의 표면 위에 세포 현탁액 1 ml의 피펫 팅하여 세포를 수집 각도는, 세포 현탁액은 접시에 수집되도록. </li><li> 인서트의 상면으로부터 세포를 수집하는 경우, 상면에 성장 배지를 추가하고 부드럽게 삽입 배의 표면 위에 세포 현탁액 1 ml의 피펫. </li></ol></li></ol> 유동 세포 계측법에 의해 세포 순도 4. 특성 주 : t의 순도를 유지하는 통기성 미세 다공성 막 삽입 능력을 특성화120 시간까지, 섹션 1-3 녹색 형광 단백질 (GFP)을 수행 하였다 위해 (즉, 상단과 하단) 그는 두 개의 세포 집단은 MDA-MB-231 세포는 삽입물의 상단면에 도금되는 -tagged하고, 비 GFP 태깅 AG1522 세포는 0.4 μm-의 바닥면에 1 μm-, 3 ㎛의 포어 인서트 도금된다. <ol><li> 인서트의 바닥 측으로부터 셀 (절차 3 장에 기재되어 있음)을 수집 후 원심 분리하여 세포 현탁액 (500g, 30 초) 펠렛. </li><li> 상층 액을 제거하고 1 % (부피 / 권) FBS로 보충 행크스 &#39;균형 소금 솔루션 (HBSS) 400 μL의 세포 펠렛을 일시 중지합니다. </li><li> GFP 및 GFP의 광자 (37)를 검출하기 30분의 530의 대역 통과 필터를 여기하는 사이토 488 nm 인 레이저를 구비 한 흐름 세포 측정 분석을 수행한다. </li><li> 셀 식별을 위해, 유동 세포 계측기에 순방향 조정할 AG1522 조절 세포 집단 및 측면 산란 전압을 사용한다. 맞추다GFP의 채널 전압은 GFP 신호에 대한 낮은 검출 임계치와 셀룰러 형광도 값을 설정한다. </li><li> 대조군 세포를 이용하여 임계 값을 결정 게이팅. 제어 대 GFP 양성 세포의 존재에 기초하여 각각의 세포 집단의 순도를 평가한다. 주 : 순수 인구가 감지 된 GPF 양성 세포의 반사 될 것이다. </li></ol> 제자리에 면역 형광에 의한 세포의 5. 특성 <ol><li> 삽입에서 세포의 트립신에 따라, (3 절 참조) 세포를 수집, 판 5 × 10 4 멸균 커버 글라스 상에 250 ㎕의 성장 매체 (참조 단계 1.1) 세포, 그리고 가습 공기 분위기에서 1 시간 동안 부착 할 수 있도록 37 ° C 배양기에서 5 % (부피 / 부피) CO 2. </li><li> 인큐베이션의 끝에, 부드럽게 커버 슬립을 함유하는 접시를 제거하고 층류 생물학적 안전 캐비넷에 배치. </li><li> 조심스럽게 (단계 참조 미리 예열 완전 배지 2 ㎖를 추가1.1) 각 접시에,되도록 커버 슬립을 담근다. </li><li> 커버 슬립을 포함하는 모든 요리에 성장 매체를 추가 한 후, 48 시간 동안 인큐베이터에서 37 ° C에서 5 % (부피 / 부피) CO 2의 가습 공기 분위기에 요리를 반환합니다. </li><li> 48 시간 배양 후, PBS로 샘플 배를 씻어 RT에서 10 분 동안 PBS에서 4 % (중량 / 부피) 포름 알데히드로 고정한다. </li><li> 트리스 완충 식염수 (TBS : 50 mM 트리스 - CL, 산도 7.5, 150 mM의 염화나트륨)로 5 배를 씻어 후 5 분에서 0.25 % (부피 / 부피) 트리톤 X-100, 0.1 % (중량 / 부피) 사포닌과 Permeabilize 하시려면 RT. </li><li> 비특이적 2 % (부피 / 권) 정상 염소 혈청 (NGS), 1 % (중량 / 부피) 소 혈청 알부민 (BSA), 0.1 % (부피 / 부피) TBS 트리톤 X-100을 가진 결합 부위를 차단 (블로킹 RT에서 1 시간 동안 용액). </li><li> 밤새 4 ° C에서 솔루션을 차단에 : 차 항체 (1,000 방지 카베 올린 1 (CAV1), 1)에 품어. </li><li> 0.2 % NGS (부피 / 부피), 1 % (중량 / 부피) BSA, 0.1 %로 언 바운드 일차 항체 (배, 5 분 / 세척)을 씻어 (VOl / 부피) TBS 트리톤 X-100 (세정액). </li><li> 솔루션을 차단에서 1 시간 동안 실온에서 차 항체와 함께 품어 (섹션 5.4 참조). </li><li> 언 바운드 차 항체 세척 용액 (3 배, 5 분 / 세척)을 씻어 (단계 5.6 참조). </li><li> 마운트 4 &#39;, 6-diamidino-2-페닐 인돌 (DAPI)를 포함하는 안티 - 페이드 장착 매체와 슬라이드에 커버 슬립, 매니큐어로 밀봉. </li><li> 형광 여기를 위해 외부 광원을 구비 거꾸로 현미경에 오일 63X 배율 대물 렌즈를 사용하여 세포를 관찰하고, 후속 분석을 위해 부착 된 디지털 카메라를 사용하여 이미지를 캡쳐. </li></ol> 서양의 얼룩에 의해 세포의 6. 특성 주 : 웨스턴 블롯 절차는 다른 38 설명한다. 간략한 개요는 여기에 설명되어 있습니다 : <ol><li> 트립신 처리에 의해 삽입로부터 세포의 분리 이후, (제 3) 원심 분리 (500g, 30 초)에 의해 세포 현탁액 펠렛. </li><li> 상층 액을 제거하고 100 μl의 PBS로 세포 펠렛의 2 배를 일시 중지합니다. </li><li> 변성 radioimmunoprecipitation 분석 50 μL의 상등액를 Lyse 세포를 제거 (RIPA) 완충액 (트리스 pH를 7.5의 50 mM NaCl을 150 mm의 NP40 1 % (부피 / 권), 소듐 데 옥시 콜레이트 수화물 (DOC) 0.5 % (부피 / 부피), 소듐 도데 실 설페이트 (SDS), 0.1 % (부피 / 부피의)), 프로테아제 및 포스파타제 억제제 칵테일을 함유. </li><li> 4 ℃에서 15 분 동안 19,000g에서 얼음과 원심 분리기에 20 분 동안 품어. </li><li> RIPA 버퍼 내의 세제와 호환 가능한 광학 밀도 단백질 분석을 이용하여 상등액의 단백질 농도를 결정한다. </li><li> 0.2 μm의 니트로 셀룰로오스 막 상 electroblot 소듐 도데 실 설페이트 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (SDS-PAGE)에 의해 분리 된 단백질. </li><li> 0.1 % (부피 / 부피) 트윈 - 20 (TBST), 4 % (중량 / 부피)를 포함하는 TBS에서 막을 품어 60 분 동안 우유 (차단 솔루션을) 탈지 및 (4 ° C에서 하룻밤 일차 항체와 반응 방지CAV1, 1 : 1000). </li><li> RT (5 분 / 세탁)에서 TBST로 막 배를 씻으십시오. </li><li> 양 고추 냉이 퍼 옥시 다제 (HRP) (5,000 1)와 접합 항 - 마우스 이차 항체를 함유하는 차단 용액에 30 분 동안 막을 인큐베이션. </li><li> RT (5 분 / 세탁)에서 TBST로 막 배를 씻으십시오. </li><li> 웨스턴 블 롯팅 검출 시스템을 이용하여 화학 발광 법에 의해 반응 생성물을 가시화. </li></ol> 유동 세포 계측법에 의해 세포 간 통신의 7 특성 주 : 투과성 미다 공막의 적응성을 특징들은 간 통신 (예를 들어, 분비 된 인자 간극 연접)의 다양한 모드를 검사하기 위해 삽입한다. 섹션 1-2.12 비 형광 AG1522 세포 0.4 μm-의 바닥면, 한 μm-, 3 μm의 구멍에 삽입되는 도금으로 수행 하였다. <ol><li> 문화 섹션 1.1에 기재된 배지를 사용하여 90 % 포화 상태에 35mm 접시에 AG1522 세포는 비 - 표지. </li><li> 아르 자형INSE 세포 HBSS 1 mL의 1 배. </li><li> 칼 세인 오전 30 μM을 포함하는 HBSS에 세포를 배양하여 칼 세인 AM와로드 셀. </li><li> 37 ℃에서 5 % (부피 / 부피) CO 2의 가습 된 공기 분위기에서 15 분 동안 인큐베이션. </li><li> 워시 세포 HBSS 1 mL의 2 배. </li><li> RT에서 2 분 동안 2.21 mM의 EDTA와 0.25 % 트립신 200 μL 용액 (부피 / 부피)을 첨가하여 세포를 Trypsinize. </li><li> 12.5 %를 함유하는 완전 배지 (부피 / 부피) FBS 800 μl를 첨가함으로써 트립신의 활성을 해소. </li><li> 반복 피펫 팅에 의해 현탁액에 세포를 가져와. </li><li> 혈구 전자 계수기를 사용하여 세포 농도를 결정 이미 바닥면에 성장 AG1522 셀이 인서트의 윗면에 칼 세인 AM 로케이션 250,000 세포 접시. </li><li> 37 ℃에서 5 % CO 2의 가습 된 공기 분위기에서 삽입 부화 6 시간 동안. </li><li> 설명 된 바와 같이 6 시간 후, 인서트의 바닥면으로부터 세포를 수집섹션 3인치 </li><li> 원심 분리하여 세포 현탁액 (500g, 30 초) 펠렛. </li><li> 상층 액을 제거하고 1 % (부피 / 부피) FBS로 보충 된 HBSS 400 μL의 세포 펠렛을 일시 중지합니다. </li><li> 레이저가 장착 된 사이토에 세포를 분석하고 흥미로운 가능한 필터 제조사의 프로토콜에 따라, 칼 세인 (496 nm 내지 516 nm의 각각)의 방출을 검출. </li><li> 셀 식별을 위해, 유동 세포 계측기에 전방 및 측면 스 캐터 전압을 조정하는 흠 AG1522 조절 세포 집단을 사용한다. 칼 세인 신호 낮은 검출 임계치와 셀룰러 형광도 값을 설정하기 위해 칼 세인 채널 전압을 조정한다. </li><li> 칼 세인 제어로드 셀을 사용하여 상위 임계 값 제한을 결정한다. 제어 대 칼 세인 양성 세포의 존재에 기초하여 각각의 셀을 삽입 통신 평가. </li></ol>

저자는 더 경쟁 또는 상충되는 이해 관계가 없음을 선언합니다.

여기에 설명 된 프로토콜은 투과성 미다 공막 인서트 이형 세포의 공 배양에서 고농축 개별 세포 집단을 생성하기 위해 이용하는 간단한 시험 관내 절차에 적응 (도 1)이다. 현저하게, 간 모델은 다양한 통신 방식을 연구하기에 적합하다. 중요한 단계는 상단 측에 제 세포군 시드 50 % FBS로 보충 된 배지에서 인서트의 바닥면에 상기 제 세포군 시드 특정 실험이자 (S)에 적절한 기공 크기의 삽입물을 선택하는 것을 포함 삽입하고, 적절한 시간 동안 두 개의 별개의 세포 집단을 공동 배양. 우리는이 시스템은 따라서 분자 표현형을 이해하는 큰 기회를 제공하는 다양한 생체 내 특성을 모방 할 수 있음을 보여 주며, 잠재적 변화는 주요 D를 해결 초기 TME 발전 중에 생기는많은 설립 TME 체외 모델의 isadvantage (그림 2). 모델은 쉽게 암 기질 개발 및 진화 T...

종양 미세 환경 (TME)을 공존 기질 및 호스트와 함께 진화 암종 세포로 구성된 복잡한 시스템이다. 이 기질 성분은 일반적으로 섬유 아세포, 근육 섬유 모세포, 내피 세포, 다양한 면역 성분뿐만 아니라, 세포 외 매트릭스 (1)로 구성된다. 중요한 성분이 기질의 대부분은 종종 활성 섬유 아세포 자주 암 관련 아세포 또는 암 - 관련 아세포 (CAF) 2,3-라고 칭한다. 정상적인 비 - 활성화 된 섬유 아세포와 달리 CAFs에 유방, 전립선, 폐, 췌장, 피부, 결장, 식도를 포함한 암의 다양한에서 종양의 개시, 진행, 혈관 형성, 침윤, 전이 및 재발 4-11에 기여하고, 5,6,12-17 난소. 그러나, 암 발병에 걸쳐 CAFs에의 기여의 정확한 특성을 제대로 정의 된 상태로 유지됩니다. 또한, 임상 적 증거는 CAFs에의 예후 값을 보여 주었다높은 등급의 악성 종양, 치료 실패 및 전반적인 불량한 예후의 10,18,19에 자신의 존재의 상관 관계. 분명히, CAF 개발 개시 이벤트뿐만 아니라 TME 내 역할을 매개 세포 간 통신에 대한 이해를 향상 환자 결과를 향상시킬 수있는 새롭고 흥미로운 치료 대상 향상된 전략을 제공 할 수있다. 이 목표를 향해, 생체 내 및 생체 외 모델에서 여러 가지가 개발되어왔다. 생체 내 방법은 환자의 TME 더 반사하지만, 그들은 내 종양 사이에 모두 엄청난 복잡성과 이질성을 포함한 한계를 가지고있다. 또한, 피험자의 종양 샘플은 종종 매우 TME 개발 대표하고 TME 개시 이벤트에 대한 이해를 허용하지 않는다. 실험 동물 연구 때문에 그 풍모의 차이 그러나 인간에게 동물 데이터의 일반화가주의해야합니다 몇 가지 장점을 제공합니다같은 설치류 (예를 들어, 티올 화학 (20), 신진 대사 속도 (21), 관용 등, (22)을 강조하는)와 같은 인간과 동물 사이의 ology. 또한, 자연의 유전자 유형이있는 인구는 달리, 실험 동물은 일반적으로 동질성을 사육하고 있습니다. 또한, 일시적인 생리 학적 변화 및 ​​세포 표현형의 변화를 조사 할뿐만 아니라 설치류 동물을 사용하는 실험의 특정 매개 변수를 제어하는​​ 것이 곤란하다. 따라서, 체외 2- 및 3- 차원 (2D 및 3D) 조직 배양 모델에서 자주 TME 개발의 기본적인 이해를 전진하는 데에 이용된다. 생체 시스템의 복잡성을 정확하게 묘사의 부족에도 불구하고, 이러한 모델은 매우 기계적 조사를 용이 장점을 제공한다. 관내 모델은 TME보다 단순화 집중하고 비용 효과적인 분석을 위해, 이에 유의 허용 데이터가 생성 될 수있다동물에서 발생하는 전신 변동이없는 세포. 체외 시스템의 여러 종류가 있습니다. 두 개의 가장 일반적으로 사용되는 TME 체외 모델은 혼합 단층 또는 회전 타원체 세포 배양으로 구성되어 있습니다. 두 배양 방법은 세포 간 상호 작용과 각종 TME 특정 세포 표현형 변화를 분석 (종양 세포 예를 들어, 정상 세포)의 기초 연구에 유리하다 (예를 들면, 정상 섬유 아세포에서 암과 관련된 섬유 아세포의 출현). 또한, 구 상체는 TME보다 반사 형 조직 구조를 만들 수 있고, 종양 이질성 (23)을 대표 할 수있다. 그러나 타원체는 종종 실험의 결론 (24)를 복잡하게 할 수있다 층에 걸쳐 매우 다양한 산소 장력 구배를 생산하고 있습니다. 불행하게도, 두 모델은 매우 코 아래의 추가 특성화 및 연구를위한 순수한 세포 집단을 분리하는 능력에 제한이문화. 이렇게 형광 태그 또는 머신 식별 표지 한 후 세포 집단을 분리 정렬 광범위한 프로세싱 셀에 공 배양을 행하여 혼합되도록 적어도 하나의 세포 유형을 필요로 할 수있다. 셀 소터는 다소 순수한 세포 집단을 분리 할 수 있지만, 하나는 세포 스트레스 및 전위 미생물 오염을 인식 25 위험이어야한다. 간 통신의 이해를 용이하게하기 위해 많은 노력과 개발 간략화 된 방식을 허용하면서 밀접 생체 내 환경을 모방 한 시험 관내 시스템에서 최적화 향해 헌신되었다. 그러한 도구는 투과성 미다 삽입, 제 1953 26 개발이어서 다양한 애플리케이션 및 연구 (예를 들어, 셀의 극성 (27), 엔도 시토 시스 (28), 약물 수송 29 티슈 모델링 30 FERT 적응 된 막 기판ilization 31 방관자 효과 32, 33 등). 이 시스템은 불 침투성 plasticware에 때 배양 관찰되지 않은 34, 35 마커 생체 내에서 많은 사람들의 생체 -like 해부학 적 및 기능적 분화와 세포의 성장뿐만 아니라 표현을 허용한다. 또한, 매우 얇은 다공질 막 (10 μm의 두께)의 생체 내 환경을 시뮬레이트 모두 꼭대기 및 기저 세포 영역에서 독립적으로 세포 기능을 허용 분자 평형 시간의 신속한 확산을 허용한다. 멤브레인의 기공을 통해 간 다양한 통신 모드를 유지하면서 TME 시스템으로 삽입 효용의 추가적인 장점은 동일한 환경 조건에서 멤브레인의 양측 상에 성장 개의 이형 세포 집단의 물리적 분리된다. 비록 물리적으로 분리 된 두 세포 집단은 대사 드로 분비 소자를 통해 접속되며또한 갭 접합부 채널을 통해, 여기 스크라이브. 또한, 생체 부분 산소 장력의 인서트 (PO 2)를 유지함으로써,이 모델은 다른 시스템들에서 관찰 된 산소와 화학 구배의 합병증을 감소시킨다. 오히려, 그것은 자연 TME 제어 메커니즘에 대한 이해를 증가시킨다. 특히, 두 세포 집단 쉽게 공 배양 장기간 다음 형광 태그 및 / 또는 세포 소팅 않고 고순도로 분리 할 수​​있다. 여기서 우리는 멤브레인 기공을 통해 지속적인 양방향 통신 아직 인간 유방암 세포 투과성 미다 공막 인서트의 양쪽에 각각 자란 인간 섬유 아세포 이루어지는 관내 TME 프로토콜을 설명하지만. 우리는 그 표시 발달로 다양한 기공 크기와 간 통신의 특정 유형의 기여 (간극 연접 비교 예 분비 인자) 막을 사용하여TME으로 조사 할 수있다.

<table><tbody><tr><td>세포 배양용</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>AG01522 (i.e., AG1522) 인간 이배체 섬유아세포</td><td>Coriell</td><td>107661</td><td>Passage 8-13</td></tr><tr><td>MDA-MB-231-luc-D3H1 유방 선암 세포주</td><td>PerkinElmer</td><td>119261</td><td>부모 라인: ATCC (#HTB-26)</td></tr><tr><td>MDA-MB-231/GFP 유방 선암 세포주</td><td>Cell Biolabs</td><td>AKR-201</td><td></td></tr><tr><td>독수리의 최소 필수 배지(MEM)</td><td>Corning Cellgro</td><td>15-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청(FBS), 적격</td><td>시그마</td><td>F6178-500mL</td><td></td></tr><tr><td>코닝 글루타그로 보충제(200mM L-알라닐-L-글루타민)</td><td>Corning Cellgro</td><td>25-015-Cl</td><td></td></tr><tr><td>페니실린 스트렙토마이신 용액, 100x</td><td>Corning Cellgro</td><td>30-002-Cl</td><td></td></tr><tr><td>트랜스웰 인서트 (i.e., 투과성 미세다공성 멤브레인 인서트) (0.4 & m pore)</td><td>Costar</td><td>3450</td><td></td></tr><tr><td>Transwell Insert (i.e., 투과성 미소다공성 멤브레인 인서트) (1 &mu; m pore)</td><td>Greiner bio-one</td><td>657610</td><td></td></tr><tr><td>Transwell Insert (i.e., 투과성 미소다공성 멤브레인 인서트) (3 &mu; m pore)</td><td>Costar</td><td>3452</td><td></td></tr><tr><td>6-well Culture Plate</td><td>Greiner Bio-One Cellstar</td><td>657160-01</td><td></td></tr><tr><td>75 cm2 세포 배양 플라스크</td><td>CellStar</td><td>658 170</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS), 칼슘</td><td>및 마그네슘 미포함</td>1x <td>Corning Cellgro</td><td>21-040-CV</td></tr><tr><td>0.25%(vol/vol) 트립신, 2.21mM EDTA, 1x</td><td>Corning Cellgro</td><td>25-053-Cl</td><td></td></tr><tr><td>15ml 원심분리기 튜브</td><td>CellTreat</td><td>229411</td><td></td></tr><tr><td>35mm x 10mm 세포 배양 접시</td><td>Greiner bio-one</td><td>627 160</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>면역형광 현미경 검사용</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mouse anti-Caveolin 1</td><td>BD Transduction Laboratories</td><td>610406</td><td>In situ Immunofluorescence - 1:5,000</td></tr><tr><td>Goat anti-Mouse IgG (H+L) Secondary 항체, Alexa Fluor 488 conjugate</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A-11029</td><td>In situ Immunofluorescence - 1:2,000</td></tr><tr><td>Bovine Serum Albumin - Fraction V</td><td>Rockland</td><td>BSA-50</td><td>면역글로불린 및 프로테아제 무함유</td></tr><tr><td>16%(wt/vol) 포름알데히드 용액</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>28908</td> 1x PBS 프리미엄 커버 유리(22mm x 22mm No.1<td>)를 사용하여 4%로 희석</td></tr><tr><td></td><td>Fisher</td><td>12548B</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787-50ML</td><td></td></tr><tr>DAPI <td>Invitrogen</td><td>S36938</td><td></td><td></td></tr><tr><td>을 사용한 SlowFade Gold 안티페이드 시약Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>For Flow Cytometric Analysis</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Calcein, AM</td><td>Molecular Probes</td><td>C3100MP</td><td></td></tr><tr><td>Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS)</td><td>Gibco</td><td>14025-076</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>For Western Blot Analysis</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mouse anti-Caveolin 1</td><td>BD Transduction Laboratories</td><td>610406</td><td>Western Blot - 1:1,000</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>BioRad</td><td>170-6531</td><td></td></tr><tr><td>니트로 셀룰로오스 멤브레인 (0.2 &mu; m)</td><td>BioRad</td><td>162-0112</td><td></td></tr><tr><td>Western Lightning Plus-ECL</td><td>PerkinElmer</td><td>NEL104001EA</td><td></td></tr><tr><td>BioRad DC 단백질 분석</td><td>BioRad</td><td>500-0116</td><td></td></tr><tr><td>도데실황산나트륨(SDS)</td><td>BioRad</td><td>161-0302</td><td></td></tr><tr><td>데옥시콜레이트 나트륨 일수화물(DOC)</td><td>Sigma</td><td>D5670</td><td></td></tr><tr><td>IGEPAL CA-630(NP40)</td><td>Sigma</td><td>I8896</td><td></td></tr><tr><td>30% 아크릴아미드/비스 용액, 37.5:1</td><td>BioRad</td><td>161-0158</td><td></td></tr></tbody></table>

종양 미세 환경의 모방 : 세포 간 통신을 농축 세포 인구를 생성 및 조사를위한 간단한 방법

A Mimic of the Tumor Microenvironment: A Simple Method for Generating Enriched Cell Populations and Investigating Intercellular Communication

암세포와 주위의 비 - 암성 기질의 초기 이형 작용을 이해하는 것은 실질 활성화 및 종양 미세 환경 (TME) 설립 이어지는 이벤트를 아는데 중요하다. 시험 관내 및 생체 TME 모델 일부는 개발되었다; 그러나, 일반적으로 이러한 모델 용이 추후 연구 비 교란 조건 하에서 각각의 세포군의 분리를 허용하지 않는다. 이러한 어려움을 회피하기 위해 연장 된 공동에 대한 인서트의 멤브레인의 양측에 개별적으로 밀접 성장 고도로 농축 된 세포 집단의 단순 생성하면서도 허용하는 투과성 미다 공막 인서트 이루어진 세포 성장 기판을 이용한 시험 관내 TME 모델을 채용 한 - 문화 회. 이 모델의 사용을 통해, 우리는 정상 이배체 인간 섬유 아세포에서 (CAF) 인구는 다음과 같은 매우 풍부한 암 관련 섬유 아세포를 생성 할 수있다형광 태그 및 / 또는 셀의 정렬을 사용하지 않고 높은 전이성 인간 유방암 세포와 공 배양 (120 시간). 또한, 삽입물의 기공 크기를 조절함으로써, 우리는 개발 근본적인 메커니즘의 조사를 허용하는 두 개의 이형 세포 집단 사이 간 통신 (예를 들어, 갭 정션 통신 분비 인자)의 모드에 대해 제어 할 수있다 갭 접합 투과성의 역할을 포함 TME. 이 모델은 암 기질 개시의 TME의 초기 진화 및 치료제에 대한 암세포의 반응에 기질의 조절 효과로 이어지는 초기 사건에 대한 우리의 이해를 높이는 데 유용한 도구 역할을한다.

여기서 우리는 생체 내 종양 미세 환경 (도 1)를 모방 한 시험 관내 이형 세포 공 배양 시스템을 개발하는 투과성 미다 공막 인서트 장치. 서로 다른 세포 집단은 (유스에서는, 120 시간 이하) 장시간 동안 삽입물의 다공질 막의 양측에 성장 될 때까지 이러한 시스템은 허용한다. 0.4-, 1-, 3 M-세공 인서트의 윗면에 GFP 표지 된 MDA-MB-231 세포를 도금들이 성장할 수에 의해 결정되는 중요한에있어서, 상기 세포 집단의 순도를 유지할 수 AG1522 세포는 120 시간 동안 상기 인서트의 바닥면에 성장하는 공존 배양. 이 시간 후, 세포는 인서트의 바닥면으로부터 수집하고, 세포 집단 순도의 손실을 표시하는 어떤 GFP 양성 MDA-MB-231 세포의 존재를 확인하기 위해 유세포 분석. 분석은 99.9 %와 99.8 % 폴리 우레탄 밝혀각각 0.4와 1 ㎛ 기공 삽입에서 인구 재; 기공 막에...

종양 미세환경(TME)을 모방하기 위해 투과성 미다공성 멤브레인 삽입물을 조정했습니다. 이 모델은 혼합 세포 배양으로 구성되며, 형광 태깅 또는 세포 분류를 사용하지 않고 고도로 농축된 개별 세포 집단을 간단하게 생성할 수 있으며, 정상 또는 스트레스 조건에서 TME 내 세포 간 통신을 연구할 수 있습니다.

Understanding the early heterotypic interactions between cancer cells and the surrounding non-cancerous stroma is important in elucidating the events ...

이 간단한 인비트로(in vitro) 공동 배양 모델의 전반적인 목표는 인비보(in vivo) 종양 미세환경의 특성을 모방하고, 개별 세포 집단을 농축하며, 다양한 세포 간 통신 방식을 조사하는 것입니다. 이 방법은 암 및 방사선 생물학 분야의 핵심 질문, 특히 암 연관 섬유아세포의 생성 근거가 되는 요인과 치료제에 대한 반응에 관한 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 스트레스를 유발하는 형광 표지나 세포 분리 과정 없이 혼합 세포 배양액으로부터 개별 세포 집단을 생성할 수 있다는 점입니다.먼저 관심 있는 세포 배양물을 5 mL의 PBS로 2회 세척합니다. 두 번째 세척 후, 실온의 trypsin-EDTA 1 mL를 사용하여 실온에서 2분 동안 세포를 탈착시킵니다. 그 다음, 9 mL의 완전 성장 배지를 첨가하여 반응을 중단시키고, 플라스크 표면에 배지를 10회 부드럽게 파이펫팅하여 세포를 해리시킵니다.세포 수를 센 후, 신선한 배지를 사용하여 세포 농도를 2.5 × 10⁵ cells/mL로 희석하고, 세포를 멸균된 15 mL 원심분리 튜브로 옮깁니다. 원심분리를 통해 세포를 가라앉힌 다음, 50% fetal bovine serum이 첨가된 신선한 성장 배지를 사용하여 70 µL의 배지당 2.5 × 10⁵ cells 농도로 펠렛을 재부유시킵니다. 그 다음, 포장 상태의 적절한 실험용 공극 크기를 가진 인서트를 멀티웰 디쉬의 개별 웰로 옮기고 디쉬를 덮습니다.그런 다음 양손으로 디시를 잡고, 인서트 바닥면이 위를 향할 때까지 디시를 조심스럽게 뒤집습니다. 디시 바닥을 제거합니다. 한 손에는 멸균 핀셋을 사용하여 인서트 하나를 고정하고, 다른 한 손을 사용하여 70 µL의 세포를 마이크로피펫 팁으로 천천히 흡입합니다.그런 다음 현재 인서트의 상단면인 표면에 세포를 천천히 분주합니다. 각 인서트에 세포 파종을 마친 후, 디쉬 바닥을 조심스럽게 다시 덮고 뒤집힌 상태의 디쉬를 37 °C, 5% CO2 및 습도가 유지되는 조건에서 30~45분 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 층류 생물학적 안전 작업대(laminar flow biological safety cabinet)에서 인서트의 바닥면이 다시 아래를 향하도록 디쉬를 조심스럽게 다시 뒤집습니다.그다음 각 인서트의 바닥 부분을 미리 데워둔 2 mL의 완전 배지에 천천히 조심스럽게 담근 후, 디쉬를 가습 인큐베이터에 다시 넣습니다. 48시간 후, 각 웰 바닥의 배지를 2 mL의 신선한 성장 배지로 교체합니다. 모든 배지를 교체한 후, 두 번째 표적 세포군 2.5 × 10⁵개의 세포를 1 mL의 신선한 배지에 섞어 인서트 상단에 파종하고, 디쉬를 인큐베이터로 옮깁니다.24, 48, 96시간 후에 각 인서트 상단의 배지를 1 mL의 신선한 완전 배지로 교체합니다. 또한, 각 웰 하단의 배지를 2 mL의 신선한 완전 배지로 교체합니다. 120시간의 공배양 후, 인서트를 하나씩 1 mL의 PBS가 담긴 개별 35-mm 세포 배양 접시로 옮깁니다.인서트의 바닥면과 윗면을 1 mL의 PBS로 세척합니다. 인서트 바닥에서 배양된 세포를 수집하려면, 인서트를 바닥면이 아래로 향하도록 하여 상온의 200 µL trypsin-EDTA에 넣습니다. 상온에서 2분 후, 800 µL의 완전 성장 배지를 가하여 반응을 중단시킵니다.그런 다음 인서트를 약간 기울인 상태에서, 상층액을 세포 표면에 10회 조심스럽게 피펫팅하여 디쉬에 세포를 수집합니다. 모든 인서트의 세포를 회수한 후, 세포를 성장 배지에서 2 × 10⁵ cells/mL의 농도로 재현탁합니다. 그리고 멸균된 개별 유리 커버슬립 위에 세포 250 µL를 첨가합니다.커버슬립을 가습 인큐베이터에 1시간 동안 둡니다. 배양이 끝나면, 층류 생물안전작업대 내에서 배양 접시에 완전 성장 배지 2 mL를 조심스럽게 첨가하고, 37 °C, 5% 이산화탄소 및 습도가 유지되는 조건에서 48시간 동안 배양합니다. 그 후 세포를 PBS로 3회 세척합니다.세 번째 세척 후, PBS에 희석된 4% formaldehyde로 상온에서 10분 동안 세포를 고정하고, 이어서 Tris-buffered saline으로 5회 세척합니다. 마지막 세척 후, 0.1 saponin이 첨가된 0.25% Triton X-100으로 상온에서 5분 동안 세포를 투과화한 다음, 블로킹 용액에서 상온으로 1시간 동안 배양합니다. 이어서, 블로킹 용액에 희석된 목적 1차 항체를 사용하여 4°C에서 하룻밤 동안 샘플을 라벨링합니다.다음 날 아침, 세척액으로 3분간 세 차례 세척하여 결합되지 않은 항체를 제거한 후, 블로킹 용액에 희석된 적절한 2차 항체를 사용하여 실온에서 1시간 동안 반응시킵니다. 반응이 끝나면 앞서 설명한 것과 동일한 방법으로 결합되지 않은 2차 항체를 세척하고, DAPI가 포함된 항퇴색 마운팅 용액을 사용하여 커버슬립을 개별 슬라이드에 마운팅합니다. 투명 매니큐어를 사용하여 커버슬립의 가장자리를 밀봉합니다.그 후, 형광 여기를 위한 외부 광원이 장착된 도립 현미경에서 63x 오일 배율로 세포를 이미징합니다. 이 시스템을 통해 세포 배양 인서트의 다공성 막 양측에서 두 개의 서로 다른 세포 집단을 최소 120시간 동안 배양할 수 있으며, 0.4 또는 1 µm 기공의 인서트를 사용할 경우 막 양측의 세포 집단 순도를 99% 이상으로 유지할 수 있습니다. 하지만 3 µm 기공의 인서트는 GFP 양성 인간 유방암 세포주를 사용한 본 실험에서 관찰된 바와 같이, 세포가 막을 가로질러 이동할 수 있을 만큼 기공이 큽니다.0.4 micron 공극 인서트는 인서트 양측의 세포 배양물 사이에 기능적인 갭 결합(gap junction)이 형성되는 것을 제한하여, 통신 수단을 분비 인자로 한정시킵니다. 반면, 1 micron 및 3 micron 공극 인서트는 이러한 공동 배양 시스템에서 막을 통한 형광 표지의 이동으로 확인되듯이 갭 결합을 통한 세포 간의 기능적 결합을 허용합니다. 중요한 점은, 이 시스템을 사용하여 정상 인간 이배체 섬유아세포를 유방암 세포와 공동 배양함으로써 암 관련 섬유아세포를 효과적으로 생성할 수 있으며, 이는 인간 유방암 세포와 공동 배양된 섬유아세포에서 caveolin-1의 발현이 감소한 것으로 입증되었습니다.이 실험 절차를 수행할 때는 탐구하고자 하는 질문에 적합한 공극 크기의 인서트를 선택하는 것이 중요합니다. 또한, 첫 번째 세포 집단이 인서트 바닥면에 부착될 수 있도록 부착을 촉진하는 배지를 사용하여 관찰해야 합니다. 본 절차 이후에는 단백질 발현 변화, 침윤 및 이동의 변화 또는 치료제에 대한 반응 차이와 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 면역블롯팅, 인시튜 면역형광 염색 또는 기타 대부분의 세포 기반 분석법과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다.이 기술의 개발 이후, 암 생물학 및 방사선 생물학 분야의 연구자들은 암의 발생, 종양 미세환경의 진화, 그리고 본 실험의 경우 방사선 조사 대상 세포에서 주변의 방관자 세포(bystander cells)로 전이되는 전리 방사선의 유해한 영향에 기여하는 요인들을 탐구할 수 있게 되었습니다. 이 영상을 시청한 후에는 혼합 세포 공배양(coculture)을 준비하고 유지하는 방법과, 추가 분석을 위해 공배양액에서 고순도로 농축된 세포군을 회수하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 인간 세포주를 다루는 작업은 위험할 수 있으므로, 이 절차를 수행하는 동안 적절한 개인 보호 장구를 착용하고 적절한 생물 안전 규정을 준수해야 함을 잊지 마십시오.시청해 주셔서 감사합니다. 귀하의 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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여기 우리가 설립된 피하 종양에서 종양 면역 및 비 면역 microenvironment의 구성 요소를 풍부 하 게 분리 하는 방법을 설명 합니다. 이 기술은 종양 면역 침투 및 비 면역 종양 분수는 종양 면역 microenvironment의 포괄적인 특성화를 허용할 수 있는 별도 분석에 대 한 수 있습니다.

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Paracrine juxtacrine 세포 상호 작용 종양 진행, 면역 반응, 신생, 개발 등 많은 생물 학적 과정에 중요 한 역할을 한다. 여기, 인접 문화 메서드 secreted 요소의 지역화 된 농도 세포에 직접 접촉을 방지 하는 동안 유지 됩니다 paracrine 신호 연구에 사용 됩니다.

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여기에 제시된 방법의 목적은 미세 환경 마이크로어레이(MEMA)가 배양된 세포의 표현형에 대한 수천 개의 간단한 조합 미세 환경의 영향을 심문하기 위해 제조되고 사용될 수 있는 방법을 보여주는 것입니다.

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이 보고서는 여러 단일 세포의 고효율 페어링 및 현미경 분석을 달성할 수 있는 단일 세포 배양 실험을 설정하는 미세 유체 칩 기반 방법을 설명합니다.

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제시된 접근은 3D 스페로이드 ascy 및 T 세포 세포 독성에 있는 암 세포 침략을 동시에 평가합니다. 스페로이드는 비계가 없는 아가로즈 멀티 마이크로웰 캐스트에서 생성됩니다. I형 콜라겐 매트릭스에 공동 배양 및 포함은 암세포 침입 및 T세포 중재 세포 독성을 모니터링할 수 있는 동일한 장치 내에서 수행된다.

3D 배양에서 암 세포 침략 및 T 세포 세포 독성 을 감시

면역 요법 및 단일 세포 게놈 프로파일링 시대에 암 생물학은 적절한 시공간 맥락에서 종양-면역 인터페이스를 조사하기 위한 새로운 시험관 내 및 전산 도구를 필요로 합니다. 우리는 2D 및 3D 설정에서 종양 면역 미세유체 공동 배양을 활용하기 위한 프로토콜을 설명하며, 세포 기능의 동적 다중 매개변수 모니터링과 호환됩니다.

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여기에서는 암-면역 주기를 구성하는 단계를 모니터링하고 특성화하기 위한 간단하고 빠르며 신뢰할 수 있는 다중 파라메트릭 유세포 분석 및 종양 온 칩 지원 프로토콜에 대해 자세히 설명합니다. 실제로, 암과 면역 세포 간의 상호 작용에 대한 철저한 이해는 종양을 능가하고 임상 치료를 안내하는 데 중요한 통찰력을 제공합니다.

암-면역 주기를 재현하기 위한 Co-Culture In Vitro 시스템

여기에서는 미세생리학적 시스템에서 콜라겐 및 콜라겐-아가로스 매트릭스를 사용하여 3D 세포 배양을 구현하기 위한 지침을 자세히 설명하는 프로토콜을 제시합니다. 이러한 프로토콜은 신장 근위세뇨관 및 신세포 암 스페로이드 공동 배양을 지원하여 생체 내 조건을 시뮬레이션하고 신장암 세포 상호 작용에 대한 고급 조사를 가능하게 합니다.

신장암 진행을 모델링하기 위한 건강한 신장과 종양 상피의 미세유체 공동 배양

암 전이를 연구하기 위해 이세포성 누화를 캡처하는 3D 암 모델이 매우 필요합니다. 우리의 연구는 침입 및 세포 공간 분포를 연구하는 데 사용할 수 있는 골격 및 골격이 없는 환경에서 이종 다세포 기질-상피의 생성을 제시합니다.

상피암 세포의 스캐폴드가 없는 3D 배양에서 이종다세포 기질 세포(Heteromulticellular Stromal Cells in Scaffold-free 3D Cultures of Epithelial Cancer Cells to Drive Invasion)

배우세요 종양 미세환경을 모방하는 간단한 공배양 모델을 통해 세포 간 통신을 연구하는 방법을. 이 기법은 형광 표지 없이 농축된 세포 집단을 생성하여 암 생물학 및 방사선 생물학 연구에 활용할 수 있습니다.

종양 미세 환경의 모방 : 세포 간 통신을 농축 세포 인구를 생성 및 조사를위한 간단한 방법

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