Name: 세포 축적을 증가 하 고 종양을 대상으로 개선에 대 한 바이러스 성 파생 된 펩 티 드 항 체 어원이 같은 말의 초기 평가 수정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 58 s
Description: 배우세요 항체 접합체의 세포 축적 및 핵 국소화 효율을 평가하는 방법을. TF1A 세포와 PET 영상을 활용하여 종양 표적화 치료제 개발의 효과성과 선택성을 분석하는 실험 기술을 익히세요.

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이 작품은 암 연구 협회 (캐나다)와 CIMS에 의해 투자 되었다. 저자 박사 Samia Ait-Mohand 및 장-프랑소와 Beaudoin 도움 감사합니다. 박사 천사 로페즈 (사우스오스트레일리아 대학교) mAb A14에 대 한.

Vivo에서 동물 실험 설명 동물 실험 센터 Hospitalier 대학 드 룩 윤리 위원회의 윤리 지침에 따라 승인 된 프로토콜에 따라 수행 했다.
1. 항 체 펩 티 드 활용
참고: ChAcNLS 상업적인 펩 티 드 제조 업체 또는 대학 제휴 펩 티 드 종합 서비스 플랫폼에서 합성 될 수 있습니다. ChAcNLS의 합성 기준 34에서 찾을 수 있습니다. 절차 1과 2에 대 한 사용 하 여 7G 3, mAb는 백혈병 항 원 일 3Rα 39에 대 한 특정.
<ol><li>1.7 mL microcentrifuge 튜브에 10 mg/mL를 버퍼링 하는 인산 염 (PBS), pH 7.6에에서 7G 3의 (~ 1 mg 총 항 체) 솔루션 준비.</li>
	<li>5-10 m m의 농도에서 디 메 틸 sulfoxide (DMSO)에 sulfo SMCC 디졸브. Vortexing 솔루션은 철저 하 게 가장 완전 한 해체를 달성 하기 위해 작동 합니다.</li>
	<li>(일반적으로 어 금 니 비율의 sulfo SMCC-7G 3 원하는 따라 5-20 μ) 사이 녹아 sulfo SMCC 솔루션 7G 3 포함 된 튜브에 추가 합니다. 10, 25 및 50 대 1의 sulfo SMCC-7G 3 비율을 테스트 하는 것이 좋습니다. 1 시간에 대 한 실 온에서 품 어.</li>
	<li>
정화 하 고 PBS, pH 7.0에에서 적용 장치 및 버퍼 exchange를 사용 하 여 maleimide derivatized 7G 3 집중. 다시 약 5 분 삭제 통해 흐름과 PBS, pH 7.0, 원심 분리기와 채우기 위해 8000 x g에서 원심.
	<ol>
<li>이 7-8 번을 수행 완전히 버퍼 교환 하. 거꾸로 깨끗 한 microcentrifuge 튜브에서 필터 장치를 배치 하 여 복구 집중된 7G 3 단백질. 1000 x g. 복구 볼륨에서 2 분 동안 원심 분리기 약 0.3 mL 해야 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Maleimide 활성화 7G 3를 포함 하는 관에서 이전 단계에서 사용한 sulfo SMCC-7G 3 비율 기준으로 ChAcNLS의 2-fold 어 금 니 과잉을 추가 하 고 하룻밤 4 ° c.에 품 어 예를 들어 10-1 sulfo SMCC-7G 3 비율, 사용 하는 경우 다음 사용 하 여 20-1 ChAcNLS-7G 3 비율. 총 볼륨 크게 변경 되지 해야 합니다. 참고: ChAcNLS 강 수 활용 과정을 발생 하지 않습니다 있지만 이것은 다른 펩 티 드와 함께 발생할 수 있는 가능성입니다. 발생 소수 성 펩 티 드 때 강수량의 징후에 대 한 반응 동안 튜브를 관찰 합니다. 이러한 경우 설계 변경 증가 화란을 제공 하려면 관심의 펩 티 드 하는 걸로 가치가 있을 수 있습니다 그것.</li>
	<li>7 G 3-ChAcNLS PBS pH 7.4 (단계 1.4 참조)에서 원하는 농도 버퍼 교환 한 장치를 사용 하 여 집중 한다. 총 단백질의 복구 수확량은 ≥ 이어야 한다 원래 시작 물자의 75%.</li>
	<li>SDS-페이지 12 %polyacrylamide 젤 (충분 한 분리는 ChAcNLS의 무거운 활용 및 nonconjugated 체인에서 체인 빛 제공)를 사용 하 여 생성 된 7 G 3-ChAcNLS 후보자를 평가를 수행 합니다. 페이지 로딩에 7 G 3-ChAcNLS의 혼합 10 μ g 포함 2 μ β-mercaptoethanol을 버퍼링 하 고 잘으로 로드.</li>
	<li>적절 한 전압 (120 V 1 h 12% 젤)를 설정 하 고 실행 하는 전기 이동 법. Coomassie 염료 앞에 도달 하면 젤 하단에 전기 이동 법을 중지 합니다. 참고: Coomassie 염료 전면 젤에서 실행 못하게 합니다.</li>
	<li>젤 전기 이동 법 기구에서 제거 하 고 빙 초 산, 20 %v / v 메탄올의 10 %v / v를 포함 하는 솔루션 destaining 린스.</li>
	<li>젤의 사진 그리고 통치자와 측정 거리 (cm) 마이그레이션 표준과 7G 3 어원이 같은 말. 고정 비율 (Rf) 값을 계산 (Coomassie 마이그레이션 앞에 단백질 로드 되는 위치)에서 젤 길이 의해 분할 마이그레이션 거리입니다. 각 단백질 표준 Rf 값에 대 한 로그에 분자량 (MW)를 플롯 및 추정 7G 3의 크기 변화.</li>
	<li>7G 3 MW에 차이 분할 하 여 항 체 당 펩 티 드의 수를 7G 3 1768.5 g/mol (ChAcNLS MW)에 의해 수정 되지 않은 계산 합니다.</li>
	<li>Coomassie 스테인드 젤의 디지털 이미지를가지고 고 densitometry 분석 수행. 이 시점에서, 리드 후보의 선택 ChAcNLS 분자의 중요 한 집계 종을 포함 하지 않는 최대 수와 AC 기반 될 수 있습니다.</li>
</ol>2. 세포내 축적 평가 confocal 현미경 검사 법
참고: 테스트의 페이로드가 공식 개발 이전 펩 티 드 수정 mAbs의 세포내 축적의 셀 선택도 중요 하다. 문신도 일반적인 세포 침투에 대 한 성향을가지고 표시 되었습니다, 때문에 첫 번째 분석 세포내 축적 및 셀 선택도 비싼 페이로드가 있는 사업 비용이 개발 단계 전에 가치가 있다. 이런 이유로 절차 1 또한 isotype 특정 없는 제어 mAbs를 수정 해야 합니다. 프로토콜의 나머지 부분에 대 한 항 체 당 10 ChAcNLS 분자와 수정 ACs를 사용 합니다. 절차 2와 3에 대 한 주요 단계를 포함 하 여 회로도 그림 2에 설명 되어 있습니다.
주의:이 단계는 프로토콜의 처리 및 조작의 paraformaldehyde 포함 됩니다. 처리 하는 경우 제조업체 지침을 따르시기 바랍니다.
<ol><li>200 nM 7 G 3-ChAcNLS 등의 수정 제어 mAbs와 대상 TF-1a 셀을 취급 합니다. 5 x 106 항 원 양성 세포 1 h 37 ° c.에 대 한 어원이 같은 말을 품 어</li>
	<li>1 시간 후 상쾌한을 제거 하 고 얼음 처럼 차가운 PBS에 3 x 1 mL로 씻어. 신선한 미디어를 추가 하 고 37 ° c.에 추가 시간에 대 한 품 어</li>
	<li>
추가 시간 후 상쾌한을 제거 하 고 1 mL의 얼음 처럼 차가운 PBS에 3 배를 세척 합니다. 3 최대 37 ° C에서 30 분 0.25 %trypsin 및 ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA)을 포함 하는 PBS의 0.5 mL를 추가 합니다. 참고: 초기 파일럿 테스트 하는 동안 그것은 권장 하지 셀 AC 세포내 축적의 차이 결정 하기 위해 trypsinize를. 이 프로토콜 trypsin의 사용을 촉진 하 고이 다른 AC 후보자의 세포내 축적 효율의 평가 향상 시키는 방법을 보여 줍니다.<ol>
<li>분리 되는 모든 셀에 대 한 시각적으로 확인 하 여 부 화에 대 한 다른 시간을 테스트 합니다. 또한, 생존 솔루션 얼룩과 셀 aliquots를 품 어 고 앞에서 설명한 40흐름 cytometric 분석을 수행.</li>
		<li>세포 배양 RPMI 1640 media/10% 태아 둔감 한 혈 청의 1.5 mL와 트립 신을 무력화. 5 분 동안 500 x g에서 세포를 원심, 상쾌한, 제거 하 고 얼음 처럼 차가운 PBS 0.5 mL에에서 3 배를 씻어.</li>
	</ol>
</li>
	<li>1% paraformaldehyde 30 분 세척을 위한 얼음에 1% 자당을 포함 된 0.5 mL PBS에 수정 세포 세포 얼음 처럼 차가운 PBS 0.5 mL에에서 3 배 그리고 5 분 Permeabilize 위한 250 x g에서 원심 분리기 0.5 ml PBS 0.15% 포함 된 얼음에 5 분에 대 한 Triton X-100 세포. 얼음 처럼 차가운 PBS에 세포를 세척 하 고 원심 분리를 반복.</li>
	<li>
0.1 mL PBS 2 μ g/mL (또는 제조업체에서 권장 하는 농도) 포함 된 셀 중단 방지 murine (특정 isotype)의 Fc 보조 polyclonal 항 체는 어둠 속에서 실 온에서 1 h AlexaFluor 647에 활용.
	<ol>
<li>얼음 처럼 차가운 PBS 0.5 mL에에서 3 x 250 x g 5 분 및 세척 셀에서 원심. 0.5 mL PBS에에서 셀을 일시 중단 합니다. 일시 중지: 셀 냉장고에 저장할 수 있습니다. 참고: 인식의 mAb의 올바른 isotype 이차 항 체 선택 필수적 이다. AF647은 propidium 요오드 화물 (PI) 핵의 얼룩과 방해 하지 않는 그것의 먼 적외선 방출 때문에 선택 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>셀과 컨테이너 10 μ g/mL의 농도에 PI를 추가 합니다. 다음, 유리 coverslip로 설치 미디어와 커버를 사용 하 여 유리 슬라이드에 1 x 105 셀을 탑재 합니다.</li>
	<li>거꾸로 레이저 confocal 현미경 검사에 계획 Apo 60 X 기름 침수 목표 나 1.42 셀을 검사 합니다. 488 nm의 아르곤 레이저와 스펙트럼 스캐닝 프리즘 600-650 nm에 대 한 설정 사용 하 여 PI 형광을 감지 합니다. AF647 형광 633 nm 헬륨-네온 레이저와 스펙트럼 스캐닝 프리즘 650-700 nm에 대 한 설정를 사용 하 여. PI와 AF647에서 형광 방출을 순차적으로 수집 합니다. 참고: 셀의 비교 평가 걸쳐 동일한 설정을 사용 합니다. 그러나, 비 trypsinized 세포에 비해 trypsinized 세포에 대 한 설정을 조정 해야 합니다.</li>
	<li>현미경 소프트웨어를 사용 하 여 이미지. 직렬 수평 광학 섹션 2 X 라인 평균 1024 x 1024 픽셀의 전체 셀 두께 통해 0.5 μ m 간격으로 사용 하 여 이미지를 수집 합니다. 최대 형광 강도에서 이미지로 누적된 z-4 연속 조각에서 예측을 제시.</li>
	<li>셀 현미경 소프트웨어를 분석 합니다. 어원이 같은 말의 세포 분포 패턴을 기록 합니다. 특히, 세포질에 있는 세포내 형광 그룹화 여부 및 표면 또는 확산 및 균질 셀 근처를 평가 합니다. 또한 셀 당 상대 형광 강도 평가 합니다.</li>
</ol>3. 방사선 AC 건설과 64 Cu 세포내 전달 효율의 평가 위한 세포 분별 법
주의: 절차 3 및 4 포함 처리 및 방사능의 조작. 이러한 단계를 수행 하기 전에 안전 교육 및 그들의 가정 기관 방사선 안전 기관에서 승인 하는 프로토콜 연구원 승인 해야 한다.
주: 절차 3 및 4에 대 한 우리가 사용 A14, mAb는 침 윤 성 방광 암 항 원 일 5Rα41에 대 한 특정. 또한, 모든 실험 시간에 민감한 64Cu의 짧은 반감기 때문입니다. 일반적으로, 이건 지난 1 주 생체 외에서 실험을 수행 하기 위해 기다리지 최고의 72 h 보다는 더 이상 vivo에서 학문에 대 한.
<ol><li>1.7 mL 튜브에 10 m m의 농도에 DMSO에 2,2'-(7-(2-((2,5-dioxopyrrolidin-1-yl)oxy)-2-oxoethyl)-1,4,7-triazonane-1,4-diyl)diacetic 산 (NOTA-보 건국)을 일시 중단.</li>
	<li>볼륨 ≤ 0.5 mL (최종 NOTA NHS 볼륨 총 볼륨의 2 %v / v를 초과 하지 않아야 합니다)에 실 온에서 1 h에 대 한 pH 8.6에서 0.1 M 나트륨 중 탄산염에 A14 (2 mg 시작 물자)와 NOTA NHS의 50-fold 어 금 니 과잉 반응.</li>
	<li>정화 및 버퍼 교환 NOTA-A14 PBS, pH 7.6 (단계 1.4 참조)에 한 장치를 사용 하 여.</li>
	<li>ChAcNLS의 후속 첨부 파일에 대 한 단계 1.2-1.6.</li>
	<li>100 megabecquerel (MBq) 0.1 M 나트륨 중 탄산염, pH 5.5에서 37 ° C ≤ 1 h에서에서 64CuCl2 의 NOTA-A14-ChAcNLS (250 μ g 배치) 반응 0.1 mL. 64 Cu는 CIMS 42에서 TR-애완 동물의 싸이 클 로트 론에서 생산 됩니다.</li>
	<li>집중 PBS ph 7.4 원하는 농도를 한 장치를 사용 하 여 64Cu-A14-ChAcNLS (1.4 단계 참조).</li>
	<li>
용 매로 64Cu-A14-ChAcNLS 인스턴트 얇은 층 크로마토그래피 (ITLC) 하 여 크로마토그래피를 사용 하 여 스트립의 0.1 m M, pH 5.5 나트륨 시트르산 (ITLC eluent) radiolabeling 효율을 결정 합니다. ITLC 스트립에 반응 해결책의 0.5 μ 약 수를 적용 됩니다. 스트립의 autoradiograph를 수행 하 고 디지털 이미지를 얻을.
	<ol>
<li>바운드의 비율 64Cu 무료 하 densitometry를 수행 합니다. 무료 64Cu 콘텐츠 > 5% 인 경우에, 이전 단계로 돌아가서 고 추가 정화를 수행 합니다.</li>
		<li>또한 SDS-페이지 집계 평가 하 얼룩 Coomassie 수행 합니다. 두 번째 SDS 페이지 젤의 autoradiograph 뒤 방사선된 집계 종 확인을 수행 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
품질 체크 포인트에 바인딩 친 화력: 증가 농도에서 64Cu-A14 어원이 같은 말을 품 어 (0-100 nM) mL 당 1 x 106 대상 셀 중복에서. 일반적인 바인딩을 예상 하려면 레이블이 A14의 100 어 금 니 과잉 존재 셀 64Cu-A14 어원이 같은 말의 중복 샘플 혼합.
	<ol>
<li>얼음에 1 h 인큐베이션, 후 셀 세척 하 고 총 바인딩된 항 체 샘플 및 감마 카운터에 총 일반적인 바운드 항 체 샘플을 계산 합니다. 특정 바인딩 (총 바인딩된 항 체-특이 항 체 바인딩) 반응 무료 64Cu-A14 (nM) 분석 결과에 사용에 대 한 그래프. 그래픽 소프트웨어를 사용 하 여 비선형 회귀에 의해 분리 상수 (Kd)를 결정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>64Cu 세포 축적 연구: 100 셀 치료 64Cu 표시 A14의 nM 1 h, 6 h을 37 ℃에서 24 h 앞33에서 설명한. 수용 체-중재 국제화를 차단 하도록 수정 되지 않은 A14 블록 IL 5Rα 사이트 및 4 ° C에서의 치료와 같은 추가 매개 변수를 포함 합니다.</li>
	<li>정의 된 시간에 포인트에서 앞에서 설명한 단계 2.3-2.3.2, 0.5 mL PBS 포함 하 0.25 %trypsin 추가 하 고 37 ° C에서 EDTA 다음 중화와 세척.</li>
	<li>원형질 막 세포의 용 해 버퍼 1% 포함 된 셀을 품 어 NP-40, 10 mM Tris pH 7.5, 10 mM NaCl, 3 mM MgCl2 버퍼 10 분에 대 한 얼음에 원심 5 분 동안 90 x g에서 원형질 막 lysed 세포.</li>
	<li>상쾌한을 제거 하 고 신선한 튜브에. 이 세포질 분수를 나타냅니다. 핵 3 씻어 얼음 처럼 차가운 PBS에 x 세포질 분수를 세척을 추가.</li>
	<li>튜브는 핵과 세포질 분수를 포함 하는 봉인 하 고 있다 확인 하십시오. 다음 카운터 MBq 안됨 변환 하려면 64Cu에 대 한 보정 감마에 그들을 놓습니다.</li>
	<li>
Lamin a/C, 제한 된 핵 단백질, 및 Rab7 서쪽 오 점 분석을 수행 하 여 핵 격리의 품질을 결정, 전체에 풍부한 세포질 단백질 세포 lysate, 핵 및 세포질 분수.
	<ol>
<li>라디오 immunoprecipitation 분석 결과 (RIPA) 버퍼와 원형질 막 세포의 용 해 버퍼의 500 μ와 치료 5 x 106 세포 단계 3.12 포함 1%, 2%와 4 %NP-40. 또한, 고립 된 핵 단백질을 얻기 위해 RIPA 버퍼의 500 μ에 고립 된 핵을 취급 합니다.</li>
		<li>-20 ° c.에 60 분 찬 아세톤의 샘플 볼륨 x 4를 사용 하 여 격리 된 핵, 세포질과 전체 세포 단백질을 침전 10 분 13000 x g에서 centrifuge 고 단백질 펠 릿을 꺼내 려 하지 않도록 주의 되 고 상쾌한 가만히 따르다. 단백질을 분해 하는 PBS의 100 μ를 추가 합니다.</li>
		<li>각 잘 10 %SDS-PAGE 젤에 단백질의 10 μ g를 로드 합니다. 1.7-1.9에 설명 된 대로 전기 이동 법을 수행 합니다. 서쪽 오 점 이전 이전 refeference 43에 설명 된 대로 수행 합니다.</li>
		<li>~ 40 kDa의 MW에 해당 하는 마커를 최고의 사다리를 식별 합니다. 막이이 표식에 반으로 잘라. 프로브 Lamin A/C-특정 항 체와 높은 MW 단백질을 포함 하는 오 점. 랩 7 특정 항 체와 낮은 MW 단백질 막 프로브. 서쪽 오 점 잘 알려진 기술 이며이 프로토콜에서 설명 하지 않은.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 애완 동물의 종양을 대상으로 평가 이미징
참고: 생성할 heterotopic xenografts 쥐에 종양 세포를 이식 하는 기술을 잘 알려져 있으며 대부분 실험실 그들의 종양 시스템에 맞게 자체 프로토콜을가지고. 따라서,이 프로토콜에 적용 되지 않습니다. 이 종이 식 모델 nonobese 당뇨병/심한 결합 된 immunodeficient (끄 덕 임/SCID) 마우스 IL 5Rα 양성 침 윤 성 방광 종양 HT-1376 및 HT-B9 베어링 있을 것 이다. IL 5Rα 양성 침 윤 성 방광 종양 세포는이 종이 식에 총 셀의 > 66% 구성. 반면, IL 5Rα 양성 HT-B9 셀의 ~ 11%만 개발된 xenografts41에 포함 했다. 따라서이 모델 AC 예측 가능한 환자 종양이 나타내는 두 종양에서 종양 대상 평가 대 한 훌륭한 예를 제공 합니다.
<ol><li>≥를 포함 하는 그룹 4 (끄 덕 임/SCID) 쥐 꼬리 정 맥에 64Cu-A14-ChAcNLS, 64Cu-A14-NLS, 및 64Cu-A14의 20-30 μ g (6-9 MBq)을 주사.</li>
	<li>같은 날 64초당 방사성 조사 조직 (%ID/g)의 그램 당 주입된 량으로 변환 하는 Cu의 5 MBq 포함 된 원통형 팬텀 (24.8 mL)를 배치 합니다.</li>
	<li>48 h 고 1.5 L/min 2 %isoflurane 산소 흐름의 유도 챔버에 배치 하 여 마우스를 anesthetize. 유도 후 및 애완 동물 스캐너에 배치 하기 전에 마우스 눈에 메 마른 눈 연 고를 적용 합니다.</li>
	<li>빠르게 isoflurane에 대 한 코 콘 headfirst 경향이 위치에 애완 동물 스캐너 테이블에 마우스를 전송. 위치는 호흡 및 직장 프로브 및 생리 적 상태는 이전 실험 기간 동안 유지 되도록 모니터 온도 호흡 속도 44를설명 합니다.</li>
	<li>정기적인 샘플링 모드 설정 및 250-650 keV의 에너지 윈도우를 사용 하 여 애완 동물 데이터 수집을 시작 합니다. 일반적으로, 마우스 당 45 분 정적 스캔 재건 및 고품질 애완 동물 이미지의 생산을 위한 충분 한 일치 하는 이벤트를 제공 해도 됩니다.</li>
	<li>64Cu-AC 스캔 후 스캐너에서 마우스를 제거 하 고 다시 감 금 소에. 마우스 충분히 동물 시설에 반환 하기 전에 복구를 허용 합니다.</li>
	<li>3 차원 최대 가능성 기대 최대화 알고리즘의 20 번을 사용 하 여 복원된 이미지를 얻을.</li>
	<li>
종양 및 아 미드 소프트웨어를 사용 하 여 시각적으로 평가할 수 있는 장기의 관심 (ROI) 분석의 영역을 수행 합니다.
	<ol>
<li>수동으로 3D 자유형 도구 설정을 사용 하 여 양적 %ID/g 데이터를 얻기 위해 ROIs 그리고 신중 하 게 종양 또는 인접 한 허벅지 근육을 나타냅니다. 투자 수익에서 픽셀 당 계산 이전 단계 4.2에서에서 %ID/g으로 변환 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>종양, 그리고 정량적 투자 수익 %ID / g, 명암과 종양-배경 비율에 대 한 64Cu-A14, 64Cu-A14-ChAcNLS, 64Cu-A14-NLS 이미지를 비교 합니다.</li>
</ol>

저자 공개할 게 없다

항 암 제의 조직 배달의 주요 목표는 종양 사이트 및 통풍 관 암 세포 내에 축적을 증가 하 고 건강 한 조직에 원치 않는 부작용을 감소를. 종양 세포에 분자 페이로드 AC 타겟 배달 치료 종양을 검출 하는 매우 유망한 접근 이다. 그러나, 효 험의 부족 endosome 함정으로 인 한 고 스트림 lysosomal 저하 아래로 남아 중요 한 도전. 이 프로토콜 ChAcNLS 펩 티 드를 활용 하 여 차세대 ACs의 건설에 대 한 예를 들어, 설명된 절차는 세포내 전달된 페이로드의 양을 증가 하는 것을 목적으로 개발 되 고 하는 펩 티 드 수정 AC에 에 암 세포를 대상으로.
이 프로토콜의 가장 중요 한 단계는: 1) 식별 하 고 높은 MW 제한 집계 종; 세포내 축적;를 결정 하기 위한 분석 전에 세포의 trypsinization 2) 3) 세포질 분별 법 절차;의 품질 보증 수행 그리고 4) 이미징 종양 vivo에서타겟팅을 평가 하는 애완 동물을 수행.
...

항 체 어원이 같은 말 (ACs)는 효과적인 약물 암 치료 향상을 위한과 종양의 transformative 클래스에 성숙 하는 바이오. 단일 클론 항 체 (mAb) radioisotopes, 작은 분자 및 생물 독 소 같은 분자 페이로드를 활용의 구성, ACs 절묘 한 대상 항 원 친화성 및 특이성 암 세포에 이러한 페이로드를 전달할 수 있습니다. 따라서 ACs을 크게 줄이고 특이 독성 종양 사이트에서 페이로드 활동 증가 가능성이 있다. 치료로, 세포 독성 작은 분자 (일반적으로 언급 항 체 약 변화)를 수송 하는 ACs 기존의 치료 1, 실패 한 유방암 및 Hodgkin의 림프 종 환자 치료에 대 한 승인 되었습니다. 2. 또한, ACs 수송 radioisotopes (일반적으로 radioimmunoconjugates 라고 함)는 또한 개발. 이미징에 대 한 방사성 동위 원소를 수송 하는 AC 전립선 암 전이 3식별을 위해 승인 된다. 많은 더 치료 acs 승인 4에 대 한, 암 치료 5개선에 ACs의 미래에 대 한 낙관론은 높다.
그럼에도 불구 하 고, chemotherapeutics 또는 radioisotopes 제공 때 ACs 대상 셀 안에 이러한 페이로드를 효과적으로 축적 하는 어려움이 있다. 이 부분 상당히 오랫동안 질병-무료 생존 또는 고대비 종양 6,7이미지를 제공 하는 ACs의 무 능력에서 많은 경우에 공헌 한다. 일반적으로, 일단 ACs 바인딩할 그들의 대상 항 원 수용 체 중재 된 endocytosis 이라는 프로세스를 통해 내는 그들은. ACs는 다음 endosomes 안에 갇힌 저하에 대 한 리소좀에 인신 매매 및 페이로드 발표 8. 세포내 밀매 과정 높은 페이로드 특이성 및 대상 암 세포에 대 한 효능을 ACs에 대 한 도전 포즈. 예를 들어 많은 항 Her2 등 (대상 치료 AC Trastuzumab-emtansine)는 첫 번째 30 분 9에 바인딩된 항 체의 85%를 재생할 수 있다. 또한, 저하 발생 하면 출시 된 chemotherapeutics와 radioisotopes 내보낼 수 있습니다 적극적으로 증가 식 및/또는 관련 된 막 수송 단백질 10,11의 활동. 리소좀 저하 또한 소설 생물 페이로드 치료 효소 등의 납품을 방해 하 고 수 있는 oligonucleotides 비활성화 12,13. 본질적으로, 암 세포 abrogating 페이로드 ACs에 의해 전달의 필요한 세포내 축적에 매우 효과적입니다.
이 프로토콜에서는 ACs-바이러스 파생 된 펩 티 드, 특히 endosome 함정을 탈출 하 고 세포 핵에 지역화에 대 한 결합의 개념을 구현 하는 방법을 설명 합니다. 호스트 셀 시스템 조작 같은 세련미와는 잠재적인 바이오로 바이러스 파생 단백질 및 펩 티 드의 개발은 오래 되었습니다에 배어 든 치료 연구 14놀라운 일이 아니다. 바이러스 단백질에 정상 생리 포유류 세포 시스템을 효과적으로 이용할 수 있는 뛰어난 컬렉션을 얻으려고 진화 하는 년의 수백만 대 한 호스트 셀을 입력 합니다. 바이러스 수용 체 중재 된 endocytosis를 통해 내 면, 그들은 또한 프로 테아의 지역화 된 농도의 공격 생존에 대 한 문제가 될 수 있는 매매는 리소좀에 이스케이프와 도전 됩니다. 특징이 잘 바이러스 성 파생 된 펩 티 드 endosome 함정 탈출을 위한 약물 전달에 활용은 전사 (문신) 단백질 15의 인간 면역 결핍 바이러스 transactivator 이다. 문신은 낮은 pH 이때 단백질 구조적 변화가 활성화 문신 자체에 삽입 하 고 endosomal 막 16방해를 감지 하 여 endosome 함정을도 주 할 수 있습니다. 이 결과 세포질 액세스할 수 문신 페이로드 어원이 같은 말. 이 프로토콜에 관련 된 두 번째 바이러스 성 조작 요소 핵 17에 치료 유전자와 약물을 전달 하는 데 사용 하는 접근 이다. 바이러스는 성공적으로 복잡 한 핵 공 (NPC)를 통과 하 여 핵 막 과거 진행에 대 한 호스트 셀 기계 조작에 진화 했다. 세포질 고분자 포함 (또는 포함 하는 단백질을 바인딩할) 핵에 바인딩하는 데 필요한 핵 지 방화 신호 (NLSs) 수송 단백질 (예: karyopherins α와 β), NPC 통해 필요한 움직임을 제공 하는. 바이러스는 호스트 셀 전송 단백질 핵 18에 왕복에 대 한 활용 하는 기능 들을 제공 하는 NLS 시퀀스를 포함 하는 단백질을 개발 했습니다.
수많은 ACs 이전 문신 및 NLS 파생 된 펩 티 드와 공업화 되었고 암 세포 안에 축적 하는 그들의 능력에 대 한 고 종양 19,20,,2122 를 대상으로 테스트 23,,2425,26,27,28,29,30 (표 1). 세포 독성 페이로드를 제공 하는 연구 ACs 바이러스 파생 된 펩 티 드로 세포 축적, 세포 독성, 그리고 수정 되지 않은 ACs 22,26이상 죽이고 종양을 크게 증가 시킬 수 있습니다 설명 했다. AC의 소설이 클래스에 대 한 일반적인 특징은 그들의 건설 이다. 일반적으로, 펩 티 드 무료 sulfhydryl 그룹을 제공 하는 터미널 시스테인 포함. MAbs는 처음 N-hydroxysuccinimide (NHS)와 반대 끝에 maleimide 그룹을 포함 하는 noncleavable bifunctional crosslinker로 반작용 했다. NHS 에스테 르 아 미드 유대를 형성 하는 mAb에 1 차 아민으로 반작용 한다. 무료 maleimide 그룹으로 반작용된 mAb 다음 sulfhydryl 그룹 펩 티 드 thioester 유대와 이렇게 연결 하는 펩 티 드 및 mAb 형성에 반작용 했다. 비록 homobifunctional crosslinkers는 사용된 28, heterobifunctional crosslinker는 더 일반적으로 바이러스 파생 된 펩 티 드-ACs 22,,2326의 건설에 사용 되 31,32. 이 프로토콜은 특히 crosslinker sulfosuccinimidyl 4-(N maleimidomethyl) 사용 하 여 cyclohexane-1-카복실산 (sulfo SMCC) 사용의 용이성에 대 한 승인 된 항 체 약물 어원이 Trastuzumab-emtansine에 많은 사용 되 고 바이러스 파생 된 펩 티 드-ACs 8,22,23,26,,3132. 나트륨 라우릴 황산 염의 polyacrylamide 젤 전기 이동 법 (SDS 페이지)가 처음 활용 효율성을 결정 하기 위한 기본 방법에 대 한 반 측정 mAb 당 펩 티 드의 수. Confocal 현미경 검사 법을 붙일 표시 된 이차 항 체는 mAb에를 사용 하 여 일반적으로 처음 바이러스 파생 된 펩 티 드 수정 ACs의 세포내 분포 속성을 평가 하기 위한 방법입니다. 지금까지, radioisotopes 기본 페이로드를 바이러스 파생 된 펩 티 드 수정 ACs에 의해 전달 되는. Radioisotopes 셀에 방사능은 쉽게 감마를 계산 하 여 정량 때문에 유리 하다. 또한, 인간의 암 마우스 모델으로 번역 하는 ACs 종양 단일 광자 방출 컴퓨터 단층 촬영과 양전자 방출 단층 촬영 (PET)와 같은 분자 이미징 modalities를 사용 하 여 대상으로 평가 하는 능력 연구원 제공 23 , 32 , 33. 건설 및 연구자에 의해 주로 사용 되는 메서드를 테스트 하는 유효성 검사 효과적으로 입력 하 고 제공 바이러스 파생 된 펩 티 드와 함께 초기 개발 단계에서 수정 하는 ACs의 매우 좋은 평가 제공 하는 일반적으로 페이로드 대상 셀 내부와 대상 종양입니다.
문신 및 NLS-수정 ACs 추가 페이로드 배달 암 세포 내부와 종양을 개선 하기 위한 조명된 핵심 지역이 있다. NLS 수정 ACs에 관하여 세포내 축적에 효율성 겸손 23,,3134수 있습니다. 비효율적인 세포내 축적은 지속적인된 endosomal 함정에 의해 발생 합니다. Vivo에서 종양을 대상으로 수 있습니다 또한 줄어들와 두 문신 및 NLS-수정 ACs. 문신 및 NLS의 활성 시퀀스 여러 긍정적인 충전된 잔류물을 포함합니다. MAbs에 연결 된, 전체 양이온 충전 크게 증가 35수 있습니다. 결과적으로 문신 및 NLS-수정 ACs 건강 한 조직에 통풍 관을 증가 있고 급속 한 혈액 클리어런스를 증가.
우리의 그룹 개발 복합 화합물 cholic acid NLS (ChAcNLS;에 연결 구성 그림 1)입니다. ChAcNLS 수정 ACs 배달된 radioisotopes의 세포내 축적을 증가 및 종양 NLS 수정 및 전통적인 ACs 33,34에 비해 대상으로 향상 시킬 수 있습니다. Cholic 산 뒤에 장치는 막 퓨전 세 라마 이드의 형성을 통해 endosome 탈출 하 cholic acid를 활용 하는 것에 의존할 수 없는 선택 nonenveloped 바이러스의 능력에 의해 영감 이다. 예를 들어 돼지 장 바이러스 sphingomyelinase, 세 라마 이드 36,,3738에 sphingomyelin의 가수분해를 catalyzes 활성화 cholic acid를 보충 한다. 이 endosomal 막 destabilizes 고 바이러스 탈출에 대 한 수 있습니다. 따라서, cholic acid NLS를 보완 하는 다른 바이러스 파생 된 구성 요소입니다.
이 필드 이동 앞으로 미래의 발전 그것은 초기 개발 하는 동안 그들의 생 화 학적 및 기능적 특성의 시각적 데모를 제공 하는 적시 페이로드 전달 바이러스 파생 된 펩 티 드로 ACs에 의해 발생 합니다. 여기, 우리는 세포내 축적 및 종양 초기 단계 개발 대상으로 효율적인 아직 간단한 결정에 대 한 펩 티 드 수정 ACs 바이러스 파생의 초기 평가 대 한 우리의 프로토콜을 설명 합니다. 우리는 상용 mAbs 7G 3 및 A14 예제 모델 시스템으로 사용합니다. 절차 1 생성 된 ACs에 대 한 ' go/no가 ' 결정에 대 한 허용 하는 방법으로 SDS 페이지를 사용 하 여를 설명 합니다. 프로시저 2 trypsinization AC 세포내 분포와 축적의 향상 된 시각화에 대 한 허용을 사용 하는 방법을 설명 합니다. 절차 3 핵 지역화가 정확 하 게 결정을 향상 된 세포내 분별 하는 방법을 설명 합니다. 이 절차에서는 우리가 활용 페이로드 64Cu (t1/2 = 12.7 h) 셀룰러 경과에 취약 하 고 양전자가 미터 10때문에. 따라서, 절차 4 종양 vivo에서 애완 동물 이미지 배경 (즉 nontarget 건강 한 조직) 기준으로 종양 글귀를 시각화 하 고 AC 예를 구체적으로 그리고 효과적으로 할 수 있는지 여부를 확인 하 여 특성화를 대상으로 설명 대상 종양입니다. 이 메서드는 추가 발전에 대 한 후보를 식별 하기 위해 바이러스 파생 된 펩 티 드로 ACs를 개발 하는 수 사관에 대 한 충분 한.

<table><tbody><tr><td>Sulfo-SMCC</td><td>Thermo Scientific</td><td>22122</td><td>선택할 수 있는 많은 homo- 및 hetero-bi-functional maleimide crosslinker가 있습니다.</td></tr><tr><td>Amicon Ultra-0.5 mL 원심 필터</td><td>EMD Millipore</td><td>UFC505096</td><td>8, 24, 96의 팩 크기가 있습니다. 필요에 따라 선택하십시오.</td></tr><tr><td>Precision Plus 단백질 만화경 표준물</td><td>BioRad</td><td>1610375EDU</td><td>10 - 250 kDa의 Mulicolor 재조합 단백질.</td></tr><tr><td>트립신-EDTA(0.25%), 페놀 레드</td><td>Thermo Scientific</td><td>25200056</td><td>100 또는 500mL 용량 중에서 선택할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>염소 안티 마우스 IgG (H + L) 2 차 항체, Alexa Fluor 647 conjugate</td><td>Thermo Scientific</td><td>A-21235</td><td>1 - 10 &mu; g/mL 권장</td></tr><tr><td>NOTA-NHS</td><td>CheMatech</td><td>C100</td><td></td></tr><tr><td>Lamin A/C 항체 (N-18)</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-6215</td><td></td></tr><tr><td>Rab7 항체</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-376362</td><td></td></tr><tr><td>A14 mAb</td><td>BD Biosciences</td><td>555902</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE LDS Sample Buffer (4x)</td><td>Thermo Scientific</td><td>NP0007</td><td></td></tr><tr><td>2- 메르캅토에탄올</td><td>시그마 Aldrich</td><td>M3148-25ML</td><td></td></tr><tr><td>TF-1a 셀</td><td>ATCC</td><td>ATCC CRL-2003</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 매체</td><td>ATCC</td><td>ATCC 30-2001</td><td></td></tr><tr><td>RIPA 용해 및 추출 버퍼</td><td>Thermo Scientific</td><td>89900</td><td></td></tr><tr><td>AMIDE 의료 영상 소프트웨어</td><td>amide.sourceforge.net</td><td></td><td>완전 무료 다운로드</td></tr><tr><td>FluoView FV1000 컨포칼 현미경</td><td>Olympus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluoview 소프트웨어</td><td>Olympus</td><td></td><td>www.olympus-lifescience.com</td></tr><tr><td>ITLC 스트립</td><td>Biodex</td><td>150-771</td><td></td></tr></tbody></table>

세포 축적을 증가 하 고 종양을 대상으로 개선에 대 한 바이러스 성 파생 된 펩 티 드 항 체 어원이 같은 말의 초기 평가 수정

Initial Evaluation of Antibody-conjugates Modified with Viral-derived Peptides for Increasing Cellular Accumulation and Improving Tumor Targeting

항 체-어원이 같은 말 (ACs) 바이러스 파생 된 펩 티 드로 분자 페이로드 암 치료에 사용 되 고 현재 ACs에 증가 세포 축적 때문 이미징에 대 한 종양 세포 배달 에이전트의 잠재적으로 강력한 클래스는. 초기 AC에 체 외에서 동안 개발, 형광 기술 및 방사는 세포내 지역화, 축적, 효율과 대상 세포 특이성을 결정 하기 위한 충분 한. 현재, AC 세포내 축적 및 지역화에 대 한 셀을 준비 하기 위한 표준화 된 방법에 아무런 합의입니다. ACs를 바이러스 파생 된 펩 티 드로의 초기 테스트 하는 것이 여러 후보를 생성 하는 경우에 특히 중요 합니다. 세포내 축적 결정 형광 세포 표면에 ACs에서 배경 신호에 의해 영향을 받을 수와 축적의 해석을 복잡 하 게. 방사, 일반적으로 치료 세포는 분류 한 및 다른 세포 격실에 방사능 측정. 그러나, 세포 세포의 용 해 셀을 변화 하 고 종종 핵과 세포질 구획 적절 하 게 격리 됩니다. 이 페이로드 배달 속성에 잘못 된 데이터를 생성할 수 있습니다. 방사선된 바이러스 파생 된 펩 티 드 수정 ACs 종양 마우스 뒤에 방사성 핵 종 영상 베어링에서 정 맥 주입의 비보에 단계에서 종양 타겟팅 및 페이로드 배달 속성을 결정 하기 위한 강력한 방법 이다 개발입니다. 그러나, 이것은 비교적 최근의 발전 하 고 몇 그룹 펩 티 드 수정 ACs를 바이러스 파생이 방식으로 평가 했습니다. 우리는 더 정확 하 게 평가 하는 펩 티 드 수정 AC 축적 바이러스 파생 confocal 현미경 검사 법 및 방사를 사용 하는 경우에 치료 셀의 처리를 설명 합니다. 특히, trypsinizing 세포 세포 표면 제거 하는 방법 ACs 바인딩됩니다. 우리는 또한 세포 분별 법을 개선 하기 위한 방법을 제공 합니다. 마지막으로,이 프로토콜이 있습니다 vivo에서 양전자 방출 단층 촬영 (PET)를 사용 하 여 초기 종양 종양 방위 쥐에서 속성을 대상으로 평가. 우리가 사용 하는 방사성 64Cu (t1/2 = 12.7 h)이 프로토콜에서 예제 페이로드로.

절차 1, 7G 3의 건설 한 crosslinker는 매우 안정적인 sulfo SMCC를 사용 하 여 ChAcNLS로 수정. 일반적으로, 12% 젤에 로드 하 고 의해 SDS 페이지 분석,이 결과 구별할 수 stepwise MW sulfo SMCC-7G 3 비율 증가에 비례 증가에 사용 및 개별적으로 ChAcNLS에 대 한 평가를 무 겁 고 가벼운 사슬에 대 한 허용 활용 (그림 3)입니다. 7 G 3는 10, 20, 25, 그리고 50 대 1 sulfo SMCC-7G 3 비율 Rf 측정, 3, 7, 10, MW 추정 결과 및 7G 3 당 20 ChAcNLS 분자에 반응. 의해 densitometry, 백분율 단위체 종 7G 3 3-10 ChAcNLS 수정 > 90%입니다. 7 G 3-ChAcNLS20 에 대 한 집계 종 45%입니다. 이 SDS 페이지는 아직 7 G 3-ChAcNLS를 선택 하기 위한 효과적인 켤레 추가...

바이러스 성 파생 된 펩 티 드 항 체 어원이 같은 말 (ACs)에 결합 된 증가 된 종양 세포 축적과 분자 페이로드를 제공의 가능성으로 인해 기세를 얻고입니다. 펩 티 드 활용, AC 및 페이로드 세포내 축적, 및 종양을 대상으로 평가 하는 일반적인 방법을 활용 하 고,이 프로토콜 연구원 주요 초기 개발 단계에서 도움이 됩니다.

Antibody-conjugates (ACs) modified with virus-derived peptides are a potentially powerful class of tumor cell delivery agents for molecular payloads used ...

이러한 절차의 전반적인 목표는 초기 개발 단계에서 표적 세포와 종양 내부에 축적되는 항체 접합체의 특이성과 효과를 평가하여 궁극적으로 임상에서 사용할 수 있도록 하는 것입니다. 이 방법은 핵 국소화의 효율성 및 전반적인 세포 간 축적과 같은 접합 필드에 대한 답변에 대한 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 장점은 PET 이미징을 통해 연구원들이 후보 항체 접합체의 효과와 선택성을 평가할 수 있다는 것입니다.이러한 기술의 의미는 암 치료 및 진단으로 확장되는데, 이는 비효율적인 종양 세포 축적이 항체 접합체에 대한 이러한 응용 프로그램의 주요 제한 사항이기 때문입니다. 텍스트 프로토콜에 따라 colic-acid nuclear localization sequence antibody conjugate를 합성한 후, 200 nanomolar 7G3 colic-acid MLS 항체 conjugate로 타겟 TF1A 세포를 처리합니다. 변형된 대조군 단클론 항체로 처리된 세포를 포함합니다.10-6번째 항원 양성 세포를 5배 배에 접합체를 사용하여 섭씨 37도에서 1시간 동안 배양합니다. 그런 다음 상층액을 제거하고 얼음처럼 차가운 PBS 1ml를 사용하여 세포를 세 번 세척합니다. 새로운 배지를 추가하고 섭씨 37도에서 한 시간 더 세포를 배양합니다.다음으로, 0.25%트립신과 EDTA를 함유한 PBS 0.5ml를 첨가하고 섭씨 37도에서 최대 30분 동안 세포를 배양합니다. 그런 다음 10% FBS가 함유된 1.5ml의 RPMI1640액을 사용하여 트립신을 중화합니다. 500배 G로 세포를 5분 동안 원심분리하고 상층액을 제거한 후 0.5ml의 얼음처럼 차가운 PBS를 사용하여 세포를 다시 3번 세척합니다.세포에 0.5ml의 1%PFA와 1%자당 및 PBS를 넣고 얼음에 30분 동안 올려 고정시킵니다. 그런 다음 0.5ml의 얼음처럼 차가운 PBS를 사용하여 세포를 세 번 세척하고 5분 동안 250배 G로 샘플을 원심분리합니다. 다음으로, 0.15%Triton X-100 및 PBS를 세포에 첨가하고 얼음 위에서 5분 동안 투과시킵니다.그런 다음 얼음처럼 차가운 PBS로 세포를 세척하고 원심분리를 반복합니다. Alexa Fluor 647에 접합된 반미러링 FC 2차 다클론 항체 밀리리터당 2마이크로그램을 포함하는 0.1ml의 PBS에 세포를 현탁시키고 샘플을 실온의 어두운 곳에서 1시간 동안 배양합니다. 250배 G로 5분 동안 세포를 원심분리하고 0.5ml의 얼음처럼 차가운 PBS를 사용하여 세포를 세 번 세척합니다.그런 다음 0.5 밀리리터의 PBS에 세포를 현탁시킵니다. 프로피듐 요오드화물을 밀리리터당 10마이크로그램을 세포에 첨가합니다. 그런 다음 장착 매체를 사용하여 유리 슬라이드에 10-5번째 셀을 한 번 장착한 후 유리 커버 슬립으로 샘플을 덮습니다.도립 레이저 스캐닝 컨포칼 현미경에서 Plan APO 60X 오일 이멀젼 대물렌즈(개구수 1.42)를 사용하여 세포를 검사합니다. 488나노미터 아르곤 레이저와 600 - 650나노미터로 설정된 분광 스캐닝 프리즘을 사용하여 PI 형광을 검출합니다. AF 647 형광의 경우 633 나노미터 헬륨-네온 레이저와 650 - 700 나노미터용 분광 스캐닝 프리즘 세트를 사용하십시오.PI 및 AF 647에서 1024 x 1024 픽셀, 2X 라인 평균으로 전체 세포 두께를 통해 0.5미크론 간격으로 촬영한 이미지를 순차적으로 수집합니다. 이미지를 Z 투영으로 표시합니다. 세포를 분석하기 위해 세포질의 세포 내 형광이 그룹화되어 있고 세포 표면 근처에 있는지 또는 확산되고 균질한지 평가하고 기록합니다.또한 세포당 상대적인 형광 강도를 평가합니다. 텍스트 프로토콜에 따라 방사성 표지된 colic-acid NLS 항체 접합체를 준비하고 농축한 후 0.5마이크로리터의 0.1몰 PH5.5 구연산나트륨 또는 ITLC 용리액을 ITLC 스트립에 적용하여 방사성 표지 효율을 측정합니다. 스트립의 자가방사선 사진을 형성하고 디지털 이미지를 얻습니다.결합 및 자유 Copper-64의 비율을 얻기 위해 밀도 측정을 수행합니다. 유리 구리-64 함량이 5%보다 크면 샘플을 더 농축합니다. Copper-64 세포 축적 연구의 경우, 앞서 설명한 대로 섭씨 37도에서 1시간, 6시간, 24시간 동안 100나노몰의 Copper-64 표지 A14 접합체로 세포를 처리합니다.변형되지 않은 A14로 세포를 처리하여 IL5R 알파세포를 차단하고 섭씨 4도에서 수용체 매개 내재화를 차단합니다. 세포를 세척하고 새로운 배지로 배양한 후 이 비디오의 앞부분에서 설명한 것처럼 0.25%트립신과 EDTA가 포함된 PBS 0.5ml를 첨가하고 섭씨 37도에서 15분 동안 배양합니다. 그런 다음 이전과 같이 세포를 중화하고 세척한 후 세포에 원형질막 용해 완충액을 추가하고 얼음에서 10분 동안 배양합니다.원형질막 용해된 세포를 90배 G로 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 제거하고 새 튜브에 옮깁니다. 이것은 세포질 분획을 나타냅니다.그런 다음 얼음처럼 차가운 PBS를 사용하여 핵을 세 번 세척하고 세척액을 세포질 분획에 추가합니다. 핵 및 세포질 분획이 들어 있는 바이알이 밀봉되었는지 확인한 다음 Copper-64에 대해 보정된 감마 카운터에 넣어 원시 계수를 메가베카릴로 변환합니다. 제한된 핵 단백질인 lamin AC에 대한 Western-Blot 분석을 수행하여 핵 분리의 품질을 결정합니다. 및 Rab-7, 풍부한 세포질 단백질, 도매 용해물, 핵 및 세포질 분획.500마이크로리터의 방사성-아미노-침전 분석법(RIPA buffer)과 1%2%및 4%NP-40을 함유한 플라즈마-멤브레인 용해 완충액으로 6개의 세포를 5배 10번 처리합니다. 또한 분리된 핵을 500마이크로리터의 RIPA 완충액으로 처리하여 분리된 핵 단백질을 얻습니다. 분리된 핵단백질, 세포질 단백질, 도매 단백질에 시료량의 4배인 저온 아세톤을 첨가하고 영하 20도에서 60분 동안 배양합니다.13, 000 시간 G에 10 분 동안 표본을 원심분리기. 상등액을 디캔팅하고 단백질 펠릿이 제거되지 않도록 주의하십시오. 그런 다음 100마이크로리터의 PBS를 첨가하여 단백질을 용해합니다.앞서 설명한 대로 웨스턴 블로팅을 수행한 후 40킬로달톤 분자량 마커에서 멤브레인을 반으로 자릅니다. lamin-AC 특이적 항체를 사용하여 고분자량 단백질이 포함된 블롯을 프로브하고, Rab-7 특이적 항체를 사용하여 멤브레인의 아래쪽 절반을 프로브합니다. 4마리의 nodskit 마우스가 포함된 그룹에서 20-30마이크로그램의 방사성 표지된 A14 콜산 NLS 항체 접합체, 방사성 표지된 A14 NLS 및 방사성 표지된 A14를 꼬리 정맥에 주입합니다.같은 날, 구리-64 5메가베카릴이 함유된 원통형 팬텀을 PET 스캐너에 넣어 초당 방사성 수치를 조직 1g당 주입량으로 변환합니다.48시간 후, 텍스트 프로토콜에 따라 마우스를 마취한 후 이소플루란에 대한 노즈콘이 있는 헤드퍼스트 엎드린 위치의 PET 스캐너 테이블로 마우스를 빠르게 옮깁니다. 일반 샘플링 모드 설정과 250 - 650 킬로전자 볼트의 에너지 창을 사용하여 PET 데이터 수집을 시작합니다.스캔 후 스캐너에서 마우스를 제거하고 케이지에 다시 넣습니다. 이 그림에서 볼 수 있듯이 화살표는 트립신화(trypsinization)가 있는 경우와 없는 경우의 항체 접합체 축적을 평가할 때의 차이를 보여줍니다. 트립신화되지 않은 세포에서는 표적 세포의 표면 수용체가 과도하게 발현되기 때문에 세포 내 축적 및 분포를 평가하기 어렵습니다.화살표는 세포가 적절하게 트립신화되었을 때 두 개의 항체 접합체 후보의 세포 내 축적 및 분포의 차이를 보여줍니다. 방사성 표지된 A14 콜산 NLS 항체 접합체는 IL5R 알파에 대한 나노몰 친화도를 보여줍니다. 방사성 표지된 A14 콜산 NLS 항체 접합체의 농도가 증가함에 따라 A14 콜산성 NLS 항체 접합체의 특이 결합은 HT-1376 및 HT-B9 세포 모두에서 3.5 나노몰 농도에서 포화 상태에 접근했습니다.감마 계수는 방사성 표지된 A14 산산성 NLS 항체 접합체로 인한 핵과 세포질의 방사성 증가가 특이적이며 시간이 지남에 따라 증가한다는 것을 보여줍니다. HT-1376 및 HT-B9 세포를 1%2% 또는 4%NP-40을 함유하는 원형질막 용해 완충액으로 배양했습니다. HT-1376 및 HT-B9 세포의 경우, 하나 또는 2%NP-40 Rap-7을 포함하는 용해 완충액은 핵 분획에서 검출되지 않았으며, 라민 AC는 세포질 분획에서 검출되지 않았습니다.PET 이미징을 통해 항원 양성 종양, 빨간색 및 파란색 화살표, 부모의 비펩타이드 변형 항체와 비교하여 관련 생체 분포 특성을 표적으로 하는 능력에 대한 후보 항체 접합체를 평가할 수 있습니다. 종양에서 신호 축적을 볼 수 있어 개발된 항체 접합체의 가능성을 선택하는 데 도움이 됩니다. PET 이미징을 통해 간과 같은 건강한 조직에서 후보 항체 접합체 흡수를 평가할 수도 있습니다.이러한 기술을 마스터한 후, 분자 페이로드의 표적 종양 전달 분야의 연구자들은 엔도솜 포획으로 인해 종양 세포 축적이 방해되는 추가 약물을 탐색할 수 있습니다.

initial-evaluation-antibody-conjugates-modified-with-viral-derived

Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

이 동영상은 컨포칼 현미경을 사용하여 바이러스 유래 펩타이드 변형 항체 접합체의 세포 내 분포를 평가하는 과정을 보여줍니다. 바이러스 유래 핵 국소화 염기서열은 면역염색 및 형광 측정을 통해 확인된 세포질 내의 항체 접합체를 지시합니다.

바이러스 유래 펩타이드 변형 항체 접합체의 세포 내 분포 평가

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이 프로토콜에서 포드는 phenyoxadiazolyl 메 틸 sulfone 기반 시 약 쓰이므로, 특히 항 체의 thiols 화물의 사이트 선택 첨부 파일에 대 한 종합을 설명 합니다. 또한, 합성 및 포드 베어링 bifunctional chelator 및 모델 항 체에의 활용의 설명 합니다.

합성 및 Bioconjugation의 Thiol 반응 시 약 사이트에 선택적으로의 창조에 대 한 수정 Immunoconjugates

생체 내 면역형광 국소화(IVIL) 방법은 생체내 종양 표적화 및 ex vivo 면역염색의 조합을 사용하여 살아있는 유기체에서 종양학적 목적을 위해 항체 및 항체 접합체의 생체 분포를 검사하는데 사용될 수 있다. 방법.

암 연구에서 치료 및 진단 항체 바이오 유통 평가를 위한 생체내 면역형광 국소화

여기서 우리는 마우스 종양 제노이식 모델에서 항체의 생체 내 국소화를 연구하는 프로토콜을 제시한다.

표적 항원 특이적 치료 항체의 종양 및 조직 분포 분석

당사는 생체 내 수지상 세포 표적화를 위한 내분균 수용체 특이적 항체에 대한 모델 항원 배부안의 화학적 결합을 위한 프로토콜을 기술한다. 이 프로토콜은 항체의 정제, 항원의 화학적 융합, 공자의 정제 및 효율적인 유도의 검증을 포함한다.

체외 및 비보에서 마우스 수지상 세포를 대상으로 하는 전체 길이 단백질을 가진 정제 된 DEC-205 지향 항체의 화학 적 융합

여기에서는 항종양 항체의 중요한 암세포 사멸 기전인 ADCC 기전을 조절하는 화합물을 확인하는 방법을 제시합니다. NK 세포의 세포독성 효과는 트라스투주맙이 있는 유방암 세포 스페로이드에서 측정됩니다. 이미지 분석은 스페로이드에서 살아있는 킬러와 죽은 킬러와 표적 세포를 식별합니다.

종양 스페로이드 모델에서 항체 의존성 세포 독성 정량화: 약물 발견을 위한 응용

배우세요 항체 접합체의 세포 축적 및 핵 국소화 효율을 평가하는 방법을. TF1A 세포와 PET 영상을 활용하여 종양 표적화 치료제 개발의 효과성과 선택성을 분석하는 실험 기술을 익히세요.

세포 축적을 증가 하 고 종양을 대상으로 개선에 대 한 바이러스 성 파생 된 펩 티 드 항 체 어원이 같은 말의 초기 평가 수정

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