Name: Microfluïdische-based Electrotaxis voor On-demand Kwantitatieve analyse van Caenorhabditis elegans Locomotion (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 23 s
Description: Leer microfluïdische electrotaxis voor kwantitatieve analyse van Caenorhabditis elegans-locomotie. Deze methode maakt snelle screening van factoren die neurale gezondheid beïnvloeden mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

De auteurs willen graag de Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada, Canada Onderzoek Stoelen Program, Canadese Institutes of Health Research, en Ontario ministerie van Onderzoek en Innovatie bedanken door middel van hun Early Onderzoekers Award Programma voor financiële steun.

1. Fotolithografie voor Master Mold Fabrication <ol><li> Baden een 3 inch siliciumwafel in aceton gedurende 30 seconden en vervolgens methanol gedurende 30 sec. Spoelen met dH 2 0 water gedurende 5 minuten. </li><li> Droog het oppervlak van de wafer met een N2 klap pistool. Verwarm de wafer op een hete plaat bij 140 ° C gedurende 2 minuten. </li><li> Plasma oxideren van het oppervlak van de siliciumwafel (1 min, 50 W). </li><li> Spin-coat oppervlak van de wafer met 3 ml SU-8 100 fotolak (40 sec; 1750 rpm). </li><li> Pre-bak de gecoate wafer op een hete plaat bij 65 ° C gedurende 10 min, waarna uitloop de temperatuur tot 95 ° C gedurende 2 minuten. Handhaaf deze instelling voor een extra 1 uur. </li><li> Lijn een fotomasker met het gewenste kanaal ontwerp. Expose de weerstaan ​​om 550-600 mJ / cm 2 van UV-licht (350-400 nm). Fotomaskers kunnen worden ontworpen in AutoCAD en afgedrukt op een transparant met een hoge resolutie afdrukken. </li><li> Post-bak de wafer op een hete plaat bij 65 ° C gedurende 1 min en 95 ° C gedurende 10 min, t rampingHij temperatuur als voorheen. </li><li> Dompel de wafer in SU-8 developer oplossing voor 10-15 minuten. Controleer de voltooiing van de ontwikkeling door spoelen met isopropanol. Als een witte neerslag ontstaat, blijven ontwikkelen. De master vorm wordt getoond in figuur 2A. </li></ol> 2. Zachte lithografie voor Microchannel Fabrication <ol><li> Meng 35 ml polydimethylsiloxaan (PDMS) elastomeer basis met 3,5 ml PDMS verharder. </li><li> Plaats de gefabriceerde meester mal (patroon naar boven) en een lege silicium wafer in petrischalen bekleed met aluminiumfolie. </li><li> Giet 20 ml PDMS pre-polymeer in de master-mal schotel en 15 ml in de tweede schaal. Elimineer luchtzakken onder de wafers door zachtjes te drukken op hen met een wegwerp houten applicator. </li><li> Bedek beide gerechten en gereserveerd voor een dag om te genezen. Als alternatief voor een snellere uitharding, verwijder luchtbellen uit de PDMS gebruik van een vacuüm ontgasser en dan laat de gerechten op een hete plaat bij 80 ° C gedurende 2hr. </li><li> Verwijder de folie en schil de PDMS van de wafers. </li><li> Gebruik Harris Uni-Core (2,5 mm) om vloeistof toegangspoorten slaan aan beide einden van het kanaal. Snijd het kanaal en blanco PDMS in vergelijkbare grootte reepjes. </li><li> Laad het kanaal, de lege PDMS strip en een glasplaatje (75 × 25 mm 2) in een plasma oxidator, waarschijnlijk gelegen in een cleanroom. Blootstellen aan zuurstof plasma gedurende 40 sec bij 40 W vermogen. </li><li> Plak het kanaal stuk en glasplaatje aan weerszijden van het lege strip. Gereserveerd voor 2 uur om de hechting te voltooien. </li><li> Plaats het geheel op een hete plaat bij 120 ° C. Bevestig kunststof buis (binnendiameter 1/32 &quot;diameter 3/32&quot;), elk ten minste 6 inch lang, aan de geperforeerde reservoirs met PDMS prepolymeer. Aanbrengen van een vloeibare plastic connector aan een of beide buizen te spuiten beslag laten, of in de handel verkrijgbare hulpstukken. </li><li> Sta het PDMS veiligstellen van de slang te genezen. Plaats 3 &quot;lengtes van 22 gauge geïsoleerde koperdraad in each reservoir, tussen de inlaat buis en het kanaal, en veilig met PDMS pre-polymeer. Het eindproduct is weergegeven in figuur 2B. </li></ol> 3. Electrotaxis Experiment <ol><li> Plaats de microkanaal op het podium (bij voorkeur XY-verplaatsbare) van een microscoop met een gemonteerde camera is aangesloten op een monitor (figuur 1). </li><li> Sluit de voeding of uitgangsdraden versterker naar de elektroden van de microchannel&#39;s. Een eenvoudige DC voeding voldoende is als alleen een DC-signaal wordt gewenst, maar een versterker aangesloten op een functie generator maakt gebruik van gepulste DC-en AC-signalen ook. </li><li> Bevestig eindbuis de microchannel om een ​​wegwerpspuit. Dompel de monding van de inlaatbuis in M9 fysiologische buffer en voorzichtig streven vloeistof in het kanaal door een onderdruk in de spuit (manueel of met behulp van een injectiepomp). Wanneer de inlaat en uitlaat pijpen zijn beide gevuld met M9, koppel de spuit from de buis. Niveau beide buizen dezelfde hoogte hydrostatisch aangedreven stromen voorkomen. </li><li> Breng een gelijkspanning aan het kanaal en ervoor zorgen dat de weerstand (R = V / I) is ongeveer 0,6 MQ (voor een 50 mm lang, 0,3 mm breed en ~ 0,1 mm diep microchannel). </li><li> Als u tevreden bent met de integriteit van het kanaal, volgt u de bovenstaande stappen om wormen te laden van een verdunde suspensie in het kanaal. </li><li> Koppel de spuit en hydrostatisch manipuleren de stroming door het aanpassen van de buizen &#39;relatieve hoogte. Gebruik deze methode om een ​​worm te plaatsen in het midden van het kanaal en dan leg beide buizen plat op dezelfde hoogte. </li><li> Zet de voeding aan op de juiste spanning: 4-12 V / cm voor L3 stadium dieren, 4-10 V / cm voor L4S en 2-4 V / cm voor jonge volwassenen. Activeert het elektrische signaal en laat 1 min van de pre-exposure voor de worm te acclimatiseren aan het veld. De worm moet beginnen richting de kathode. Wanneer de minuut voorbij is, gebruikt u de camera om de opname te starten. </li><li> Voor AC en polsslagd DC experimenten, kan de maximale responsieve elektrisch veld van boven en de frequentie en de duty cycle van het signaal worden aangenomen kan worden gemoduleerd zoals gewenst 7, 8. </li><li> Als experiment is voltooid, verwijdert alle vloeibare (en wormen) uit het kanaal, spoelen met dH 2 0, en laat het apparaat op een hete plaat bij 125 ° C om te drogen. </li><li> Uittreksel motorische gegevens van opgenomen video&#39;s handmatig met NIH ImageJ ( <a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a> ) of aangepaste MATLAB-gebaseerde worm tracking software. </li></ol>

<ol><li>Kuwahara, T., Koyama, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Familial+Parkinson+mutant+%CE%B1-synuclein+causes+dopamine+neuron+dysfunction+in+transgenic+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Familial Parkinson mutant α-synuclein causes dopamine neuron dysfunction in transgenic Caenorhabditis elegans.</a> J. Biol. Chem. 281 (1), 334-340 (2006).</li>
<li>Kuwahara, T., Koyama, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+systematic+RNAi+screen+reveals+involvement+of+endocytic+pathway+in+neuronal+dysfunction+in+a-synuclein+transgenic%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">A systematic RNAi screen reveals involvement of endocytic pathway in neuronal dysfunction in a-synuclein transgenic.</a> 17 (19), 2997-3009 (2008).</li>
<li>Su, L. J., Auluck, P. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compounds+from+an+unbiased+chemical+screen+reverse+both+ER-to-Golgi+trafficking+defects+and+mitochondrial+dysfunction+in+Parkinson%27s+disease+models%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Compounds from an unbiased chemical screen reverse both ER-to-Golgi trafficking defects and mitochondrial dysfunction in Parkinson's disease models.</a> Dis. Model Mech. 3 (3-4), 194-208 (2010).</li>
<li>Rezai, P., Siddiqui, A., Selvaganapathy, P. R., Gupta, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrotaxis+of+Caenorhabditis+elegans+in+a+microfluidic+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Electrotaxis of Caenorhabditis elegans in a microfluidic environment.</a> Lab Chip. 10 (2), 220-226 (2010).</li>
<li>Salam, S., Ansari, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidics+set+up+to+study+neuronal+degeneration+and+identification+of+neuroprotective+compounds+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">A microfluidics set up to study neuronal degeneration and identification of neuroprotective compounds in C. elegans.</a> , Submitted (2013).</li>
<li>Rezai, P., Salam, S., Selvaganapathy, P. R., Gupta, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+sorting+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Electrical sorting of Caenorhabditis elegans.</a> Lab Chip. 12 (10), 1831-1840 (2012).</li>
<li>Rezai, P., Salam, S., Selvaganapathy, P. R., Gupta, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+pulse+direct+current+signals+on+electrotactic+movement+of+nematodes+Caenorhabditis+elegans+and+Caenorhabditis+briggsae%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Effect of pulse direct current signals on electrotactic movement of nematodes Caenorhabditis elegans and Caenorhabditis briggsae.</a> Biomicrofluidics. 5 (4), 044116(2011).</li>
<li>Rezai, P., Siddiqui, A., Selvaganapathy, P. R., Gupta, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavior+of+Caenorhabditis+elegans+in+alternating+electric+field+and+its+application+to+their+localization+and+control%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Lett%22%5BJournal%5D)">Behavior of Caenorhabditis elegans in alternating electric field and its application to their localization and control.</a> Appl. Phys. Lett. 96 (15), 153702(2010).</li>
<li>van Ham, T. J., Thijssen, K. L., Breitling, R., Hofstra, R. M., Plasterk, R. H., Nollen, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C.+elegans+model+identifies+genetic+modifiers+of+alpha-synuclein+inclusion+formation+during+aging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">C. elegans model identifies genetic modifiers of alpha-synuclein inclusion formation during aging.</a> PLoS Genet. 4, e1000027(2008).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
<li>Gabel, C. V., Gabel, H., Pavlichin, D., Kao, A., Clark, D. A., Samuel, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+circuits+mediate+electrosensory+behavior+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neural circuits mediate electrosensory behavior in Caenorhabditis elegans.</a> J. Neurosci. 27 (28), 7586-7596 (2007).</li>
<li>Chuang, H. -S., Raizen, D. M., Lamb, A., Dabbish, N., Bau, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dielectrophoresis+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Dielectrophoresis of Caenorhabditis elegans.</a> Lab Chip. 11 (4), 599-604 (2011).</li>
<li>Cronin, C. J., Mendel, J. E., Mukhtar, S., Kim, Y. -M., Stirbl, R. C., Bruck, J., Sternberg, P. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+automated+system+for+measuring+parameters+of+nematode+sinusoidal+movement%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genet%22%5BJournal%5D)">An automated system for measuring parameters of nematode sinusoidal movement.</a> BMC Genet. 6, 5(2005).</li>
<li>Manière, X., Lebois, F., Matic, I., Ladoux, B., Meglio, J. -M. D. i, Hersen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Running+worms%3A+C.+elegans+self-sorting+by+electrotaxis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Running worms: C. elegans self-sorting by electrotaxis.</a> PLoS One. 6 (2), e16637(2011).</li>
</ol>

De microfluïdische electrotaxis assay technologie is octrooi aangevraagd in de Verenigde Staten van Amerika en Canada.

Profiterend van de gedrags-fenomeen voor het eerst beschreven door Gabel en collega&#39;s en voortbouwend op de dielectrophoretic manipulatie werk van Chuang en collega&#39;s 11,12, onze microfluïdische gebaseerde electrotaxis test biedt een eenvoudige, robuuste en gevoelige methode om neuronale activiteit sonde in wormen met beweging als een uitgang. De analyse van de parameters verplaatsing mogelijk kwantitatieve vergelijking tussen de verschillende genotypen. De nauwkeurigheid van microkanaal fabricage en ...

<table><tbody><tr><td>Acetone</td><td>CALEDON Labs</td><td>1200-1-30</td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>CALEDON Labs</td><td>6700-1-30</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>CALEDON Labs</td><td>8600-1-40</td><td></td></tr><tr><td>SU-8</td><td>Microchem Corp.</td><td>Y131273</td><td>SU-8 100</td></tr><tr><td>SU-8 Developer</td><td>Microchem Corp.</td><td>Y020100</td><td></td></tr><tr><td>92x16mm Petri Dish</td><td>Sarstedt</td><td>82.1473.001</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Bevat elastomer base en verhardingsmiddel</td></tr><tr><td>Function generator</td><td>Tektronix Inc.</td><td></td><td>Model AFG3022B</td></tr><tr><td>Amplifier</td><td>Trek Inc.</td><td></td><td>Model 2210-CE</td></tr><tr><td>Syringe pump</td><td>Harvard Apparatus</td><td>70-4506</td><td>Model 11 ELITE</td></tr><tr><td>Hotplate</td><td>Fisher Scientific</td><td>11675916Q</td><td>Model HP131725Q</td></tr></tbody></table>

microfluïdische-based electrotaxis voor on-demand kwantitatieve analyse van<em&gt; caenorhabditis elegans</em&gt; &#39;locomotion

Microfluidic-based Electrotaxis for On-demand Quantitative Analysis of Caenorhabditis elegans' Locomotion

De nematode Caenorhabditis elegans is een veelzijdige modelorganisme voor biomedisch onderzoek vanwege het behoud van ziektegenen en trajecten alsmede het gemak van de teelt. Verschillende C. elegans ziektemodellen gemeld, waaronder neurodegeneratieve aandoeningen zoals de ziekte van Parkinson (PD), die de degeneratie van dopaminerge (DA) neuronen 1 omvat. Zowel transgenen en neurotoxische chemicaliën zijn gebruikt om DA neurodegeneratie en beweging defecten daaruit in wormen induceren, waardoor onderzoek naar de basis van neurodegeneratie en schermen voor genen en neuroprotectieve verbindingen 2,3. Schermen in lagere eukaryoten, zoals C. elegans een doelmatige en economische manier op verbindingen en genen die neuronale signalering te identificeren. Conventionele schermen worden meestal handmatig uitgevoerd en gescoord door visuele inspectie, dus ze zijn tijd-consuming en gevoelig voor menselijke fouten. Bovendien, de meeste nadruk op celniveau analyse terwijl het negeren locomotievorm is een bijzonder belangrijke parameter voor bewegingsstoornissen. We hebben een nieuwe microfluïdische screening systeem (figuur 1), dat controleert en kwantificeert C. ontwikkeld locomotion elegans &#39;met elektrisch veld stimuli binnen microkanalen. We hebben aangetoond dat een gelijkstroom (DC) veld robuust kan induceren on-demand voortbeweging naar de kathode (&quot;electrotaxis&quot;) 4. Verwisseling van de polariteit van het veld zorgt ervoor dat de worm snel achteruit zijn richting ook. We hebben ook aangetoond dat defecten in dopaminerge en andere sensorische neuronen weg zwemmen respons 5. Daarom kunnen afwijkingen in neuronale signalering worden bepaald met beweging als read-out. De respons beweging kan nauwkeurig worden gekwantificeerd aan de hand van een reeks parameters zoals zwemmen snelheid, lichaam buigen frequentie en omkering tijd. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Ons werk is gebleken dat de electrotactic reactie varieert met de leeftijd. Specifiek, jonge volwassenen reageren op een lager bereik van elektrische velden en bewegen sneller in vergelijking met larven 4. Deze bevindingen leidden ons naar een nieuwe microfluïdische apparaat om passief te sorteren wormen naar leeftijd en fenotype 6 ontwerpen. We testten ook de reactie van wormen gepulseerde gelijkstroom en wisselstroom (AC) elektrische velden. Gepulseerde DC velden van verschillende duty cycles effectief gegenereerd electrotaxis in beide C. elegans en zijn neef C. briggsae 7. In een ander experiment, symmetrisch wisselvelden met frequenties van 1 Hz tot 3 kHz geïmmobiliseerde wormen in het kanaal 8. Uitvoering van het elektrische veld in een microfluïdische omgeving maakt een snelle en geautomatiseerde uitvoering van de electrotaxis assay. Deze benadering belooft high-throughput genetische en chemische schermen voor factoren vergemakkelijkeninvloed neuronale functie en leefbaarheid.

Een vertegenwoordiger van video electrotaxis een wildtype jonge volwassen nematode en zijn positie en snelheid uitgangen van de worm tracking software wordt in aanvullende Video 1 en figuur 3. De bewegingsanalyse software zelf is de richting van het veld polariteit en het tijdstip van ompoling niet herkennen, maar eerder, moet deze informatie worden verkregen van de bron video. Dit kan worden gedaan met behulp van een audio-of visuele cue in de video of het opschrijven van experimentele...

Een semi-automatische micro-electro-fluidisch methode om on-demand motoriek induceren in<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Is beschreven. Deze methode is gebaseerd op het verschijnsel van neurofysiologische wormen reageren op milde elektrische velden (&quot;electrotaxis&quot;) in microkanalen. Microfluïdische electrotaxis dient als een snelle, gevoelige, low-cost, en schaalbare techniek voor het screenen op factoren die van invloed neuronale gezondheid.

Microfluïdische-based Electrotaxis voor On-demand Kwantitatieve analyse van<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; &#39;Locomotion

The nematode Caenorhabditis elegans is a versatile model organism for biomedical research because of its conservation of disease-related genes and ...

Het algemene doel van deze procedure is het identificeren van abnormaliteiten in de neuronale en neuromusculaire signalering in het modelorganisme van C Allergan na chemische blootstelling of genetische manipulatie. Dit wordt bereikt door eerst een microkanaalpatroon te ontwerpen en in een siliciumwafer te etsen. Tijdens de tweede stap wordt de siliciumvorm gebruikt om één of meerdere microkanalen van PDMS te gieten.Vervolgens worden de hulpcomponenten aan de PDMS-mal bevestigd. Daarna wordt het gedrag van de wormen, terwijl ze worden gestimuleerd om door het microkanaal te zwemmen, geregistreerd met een camera op een microscoop. Uiteindelijk wordt elektro-microfluidica gebruikt om de veranderingen in de neuronale en musculaire systemen van de nematoden te bepalen als gevolg van chemische of genetische manipulatie, waarbij locomotie als uitkomstmaat dient.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande technieken, in het bijzonder de gedragsassays op platen, is dat met deze methode de voortbewegingsrichting van de worm nauwkeurig kan worden gecontroleerd, waardoor een precieze kwantificering van het locomotiegedrag mogelijk is, zoals de buigingsfrequentie va

microfluidic-based-electrotaxis-for-on-demand-quantitative-analysis

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Een eenvoudige microfluïdische apparaat is ontwikkeld om verdoving gratis uit te...

Eenvoudige Microfluïdische Inrichtingen voor<em&gt; In vivo</em&gt; Beeldvorming van<em&gt; C. elegans</em&gt;,<em&gt; Drosophila</em&gt; En zebravis

Microscopische organismen zoals de vrij-zwemmen...

Kwantitatieve Locomotion Studie van Vrij Zwemmen micro-organismen met behulp van laser diffractie

Onderzoekers kunnen on-demand beweging in C. elegans activeren door een elektrisch veld toe te passen dat wormen voelen en erop reageren.  Deze video introduceert elektrotactisch gedrag en toont een voorbeeldprotocol dat wordt uitgevoerd in een microfluïdisch apparaat.

Electrotaxis Assay: een methode om voortbeweging te observeren in C. elegans

Deze video beschrijft het gebruik van video- en trackingsoftware om wormbewegingen in een arena op te nemen.  Het voorbeeldprotocol meet het effect van blootstelling aan ethanol op de voortbeweging van wormen.

C. elegans Bewegingstracking: een methode om voortbeweging in wormen te beoordelen

De hier gepresenteerde techniek meet de weg van vrij zwemmen microscopische soorten enkelvoudige belichtingsgolflengte. C. elegans worden gebruikt om schaduw beeldvorming te tonen als een goedkoop alternatief voor dure microscopen. Deze techniek kan worden aangepast aan verschillende richtingen, omgevingen en soorten tegemoet richting, snelheid, versnelling en krachten meten.

Enkele golflengte Shadow beeldvorming van<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Locomotion Inclusief Force Schattingen

Het gebruik van een aangepast "olfactorische chip" voor de efficiënte calcium beeldvorming van C. elegans mannetjes wordt hier beschreven. Studies van mannelijke Gasbedwelming met behulp van glycerol en een feromoon worden ook weergegeven.

Met behulp van een aangepast Microfluidic olfactorische Chip voor de beeldvorming van neuronale activiteit in reactie op de feromonen in mannelijke C. Elegans hoofd neuronen

Nieuwe hulpmiddelen voor het mechanobiology onderzoek nodig zijn om te begrijpen hoe mechanische spanning activeert biochemische paden en lokt biologische reacties. Hier presenteren we een nieuwe methode voor selectief mechanische stimulatie van geïmmobiliseerdet dieren met een val van de microfluidic waardoor hoge resolutie beeldvorming van cellulaire reacties.

Met behulp van een Microfluidics apparaat voor mechanische stimulatie en hoge resolutie Imaging van C. elegans

In dit artikel tonen we live beeldvorming van individuele wormen met een aangepaste microfluidic apparaat. In het apparaat, zijn meerdere wormen individueel beperkt om te scheiden van de kamers, waardoor multiplexed longitudinale toezicht van verschillende biologische processen.

Een Microfluidic Platform voor het longitudinale beeldvorming in Caenorhabditis elegans

Een reeks van immobilisatie methoden is vastgesteld dat de gerichte bestraling van levende Caenorhabditis elegans individuen met behulp van een onlangs ontwikkelde ultradunne Polydimethylsiloxaan microfluidic chip met waterretentie. Deze roman op de chip immobilisatie is ook geschikt voor imaging opmerkingen. De gedetailleerde behandeling en toepassingsvoorbeelden van de chip worden toegelicht.

Immobilisatie van levende Caenorhabditis elegans personen een Ultra-thin Polydimethylsiloxaan Microfluidic Chip met waterretentie

Deze studie presenteert protocollen voor twee semi-geautomatiseerde locomotorische activiteitsanalysebenaderingen in C. elegans complex I ziekte gas-1(fc21) wormen, namelijk ZebraLab (een medium-throughput assay) en WormScan (een high-throughput assay) en biedt vergelijkende analyse tussen een breed scala aan onderzoeksmethoden om het gedrag van nematoden en de geïntegreerde neuromusculaire functie te kwantificeren.

Vergelijkende analyse van experimentele methoden om dierlijke activiteit in Caenorhabditis elegans-modellen van mitochondriale ziekte te kwantificeren

Deze studie onderzoekt het effect van leeftijd op de voortbeweging in C. elegans door de grootste Lyapunov-exponent (LLE) te meten. Naarmate ze ouder worden, vertonen C. elegans een toename en daaropvolgende afname van de motorische controle. De resultaten laten een piek LLE zien na vijf dagen, gevolgd door een afname naarmate de wormen ouder worden.

Leeftijdsafhankelijke dynamiek van voortbeweging in Caenorhabditis elegans: een Lyapunov-exponentanalyse

Leer microfluïdische electrotaxis voor kwantitatieve analyse van Caenorhabditis elegans-locomotie. Deze methode maakt snelle screening van factoren die neurale gezondheid beïnvloeden mogelijk.

Microfluïdische-based Electrotaxis voor On-demand Kwantitatieve analyse van

Meer video's verkennen