12 augustus 2015
Snelle schommelingen in extracellulair dopamine (DA) bemiddelen zowel beloningsverwerking als gemotiveerd gedrag bij zoogdieren. Dit manuscript beschrijft het gecombineerde gebruik van snelle scancyclische voltammetrie (FSCV) en intra-orale toediening van smaakstoffen om te bepalen hoe smaakstoffen de snelle dopamine-afgifte bij wakkere, vrij bewegende ratten veranderen.
Het algemene doel van deze procedure is om dopaminereacties in subseconden op orale smaak te meten. Dit wordt bereikt door eerst orale katheters, referentie-elektroden en koolstofvezelelektroden te maken die nodig zijn voor de chirurgische ingrepen en de daaropvolgende registratie via snelle scancyclische V-telemetrie. De tweede stap is om de orale katheters, de intracraniale elektrode en de geleidecanule voor de koolstofvezelelektrode chirurgisch te implanteren.
Een week later kan de koolstofvezel micro-elektrode in de nucleus accumbens worden neergelaten om veranderingen in extracellulaire dopamine-afgifte te registreren als reactie op intraorale toediening van smaken. De laatste stap na de registratie is om de elektrode te kalibreren en om hoofdcomponentenanalyse te gebruiken om gegevens te isoleren die informatie bevatten over dopamine. Uiteindelijk wordt de gecombineerde toepassing van intraorale smaak en toediening en snelle scancyclische vol-telemetrie gebruikt om veranderingen in dopaminereacties in subseconden op taten te tonen.
Er zijn twee belangrijke voordelen van deze gecombineerde techniek ten opzichte van bestaande methoden. Ten eerste heeft snelle IC-fotometrie een hoge tijdelijke resolutie en ten tweede minimaliseert intraorale toediening van taten de beweging die de rat moet maken om de tatin te verkrijgen en stelt ons in staat om dopaminereacties op de tatin beter te isoleren. Over het algemeen zullen individuen die nieuw zijn met deze methode worstelen met het fabriceren van de orale katheter.
Het construeren van een goede en betaalde orale katheter zal echter zorgen voor een goede pasvorm van de katheter tussen de wang en de bovenste kiezen en de kans op een succesvol experiment vergroten. Om de opname-elektrode voor te bereiden, zuigt u eerst een T zes 50 koolstofvezel met een diameter van zeven micron in een bora sili kaatglazen capillair met een binnendiameter van 0,4 millimeter. Plaats vervolgens de capillair in een verticaal elektrodenpool, trek in eerste instantie met een verwarmer ingesteld op 55,0 en de magneet uit, en pas vervolgens aan zoals nodig.
Nadat de pipet onder een microscoop is getrokken, snijdt u het blootgestelde koolstofvezel zodat het 75 tot 100 micron verder reikt dan het glas. Het vezel in het glas moet goed worden afgedicht, anders moet de voorbereiding worden weggegooid. Strip vervolgens de isolatie van de helft van een drie inch 30 gauge draad, breng heat shrink aan om de elektrode aan de micromanipulator te bevestigen.
Breng vervolgens een dunne laag zilververf aan op de draad terwijl de verf nog nat is. Steek de draad in het open uiteinde van de elektrode en bevestig deze aan het koolstofvezel daarin. Controleer deze contact onder een microscoop.
Neem de elektrode in de micromanipulator en zet deze vast met heat shrink. Plaats de voorbereide koolstofvezelelektrode in IPA gedurende ten minste 10 minuten om het elektrodeoppervlak te reinigen en de gevoeligheid voor dopamine te verhogen. Nadat de elektrode uit IPA is verwijderd, spoelt u het koolstofvezel met kraanwater om de IPA te verwijderen.
Bereid vervolgens de referentie-elektrode voor vanuit een 13 millimeter zilverdraad met een zes millimeter zilver, zilverchloride gaas met een diameter van 0,4 millimeter, snijd het niet-geweven gedeelte van de draad af en soldeer het aan een gouden pin. Breng vervolgens epoxy aan op de soldeer. Dompel vervolgens het gaasgedeelte vijf keer in een copolymere zuur.
Laat het 30 minuten in de lucht drogen tussen de duiken na de laatste duik. Laat het 's nachts drogen. De volgende dag.
Bakken de gaasgedeelte van de draad gedurende een uur op 120 graden Celsius. Om de orale katheter te maken, snijdt u eerst polyethyleen 100-buis in segmenten van zes centimeter.
Maak vervolgens een kleine platte schijf bij een van de buissegmenten door het uiteinde te smelten en het op een vlakke koele oppervlakte in het midden van de schijf te drukken. Gebruik een 18 gauge naald om een gat te maken. Bevestig het andere uiteinde van het buissegment aan het stompe uiteinde van een 18 gauge naald.
Maak vervolgens met een pons verschillende stukken polytetrafluorethyleen met een diameter van zes millimeter en een dikte van 3,18 millimeter. Maak vervolgens in het midden van deze schijven een gat, waardoor de schijven in sluitringen worden omgezet. Snijd de sluitring in een trapeziumvorm om ze tijdens de implantatie van de kies te helpen vastzetten.
Om de katheter te voltooien, duwt u een naald die is bevestigd aan PE-buis volledig door de sluitring en schuift u de sluitring vlak tegen de buis. Het volgende protocol duurt ongeveer 75 minuten om te voltooien. Begin met een rat die klaar is voor de operatie en open zijn mond met een wattenstaafje.
Duw vervolgens de naald op een canule in het weefsel tussen de wang en de eerste bovenste kies, zodat de naald net achter en mediaal van de oren uitkomt. Verplaats vervolgens de canule en bevestig de sluitring aan de kiezen om de katheter op het blootgestelde naald te bevestigen. Schuif een sluitring en breng deze strak naar de incisie.
Bevestig deze sluitring in positie. Knip de buis zodat er twee tot vier centimeter boven het hoofd van de rat blijft blootliggen. Gebruik vervolgens dezelfde techniek om een katheter in de andere kant van de mond te plaatsen.
Hierop volgend, plaats de rat in een stereotaxische frame en boor drie gaten voor de canules en elektroden om registraties te maken in de nucleus accumbens kernpositie. De geleidecanule 1,2 millimeter anterieur en 1,4 millimeter. Lateraal torema.
Laat het canula-apparaat zakken totdat de plastic basis vlak is met de schedel. Plaats de referentie-elektrode in het tegenoverliggende halfrond van de geleidecanule. Laat de referentie ongeveer twee millimeter onder de dura zakken.
Plaats vervolgens de stimulerende elektrode, 5,2 millimeter posterior en 1,0 millimeter lateraal torema. Om het ventrale tegmentale gebied te targeten. Laat de stimulerende elektrode 8,0 millimeter onder de dura
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie onderzoekt hoe orale smaakstoffen de snelle afgifte van dopamine beïnvloeden bij wakke, vrij bewegende ratten. Met behulp van fast scan cyclic voltammetry (FSCV) beoogt het onderzoek subseconde dopamine-responsen op smaakstimuli te meten.
Deze methode maakt directe meting van subseconde dopamine-dynamiek in reactie op orale smaakstoffen mogelijk, waardoor verwarrende beloningsgerichte gedragingen worden omzeild. Het biedt een mechanistisch instrument voor risicoreductie bij de validatie van targets in beloningsgerelateerde pathways door primaire stimulusresponsen te isoleren van motorische of leergerelateerde confounders. De aanpak ondersteunt de voorspellende betrouwbaarheid in vroege ontdekkingsfasen door fasische dopaminevrijgave te kwantificeren als translationele biomarker voor orale bekrachtigingsmechanismen.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypothesetoetsing tot leadidentificatie, in het bijzonder voor targets die orale beloning en motivatie moduleren, door vroege mechanistische readouts te leveren die voorafgaan aan het testen van de gedragseffectiviteit.