Name: Standaard werkings procedure voor Lyssavirus surveillance van de BBT-populatie in Taiwan (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-08-27T13:30:00.000+00:00
Duration: 7 s
Description: Leer een gestandaardiseerde werkwijze voor Lyssavirus-surveillance bij vleermuizen in Taiwan. Dit protocol helpt onderzoekers bij diagnostisch testen en monitoring van zoönotische ziekten.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We danken tien-Cheng Li, Yi-Tang Lin, Chia-Jung Tsai en ya-LAN Li voor hun hulp tijdens deze studie. Deze studie werd gesteund door Grant No. 107AS-8.7.1-BQ-B2 (1) van het Bureau voor dier-en Plantenziekte inspectie en quarantaine, Raad van landbouw, uitvoerende yuan, Taiwan.

1. veiligheidsmaatregelen bij het hanteren van lyssavirussen
<ol><li>Zorg ervoor dat alle laboratoriummedewerkers die de BBT-specimens hanteren, pre-exposure-rabiës profylaxe krijgen17. Bewaak de niveaus van antilichamen tegen rabiës van de werknemers vooraf en bekijk ze elke 6 maanden17opnieuw. Follow-up rabiësvaccinatie is vereist voor degenen wier antilichaam niveaus lager zijn dan 0,5 IE/mL17.</li>
	<li>Afhankelijk van de bioveiligheidsvoorschriften van het land waar het laboratorium zich bevindt, moet u ervoor zorgen dat de volgende procedures worden uitgevoerd in geschikte laboratoria voor bioveiligheidsniveau (bv. BSL-2 laboratoria in Taiwan en BSL-3 laboratoria in Australië), en dat werknemers zijn momenteel gekwalificeerd en dragen passende persoonlijke beschermingsmiddelen18. Opmerking: rabiësvaccinatie biedt weinig tot geen bescherming tegen lyssavirussen die behoren tot phylogroepen II en III18. De werknemers moeten ervan op de hoogte worden gesteld dat er in vleermuizen19 verschillende zoönoseverwekkers zijn geïdentificeerd en dat monsters moeten worden verwerkt onder geschikte laboratoriumomstandigheden op bioveiligheidsniveau met adequate persoonlijke beschermingsmiddelen.</li>
</ol>2. monsterverzameling
<ol><li>Gebruik gevonden zwakke of zieke vleermuizen of karkassen. Opmerking: zwakke of zieke vleermuizen worden geleverd aan de bat Conservation Society van Taipei voor veterinaire zorg of onderzoek, terwijl karkassen rechtstreeks aan het onderzoeksinstituut voor diergezondheid worden voorgelegd. In dit surveillanceprogramma zijn geen gezonde vleermuizen geëerd.</li>
	<li>Laat een vleermuis ecoloog vleermuissoorten identificeren door middel van morfologische kenmerken20.</li>
	<li>Voer DNA barcoding van de vleermuissoorten wanneer Lyssavirus positief wordt gediagnosticeerd, met behulp van eerder gepubliceerde procedures21.</li>
	<li>Dien een inlichtingenblad in van elk BBT-karkas (verzamelplaats, soorten, klinische verschijnselen, enz.).</li>
</ol>3. obductie van vleermuis specimens
<ol><li>Materialen voorbereiden.<ol>
<li>Maak een schoon dissectie bord en plaats een steriel absorberend pad voor obductie.</li>
		<li>Bereid Verzamel buisjes voor het verzamelen van vleermuis organen.</li>
		<li>Bereid Wegwerp pincet en scalpels voor obductie. Verander tools tussen de obductie van elke vleermuis. Bereid katoen ballen bevochtigd met 70% ethanol voor het reinigen van pincet en scalpels tijdens het bemonsteren.</li>
		<li>Maak twee Microscoop-dia's voor het vet. Verzamel verse specimens en fixeer ze in formaline oplossing voor histopathologisch onderzoek.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Onderzoek alle uitwendige openingen voor obductie. Fotografeer de externe kenmerken van de vleermuis, met name het hoofd, de oren en de vleugels, voor soorten differentiatie.</li>
	<li>Verzamel een oraal wattenstaafje monster. Plaats de vleermuis in ventrale ligigheid op het bord en bevestig de knuppel met een pincet. Snijd de huid langs de middenlijn van de snuituil met een scalpel en trek de huid aan de zijkanten. Snijd de schedel langs de middenlijn van de snuituil met een scalpel en open hem met een pincet om het hersenweefsel bloot te leggen.</li>
	<li>Verwijder het hersenweefsel van de schedel en plaats het op een steriele tong depressor, en maak indruk uitstrijkjes van het hersenweefsel (zie stap 4,2). Verzamel een klein stukje vers hersenweefsel en repareer het in formaline voor histopathologisch onderzoek. Het overgebleven hersenweefsel in een buis voor nucleïnezuur extractie bevatten.</li>
	<li>Reinig pincet en scalpel met katoenen ballen bevochtigd met 70% ethanol om achtergebleven weefsels te verwijderen tussen de specimen collectie.</li>
	<li>Plaats de vleermuis op het bord in dorsale ligpositie en bevestig deze op het bord met naalden aan beide zijden van de oksel en Tail hiel.</li>
	<li>Verdoe de huid langs de middellijn van het lichaam van onderkaak naar anus. Til de huid en de onderliggende spierweefsels op en scheid ze met een pincet. Verzamel de speekselklieren, die in de buurt van de mandibulaire bot.</li>
	<li>Til het borstbeen lichtjes op met een pincet en snijd het borstbeen en de buikwand langs de middenlijn met een scalpel. Snijd de sleutelbeenderen met een scalpel. Bevestig de linker-en rechter rib-kooien aan het bord met naalden om de thoracische holte te openen.</li>
	<li>Noteer de bruto laesies en de mate van postmortemwisseling.</li>
	<li>Verwijder de viscerale weefsels (d.w.z. hart, longen, lever, nieren, darmen) van het karkas met behulp van een pincet en een scalpel. Verzamel de viscerale specimens als dat nodig is voor toekomstig onderzoek. Opmerking: verzameling van dubbele voorbeelden wordt aanbevolen. Men moet worden verzameld voor moleculaire diagnostiek, en de andere moet worden bevroren bij-80 ° c met of zonder virale transportmedium voor virale cultuur22.</li>
</ol>4. direct fluorescerende antilichaam test (vet)
<ol><li>Maak indruk uitstrijkjes van het hersenweefsel voor het vet. Voer het vet uit zoals eerder beschreven18,23 met de volgende wijzigingen.</li>
	<li>Scheid het hersenweefsel voorzichtig van het verbonden zenuwweefsel met een pincet en breng het hersenweefsel over naar een steriele tong depressor. Snijd de dwarsdoorsnede van de hersenen, met inbegrip van de hersenstam en cerebellum18,23. Maak indruk uitstrijkjes van het hersenweefsel door het snijoppervlak van het hersenweefsel lichtjes aan te raken en druk op de schuif op het lens weefsel om overtollig weefsel te verwijderen.</li>
	<li>Bevestig de dia's met aceton bij-20 °C gedurende 30 min. droog de geteste dia's en de positieve en negatieve controles vóór het vlekken met conjugaat.</li>
	<li>Het gebruik van elk van de twee in de handel verkrijgbare FITC-geconjugeerde anti-rabiës antilichamen voor kleuring Lyssavirus antigen wordt ten zeerste aanbevolen23. Bepaal de werkconcentratie van het handels conjugaat vóór de eerste kleuring. Laat de verdunde conjugaten door een spuit filter van 0,45 μM op de glijbanen vallen en inbroed de glaasjes bij 37 °C gedurende 30 minuten in een natte kamer.</li>
	<li>Giet de overtollige conjugaat uit de glijbanen en was na incubatie de glaasjes met fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS).</li>
	<li>Laat een kleine hoeveelheid van 10% glycerol vallen op de dia's en dek af met afdekplaatjes.</li>
	<li>Bekijk de dia's met een fluorescerende Microscoop.</li>
</ol>5. nucleïnezuur extractie
<ol><li>Voeg het juiste volume MEM-10 toe (minimaal essentieel medium aangevuld met 10% foetaal runderserum) aan het hersenweefsel (10% w/v).</li>
	<li>Homogenaat het hersenweefsel met een 5 mm stalen kraal in een homogenisatieinstrument en centrifugeer bij 825 x g gedurende 10 minuten.</li>
	<li>Extract het nucleïnezuur, waarvan het eindvolume 50 μL is, binnen 200 μL van het supernatant met behulp van de in de handel verkrijgbare totale nucleïnezuur extractie Kit met instrument.</li>
</ol>6. RT-PCR en fylogenetische analyse
Opmerking: verschillende primer sets zijn gepubliceerd om alle bekende lyssavirussen of specifieke lyssavirussen te detecteren. Het hier beschreven protocol is een voorbeeld dat ons laboratorium gebruikt en mogelijk niet voldoet aan alle experimentele behoeften. Selecteer geschikte primers volgens de behoeften van het laboratorium.
<ol><li>Bereid het One-Step RT-PCR-reagens als volgt: Voeg 5 μL geëxtraheerd nucleïnezuur toe aan het reactiemengsel met 2,5 μL van een 10x-reactiebuffer, 0,5 μL voorwaartse en omgekeerde primers (10 μM van elk), 4 μL 1,25 mM dNTP, 0,3 μL RNase-remmer (40 U/μL) , 0,3 μL van reverse transcriptase (10 e/μL), 0,4 μL van DNA-polymerase (5 U/μL) en 11,5 μL DEPC-behandeld water. Opmerking: de in dit Protocol gebruikte primer is JW12 (5 '-ATGTAACACCYCTACAATG-3 ') en N165-146 (5 '-GCAGGGTAYTTRTACTCATA-3 ')24. Wijzig de bereiding van reagentia en fiets condities volgens de gebruikte primer sets.</li>
	<li>Voer de fiets uit onder de volgende omstandigheden: incubatie bij 42 °C gedurende 40 min; initiële denaturatie bij 94 °C gedurende 10 min; 35 cycli van 94 °C gedurende 30 s, 55 °C gedurende 30 sec. en 72 °C gedurende 30 sec.; en tot slot, verdere uitbreiding bij 72 °C gedurende 10 minuten.</li>
	<li>Gebruik een andere of meer primer sets om de diagnostische gevoeligheid te verhogen.<ol>
<li>Gebruik N113F (5 '-gtaggatgctatatggg-3 ') en N304R (5 '-ttgacgaagatcttgctcat-3 ')25,26 om het One-Step RT-PCR-reagens als volgt voor te bereiden: Voeg 5 μl geëxtraheerd nucleïnezuur toe aan een reactiemengsel met 5 μl 10x-buffer, 5 μl voor-en achteruit primers (4 μM van elk), 5 μL van 1,25 mM dNTP, 0,5 μL RNase-remmer (40 e/μL), 0,2 μL reverse-transcriptase (10 e/μL), 1 μL van DNA-polymerase (5 U/μL) en 23,3 μL DEPC-behandeld water.</li>
		<li>Voer de fiets uit onder de volgende omstandigheden: incubatie bij 42 °C gedurende 40 min; initiële denaturatie bij 95 °C gedurende 5 minuten; 35 cycli van 95 °C gedurende 1 min, 55 °C gedurende 1 minuut en 20 sec. en 72 °C gedurende 1 minuut; en tot slot, verdere uitbreiding bij 72 °C gedurende 10 minuten. Opmerking: afhankelijk van de laboratorium behoeften, kiest u geschikte primers voor diagnose. N113F is oorspronkelijk ontworpen voor rabiësvirus versterking, maar het werkt mogelijk niet goed voor andere lyssavirussen. De set van N113F en N304R werkt goed voor rabiësvirus (Taiwan Ferret Badger variant) en Taiwan bat Lyssavirus. Het zal gemakkelijker zijn om hele nucleoproteïne sequenties te verkrijgen door gebruik te maken van de set JW12 en N304R primers als het Lyssavirus wordt versterkt door beide bovenstaande primer sets.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Analyseer het PCR-product op 2% agarose-gel elektroforese en visualiseer door UV-licht verlichting.</li>
	<li>Volgorde van het PCR-product door commerciële sequencing-service.</li>
	<li>Voer de sequentie in of upload deze naar de webpagina van de nucleotide Basic Local Alignment Search Tool (BLAST). Selecteer de database "anderen (nr etc.)" en voer het organisme in als Lyssavirus. Selecteer het MegaBlast algoritme en voer de BLAST uit.</li>
</ol>7. virus isolatie
Opmerking: Voer virusisolatie uit wanneer 1) het vet of 2) de RT-PCR duidt positiviteit aan.
<ol><li>Homogeniseren het hersen preparaat in een 10% (w/v) suspensie in MEM-10. Centrifugeer bij 825 x g gedurende 10 min.</li>
	<li>Inoculeren 200 μL supernatant met een suspensie van 3 x 106 MNA (muis neuroblastoma) cellen in 1 ml mem-10 voor 1 uur bij 37 °c met 1% co2. Breng de hersenen homogenaat-celsuspensie over in een kolf van 25 cm2 en voeg 6 ml mem-10 toe.</li>
	<li>Cultiveer 1 mL van de hersenen homogenaat-celsuspensie in een 4 goed Teflon gecoate glazen glijbaan met 6 mm diameter op hetzelfde moment.</li>
	<li>Na 3 – 4 dagen incubatie bij 37 °C met 1% CO2, Fixeer de cellen op de 4 well slide met 100% aceton (v/v).</li>
	<li>Beits de glaasjes met twee FITC-geconjugeerde anti-rabiës antilichamen na stappen 4.4 – 4.7. De cellen zijn geïnfecteerd wanneer de intracytoplasmische insluitsels worden onderzocht. Noteer het percentage geïnfecteerde cellen.</li>
	<li>Voer trypsinoisatie en subcultuur van de geënt celcultuur uit wanneer de dia's als negatief worden gekleurd:<ol>
<li>Verwijder het medium en spoel de kolf af met 5 mL PBS.</li>
		<li>Voeg 1 mL trypsine toe aan de kolf en sla de bodem van de kolf stevig vast.</li>
		<li>Voeg 6 mL MEM-10 toe en hervat de cellen.</li>
		<li>Zet de celsuspensie in een nieuwe weefsel kolf (6 mL) en op een 4 well Slide (1 mL).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Herhaal stap 7.4 – 7.6 tot 100% infectiviteit is bereikt.</li>
	<li>Verzamel de supernatant na 24 h van incubatie.</li>
</ol>

<ol><li>Kuzmin, I. V. Basic facts about lyssavirus. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKuzmin%2C+IV+%22Current+laboratory+techniques+in+rabies+diagnosis%2C+research%2C+and+prevention%2C+volume+1%22">Current laboratory techniques in rabies diagnosis, research, and prevention, volume 1</a>. Rupprecht, C. E., Nagarajan, T. , Elsevier. California. 3-21 (2014).</li>
<li>Aréchiga Ceballos, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+lyssavirus+in+bat%2C+Spain%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Novel lyssavirus in bat, Spain.</a> Emerging Infectious Diseases. 19 (5), 793-795 (2013).</li>
<li>Gunawardena, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lyssavirus+in+Indian+Flying+Foxes%2C+Sri+Lanka%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Lyssavirus in Indian Flying Foxes, Sri Lanka.</a> Emerging Infectious Diseases. 22 (8), 1456-1459 (2016).</li>
<li>Hu, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lyssavirus+in+Japanese+Pipistrelle%2C+Taiwan%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Lyssavirus in Japanese Pipistrelle, Taiwan.</a> Emerging Infectious Diseases. 24 (4), 782-785 (2018).</li>
<li>Nokireki, T., Tammiranta, N., Kokkonen, U. -M., Kantala, T., Gadd, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tentative+novel+lyssavirus+in+a+bat+in+Finland%5BTitle%5D)+AND+%22Transboundary+Emerging+Diseases%22%5BJournal%5D)">Tentative novel lyssavirus in a bat in Finland.</a> Transboundary Emerging Diseases. 65 (3), 593-596 (2018).</li>
<li>Banyard, A. C., Evans, J. S., Luo, T. R., Fooks, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lyssaviruses+and+bats%3A+emergence+and+zoonotic+threat%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Lyssaviruses and bats: emergence and zoonotic threat.</a> Viruses. 6 (8), 2974-2990 (2014).</li>
<li>Pal, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabies+virus+infection+of+a+flying+fox+bat%2C+Pteropus+policephalus+in+Chandigarh%2C+Northern+India%5BTitle%5D)+AND+%22Tropical+and+Geographical+Medicine%22%5BJournal%5D)">Rabies virus infection of a flying fox bat, Pteropus policephalus in Chandigarh, Northern India.</a> Tropical and Geographical Medicine. 32 (3), 265-267 (1980).</li>
<li>Smith, P. C., Lawhaswasdi, K., Vick, W. E., Stanton, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+rabies+virus+from+fruit+bats+in+Thailand%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Isolation of rabies virus from fruit bats in Thailand.</a> Nature. 216 (5113), 384(1967).</li>
<li>Tang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pivotal+role+of+dogs+in+rabies+transmission%2C+China%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Pivotal role of dogs in rabies transmission, China.</a> Emerging Infectious Diseases. 11 (12), 1970-1972 (2005).</li>
<li>Kuzmin, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bat+lyssaviruses+%28Aravan+and+Khujand%29+from+Central+Asia%3A+phylogenetic+relationships+according+to+N%2C+P+and+G+gene+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Research%22%5BJournal%5D)">Bat lyssaviruses (Aravan and Khujand) from Central Asia: phylogenetic relationships according to N, P and G gene sequences.</a> Virus Research. 97 (2), 65-79 (2003).</li>
<li>Arguin, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serologic+evidence+of+Lyssavirus+infections+among+bats%2C+the+Philippines%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Serologic evidence of Lyssavirus infections among bats, the Philippines.</a> Emerging Infectious Diseases. 8 (3), 258-262 (2002).</li>
<li>Lumlertdacha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survey+for+bat+lyssaviruses%2C+Thailand%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Survey for bat lyssaviruses, Thailand.</a> Emerging Infectious Diseases. 11 (2), 232-236 (2005).</li>
<li>Kuzmin, I. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lyssavirus+surveillance+in+bats%2C+Bangladesh%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Lyssavirus surveillance in bats, Bangladesh.</a> Emerging Infectious Diseases. 12 (3), 486-488 (2006).</li>
<li>Reynes, J. -M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serologic+evidence+of+lyssavirus+infection+in+bats%2C+Cambodia%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Serologic evidence of lyssavirus infection in bats, Cambodia.</a> Emerging Infectious Diseases. 10 (12), 2231-2234 (2004).</li>
<li>Nguyen, A. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bat+lyssaviruses%2C+northern+Vietnam%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Bat lyssaviruses, northern Vietnam.</a> Emerging Infectious Diseases. 20 (1), 161-163 (2014).</li>
<li>Liu, Y., Zhang, S., Zhao, J., Zhang, F., Hu, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Irkut+virus+from+a+Murina+leucogaster+bat+in+China%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Isolation of Irkut virus from a Murina leucogaster bat in China.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (3), 2097(2013).</li>
<li>Kaplan, M. M. Safety precautions in handling rabies virus. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaplan%2C+MM+%22Laboratory+Techniques+in+Rabies%2C+4th+Ed%22">Laboratory Techniques in Rabies, 4th Ed</a>. Meslin, F. X., Kaplan, M. M., Kiprowski, H. , World Health Organization. Geneva. 3-8 (1996).</li>
<li>World Organization for Animal Health (OIE). Rabies (infection with rabies and other lyssavirus. , Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.17_RABIES.pdf">http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/3.01.17_RABIES.pdf</a> (2019).</li>
<li>Smith, I., Wang, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bats+and+their+virome%3A+an+important+source+of+emerging+viruses+capable+of+infecting+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Virology%22%5BJournal%5D)">Bats and their virome: an important source of emerging viruses capable of infecting humans.</a> Current Opinion in Virology. 3 (1), 84-91 (2013).</li>
<li>Corbet, G. B., Hill, J. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCorbet%2C+GB+%22The+mammals+of+the+Indomalayan+region%3A+a+systematic+review%22">The mammals of the Indomalayan region: a systematic review</a>. , Oxford University Press. Oxford, New York. (1992).</li>
<li>Mayer, F., von Helversen, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryptic+diversity+in+European+bats%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+B%3A+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Cryptic diversity in European bats.</a> Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 268 (1478), 1825-1832 (2001).</li>
<li>Epstein, J. H., Field, H. E. Anthropogenic epidemics: the ecology of bat-borne viruses and our role in their emergence. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEpstein%2C+JH+%22Bats+and+viruses%3A+a+new+frontier+of+emerging+infectious+diseases%22">Bats and viruses: a new frontier of emerging infectious diseases</a>. Wang, L. F., Cowled, C. , John Wiley & Sons, Inc. Hoboken, New Jersey. 249-280 (2016).</li>
<li>Centers for Disease Control and Prevention. Protocol for postmortem diagnosis of rabies in animals by direct fluorescent antibody testing. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf">https://www.cdc.gov/rabies/pdf/rabiesdfaspv2.pdf</a> (2019).</li>
<li>Hayman, D. T. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+universal+real-time+assay+for+the+detection+of+Lyssaviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">A universal real-time assay for the detection of Lyssaviruses.</a> Journal of Virological Methods. 177 (1), 87-93 (2011).</li>
<li>Franka, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+phylogenetic+lineage+of+rabies+virus+associated+with+western+pipistrelle+bats+%28Pipistrellus+hesperus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+General+Virology%22%5BJournal%5D)">A new phylogenetic lineage of rabies virus associated with western pipistrelle bats (Pipistrellus hesperus).</a> Journal of General Virology. 87 (8), 2309-2321 (2006).</li>
<li>Trimarchi, C. V., Smith, J. S. Diagnostic evaluation. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTrimarchi%2C+CV+%22Rabies%2C+1st+ed%22">Rabies, 1st ed</a>. Press, A., Jackson, A. C., Wunner, W. H. , Academic Press. San Diego, CA. 307-349 (2002).</li>
<li>Moldal, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+detection+of+European+bat+lyssavirus+type+2+%28EBLV-2%29+in+Norway%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">First detection of European bat lyssavirus type 2 (EBLV-2) in Norway.</a> BMC Veterinary Research. 13, 216(2017).</li>
<li>Robardet, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+assay+of+fluorescent+antibody+test+results+among+twelve+European+National+Reference+Laboratories+using+various+anti-rabies+conjugates%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Comparative assay of fluorescent antibody test results among twelve European National Reference Laboratories using various anti-rabies conjugates.</a> Journal of Virological Methods. 191 (1), 88-94 (2013).</li>
<li>Hanlon, C. A., Nadin-Davis, S. A. Laboratory diagnosis of rabies. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHanlon%2C+CA+%22Rabies%2C+3rd+ed%22">Rabies, 3rd ed</a>. Jackson, A. C. , Academic Press. San Diego, CA. 409-459 (2013).</li>
<li>Fischer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+step+forward+in+molecular+diagnostics+of+lyssaviruses--results+of+a+ring+trial+among+European+laboratories%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">A step forward in molecular diagnostics of lyssaviruses--results of a ring trial among European laboratories.</a> PLoS ONE. 8 (3), 58372(2013).</li>
<li>David, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabies+virus+detection+by+RT-PCR+in+decomposed+naturally+infected+brains%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Rabies virus detection by RT-PCR in decomposed naturally infected brains.</a> Veterinary Microbiology. 87 (2), 111-118 (2002).</li>
<li>Robardet, E., Picard-Meyer, E., Andrieu, S., Servat, A., Cliquet, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+interlaboratory+trials+on+rabies+diagnosis%3A+an+overview+of+results+and+variation+in+reference+diagnosis+techniques+%28fluorescent+antibody+test%2C+rabies+tissue+culture+infection+test%2C+mouse+inoculation+test%29+and+molecular+biology+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">International interlaboratory trials on rabies diagnosis: an overview of results and variation in reference diagnosis techniques (fluorescent antibody test, rabies tissue culture infection test, mouse inoculation test) and molecular biology techniques.</a> Journal of Virological Methods. 177 (1), 15-25 (2011).</li>
</ol>

Er worden geen belangenconflicten gedeclareerd.

Deze laboratoriumstandaard operating procedure (SOP) biedt een serieel proces voor het testen van BBT-monsters voor de aanwezigheid van Lyssavirus-antigenen in Taiwan. De belangrijkste stappen zijn de tewerkstelling van vet en RT-PCR. Ook de selectie van geschikte monsters en een geslaagde isolatie van het virus zijn belangrijk. Bovendien, sommige problemen is uitgevoerd tijdens de controle van bat lyssavirussen. Het grote verschil was de doeldieren. Aanvankelijk (2008 – 2009), de doeldieren van bat Lyssavirus toezicht w...

Virussen binnen het geslacht Lyssavirus zijn zoönotische pathogenen. Er zijn ten minste zeven Lyssavirus soorten in verband met menselijke gevallen1. In aanvulling op de 16 soorten in dit geslacht1,2,3, Taiwan bat Lyssavirus (twblv)4 en kotalahti bat Lyssavirus5 zijn onlangs geïdentificeerd in vleermuizen, maar hun taxonomische statussen nog te worden bepaald.
Vleermuizen zijn de natuurlijke hosts van de meeste lyssavirussen, met uitzondering van mokola Lyssavirus en Ikoma Lyssavirus, die nog niet zijn geïdentificeerd in een vleermuizen1,2,3,6. De informatie over lyssavirussen in Aziatische vleermuizen is nog steeds beperkt. Twee niet-gekenmerkte lyssavirussen in Aziatische vleermuizen (een in India en de andere in Thailand)7,8 zijn gemeld. Een menselijke rabiës geval geassocieerd met een vleermuis beet in China werd gemeld in 2002, maar de diagnose werd alleen gemaakt door klinische observatie9. In Centraal-Azië, Aravan Lyssavirus werd geïdentificeerd in de kleine muizen-eared bat (Myotis blythi) in kirgizië in 1991, en Khujand Lyssavirus werd geïdentificeerd in de klop knuppel (Myotis mystacinus) in Tadzjikistan in 200110. In Zuid-Azië werd Gannoruwa bat Lyssavirus geïdentificeerd in de Indische Flying Fox (Pteropus Medius) in Sri Lanka in 20153. In Zuidoost-Azië vertoonden verschillende serologische studies over vleermuizen in de Filipijnen, Thailand, Bangladesh, Cambodja en Vietnam een variabele seroprevalentie van11,12,13,14, 15. Hoewel Irkolyssavirus werd geïdentificeerd in de grote buis-nosed bat (Murina leucogaster) in de provincie Jilin, China in 201216, blijven de exacte soorten en locaties van lyssavirussen in Oost-Aziatische vleermuis populaties onbekend.
Om de aanwezigheid van Lyssavirus in de Taiwanese vleermuis populaties te beoordelen, werd een surveillanceprogramma met zowel direct FAT als RT-PCR geïnitieerd. Taiwan bat Lyssavirus werd geïdentificeerd in twee gevallen van de Japanse dwergvleermuis (Pipistrellus abramus)4 in 2016 – 2017. In dit artikel wordt een standaardwerk procedure voor laboratoria geïntroduceerd voor het toezicht op de BBT-populatie in Taiwan door Lyssavirus. Het stroomschema van de bat Lyssavirus diagnose in ons laboratorium is weergegeven in Figuur 1.

<table><tbody><tr><td>2.5% Trypsin (10x)</td><td>Gibco</td><td>15090046</td><td>Trypsin</td></tr><tr><td>25 cm2 flask</td><td>Greiner bio-one</td><td>690160</td><td></td></tr><tr><td>Aceton</td><td>Honeywell</td><td>32201-1L</td><td></td></tr><tr><td>Agarose I</td><td>VWR Life Science</td><td>97062-250</td><td></td></tr><tr><td>Alcohol</td><td>NIHON SHIYAKU REAGENT</td><td>NS-32294</td><td></td></tr><tr><td>AMV Reverse Transcriptase</td><td>Promega</td><td>M5101</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotic-Antimycotic(100X)&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15240-062</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>Blade</td><td>Braun</td><td>BA215</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>eppendorf</td><td>5424R</td><td></td></tr><tr><td>Chemilumineance systeem</td><td>TOP BIO CO.</td><td>MGIS-21-C2-1M</td><td></td></tr><tr><td>Collectiebuis</td><td>Qiagen</td><td>990381</td><td></td></tr><tr><td>Collectiebuis</td><td>SSI</td><td>2341-SO</td><td></td></tr><tr><td>Dekglas</td><td>Muto Pure chemical Co., LTD.</td><td>24505</td><td></td></tr><tr><td>DNA analyzer</td><td>Applied Biosystems</td><td>3700XL</td><td></td></tr><tr><td>Fetaal bovien serum</td><td>Gibco</td><td>10437028</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>FITC Anti-Rabies Monoclonal Globulin</td><td>Fujirebio Diagnostic Inc.</td><td>800-092</td><td>FITC-geconjugeerde anti-rabiësantilichamen: reagens B</td></tr><tr><td>Vier-wels Teflon-coating glasplaatje</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>30-86H-WHITE</td><td></td></tr><tr><td>Gel Electrophoresis System</td><td>Major Science</td><td>MJ-105-R</td><td></td></tr><tr><td>HBSS (1x)</td><td>Gibco</td><td>14175095</td><td>Trypsin</td></tr><tr><td>Incubator</td><td>ASTEC</td><td>SCA-165DS</td><td></td></tr><tr><td>Inverteer microscoop</td><td>Olympus</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine 200 mM (100x)</td><td>Gibco</td><td>A2916801</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>LIGHT DIAGNOSTICS Rabies FAT reagens</td><td>EMD Millipore Corporation</td><td>5100</td><td>FITC-geconjugeerde anti-rabiësantilichamen: reagens A</td></tr><tr><td>MagNA Pure Compact Instrument</td><td>Roche</td><td>03731146001</td><td></td></tr><tr><td>MagNA Pure Compact NA Isolation Kit 1</td><td>Roche</td><td>03730964001</td><td></td></tr><tr><td>MEM (10x)</td><td>Gibco</td><td>11430030</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>MEM NEAA (100x)</td><td>Gibco</td><td>11140050</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>MEM vitamin oplossing</td><td>Gibco</td><td>11120052</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Merck</td><td>1.06329.0500</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>Naald</td><td>Terumo</td><td>NN*2332R9</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Medicago</td><td>09-8912-100</td><td></td></tr><tr><td>Primer synthese</td><td>Mission Biotech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNasin ribonuclease remmer</td><td>Promega</td><td>N2111</td><td></td></tr><tr><td>Sequencing service</td><td>Mission Biotech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glasplaatje</td><td>Thermo Scientific</td><td>AA00008032E00MNT10</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Pyruvaat (100 mM)</td><td>Gibco</td><td>11360070</td><td>MEM-10</td></tr><tr><td>Roestvrijstalen kralen</td><td>QIAGEN</td><td>69989</td><td></td></tr><tr><td>Steriele absorberende pad</td><td>3M</td><td>1604T-2</td><td></td></tr><tr><td>Spuitfilter</td><td>Nalgene</td><td>171-0045</td><td></td></tr><tr><td>Taq polymerase</td><td>JMR Holdings</td><td>JMR-801</td><td></td></tr><tr><td>Thermische cycler</td><td>Applied Biosystems</td><td>2720</td><td></td></tr><tr><td>TissueLyser II</td><td>QIAGEN</td><td>85300</td><td></td></tr><tr><td>Tongdepressor</td><td>HONJER CO., LTD.</td><td>122246</td><td></td></tr><tr><td>Pincet</td><td>Tennyson medical Instrument developing CO., LTD.</td><td>A0601</td><td></td></tr><tr><td>Tylosinetartraat</td><td>Sigma</td><td>T6271-10G</td><td>MEM-10</td></tr></tbody></table>

standaard werkings procedure voor lyssavirus surveillance van de bbt-populatie in taiwan

Standard Operating Procedure for Lyssavirus Surveillance of the Bat Population in Taiwan

Virussen binnen het geslacht Lyssavirus zijn zoönotische pathogenen, en ten minste zeven Lyssavirus soorten worden geassocieerd met menselijke gevallen. Omdat vleermuizen natuurlijke reservoirs zijn van de meeste lyssavirussen, is een Lyssavirus surveillanceprogramma van vleermuizen uitgevoerd in Taiwan sinds 2008 om de ecologie van deze virussen in vleermuizen te begrijpen. In dit programma, niet-gouvernementele bat Conservation organisaties en lokale dierenziekte controlecentra samengewerkt om dode vleermuizen of vleermuizen sterven van zwakte of ziekte te verzamelen. Hersenweefsels van vleermuizen werden verkregen via obductie en onderworpen aan directe fluorescerende antilichaam test (vet) en omgekeerde transcriptie polymerase kettingreactie (RT-PCR) voor detectie van Lyssavirus-antigenen en nucleïnezuren. Voor het vet worden ten minste twee verschillende rabiës diagnose conjugaten aanbevolen. Voor de RT-PCR worden twee verzamelingen van primers (JW12/N165-146, N113F/N304R) gebruikt om een partiële sequentie van het Lyssavirus nucleoproteïne-gen te versterken. Dit surveillanceprogramma bewaakt lyssavirussen en andere zoönoseverwekkers in vleermuizen. Taiwan bat Lyssavirus is te vinden in twee gevallen van de Japanse dwergvleermuis (Pipistrellus abramus) in 2016 – 2017. Deze bevindingen moeten het publiek, gezondheidswerkers en wetenschappers informeren over de potentiële Risico's van contact met vleermuizen en andere dieren in het wild.

Van 2014 tot mei 2017 werden 332 BBT-karkassen uit 13 soorten verzameld voor surveillance. Twee geteste positieve. In de eerste bat geval, de hersen impressie getest negatief met behulp van het vet met een van de commerciële FITC-geconjugeerde anti-rabiës antilichamen (Figuur 2), terwijl de RT-PCRs met gebruikmaking van elk van de twee primer sets (JW12/N165-146, N113F/N304R) leverde positieve resultaten (Figuur 3). Een 428 BP-sequentie van ampliconlengte voor t...

Dit protocol introduceert een standaard laboratoriumprocedure voor diagnostische tests van Lyssavirus antigenen in vleermuizen in Taiwan.

Standaard werkings procedure voor Lyssavirus surveillance van de BBT-populatie in Taiwan

Viruses within the genus Lyssavirus are zoonotic pathogens, and at least seven lyssavirus species are associated with human cases. Because bats are ...

Lyssavirus is een dierentuin-no-tic pathogenen. Om de aanwezigheid van Lyssavirus in Taiwanese vleermuispopulaties te beoordelen, hebben we een bewakingsprogramma gestart. En het identificeerde met succes vier Lyssavirussen van 2016 tot 2018.Dit protocol is een stapsgewijze inleiding tot vi-al Lyssavirus surveillance in Taiwan. We hopen dat het nuttig zal zijn om onderzoek te doen naar mensen die geïnteresseerd zijn in vi-al Lyssavirus surveillance. Het is belangrijk om het juiste tac-vat symbool aan te sluiten.Een dode of stervende vleermuis is geschikter dan een levende vleermuis voor Lyssavirus surveillance. Afhankelijk van de bioveiligheidsvoorschriften van het land waar het laboratorium zich bevindt; de volgende procedures uitvoeren in een geschikt laboratorium op bioveiligheidsniveau. En zorg ervoor dat de onderzoekers momenteel gekwalificeerd zijn en dragen de juiste persoonlijke beschermingsmiddelen.Laat een vleermuisecoloog bij het verzamelen van zwakke of zieke vleermuizen of karkassen de vleermuissoorten identificeren aan de morfologische kenmerken van het monster. Dien bij elk vleermuismonster een informatieblad in bij het laboratorium, met inbegrip van de verzamelplaats, de soorten, de klinische symptomen en andere relevante gegevens. Voordat u met de necroscopie begint, onderzoekt u alle externe openingen en fotografeert u de externe vleermuizen, met name het hoofd, de oren en de vleugels voor soortendifferentiatie.Om een oraal wattenstaafje monster te verzamelen plaats de vleermuis in ventrale recumbency op een steriele dissectie bord en bevestig het hoofd met pincet. Gebruik een scalpel om de huid langs de middellijn van het kuitgebied te snijden;en trek de huid aan de zijkanten, om een incisie in de schedel langs de middellijn van het kalfsgebied te maken. Open de schedel met een pincet om het hersenweefsel bloot te stellen en gebruik de pincet om het hersenweefsel voorzichtig te scheiden van het verbonden zenuwweefsel.Snijd de dwarsdoorsnede van de hersenen, met inbegrip van de hersenstam en cerebellum, en licht aanraken van de gesneden oppervlak van het hersenweefsel met glazen dia's om uitstrijkje indrukken te maken. Druk op de dia op lensweefsel om het overtollige weefsel te verwijderen en bevestig de uitstrijkjeafdruk dia's in min 20 graden Celsius aceton gedurende 30 minuten. Bevestig dan een klein stukje vers hersenweefsel, in formaline, voor histopathologisch onderzoek.En plaats de rest van het weefsel in emi-em 10 voor nucleïnezuur extractie. Vervolgens insnijden van de huid van het spruitstuk naar de anus langs de middellijn van het lichaam, en gebruik maken van de pincet op te heffen en te scheiden van de huid en onderstrepen spierweefsels;om de verzameling van de speekselklieren, gelegen in de buurt van het mandibulaire bot mogelijk te maken. Licht tillen van het borstbeen met de pincet, gebruik de scalpel om het borstbeen en de buikwand langs de middellijn te snijden en snijd de sleutelbeen.Gebruik naalden om de linker en rechter ribbenkast aan de dissectieraad te bevestigen, om de borstholte te openen. En noteert de grove legioenen en de mate van post mortem verandering. Gebruik vervolgens de pincet en scalpel om de viscerale weefsels te verwijderen, indien van toepassing voor de geplande downstream-analyse.Om een directe fluorescerende antilichaamtest aan het einde van de fixatie uit te voeren, droogt u de uitstrijkafafafingsplaten uit en selecteert u ten minste twee geconjugeerde anti-rabiësantilichamen voor de analyse. Filter één antilichaam op elke dia door een zeef van 0,45 micrometer. En de glijbanen 30 minuten uitbroeden bij 37 graden celsius in een vochtige kamer.Aan het einde van de incubatie, afvoer van de overtollige conjugaat en was de dia's met PBS. Gebruik vervolgens een klein volume van 10%glycerol om cover-slips op de dia's te monteren en de dia's door fluorescentiemicroscopie te schetsen. Wanneer ofwel de fluorescerende antilichaam test of de RT-PCR analyse wijst op positiviteit, homogeniseren de hersenen specimen in de 10%suspensie in emi-en 10 en sediment de weefsels fleu-rry door centrifugatie.Inenting 200 microliter van de super-nat-en met drie keer 10 tot de 6e muis neuroblastoom cellen en een milliliter emi-en 10 voor een uur bij 37 graden Celsius en 1%kooldioxide. En breng de hersenen homogeen-cel suspensie naar een 25 centimeter kwadraatkolf, met zes milliliter verse emi-en 10. Op een milliliter van de hersenen homogeen-cel suspensie in een vier-goed Teflon-gecoate glazen glijbaan, met een zes millimeter diameter en plaats de dia op 37 graden Celsius en 1% kooldioxide voor drie tot vier dagen.Na fixatie met 100% aceton, vlek de dia's met dezelfde twee fluorescentie geconjugeerde anti-rabiës antilichamen zoals gebruikt voor de fluorescentie antilichaam test. En visualiseer de dia's door fluorescerende microscopie om het aantal intracida-plas-mic insluitsels te bepalen. Na het trypsinizing en sub-culturing van de ingeënte celcultuur volgens standaardprotocollen, de terugkeer van de koude-cultuur naar de celcultuur incubator voor nog eens drie tot vier dagen met herhalen tellen van het aantal geïnfecteerde cellen zoals net aangetoond totdat een 100% infectiviteit is bereikt.Van januari 2014 tot mei 2017 werden 332 vleermuiskarkassen van 13 soorten verzameld voor toezicht. In deze representatieve analyse van twee positieve vleermuisgevallen testte de hersenindruk negatief met behulp van de fluorescerende antilichaamtest met een van de commerciële, fit-sy geconjugatte anti-rabiës antilichamen, terwijl de RT-PCR die elk van de twee verschillende primersets gebruikt, positieve resultaten opleverde. Uit de onderwerping van de verkregen ampli-con sequentie aan het opvragen van de Gen-bank in de database van Gen bleek dat de volgorde vergelijkbaar was met Lyssavirussen met identiteiten van minder dan 79%, ter ondersteuning van de identiteit van de gedetecteerde Lyssavirussen.Twee Lyssavirussen werden vervolgens met succes geïsoleerd uit de twee hersenen, zoals bevestigd door fluorescentie antilichaam test en sequencing. De belangrijkste stap voor het bepalen van Lyssavirus positiviteit zijn de fluorescentie antilichaam test en de RT-CPR analyse. Het gebruik van twee of meer anti-rabiës antilichamen in de primer sets wordt sterk aanbevolen.Naast Lyssavirus kunnen andere ziekteverwekkers van de dierentuin en de niet-ical knuppel worden gecontroleerd gebruikend gesloten kenmerkende methodes. De gegevens kunnen vervolgens worden gebruikt om het publiek te informeren over het vermijden van contact met vleermuizen. Hoe meer we in staat zijn om vleermuis Lyssavirus te bestuderen, hoe meer we in staat zullen zijn om de evolutie en de impact ervan op de volksgezondheid te begrijpen.

standard-operating-procedure-for-lyssavirus-surveillance-bat

Research

JoVE Journal

Environment

Milieu

Hier presenteren we de protocollen om te identificeren 1) virus-gecodeerde immunomodulators ter bevordering van arbovirus replicatie en 2) eukaryotische gastheer factoren die arbovirus replicatie beperken. Deze fluorescentie - en luminescentie gebaseerde methoden toestaan onderzoekers snel verkrijgen van kwantitatieve uitlezingen van arbovirus replicatie in simplistische testen met lage signaal-ruis verhouding.

Arbovirus infecties als Screening van hulpmiddelen voor de identificatie van de virale Immunomodulators en Host antivirale factoren

Een pan-Lyssavirus geneste omgekeerde transcriptie polymerase chain reactie is ontwikkeld om specifiek te detecteren alle bekende lyssaviruses. Validatie met behulp van rabiës hersenen monsters van verschillende diersoorten bleek dat deze methode een gevoeligheid en specificiteit gelijkwaardig is aan de gouden standaard fluorescerende antilichaam test en kan worden gebruikt voor routine hondsdolheid diagnose heeft.

Evaluatie van een universele geneste omgekeerde transcriptie polymerase chain reactie voor de opsporing van Lyssaviruses

Dit is een protocol voor de optimale weefsel voorbereiding voor genomische, transcriptomische en proteomische analyses van vleermuizen die in het wild zijn gevangen. Het omvat de protocollen voor de inname van vleermuis en dissectie, weefsel conservering, en celculturing van vleermuis weefsel.

Weefsel collectie van vleermuizen voor-omics analyses en primaire celcultuur

Deze real-time RT-PCR met behulp van dsDNA intercalating Dye is geschikt om Lyssavirus infecties te diagnosticeren. De methode begint met RNA geëxtraheerd uit rabiës verdachte ante-mortem-of postmortemmonsters, detaillering Master Mix preparaat, RNA toevoeging, installatie van de real-time machine en juiste interpretatie van de resultaten.

Pan-Lyssavirus real time RT-PCR voor rabiës diagnose

We presenteren een compleet protocol voor postmortem diagnose van dierlijke hondsdolheid onder veldomstandigheden met behulp van een snelle immunochromatografische diagnostische test (RIDT), van hersenbiopsie bemonstering tot uiteindelijke interpretatie. We beschrijven ook verdere toepassingen met behulp van het apparaat voor moleculaire analyse en virale genotypering.

Field Postmortem Rabies Rapid Immunochromagrafische Diagnostische Test voor Resource-Limited Settings met verdere moleculaire toepassingen

Dit protocol demonstreert de pan-lyssavirus LN34 real-time reverse transcriptie-polymerasekettingreactie (RT-PCR)-assay van weefselverzameling tot resultaatinterpretatie, inclusief updates van primersequenties en formuleringen om de testprestaties voor sommige niet-rabiës, lyssavirussen en lagomorfen te verbeteren. We demonstreren ook de testopstelling voor een LN34 multiplexed (LN34M) formaat met één put.

Postmortale diagnose van hondsdolheid bij dieren door de bijgewerkte, gemultiplexte LN34 real-time reverse transcriptie-polymerasekettingreactietest

Er werd een benadering ontwikkeld voor het identificeren van optimale virale concentratiecondities voor kleine watermonsters met behulp van spikes van humaan adenovirus. De hier beschreven technieken worden gebruikt om concentratieparameters voor andere virale doelen te identificeren en worden toegepast op grootschalige virale concentratie-experimenten.

Een klein volume Procedure voor Virale Concentratie van het Water

Speciale zorg met behulp van "schone technieken" is vereist om watermonsters correct te verzamelen en te verwerken voor sporenmetaalstudies in aquatische omgevingen. Er wordt een protocol gepresenteerd voor bemonstering, verwerking en analytische procedures met als doel betrouwbare gegevens voor milieubewaking en resultaten met hoge gevoeligheid voor gedetailleerde sporenmetaalstudies te verkrijgen.

Clean monsterneming en analyse van de rivier en estuariene Waters voor Trace Metal Studies

Plankton en zwevende deeltjes een belangrijke rol spelen in de biogeochemische cycli in de Oceaan. Hier bieden we een Ultra-Clean, lage stress-methode voor het verzamelen van verschillende maten van deeltjes en plankton op zee met de mogelijkheid van het verwerken van grote hoeveelheden zeewater.

Een Ultra-Clean gelaagde apparaat voor het verzamelen van grootte gefractioneerde mariene Plankton en zwevende deeltjes

We presenteren een protocol voor de synthese van C5-suikers (xylose en arabinose) uit een hernieuwbare niet-eetbare lignocellulose biomassa (d.w.z., jute) met de aanwezigheid van Brønsted-zuur, Ionische vloeistoffen (BAILs) als de katalysator in water. De katalysator BAILs tentoongesteld beter katalytische prestaties dan conventionele minerale zure katalysatoren (H2SO4 en HCl).

Een nieuwe methode voor de analyse van de Pentosan aanwezig in Jute biomassa en de omzetting in suiker monomeren met zure Ionische vloeistof

Leer een gestandaardiseerde werkwijze voor Lyssavirus-surveillance bij vleermuizen in Taiwan. Dit protocol helpt onderzoekers bij diagnostisch testen en monitoring van zoönotische ziekten.

Standaard werkings procedure voor Lyssavirus surveillance van de BBT-populatie in Taiwan

Meer video's verkennen