14 december 2020
Door antimicrobiële stoffen geïnduceerde veranderingen in de biofilmarchitectuur van Pseudomonas aeruginosa verschillen tussen klinische isolaten die zijn gekweekt van patiënten met cystische fibrose en chronische longinfectie. Na confocale microscopie kan COMSTAT-software worden gebruikt om variaties in biofilmarchitectuur (bijv. oppervlakte, dikte, biomassa) voor individuele isolaten te kwantificeren om de werkzaamheid van anti-infectiemiddelen te beoordelen.
De betekenis van dit protocol is dat het een eenvoudige en reproduceerbare framework biedt voor het kwantificeren van in vitro biofilmstructuren onder verschillende antimicrobiële omstandigheden. Het grote voordeel van deze techniek is dat het subjectieve variaties elimineert die geassocieerd zijn met de handmatige bediening van COMSTAT, wat uiteindelijk de standaardisatie en transparantie van experimenten tussen onderzoekscentra vergemakkelijkt. Om de Pseudomonas aeruginosa-culturen te beeld, plaatst u de plaat op het stage van een confocale microscoop, uitgerust met de juiste laserexcitatielongen en filtersets.
En gebruik een 20 tot 25x waterimmersielens om ten minste zes gelaagde z-stack beelden te maken van het substraat tot de bovenkant van elk biofilmsegment in stappen van 0,3 micrometer. Sla de beelden vervolgens op als OME-TIFFs voor COMSTAT-analyse. Wanneer alle beelden zijn verworven, opent u het COMSTAT2-pakket in ImageJ en maakt u een bronmap op het bureaublad.
Voeg een enkele OME-TIFF toe aan de map en open OME-TIFF vanuit de bronmap. Verwijder eventuele lege lagen zonder biomassa. Selecteer Bestand, Importeren en Beeldsequentie om het bestand in ImageJ te importeren.
Loceer en markeer de bronmap zonder deze te openen en klik op Selecteren. Er verschijnt een venster met sequentie-opties, klik op OK. Selecteer Beeld, Transformeren en Z-as omdraaien om de oriëntatie van het biofilm om te draaien zodat het substraat zich bovenaan de stack bevindt. Om de beeldeigenschappen te definiëren, selecteert u Beeld en Eigenschappen, er verschijnt een bronvenster.
Geef de lengte-eenheid op als micrometer, definieer de voxeldiepte als 0,3 en klik op OK. Selecteer Beeld, Aanpassen en Drempel. Om de beelddrempel in het drempelvenster aan te passen, plaatst u de onderste schuifregelaar ver naar rechts om de maximale drempelwaarde handmatig in te stellen en gebruikt u de bovenste schuifregelaar om de minimale drempel in te stellen. Gebruik vervolgens de schuifregelaar in het beeldvenster om door elke laag te scrollen om ervoor te zorgen dat de achtergrondruis voldoende is verwijderd door de hele stack, en selecteer Instellen om de onderste drempelwaarde te bevestigen.
In het venster voor het instellen van drempelwaarden, selecteert u OK en stelt en bevestigt u op dezelfde manier de maximale drempelwaarde. Selecteer Toepassen, klik op OK in het venster dat verschijnt om de stack om te zetten naar binair en verlaat het drempelvenster. Selecteer Plugins, Bio-Formats en Bio-Formats Exporter om het bestand met een nieuwe bestandsnaam in de bronmap op te slaan.
Er verschijnt een venster met meerdere bestanden van Bio-Formats Exporter, selecteer OK. Er verschijnt een venster met opties voor Bio-Formats Exporter, selecteer opnieuw OK. Om COMSTAT te runnen, selecteert u plugins en COMSTAT2, er verschijnt een informatievenster, selecteer OK. In het venster Geobserveerde mappen, selecteert u Toevoegen, lokaliseert en markeert u de bronmap, markeert en klikt u op Kiezen. Er verschijnt een venster met Afbeeldingen in mappen dat de te analyseren OME-TIFFs vermeldt.
In het COMSTAT2.1-venster, deselecteert u Automatisch Drempelstelling Otsu's Methode en Geconnecteerde Volume Filteren om ervoor te zorgen dat de software vooraf ingestelde drempelwaarden gebruikt voor individuele OME-TIFFs. In het COMSTAT2.1-venster, selecteert u Biomassa, Diktedistributie en Oppervlakte en klikt u op Ga om het programma uit te voeren. De uitvoergegevens worden weergegeven in het logboekvenster.
De metingen worden automatisch opgeslagen als TXT-bestanden in de bronmap. In deze representatieve analyse werd een Pseudomonas aeruginosa-isolaat, gekweekt van een geïnfecteerde cystische fibrosepatiënt, gebruikt om de sterktes van deze benadering te demonstreren, waarbij onnauwkeurige kwantificering van antimicrobieel geïnduceerde veranderingen in in vitro biofilmarchitectuur werd bereikt. Levende celbeeldvorming kan ook veranderingen in Pseudomonas aeruginosa-biofilmstructuur visualiseren voor en na specifieke monoklonale en tobramycine-behandeling van biofilm.
COMSTAT-gegevensanalyse onthulde significante verschillen tussen behandelde biofilmstructuren vergeleken met controleculturen. In tobramycine-behandelde culturen werd een duidelijke vermindering in de gemiddelde dikte en biomassa waargenomen. Echter, in aanwezigheid van antilichamen, was de P. aeruginosa-biofilm resistent tegen deze tobramycine-geïnduceerde structurele veranderingen.
Bij het onderzoeken van de oppervlakte-tot-biovolume-verhouding, werd een significante vermindering waargenomen in aanwezigheid van antilichamen in zowel tobramycine-behandelde als niet-behandelde biofilms, wat duidt op de vorming van aggregaten in door antilichamen behandelde culturen. Deze procedure kan worden uitgevoerd om kwantitatief de effecten van verschillende antimicrobiële middelen die worden gebruikt om biofilmmatrices te verstoren te beoordelen of te vergelijken. Door deze techniek als een algemene framework te gebruiken, kunnen onderzoekers verschillende manieren verkennen om het protocol te verfijnen om nieuwe wiskundige modellen en algoritmische plugins in ImageJ op te nemen om biofilmheterogeniteit beter weer te geven.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een reproduceerbaar kader voor het kwantificeren van biofilmstructuren van Pseudomonas aeruginosa onder verschillende antimicrobiële omstandigheden. Het protocol beoogt de beoordeling van de biofilmarchitectuur te standaardiseren, waardoor de transparantie tussen onderzoeksinstellingen wordt vergroot.
Gestandaardiseerde kwantificering van antimicrobiële effecten op de biofilmarchitectuur ondersteunt de doelwitvalidatie bij de ontwikkeling van anti-infectieve middelen. Objectieve biofilmmetrieken maken mechanistische risicoreductie van therapeutische kandidaten mogelijk door de blootstelling aan verbindingen te koppelen aan structurele uitkomsten. Deze aanpak verbetert het voorspellende vertrouwen bij preklinische screening door de variabiliteit in de beoordeling van het biofilmfenotype tussen laboratoria te verminderen.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot leadoptimalisatie en biedt kwantitatieve biofilmphenotypering om structuur-activiteitsrelaties te onderbouwen.